- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT07346820
Recombinación VDJ del Receptor de Células B Tras el Trasplante de Células Madre Hematopoyéticas (VReST)
Recombinación VDJ del receptor de células B tras el trasplante de células madre hematopoyéticas, un estudio observacional
Cuando una persona se somete a un trasplante de células madre, un procedimiento importante utilizado para tratar enfermedades sanguíneas graves como la leucemia, el linfoma o el mieloma, todo el sistema inmunitario se ve afectado. El trasplante esencialmente "reinicia" el sistema inmunitario, lo que significa que el paciente pierde gran parte de la protección contra infecciones que se ha acumulado a lo largo de la vida. Después del trasplante, el paciente necesita, por tanto, ser revacunado contra varias enfermedades, como el tétanos, la difteria, la poliomielitis, la COVID-19 y la enfermedad neumocócica.
En este estudio, pretendemos investigar cómo se reconstituyen las células B, las células inmunitarias que producen anticuerpos, después de un trasplante de células madre. Nos interesa especialmente un proceso genético llamado recombinación VDJ, mediante el cual cada célula B desarrolla un receptor único que le permite reconocer y combatir un virus o bacteria específicos. Este proceso es lo que hace que nuestro sistema inmunitario sea tan eficaz. Pero, ¿qué ocurre con esta diversidad después de que todo el sistema inmunitario se ha reiniciado con nuevas células madre? ¿Recupera el cuerpo la misma capacidad para reconocer patógenos? ¿Existen diferencias entre los pacientes que reciben sus propias células madre (trasplante autólogo) y los que reciben células madre de otra persona (trasplante alogénico)?
Para responder a estas preguntas, seguiremos a pacientes que se someten a un trasplante de células madre en el Hospital Universitario de Umeå. Recogeremos muestras de sangre antes y después del trasplante y evaluaremos si, y con qué eficacia, los pacientes generan anticuerpos en respuesta a las vacunas administradas después del trasplante. Mediante citometría de flujo y análisis genéticos, examinaremos tanto qué poblaciones de células B se generan como cuál es su arquitectura genética. El objetivo es comprender cómo se reconstruye el nuevo sistema inmunitario después del trasplante y, en última instancia, ayudar a mejorar las estrategias de vacunación y la prevención de infecciones para este grupo vulnerable de pacientes.
Descripción general del estudio
Estado
Descripción detallada
Propósito y objetivos
El sistema inmunitario humoral es crucial para generar respuestas protectoras contra infecciones microbianas graves. Esta es una respuesta altamente específica, en la que los clones de células B vírgenes que reconocen epítopos en un patógeno se activan, se expanden clonalmente y se diferencian en células B de memoria y células plasmáticas productoras de anticuerpos.
La especificidad de la respuesta depende de la recombinación VDJ que crea clones de células B vírgenes, cada uno con un receptor de células B distinto que porta segmentos variables (V), de diversidad (D) y de unión únicos. Si bien el proceso de recombinación VDJ está bien investigado, no está bien establecido cómo/si la recombinación VDJ se ve afectada en las células B después del trasplante de células madre autólogo o alogénico. Este conocimiento podría mejorar las estrategias para revacunar a grupos de pacientes vulnerables que requieren trasplante de células madre para aliviar varios trastornos hematológicos. Aquí, utilizaremos muestras de individuos antes y después del trasplante de células madre hematopoyéticas para definir mejor el impacto en la recombinación VDJ y las respuestas clonales a antígenos vacunales.
Antecedentes
El trasplante de células madre es un procedimiento en el que la mayoría/todas las células hematopoyéticas son erradicadas de un paciente y reemplazadas por nuevas células madre derivadas de "uno mismo" (autólogo) o de un donante compatible con el MHC. Tras una transferencia exitosa de células madre, emergerán nuevas células hematopoyéticas sanas. Después del procedimiento, la inmunidad a varias enfermedades prevenibles por vacunación se pierde o se ve gravemente afectada, poniendo al paciente en riesgo.
Tras el trasplante, los pacientes son vacunados contra varias enfermedades infecciosas según un calendario de vacunación establecido. Esto brinda una oportunidad para estudiar la recombinación VDJ en una situación donde el sistema inmunitario se "reinicia": comparar y contrastar la situación antes del procedimiento, así como las diferencias entre el trasplante autólogo y alogénico.
Se implementa un calendario de vacunación estandarizado basado en las recomendaciones de la Conferencia Europea sobre Infecciones en Leucemia (ECIL) para pacientes con HSCT. Se recomiendan vacunas contra infecciones neumocócicas, haemophilus influenzae capsulado, tétanos, difteria, polio, tos ferina, covid19 e influenza para todos. Se pueden considerar más vacunas según las preferencias del paciente.
Las células B son cruciales para las respuestas inmunitarias humorales, ya que responden específicamente a un antígeno y luego se diferencian en células plasmáticas productoras de anticuerpos y en células B de memoria. La importancia de esto para la protección contra una infección primaria se ilustra fácilmente por la susceptibilidad a enfermedades infecciosas graves si el sistema inmunitario humoral es defectuoso o después del tratamiento con fármacos que agotan las células B, como los anticuerpos anti-CD20. Además, la generación de memoria inmunológica nos protege contra la reinfección con el mismo patógeno. De importancia crítica para esta respuesta es la especificidad antigénica del receptor de células B (BCR) de los clones de células B vírgenes.
El BCR comprende una cadena pesada y una ligera de inmunoglobulina con una especificidad distinta. La especificidad se crea mediante la recombinación VDJ, donde uno de los numerosos segmentos V, D y J se combinan en una región VDJ de la cadena pesada, y uno de los numerosos segmentos V y J se combinan en una cadena ligera. La combinación de estos asegura que cada uno de los clones emergentes de células B vírgenes tenga una capacidad distinta y única para reconocer un epítopo. La diversidad que se genera asegura que el sistema inmunitario pueda responder clonalmente a casi cualquier patógeno extraño que encuentre. Mediante la secuenciación del BCR de las células B, es posible determinar exactamente qué segmentos V, D o J se han recombinado aleatoriamente para reconocer un antígeno específico. Las células T experimentan un proceso similar de recombinación VDJ después de la maduración en el timo.
Después del trasplante de células madre, el segmento VJ del receptor de células T de la cadena beta se desarrolla con una simetría relativa pero una complejidad reducida, en comparación con el donante. Esto puede explicar por qué las células B pueden mostrar una hipermutación somática dependiente de células T reducida después del trasplante. Sin embargo, no se comprende bien si surgirá un conjunto similar de clones de células B después del trasplante de células madre autólogo o de un donante alogénico. Dado que los pacientes de trasplante de células madre se someten a vacunación, esto nos permitirá estudiar de cerca el proceso de recombinación VDJ específica de antígeno antes y después del "reinicio" del sistema inmunitario, y vincularlo a las respuestas antigénicas específicas después de la vacunación. Nuestra hipótesis es que esto revelará más información sobre cómo/si la naturaleza del trasplante afectará la recombinación VDJ posterior y conducirá a una capacidad o patrón alterado de reconocimiento inmunitario.
Además, se ha demostrado que las respuestas inmunitarias humorales deterioradas durante el envejecimiento pueden depender de factores extrínsecos más que intrínsecos que afectan la expresión de Bcl6 y CD39 en el compartimento de células T. La disponibilidad potencial de muestras de donantes alogénicos con variación de edad permitirá una posible verificación de estos resultados en humanos.
Descripción del proyecto
Estructura del estudio
Este es un estudio de cohorte observacional que sigue a pacientes después del trasplante de células madre, examinando el desarrollo de células B después del calendario de vacunación estandarizado y establecido que se administra como parte de la práctica clínica. En la versión actual de este calendario en Västerbotten, se incluyen vacunas contra neumococos, haemophilus influenzae, COVID-19, tétanos, difteria, polio y tos ferina. La vacunación contra sarampión, paperas y rubéola puede administrarse después de una prueba de inmunidad negativa a los 24 meses del trasplante.
Muestreo
i. Muestreo antes de iniciar la medicación inmunosupresora
ii. Muestreo al ingresar para el trasplante de células madre
iii. Muestreo antes de cada punto de tiempo de vacunación hasta los 24 meses desde el trasplante.
iv. En trasplante alogénico, muestreo del donante relacionado si está disponible (muestreo una vez).
Análisis de muestras de sangre
Caracterización de células B y secuenciación VDJ
Identificación antigénica específica de células B; Utilizaremos metodología establecida para detectar células B específicas de antígeno. En resumen, se utilizarán proteínas de SARS-CoV-2 o proteína hemaglutinina de influenza tipo A marcadas con biotina y fluorocromo para determinar células B específicas de vacuna CD19+ CD20+ mediante citometría de flujo. Nos centraremos en las células que han sufrido respuestas de células B dependientes del timo (CD27+IgD-) y fenotiparemos estas para marcadores de activación como DAF y CD71.
Para examinar el repertorio VDJ antes y después del trasplante, nos basaremos principalmente en secuenciación masiva, pero podemos someter muestras a secuenciación de células individuales para revelar si el emparejamiento de cadenas pesadas y ligeras se ve afectado por el trasplante. También pretendemos diseccionar patrones transcripcionales en células B para revelar patrones o moléculas específicas que predigan activamente el establecimiento eficiente de células B de memoria o plasmablastos después del trasplante de células madre. Para patrones transcripcionales, realizaremos expresión génica de células individuales 10x Chromium para proporcionar el transcriptoma de células individuales de hasta 10,000 células B de memoria específicas de vacuna. Mediante análisis combinado de datos fenotípicos y transcriptómicos, podremos identificar biomarcadores o patrones de expresión génica que predigan un establecimiento robusto de memoria inmunológica "potenciable" después del trasplante de células madre.
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Martin Angelin, MD, PhD
- Número de teléfono: +46-76-1465525
- Correo electrónico: martin.angelin@umu.se
Ubicaciones de estudio
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Umeå, Suecia
- Umeå University Hospital
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Contacto:
- Martin Angelin, MD, PhD
- Correo electrónico: martin.angelin@umu.se
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
- Adulto
- Adulto Mayor
Acepta Voluntarios Saludables
Método de muestreo
Población de estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
- Edad > 18 años.
- Dispuesto y capaz de participar en todas las partes del estudio.
- Consentimiento escrito firmado.
- Pacientes con una enfermedad de células plasmáticas o linfoma que califiquen para trasplante autólogo de células madre hematopoyéticas según determine el médico tratante O Pacientes con una condición para la cual pueda ser necesario un trasplante alogénico de células madre y que califiquen para trasplante de células madre hematopoyéticas según el médico tratante O Donante de células madre, que done a un participante del estudio.
Criterios de exclusión:
- Incapaz de dar consentimiento informado.
- No adecuado para participar en el estudio según el criterio del médico tratante.
- Participación previa en este ensayo.
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
Cohortes e Intervenciones
Grupo / Cohorte |
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Pacientes sometidos a trasplante autólogo de células madre
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Pacientes sometidos a trasplante alogénico de células madre
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Donantes de células madre
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Recombinación VDJ del receptor de células B (BCR) después del trasplante autólogo y alogénico de células madre en comparación con muestras previas al trasplante o con muestras del donante de células madre. Para la comparación, también se medirán los niveles de anticuerpos IgM e IgG.
Periodo de tiempo: Desde la inclusión hasta el final del estudio, que es 24 meses después del trasplante
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El estudio examinará el desarrollo de BCR y la recombinación VDJ después del trasplante de células madre en respuesta a la exposición a diferentes antígenos vacunales en comparación con las muestras tomadas antes del trasplante o las muestras del donante de células madre cuando estén disponibles.
Debido a la falta de estudios previos y por tratarse de un estudio exploratorio, no es posible definir objetivos cuantitativos medibles.
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Desde la inclusión hasta el final del estudio, que es 24 meses después del trasplante
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Diferencias en la respuesta a antígenos vacunales tras un trasplante autólogo de células madre en comparación con un trasplante alogénico de células madre en la recombinación VDJ del receptor de células B y en los niveles de anticuerpos IgM e IgG.
Periodo de tiempo: Desde la inclusión hasta el final del estudio, que es 24 meses después del trasplante
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El estudio examinará el desarrollo de BCR y la recombinación VDJ después del trasplante de células madre en respuesta a la exposición a antígenos vacunales en comparación con el período anterior al trasplante o con el donante de células madre.
Debido a la falta de estudios previos y por tratarse de un estudio exploratorio, no es posible definir puntos finales cuantitativos medibles.
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Desde la inclusión hasta el final del estudio, que es 24 meses después del trasplante
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Colaboradores e Investigadores
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Colaboradores
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Sorror ML, Maris MB, Storb R, Baron F, Sandmaier BM, Maloney DG, Storer B. Hematopoietic cell transplantation (HCT)-specific comorbidity index: a new tool for risk assessment before allogeneic HCT. Blood. 2005 Oct 15;106(8):2912-9. doi: 10.1182/blood-2005-05-2004. Epub 2005 Jun 30.
- Cordonnier C, Einarsdottir S, Cesaro S, Di Blasi R, Mikulska M, Rieger C, de Lavallade H, Gallo G, Lehrnbecher T, Engelhard D, Ljungman P; European Conference on Infections in Leukaemia group. Vaccination of haemopoietic stem cell transplant recipients: guidelines of the 2017 European Conference on Infections in Leukaemia (ECIL 7). Lancet Infect Dis. 2019 Jun;19(6):e200-e212. doi: 10.1016/S1473-3099(18)30600-5. Epub 2019 Feb 8.
- Dernstedt A, Leidig J, Holm A, Kerkman PF, Mjosberg J, Ahlm C, Henriksson J, Hultdin M, Forsell MNE. Regulation of Decay Accelerating Factor Primes Human Germinal Center B Cells for Phagocytosis. Front Immunol. 2021 Jan 5;11:599647. doi: 10.3389/fimmu.2020.599647. eCollection 2020.
- Kaku CI, Champney ER, Normark J, Garcia M, Johnson CE, Ahlm C, Christ W, Sakharkar M, Ackerman ME, Klingstrom J, Forsell MNE, Walker LM. Broad anti-SARS-CoV-2 antibody immunity induced by heterologous ChAdOx1/mRNA-1273 vaccination. Science. 2022 Mar 4;375(6584):1041-1047. doi: 10.1126/science.abn2688. Epub 2022 Feb 10.
- Fisher JS, Adan-Barrientos I, Kumar NR, Lancaster JN. The aged microenvironment impairs BCL6 and CD40L induction in CD4+ T follicular helper cell differentiation. Aging Cell. 2024 Jun;23(6):e14140. doi: 10.1111/acel.14140. Epub 2024 Mar 13.
- Suzuki I, Milner EC, Glas AM, Hufnagle WO, Rao SP, Pfister L, Nottenburg C. Immunoglobulin heavy chain variable region gene usage in bone marrow transplant recipients: lack of somatic mutation indicates a maturational arrest. Blood. 1996 Mar 1;87(5):1873-80.
- Meier JA, Haque M, Fawaz M, Abdeen H, Coffey D, Towlerton A, Abdeen A, Toor A, Warren E, Reed J, Kanakry CG, Keating A, Luznik L, Toor AA. T Cell Repertoire Evolution after Allogeneic Bone Marrow Transplantation: An Organizational Perspective. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 May;25(5):868-882. doi: 10.1016/j.bbmt.2019.01.021. Epub 2019 Jan 21.
- Cesaro S, Mikulska M, Hirsch HH, Styczynski J, Meylan S, Cordonnier C, Navarro D, von Lilienfeld-Toal M, Mehra V, Marchesi F, Besson C, Masculano RC, Beutel G, Einsele H, Maertens J, de la Camara R; ECIL 9; Ljungman P, Pagano L. Update of recommendations for the management of COVID-19 in patients with haematological malignancies, haematopoietic cell transplantation and CAR T therapy, from the 2022 European Conference on Infections in Leukaemia (ECIL 9). Leukemia. 2023 Sep;37(9):1933-1938. doi: 10.1038/s41375-023-01938-5. Epub 2023 Jul 17. No abstract available.
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