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- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04604912
Biomarqueurs dans le diagnostic des allergies alimentaires (APSIS)
Endotypage multi-omique de patients allergiques aux aliments pour la découverte avancée de biomarqueurs
L'allergie alimentaire est un fardeau mondial, affectant les patients, la société dans son ensemble et l'économie. Pour les allergies alimentaires les plus courantes, les patients synthétisent des anticorps IgE spécifiques contre des protéines alimentaires inoffensives. Les phénotypes cliniques des patients allergiques aux aliments sont très divers. Les différences dans les symptômes médicaux (organes, gravité, délai), les seuils et les niveaux de réactivité croisée suggèrent des endotypes sous-jacents variables.
Le but de cette étude est d'identifier des biomarqueurs phénotypiques pour une stratification avancée des patients allergiques aux aliments. Notre étude comprendra jusqu'à 50 participants (30 allergiques alimentaires, 20 tolérants), recrutés au Luxembourg. Des échantillons cliniques seront prélevés avant, pendant et après l'événement d'un défi alimentaire en double aveugle contrôlé par placebo pour les patients. Les analyses multi-omiques du sang (sérums, cellules mononucléées du sang périphérique, basophiles) et des selles permettront une compréhension plus approfondie des mécanismes immunitaires sous-jacents, y compris les aspects du métabolisme des allergènes, ainsi que du microbiome intestinal fonctionnel. Le décryptage de ces aspects fondamentaux au cours de la présente étude pilote devrait ouvrir la voie à de nouvelles approches de médecine personnalisée pour le diagnostic et le traitement des personnes allergiques aux aliments.
Cette étude est un projet de coopération entre le Centre Hospitalier de Luxembourg (CHL), le Luxembourg Institute of Health (LIH), l'Université du Luxembourg et l'Integrated Biobank of Luxembourg (IBBL).
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Arrière-plan. Les allergies alimentaires sont un fardeau mondial provoquant des réactions cliniques graves, notamment une anaphylaxie mortelle. Les cacahuètes comptent parmi les éliciteurs les plus puissants impliqués dans les allergies alimentaires à médiation IgE. L'allergie à l'arachide est un modèle de maladie pertinent en raison de sa prévalence en constante augmentation et de son mauvais pronostic d'excroissance. Les phénotypes cliniques des patients allergiques aux arachides sont très variables. Les patients peuvent présenter des symptômes médicaux variables (organes, gravité, retard), les seuils et les niveaux de réactivité croisée le suggèrent. Il manque un biomarqueur in vitro fiable permettant de prédire la réactivité clinique et de classer les patients en endotypes de réaction.
Les allergènes d'arachide les plus importants ont été étudiés quant à leurs propriétés biomoléculaires, leurs activités biologiques et leur pouvoir allergène. On pense que la stabilité prononcée des protéines des allergènes puissants de l'arachide contribue à l'allergénicité des molécules. Lors de l'ingestion, les protéines alimentaires sont décomposées et pénètrent dans le corps humain via les surfaces épithéliales. L'identité et le sort des peptides allergènes immunologiquement actifs après absorption épithéliale restent insaisissables. Au-delà, des cascades immunitaires complexes se produisent lors d'épisodes allergiques aigus. La manière dont les cellules immunitaires, telles que les lymphocytes, s'orchestrent chez les patients présentant différents résultats cliniques (par exemple, sensibilité, gravité) reste à résoudre. Plusieurs études ont montré que la composition et la diversité du microbiote intestinal sont pertinentes pour façonner la réponse immunitaire aux protéines alimentaires. L'interaction fonctionnelle entre l'hôte et le microbiome intestinal, dans le contexte du développement des symptômes et des variations phénotypiques, est inexplorée jusqu'à aujourd'hui.
Objectifs. Ce projet vise à explorer des biomarqueurs putatifs à différents niveaux, au niveau des profils IgE, au niveau de l'absorption des allergènes, au niveau de la réactivité basophile notée, au niveau des phénotypes immunitaires et au niveau des interactions microbiome intestinal-hôte. , en appliquant plusieurs technologies omiques.
Les partenaires. Le Luxembourg Institute of Health (LIH), Department of Infection and Immunity (DII; chef Prof. M. Ollert) a le chef de projet scientifique (Principal Investigator Dr. A. Kuehn). Les principaux partenaires cliniques sont le Dr F. Codreanu-Morel de l'Unité nationale d'immunologie-allergologie, Centre Hospitalier (CHL), Luxembourg, ainsi que le Pr C. Bindslev-Jensen du Centre de recherche sur l'anaphylaxie d'Odense (ORCA), Danemark. Le partenaire pour l'exécution de la partie clinique sera le Centre d'investigation clinique et épidémiologique (CIEC, LIH) dirigé par le Dr M. Gantenbein. La Biobanque Intégrée du Luxembourg (IBBL) préparera et conservera les échantillons cliniques jusqu'à leur utilisation. Des échantillons cliniques (sang, sérums, plasma) seront analysés au DII, LIH. Des échantillons de selles seront étudiés avec l'aide du Prof. P. Wilmes du groupe de recherche sur l'écologie des systèmes, Luxembourg Centre for Systems Biomedicine (LCSB).
La mise en œuvre du projet. Les défis alimentaires (OFC) à l'arachide seront effectués conformément aux directives officielles (Académie européenne d'allergie et d'immunologie clinique, EAACI). Les témoins sains (N = 10) seront divisés, la moitié recevra une dose alimentaire unique allant jusqu'à 100 g d'arachides grillées (OFC ouvert) et l'autre moitié sera testée avec jusqu'à 5 doses incrémentielles (contrôle par placebo en double aveugle OFC) en utilisant les mêmes doses que pour les patients allergiques. Pour l'OFC à dose unique, des échantillons de sang des témoins seront prélevés avant l'OFC et à 30 minutes, à 60 minutes et à 120 minutes. Les témoins recevant 5 doses incrémentielles d'allergènes seront soumis à un prélèvement sanguin avant le début de l'OFC et 1 h après la fin du challenge. En tant que bras de contrôle supplémentaire dans l'étude, des aliments allergènes d'origine animale seront utilisés dans l'OFC. D'autres témoins sains (N = 10) recevront soit une dose alimentaire unique allant jusqu'à 200 g de poisson cuit (OFC ouvert) et l'autre moitié sera testée avec jusqu'à 5 doses incrémentielles (OFC en double aveugle contrôlé par placebo). Des doses comprises entre 10 mg et 100 g de poisson seront sélectionnées pour l'OFC en aveugle avec témoins.
Les participants allergiques (N = 30) ingéreront des doses supplémentaires d'arachides. Les doses d'OFC seront comprises entre 5 mg, 15 mg, 60 mg, 120 mg, 200 mg, 390 mg, 790 mg, 1 580 mg, 3 160 mg et 5 530 mg d'arachide grillée. Un maximum de cinq doses sera sélectionné parmi les gammes de doses d'arachides mentionnées ci-dessus. Dès l'observation de symptômes allergiques, l'OFC sera arrêté. Si aucun symptôme allergique n'est apparu lors d'un challenge alimentaire avec cinq doses incrémentielles, le patient sera invité à participer à une deuxième provocation orale (min. 14 jours plus tard) afin de subir un test avec des doses d'allergènes plus élevées. Des échantillons de sang de participants allergiques à l'étude seront prélevés avant, pendant et après l'OFC (0, 60, 150, 180 minutes).
Des échantillons de selles de participants allergiques aux arachides (n = 30) et de témoins sains (n = 20) seront prélevés au plus tôt 2 mois après le défi alimentaire. Avant l'échantillonnage, les participants ne doivent pas avoir utilisé d'antibiotiques au cours du dernier mois, ou avoir des symptômes gastro-intestinaux récents/en cours (= diarrhée ; échelle de Bristol 5-7) au moment de la collecte des selles. Les participants recevront un kit de prélèvement à domicile, contenant des tubes de prélèvement spéciaux, des gants et des instructions. De plus, les patients sont invités à enregistrer leur prise alimentaire au cours des dernières 24 heures avant le prélèvement.
Les échantillons cliniques collectés seront pseudonymisés dans les centres cliniques. Une liste de synonymes, faisant partie du dossier de l'investigateur, contenant les informations sur l'identité des participants et le pseudonyme correspondant, sera disponible au centre clinique uniquement (médecins investigateurs) et au CIEC. Les données personnelles sont protégées au titre du règlement (UE) 2016/679 du 27 avril 2016 relatif à la protection des personnes physiques à l'égard du traitement des données à caractère personnel (RGPD) et de la loi du 1er août 2018 portant organisation de la Commission Nationale de la Protection des Données et la loi générale sur la protection des données.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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Esch-sur-Alzette, Luxembourg, 4354
- Luxembourg Institute of Health
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Luxembourg, Luxembourg, 1210
- Centre Hospitalier Luxembourg
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Pour la cohorte allergique :
Critère d'intégration:
- 2-70 ans
- masculin ou féminin
- Allergique à l'arachide (évaluée par l'anamnèse, les tests de réactivité cutanée, les tests sériques pour les IgE spécifiques)
- Signer un consentement éclairé
- Challenge alimentaire diagnostic prévu
Critère d'exclusion:
- Co-morbidité importante
- Traitement médical par anti-inflammatoires non stéroïdiens ou aspirine, traitement chronique par bêta-bloquants, inhibiteurs de l'enzyme de conversion de l'angiotensine, utilisation d'antihistaminiques dans les 5 jours suivant la provocation alimentaire orale et de corticoïdes oraux dans les 14 jours précédant la provocation
- Médical inapte au défi (ex : fièvre, malaise avec maladie intercurrente)
- Femmes enceintes
- Asthme déséquilibré
- Anaphylaxie sévère d'origine alimentaire
Pour la cohorte témoin :
Critère d'intégration:
- Adultes
- masculin ou féminin
- Signer un consentement éclairé
- Tolérance aux arachides et au poisson (titre IgE < 0,10 kUA/L)
Critère d'exclusion
- Grossesse
- Inaptitude médicale à l'épreuve (ex : fièvre, malaise avec maladie intercurrente),
- Asthme déséquilibré
- Traitement par anti-inflammatoires non stéroïdiens ou aspirine
- Traitement chronique par bêta-bloquants, inhibiteurs de l'enzyme de conversion de l'angiotensine
- Utilisation d'antihistaminiques dans les 5 jours suivant la provocation alimentaire orale
- Corticostéroïdes oraux dans les 14 jours précédant le défi
- Risque d'anaphylaxie sévère d'origine alimentaire chez les patients hautement sensibilisés et allergiques aux arachides
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
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Groupe de patients allergiques à l'arachide
L'objectif est d'inclure 30 patients allergiques à l'arachide.
Ces patients subiront des défis alimentaires diagnostiques (doses incrémentielles) tandis que du sang sera prélevé avant, pendant et après le test.
Les patients recevront des soins standard pendant et après le défi.
Les symptômes allergiques seront traités conformément aux directives établies.
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Groupe de contrôle
L'objectif est d'inclure 20 participants témoins, 10 individus tolérants aux arachides et 10 individus tolérants au poisson.
Ces participants subiront des défis alimentaires diagnostiques (doses incrémentielles ou uniques) tandis que le sang sera prélevé avant, pendant et après le test.
Les mêmes mesures de sécurité seront appliquées pour les provocations alimentaires des individus témoins, comme pour les patients allergiques.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Modification des peptides d'allergènes périphériques (échantillons de sérum) en fonction de l'absorption d'allergènes alimentaires
Délai: Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 3 mois
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Abondance de peptides allergènes détectée par spectrométrie de masse.
La comparaison principale portera sur deux groupes d'étude, les patients allergiques aux aliments par rapport aux témoins sains
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Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 3 mois
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Modification des profils de réactivité des basophiles in vitro (cellules échantillonnées avant la provocation alimentaire) à l'aide de peptides d'allergènes alimentaires définis dans différents mélanges de peptides et concentrations de peptides
Délai: Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 3 mois
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Réactivité des cellules effectrices par activation dose-dépendante (%-CD63+ CCR3+basophiles) et mesure par cytométrie en flux.
La comparaison principale se fera au sein du groupe de patients allergiques aux aliments, en alignant les patients avec une réactivité élevée/faible et une sensibilité élevée/faible des basophiles.
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Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 3 mois
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Changement des phénotypes des cellules immunitaires en fonction de l'absorption des allergènes alimentaires
Délai: Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 3 mois
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Abondance et fonction des cellules immunitaires détectées par cytométrie de masse unicellulaire.
La comparaison principale portera sur deux groupes d'étude, les patients allergiques aux aliments par rapport aux témoins sains.
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Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 3 mois
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Modification de la libération de cytokines
Délai: Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 3 mois
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Quantification des cytokines par dosages immunologiques multiplex.
La comparaison principale portera sur deux groupes d'étude, les patients allergiques aux aliments par rapport aux témoins sains.
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Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 3 mois
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Caractéristiques de base du microbiome intestinal fonctionnel chez les patients allergiques aux aliments
Délai: Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 2 mois
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Profilage de l'ADN, de l'ARN, des protéines et des métabolites à l'aide d'une approche multi-omique via le séquençage de l'ARN 16S, la méthode de séquençage métagénomique à haute résolution impartiale et l'analyse transcriptomique (Illumina MiSeq & NextSeq) ainsi que l'analyse métabolomique (chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse/chromatographie liquide -spectrométrie de masse).
De plus, analyse des composants microbiens par immunoessais spécifiques d'anticorps et cytométrie en flux.
La comparaison principale portera sur deux groupes d'étude, les patients allergiques aux aliments par rapport aux témoins sains.
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Échantillons analysés jusqu'à la fin de l'étude, une moyenne de 2 mois
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Annette Kuehn, PhD, Luxembourg Institute of Health
Publications et liens utiles
Publications générales
- Muraro A, Lemanske RF Jr, Castells M, Torres MJ, Khan D, Simon HU, Bindslev-Jensen C, Burks W, Poulsen LK, Sampson HA, Worm M, Nadeau KC. Precision medicine in allergic disease-food allergy, drug allergy, and anaphylaxis-PRACTALL document of the European Academy of Allergy and Clinical Immunology and the American Academy of Allergy, Asthma and Immunology. Allergy. 2017 Jul;72(7):1006-1021. doi: 10.1111/all.13132. Epub 2017 Apr 12.
- Matricardi PM, Kleine-Tebbe J, Hoffmann HJ, Valenta R, Hilger C, Hofmaier S, Aalberse RC, Agache I, Asero R, Ballmer-Weber B, Barber D, Beyer K, Biedermann T, Bilo MB, Blank S, Bohle B, Bosshard PP, Breiteneder H, Brough HA, Caraballo L, Caubet JC, Crameri R, Davies JM, Douladiris N, Ebisawa M, EIgenmann PA, Fernandez-Rivas M, Ferreira F, Gadermaier G, Glatz M, Hamilton RG, Hawranek T, Hellings P, Hoffmann-Sommergruber K, Jakob T, Jappe U, Jutel M, Kamath SD, Knol EF, Korosec P, Kuehn A, Lack G, Lopata AL, Makela M, Morisset M, Niederberger V, Nowak-Wegrzyn AH, Papadopoulos NG, Pastorello EA, Pauli G, Platts-Mills T, Posa D, Poulsen LK, Raulf M, Sastre J, Scala E, Schmid JM, Schmid-Grendelmeier P, van Hage M, van Ree R, Vieths S, Weber R, Wickman M, Muraro A, Ollert M. EAACI Molecular Allergology User's Guide. Pediatr Allergy Immunol. 2016 May;27 Suppl 23:1-250. doi: 10.1111/pai.12563.
- Bunyavanich S, Berin MC. Food allergy and the microbiome: Current understandings and future directions. J Allergy Clin Immunol. 2019 Dec;144(6):1468-1477. doi: 10.1016/j.jaci.2019.10.019.
- Costa J, Bavaro SL, Benede S, Diaz-Perales A, Bueno-Diaz C, Gelencser E, Klueber J, Larre C, Lozano-Ojalvo D, Lupi R, Mafra I, Mazzucchelli G, Molina E, Monaci L, Martin-Pedraza L, Piras C, Rodrigues PM, Roncada P, Schrama D, Cirkovic-Velickovic T, Verhoeckx K, Villa C, Kuehn A, Hoffmann-Sommergruber K, Holzhauser T. Are Physicochemical Properties Shaping the Allergenic Potency of Plant Allergens? Clin Rev Allergy Immunol. 2022 Feb;62(1):37-63. doi: 10.1007/s12016-020-08810-9.
- Jappe U and Kuehn A. Neues zu diagnostisch relevanten Einzelallergenen aus pflanzlichen und tierischen Nahrungsmittelallergenquellen. Allergologie 2016; 39: 425-438. doi: 10.5414/ALX01885.
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Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
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