- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT01782287
Proteombasert immunterapi av lungekreft hjernemetastaser
Proteombasert personlig immunterapi av hjernemetastaser fra lungekreft
Forsøkshypotese: Akutt, progredierende dødelig nevroonkologisk prosess kan overføres til kronisk og ikke-dødelig, overlevelsesrater og livskvalitet kan forbedres ved å kontrollere antall tumorceller (TCs) og målrettet regulering av effektorfunksjoner til tumorstamceller (TSCs) ).
Kort beskrivelse:
Førstelinjebehandlingen av hjernemetastaser av lungekreft (BMLC) involverer allogene haploidentiske hematopoietiske stamceller (HSC), dendritisk vaksine (DV) og cytotoksiske lymfocytter (CTL).
TC-er og TSC-er er isolert fra BMLC-prøve. Dendrittiske celler isoleres fra mononukleære celler fra perifert blod og dyrkes. Tumorprøve gir tumorspesifikke antigener for å forberede DV. CTL-er oppnås fra perifert blod etter DV-administrasjoner. HSC-er høstes fra nært beslektet donor etter administrering av granulocytt-koloni-stimulerende faktor (G-CSF).
Allogene HSC-er administreres intratekalt 5 ganger hver 2. uke, på dag 1, 14, 28, 42, 56. DV gis 3 ganger hver 2. uke (dag 14, 28, 42) subkutant i fire punkter. CTL-er administreres hver 2. uke i 3 måneder, deretter 3 ganger hver 1. måned intratekalt. Seks måneder etter at behandlingen er fullført, blir effektiviteten evaluert og kohorten som viser effektivitet fortsetter behandlingen, mens kohort som viser ingen effektivitet overføres til den aktive komparatorarmen.
Andrelinjebehandling involverer DV med rekombinante proteiner, CTL-er og autolog HSC med modifisert proteom. Autologe HSC-er mobiliseres av G-CSF.
Karsinogenesefrie intracellulære signaltransduksjonsveier som er i stand til å reagere på målrettet regulering av terapeutiske cellesystemer med spesifikke egenskaper, oppdages i TSC-er ved bruk av fullstendig transkriptomprofilering av genuttrykk, proteomkartlegging og profilering av proteiner, bioinformasjon og matematisk analyse og matematisk modellering av protein profiler. For å finne viktige onkospesifikke proteiner i TSC-er og TC-er, oppdages målene for TSC-regulering, så vel som proteinligander som er i stand til å regulere reproduktive og proliferative egenskaper til TSC-er.
Ved å bruke disse dataene fra TC-er og TSC-proteiner, blir cellepreparatene for å initiere adoptiv immunrespons forberedt: DV lastet med rekombinante proteiner analoge med nøkkeltumorantigener, CTL-er og autologe proteombaserte HSC-er.
Autologe proteommodifiserte HSC-er, DV- og CTL-er administreres som i førstelinjebehandlingen.
Studieoversikt
Status
Forhold
Detaljert beskrivelse
Forsøket vil omfatte 60 tilfeller av refraktorhjernemetastaser fra lungekreft (BMLC) av forskjellig malignitet etter ikke mindre enn én linje med standard kjemoterapi og fullstendig strålebehandlingsforløp.
Deltakerne vil gå inn i den eksperimentelle (førstelinjeterapi) armen og vil bli delt inn i 3 undergrupper av 20 tilfeller: gruppe I av histologisk bekreftede lungeadenokarsinomtilfeller med hjernemetastaser; gruppe II av histologisk bekreftede småcellet lungekrefttilfeller med hjernemetastaser; og gruppe III av plateepitel-lungekrefttilfeller med hjernemetastaser.
Førstelinjebehandlingen av BMLC involverer allogene haploidentiske hematopoietiske stamceller (HSC), dendritisk vaksine (DV) og cytotoksiske lymfocytter (CTL).
HSC-er brukes til å stimulere individualisert adoptiv immunrespons, for å påvirke tumorceller (TC-er) toksisk og for å regulere tumorstamceller (TSC) målrettet for å undertrykke deres reproduktive og proliferative potensial. For å oppnå HSC mottar giveren 8 subkutane administreringer av granulocyttkolonistimulerende faktor (G-CSF) med 8-10 timers intervall i 4 dager. De første tre dagene er en enkeltdose 2,5 mcg per 1 kg vekt, den siste dagen dobles dosen. Stamcellene høstes på dag 5. Røde blodceller trekkes ut ved sentrifugering. Innholdet av cellemarkører blir evaluert ved flowcytometri. Resultatet vurderes etter anrikning av cytokonsentrat og fjerning av modne celler og plasma fra det. Preparatet oppbevares i rør per 4 ml med kryoprotektor og 10 % poliglucinløsning. Stamcelleandelen er ikke mindre enn 0,5x106 CD34+, og andelen lymfocytter er ikke mindre enn 0,5x109 per administrasjon.
Prøven av hjernesvulst er oppnådd gjennom stereotaksisk/endoskopisk/åpen biopsi fra alle pasienter inkludert i forsøket. TC-er og TSC-er er immunkjemisk isolert fra BMLC-biopsiprøve. En del av tumorprøven brukes til standard histologisk, cytologisk og immunkjemisk testing, mens TC-er og TSC-er (CD133+) er isolert fra den andre delen.
Dendrittiske celler isoleres fra mononukleære celler fra perifert blod og dyrkes. Tumorprøve gir tumorspesifikke antigener for å forberede dendrittiske vaksinen (DV).
Utarbeidelse av CTL-er har som mål å forbedre cytotoksisk effekt på svulst på grunn av et stort antall sirkulerende CTL-er. CTL'er isoleres fra ca. 100 ml perifert blod etter 3 DV-administrasjoner, og av dem dyrkes dendritiske celler (DC'er). Deretter tas perifert blod gjentatte ganger, og lymfocytter isoleres. CTL-ene dyrkes sammen med DC-er lastet med tumorantigener (førstelinjeterapi) eller rekombinante proteiner analogt med nøkkelonkospesifikke proteiner (andre linjebehandling) flere ganger for å utvide antallet (108-109). Deres immunfenotype blir oppdaget og CTL-er kryokonserveres. Den første stimuleringen av CTL-er med DC-er varer 6-8 dager, den andre varer 2-4 dager, neste 2 dager stimuleres lymfocyttene for tredje og fjerde gang. Og deretter stimuleres de mottatte lymfocyttene av IL-2 i 2 dager.
Seks måneder etter fullføring av førstelinjebehandlingen blir effektiviteten evaluert og kohorten som viser effektivitet fortsetter terapien, mens kohort som viser ingen effektivitet vil fortsette forsøket med andrelinjeterapi i aktiv komparatorarm.
Den andre linjens terapiarm bruker DV med rekombinante proteiner analoge med nøkkelonkospesifikke proteiner, autologe CTL-er og autologe HSC-er med modifisert proteom.
Autologe HSC-er mottas fra prøvedeltakeren som beskrevet tidligere. Cellepreparat av HSC for aktiv komparatorarm oppnås av cytokonsentratet av autologe mononukleære celler av perifert blod etter mobilisering som spesifisert for eksperimentell arm. Tumorspesifikke antigener for aktiv komparatorgruppe tilveiebringes av pasientens tumorvev.
TC-er og TSC-er samt HSC-er for pasienten gjennomgår fullstendig transkriptomkartlegging og genekspresjonsprofilering (CTMGEP) og proteomkartlegging og proteinprofilering (PMPP). Nøkkel (3 eller 4 proteiner med maksimal normalisert intensitet) onkospesifikke proteiner (OSP) bestemmes i henhold til proteomtesting av TC-er, mens proteomprofilering av TSC-er og bruk av databaser med protein-protein-relasjoner tillater deteksjon av intracellulære signaltransduksjonsveier (ISTP) upåvirket ved kreftfremkalling og i stand til å regulere. Dessuten påvises reseptormembranmål for å påvirke disse signalveiene (akseptormembranproteiner), så vel som proteiner som er i stand til å aktivere dem (proteinligander). CTMGEP av TSC-er bekrefter diagnostisert funksjonell ISTP. Matematisk modellering av CTMGEP og sammenligning med Affymetrix GeneChip Humant genom U133A Array-data avslører perturbagener som er i stand til kjemisk å indusere HSC-er og å modifisere deres proteomprofil for å gi sekresjon av nødvendige proteinligander. Databaseanalysen tillater forståelse av hvordan endringer i genuttrykk indusert av et lavmolekylært middel eller mikro-RNA samsvarer med endringene observert i den undersøkte profilen. Hvis korrespondanse er betydelig, antas det at agenten eller lignende agenter kan sette i gang effekten. Hvis anti-korrelasjon er signifikant, er midlet ment å initiere en motsatt effekt i genekspresjonsmodifikasjon. Transkriptomet til HSC-er modifiseres ved å dyrke mononukleære celler sammen med perturbagens. Deres biologiske effektivitet blir evaluert in vitro i Homunculus bioreaktor. Deretter lagres preparatet som beskrevet tidligere.
Individuell DV tilberedes fra leukokonsentratet av perifert blod fra pasienten. Lymfocyttene isoleres, dyrkes med G-CSF og interleukin-2, kondisjoneres av tumorspesifikke antigener, TNF-α og PGE2 i 48 timer og lades med rekombinante proteiner som er identiske med nøkkeltumorspesifikke antigener påvist ved proteomisk testing av tumorceller ( TC-er). Grunnleggende mekanisme for DV-immuneffekt er utarbeidelse av tumortoksiske lymfocytter av pasientens organisme.
CTL-er oppnås som beskrevet tidligere. Inngrepet er beskrevet i det aktuelle avsnittet.
Toksisitet vil bli evaluert i henhold til CTC-NCI kriterier. Effektiviteten vurderes etter følgende kriterier:
- Fullstendig effekt - full forsvinning av alle tumorfoci
- Delvis effekt - reduksjon av tumorstørrelse og/eller metastatiske foci med ikke mindre enn 50 % og ingen tegn på nye neoplasmer
- Stabilisering - reduksjon av tumorfocistørrelse med mindre enn 50 % og ingen tegn til nye neoplasmer
- Fremgang - vekst av tumorfoci under terapien. Ved mosaikkeffekt, når en del av foci utvikler seg og en del er stabil eller reduserende, fortsettes terapien, men tilfellene analyseres utenfor konteksten "Respons på terapien"
Studietype
Registrering (Forventet)
Fase
- Fase 2
- Fase 3
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
-
Moscow, Den russiske føderasjonen, 115478
- ZAO "NeuroVita Clinic of Interventional and Restorative Neurology and Therapy"
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Kjønn som er kvalifisert for studier
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- Morfologisk bekreftede lungekreftmetastaser til hjernen (i tilfelle av tilbakefall og umulighet for biopsi, diagnose basert på radiologiske og andre diagnostiske metoder)
- Hjernemetastaser fra lungekreftrefraktor til 1. og etter konvensjonelle kjemoterapier og strålebehandling, i tilfelle fjerning av dem ikke er mulig
- Tilbakefall av hjernemetastaser fra lungekreft etter ikke mindre enn ett kurs med konvensjonell kjemoterapi og strålebehandling i tilfelle fjerning av dem ikke er mulig.
- Tilgjengelighet av HLA delvis kompatibel relatert donor
- Forventet levetid på ikke mindre enn 3 måneder
- Fravær av alvorlig dekompensert organdysfunksjon
- Informert samtykke fra pasienten eller deres foreldre
- Informert samtykke fra giveren
Ekskluderingskriterier:
- Manglende oppfyllelse av et av inklusjonskriteriene
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: BEHANDLING
- Tildeling: IKKE_RANDOMIZED
- Intervensjonsmodell: PARALLELL
- Masking: INGEN
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
EKSPERIMENTELL: allogene stamceller
3 ml suspensjon av allogene hematopoietiske stamceller i 0,9% NaCl-løsning administreres i L3-L4 ryggvirvler mellomrom med 16-18G nål.
Preparatet administreres hver 2. uke de første 2 månedene (på dag 1, 14, 28, 42, 56). 2 ml individuell dendritisk vaksine administreres subkutant i 4 punkter (skuldre og mage) 3 ganger hver 14. dag fra terapistart (på dag 14, 28 og 42).
Meloksikam, 7,5 mcg én gang daglig startes fra dag 7 til dag 42.
Preparering av cytotoksiske lymfocytter administreres intratekalt en gang i 2 uker i løpet av de første 3 månedene, og deretter en gang i måneden i tre måneder.
|
|
|
ACTIVE_COMPARATOR: autologe stamceller
3 ml suspensjon av proteommodifiserte autologe hematopoietiske stamceller i 0,9 % NaCl-løsning administreres i L3-L4-virvlene mellomrom med 16-18G nål.
Preparatet administreres hver 2. uke de første 2 månedene (på dag 1, 14, 28, 42, 56). 2 ml individuell dendritisk vaksine administreres subkutant i 4 punkter (skuldre og mage) 3 ganger hver 14. dag fra terapistart (på dag 14, 28 og 42).
Meloksikam, 7,5 mcg én gang daglig startes fra dag 7 til dag 42.
Preparering av cytotoksiske lymfocytter administreres intratekalt en gang i 2 uker i løpet av de første 3 månedene, og deretter en gang i måneden i tre måneder.
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tidsramme |
|---|---|
|
Alle forårsaker dødelighet
Tidsramme: 2 år
|
2 år
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tidsramme |
|---|---|
|
Fullstendig forsvinning av alle tumorfoci
Tidsramme: 2 år
|
2 år
|
Andre resultatmål
Resultatmål |
Tidsramme |
|---|---|
|
reduksjon av tumorstørrelse med ikke mindre enn 50 % og fravær av nye foci
Tidsramme: 2 år
|
2 år
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Samarbeidspartnere
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Andrey S. Bryukhovetskiy, MD, ZAO "NeuroVita Clinic of Interventional and Restorative Neurology and Therapy"
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Bryukhovetskiy IS, Mischenko PV, Tolok EV, Zaitcev SV, Khotimchenko YS, Bryukhovetskiy AS. Directional migration of adult hematopoeitic progenitors to C6 glioma in vitro. Oncol Lett. 2015 Apr;9(4):1839-1844. doi: 10.3892/ol.2015.2952. Epub 2015 Feb 10.
- Bryukhovetskiy A, Shevchenko V, Kovalev S, Chekhonin V, Baklaushev V, Bryukhovetskiy I, Zhukova M. To the novel paradigm of proteome-based cell therapy of tumors: through comparative proteome mapping of tumor stem cells and tissue-specific stem cells of humans. Cell Transplant. 2014;23 Suppl 1:S151-70. doi: 10.3727/096368914X684907. Epub 2014 Oct 9.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart
Primær fullføring (FORVENTES)
Studiet fullført (FORVENTES)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (ANSLAG)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (FAKTISKE)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Nøkkelord
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Patologiske prosesser
- Hjernesykdommer
- Sykdommer i sentralnervesystemet
- Sykdommer i nervesystemet
- Sykdommer i luftveiene
- Neoplasmer
- Lungesykdommer
- Neoplasmer etter nettsted
- Neoplasmer i luftveiene
- Thoracale neoplasmer
- Neoplastiske prosesser
- Neoplasmer i sentralnervesystemet
- Neoplasmer i nervesystemet
- Lungeneoplasmer
- Neoplasma Metastase
- Neoplasmer i hjernen
- Neoplasmer, Second Primær
- Fysiologiske effekter av legemidler
- Immunologiske faktorer
- Vaksiner
Andre studie-ID-numre
- MCL/2012
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .