- ICH GCP
- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT05570383
PAR에 대한 집먼지진드기 알레르겐을 이용한 SLIT의 효능 및 기전 관찰 (SLIT)
집먼지진드기 알레르겐을 이용한 통년성 알레르기 비염에 대한 설하면역요법의 효과와 ILC1s 및 ILC2s 및 ILC3s를 가진 ILCs에 대한 작용기전 관찰
알레르기성 비염은 흔하고 재발하는 이비인후과(ENT) 질환입니다. 전 세계 인구의 10~20%가 앓고 있는 만성 또는 계절성 질환입니다. 전 세계적으로 치료하기 가장 어려운 질병 중 하나로 간주되며 주요 글로벌 건강 문제가 되었습니다.
설하 면역 요법(SIT)은 현재 면역 조절 메커니즘을 통해 알레르기성 비염의 자연적 진행을 변경할 수 있는 효과적인 페어링 요법으로 간주됩니다. 면역 요법은 중등도에서 중증의 간헐적 또는 지속성 알레르기 비염 환자, 특히 약물 치료가 좋지 않은 환자에게 더 적합합니다. 이 치료는 알레르기성 비염의 중증도를 크게 줄이고 알레르기 약물 사용을 줄이며 많은 환자의 삶의 질을 향상시킬 수 있습니다.
알레르기성 비염의 발병에서 Th1/Th2/Th17 세포의 면역 균형 조절은 현재 알레르기성 비염 치료에 중요한 접근 방식으로 여겨진다. 그러나 내재적 면역 반응이 알레르기성 비염의 병인이라는 증거가 점점 늘어나고 있습니다. 선천성 림프구는 점막 면역 형성, 림프구 발달, 조직 손상 복구 및 상피 장벽 보호에 관여하며 감염 퇴치, 염증 조절 및 면역 항상성 유지에 중요한 역할을 합니다. 내인성 림프구의 세 가지 하위 집합(ILC1s, ILC2s, ILC3s)이 헬퍼 T 림프구(Th)에서 기능적으로 Th1, Th2 및 Th17에 근접하도록 제안되었지만 결과는 결정적이지 않으며 AR 진행에서 ILC 역할의 메커니즘은 완전히 밝혀지지 않았습니다. .
따라서 본 연구의 목적은 통년성 알레르기 비염에 대한 설하면역요법의 효능 및 기전을 규명하고, ILCs(ILC1s, ILC2s, ILC3s)와 Th1/Th2/Th17 세포면역의 상관관계를 규명하고 근거를 제공하는데 있다. 알레르기성 비염의 임상 연구를 위해
연구 개요
상태
정황
상세 설명
알레르기성 비염(AR)은 주요 만성 호흡기 염증성 질환이 되었으며, 세계적인 불응성 질환 중 하나로 간주됩니다. 중요한 글로벌 건강 문제가되었습니다.
AR의 치료는 주로 환경조절, 약물치료, 면역치료 등이 있다. 연구에 따르면 AR 환자의 먼지 진드기 알레르겐 피부 단자 테스트 양성률은 70%에 달할 수 있습니다. 집먼지 진드기는 알레르기성 비염, 천식 등의 알레르기 질환을 일으키는 주요 알레르겐으로 임상 생활 환경에 편재되어 있는 것으로 알려져 있다. 환자가 실생활에서 집먼지진드기에 대한 노출을 완전히 피하기는 어렵기 때문에 특정면역치료 SIT로 환자의 알레르기 체질을 변화시키는 것이 학계의 주목을 받고 있다.
특정 면역 요법은 현재 IgE 매개 제1형 알레르기 질환의 병인학적 치료인 알레르겐 회피와 더불어 보다 확실한 치료적 접근으로 간주되고 있습니다. 알레르겐 추출물의 복용량을 점진적으로 늘리고 점차적으로 신체의 면역 내성을 유도하여 증상이 있는 환자가 알레르겐에 다시 접촉할 때 이 효과가 현저하게 감소하거나 심지어 발생하지 않도록 하기 위해 치료 종료 시 이 효과의 효과를 몇 년 동안 지속할 수 있습니다. 면역 메커니즘에 의해 조절될 수 있는 유일한 것으로 간주되어 알레르기 질환을 자연적으로 치료하는 효과적인 방법으로, 면역 기능을 변화시켜 질병 진행을 변화시킴으로써 임상 치료에서 그 안전성과 효능이 입증되었습니다. 현재 SIT는 주로 피하면역요법(SCIT)과 설하면역요법(SLIT)으로 구성되어 있으며 용량축적기와 용량유지기로 구분된다. 면역요법에는 표준화된 알레르기 백신을 사용해야 합니다. 이 치료법은 AR의 중증도를 크게 줄이고 항알레르기 약물 사용을 줄이며 많은 환자의 삶의 질을 향상시킬 수 있습니다. 특히 어린이의 경우 면역요법을 통해 알레르기 증상을 줄일 수 있을 뿐만 아니라 알레르기성 비염에서 천식 및 기타 심각한 감작 반응으로 발전하는 것을 예방할 수 있습니다. AR 인식 지침에 따르면 중등도에서 중증의 간헐적 또는 지속성 AR 환자, 특히 약물 치료 효과가 좋지 않은 환자에게 면역 요법이 더 적합합니다.
SCIT와 비교하여 SLIT는 비교적 작동이 간단하고 비침습적이며 내약성이 우수하고 안전합니다. 전신 부작용의 위험은 낮습니다. 또한 알레르겐 백신은 의사의 지도하에 환자나 보호자가 집에서 접종할 수 있어 병원 방문 횟수가 줄어들어 임상에서 적극 권장하고 있다.
SLIT의 알레르겐 백신은 주로 중국의 먼지 진드기 방울입니다. AR의 임상 치료에 먼지 진드기 알레르겐의 설하 면역 요법의 적용은 1986년에 시작되었습니다. 설하 면역 요법의 투여 방식은 피하 면역 요법과 다릅니다. 알레르겐 백신을 혀 아래에 놓고 몇 분 동안 흡수한 후 삼키고 백신을 구강 점막을 통해 체내로 섭취합니다. 1993년 유럽임상면역학회(European Society of Clinical Immunology and Allergy)는 설하면역요법이 피하면역요법보다 안전하고 효과적이라고 제안했다. 1998년에 WHO는 SLIT를 성인 알레르기성 비염에 사용하도록 제안했습니다. 2001년 세계보건기구(WHO)의 ARIA 그룹은 SLIT가 AR을 효과적으로 치료할 수 있고 환자가 약물 사용을 줄일 수 있다고 지적하면서 SLIT에 대한 세계적 관심이 높아지고 있다. 2013년 세계알레르기기구(WAO)는 입장문을 통해 SLIT의 임상적 효능과 안전성을 확인했을 뿐만 아니라 알레르기 질환의 초기 및 초기 임상치료제로 SLIT를 권고하기도 했다. 그것의 적용은 약물 치료 실패를 전제로 할 필요는 없습니다. 알레르겐 특이 면역 요법은 2015년 신판 중국 지침에서 AR의 1차 요법으로 제안되어 임상 사용이 권장됩니다.
알레르기성 비염은 아토피 환자가 알레르겐에 노출된 후 주로 면역글로불린 E(IgE)에 의해 매개되는 비점막의 비감염성 만성 염증성 질환입니다. 알레르겐의 종류에 따라 AR은 계절성과 다년생으로 나눌 수 있습니다. 질병의 경과에 따라 간헐성 및 지속성으로 나눌 수 있습니다. 삶의 질에 미치는 영향은 경증과 중등도로 나뉩니다. 현재 연구에 따르면 Th1/Th2/Th17 세포 면역 불균형이 AR 병인의 중요한 메커니즘인 것으로 나타났습니다.
AR의 발달에서 T 세포는 항원과 직접 반응하는 유일한 세포입니다. 보조 T 림프구 Th 세포는 InterLeukin-2를 생성하는 전구 세포에서 파생됩니다. 초기 자극 후, 이들 세포는 Th0 세포(CD4+T 세포)로 발달합니다. 인터페론-γ(IFN-γ), IL-2, IL-4 및 IL-5를 생산할 수 있으며 Th0 세포는 사이토카인의 작용에 따라 IL-12 및 IFN-γ의 유도하에 Th1 세포로 분화될 수 있습니다. . IFN-γ, IL-2 및 종양 괴사 인자 β(TNF-β)를 분비하여 세포 면역 반응에 참여합니다. IL-4의 유도하에 이들은 Th2 세포로 분화하고 IL-4, IL-5, IL-13, IL-8 및 기타 사이토카인을 분비하여 체액성 면역 반응에 참여한다. Th17은 새로운 유형의 T 헬퍼 림프구로 신체의 염증 반응을 활성화하고 자가 면역 시스템의 조절에 참여할 수 있는 전 염증 세포입니다. 2003년에 발견되어 IL-17, IL-23 등의 상징적 인자를 분비할 수 있고 신체의 자가 면역 반응에 중요한 역할을 하기 때문에 붙여진 이름입니다.
AR의 발생 및 발달에서 IFN-γ, IL-4 및 IL-17은 각각 Th1, Th2 및 Th17의 주요 이펙터입니다. Th2 세포에 의해 방출되는 IL-4 면역 염증 인자가 IgE 수준에 조절 효과가 있는 것으로 보고되었습니다. 그러나 Th1 세포에 의해 방출되는 IFN-γ는 Th2 세포에 의한 IL-4 분비를 억제하는 효과가 있습니다. Il-17은 Th17 세포에서 분비되는 사이토카인으로 강력한 염증 유발 효과가 있습니다. 환자의 혈청 IL-17은 IgE 수치와 양의 상관관계가 있으며 증가된 수치는 AR 진단의 지표로 사용될 수 있습니다. 따라서 Th1/Th2/Th17 세포의 면역 균형을 조절하는 것은 AR을 치료하는 중요한 방법입니다. 그러나 증가하는 증거는 선천적 면역 반응이 또한 AR의 병인이라는 것을 보여줍니다.
선천적 면역 체계는 병원체나 항원 침입에 대한 첫 번째 방어선이며 그 반응은 신속하고 비특이적입니다. 그 후, 활성화된 적응 면역 시스템은 특정 항원을 완전히 제거합니다. 선천면역의 중요한 작동세포군인 선천림프구세포(ILCs)는 수용체 유전자 재배열과 클론 선택을 거치지 않고, 골수세포와 수지상세포의 표현형 마커가 부족하고, 형태가 다음과 같은 세 가지 주요 특징을 갖는다. 림프 계통에. ILC는 주로 편도선, 기관지-폐, 장관, 피부 및 기타 점막 장벽 부위에 주로 분포하는 조직 상주 림프구입니다. ILC는 점막 면역 형성, 림프구 발달, 조직 손상 복구 및 상피 장벽 보호에 관여하며 감염 퇴치, 염증 조절 및 면역 항상성 유지에 중요한 역할을 합니다.
ILCs에 의해 분비되는 표현형과 사이토카인에 따라 ILCs는 유형 1, 2 및 3 선천 림프구(ILC1s, ILC2s 및 ILC3s)의 3가지 하위 집합으로 나눌 수 있으며, 이들은 기능적으로 대략 Th 세포의 Th1, Th2 및 Th17에 해당합니다. ILC1에는 T-박스 전사 인자(T-BET)에 의존하고 다량의 인터페론(IFN-γ)과 종양 괴사 인자-α(TNF-α)를 생성하는 자연 살해 세포(NK) 및 ILC1 세포가 포함됩니다. ILC2의 발달은 Th2형 사이토카인과 IL-4, IL-5, IL-9, IL-13 및 혈관 내피 성장 인자(VEGF)와 같은 다른 이펙터 분자를 생성하는 전사 인자 GATA3에 의존합니다. 2형 면역 반응의 발달. 또한 특정 항원을 인식하는 T 세포와 달리 ILC2는 IL-25, IL-33을 포함한 비특이적 사이토카인에 반응하고 흉선 간질 림프구는 호르몬을 생성합니다. TSLP는 ILC2의 활성화 및 증식을 자극하여 많은 양의 IL-5 및 IL-13을 생성하여 기도 염증 및 기도 과민성을 유발할 수 있습니다. ILC3는 전사 인자 RORTt에 의존하여 Th17과 유사한 사이토카인 IL-17 및 IL-22를 생성합니다.
일부 연구에 따르면 AR 환자의 비강 상피가 알레르겐에 의해 자극을 받은 후 상피의 전염증성 사이토카인이 증가하고 집먼지진드기 환자의 비강 세척액에서 IL-25, IL-33 및 TSLP가 검출될 수 있음이 밝혀졌습니다. 진드기(HDM) 알레르기. 그러나 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)에 의해 방출되는 IL-25의 수준은 자작나무 및 꽃가루 알레르기 환자의 호염기구가 알레르겐에 의해 자극된 후에 상향 조절될 것입니다. 알레르기성 진균성 부비동염 환자의 비강 상피 세포에서 ILC2의 양이 증가하고 상피 세포에서 유래된 IL-25에 의해 긍정적으로 조절된다는 것을 연구에서 보여주었습니까? 코 점막. 다른 연구에서는 HDM 알레르기 환자의 말초 혈액에서 ILC2의 수가 증가하고 그 수의 변화가 증상의 중증도와 양의 상관관계가 있음을 보여주었습니다. 식물 알레르겐에 의한 AR에 대한 연구에서 잔디 꽃가루 알레르기가 있는 환자의 말초 혈액에서 ILC2와 ILC3의 수가 증가한 반면 ILC1의 수는 크게 변하지 않은 것으로 나타났습니다. 그러나 다른 연구에서는 AR 환자의 말초 혈액에서 ILC2 수가 증가하지 않았지만 천식 환자의 ILC2 수가 증가한 것으로 나타났습니다. AR 환자의 말초 혈액에서 ILC2 수가 증가하는지 여부에 대한 합의가 없습니다.
결론적으로, AR의 기전은 주로 Th1/Th2/Th17 세포 면역의 불균형과 관련이 있지만, 선천적 면역 반응도 AR의 병인이라는 증거가 점점 더 많아지고 있으며, AR의 발달에서 ILC의 특정 메커니즘 완전히 밝혀지지 않았습니다.
결론적으로, AR의 기전은 주로 Th1/Th2/Th17 세포 면역의 불균형과 관련이 있지만, 선천적 면역 반응도 AR의 병인이라는 증거가 점점 더 많아지고 있으며, AR의 발달에서 ILC의 특정 메커니즘 완전히 밝혀지지 않았습니다. 따라서 본 연구는 통년성 알레르기 비염 치료에 있어 설하 탈감작의 효능과 ILC에 대한 작용기전을 탐색하고, ILC(ILC1s, ILC2s, ILC3s)와 Th1/Th2/Th17 세포 면역과의 상관관계를 규명하고, AR에 대한 임상 연구를 위한 연구 기반.
연구 유형
등록 (예상)
단계
- 2 단계
- 3단계
연락처 및 위치
연구 연락처
- 이름: Guangjun Tang, MD
- 전화번호: 86+13595302195
- 이메일: tgjdoctor@163.com
연구 연락처 백업
- 이름: Long Chai, MM
- 전화번호: 13985740068
- 이메일: lcassrmyy2022@163.com
연구 장소
-
-
Guizhou
-
Anshan, Guizhou, 중국, 561000
- Guangjun Tang
-
연락하다:
- Long Chai, MM
- 전화번호: 86+13985740068
- 이메일: lcassrmyy2022@163.com
-
연락하다:
- Fangming Chen, MB
- 전화번호: 86+18985735028
- 이메일: cfangming2022@163.com
-
수석 연구원:
- Guangjun Tang, MD
-
부수사관:
- Long Chai, MM
-
부수사관:
- Fangming Chen, MB
-
-
참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
연구 대상 성별
설명
포함 기준:
- 위 진단기준에 해당하는 자
- 질병 경과는 최소 1년입니다.
- 18세 이상 65세 미만, 남녀 모두;
- 지난 1개월 동안 특정 면역 요법을 받지 않았거나 지난 1주 동안 AR에 대한 약물을 사용하지 않았음;
- 정상적인 인지 기능을 가진 사람들은 이 연구에 참여하고 정보에 입각한 동의서에 서명하는 데 동의합니다.
제외 기준:
- 위의 진단 및 포함 기준을 충족하지 않는 자
- 심한 비강 중격 편차, 만성 비부비동염, 기관지 천식, 비용종, 상기도 감염, 폐 감염 및 기타 질병이 있는 환자;
- 심장, 간, 신장 또는 자가면역 질환의 심각한 기능 장애가 있는 환자
- 임산부 또는 수유부;
- 알레르기 체질 및 실험용 약물 및 성분에 대한 알레르기;
- 약물 중독 병력이 있는 환자;
- 정기적으로 약물을 복용할 수 없는 주요 신경정신과 질환을 가진 환자
- 다른 임상시험에 참여하고 있는 환자. 위의 기준 중 하나라도 충족하는 환자는 제외되었습니다.
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 주 목적: 치료
- 할당: 무작위
- 중재 모델: 병렬 할당
- 마스킹: 삼루타
무기와 개입
참가자 그룹 / 팔 |
개입 / 치료 |
|---|---|
|
위약 비교기: 대조군에서
피험자 중 절반(30명)을 대조군으로 할당하고 모메타손 푸로에이트 비강 스프레이(Nasonex)를 사용합니다.
|
실험 그룹은 설하 면역 요법(상품명: Changdi, Zhejiang Tawu Biotechnology Co., Ltd.)을 사용합니다.
대조군은 Mometasone Furoate Aqueous Nasal Spray (NASUNA); 두 그룹의 치료 과정은 3개월이 될 것이다.
다른 이름들:
|
|
실험적: 실험군
피험자 중 절반(30명)이 실험 그룹에 할당됩니다.
설하 면역 요법을 위해 설하 먼지 진드기 방울 (상품명 : Changdi, Zhejiang Wuwu Biotechnology Co., LTD.)을 받았습니다.
|
실험 그룹은 설하 면역 요법(상품명: Changdi, Zhejiang Tawu Biotechnology Co., Ltd.)을 사용합니다.
대조군은 Mometasone Furoate Aqueous Nasal Spray (NASUNA); 두 그룹의 치료 과정은 3개월이 될 것이다.
다른 이름들:
|
연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
총 코 증상 점수 척도의 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
총 코 증상 점수 척도가 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
시각적 아날로그 스케일의 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
시각적 아날로그 스케일이 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
비결막염의 생활 설문지에 의한 질의 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
비결막염의 삶의 질 설문지를 수집합니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IgE 혈청 수준의 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IgE 수치를 수집합니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IFN-γ의 혈청 농도 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IFN-γ 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IL-4의 혈청 수준 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IL-4 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IL-17의 혈청 농도 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IL-17 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
TNF-α의 혈청 농도 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 TNF-α 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IL-5의 혈청 농도 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IL-5 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IL-9의 혈청 수준의 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IL-9 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IL-13의 혈청 농도 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IL-13 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IL-25의 혈청 수준의 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IL-25 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IL-33의 혈청 농도 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IL-33 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
VEGF의 혈청 수준 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 VEGF 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
TSLP의 혈청 수준 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 TSLP 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
|
IL-22의 혈청 수준의 변화
기간: 기준선, 1개월, 3개월
|
혈청 샘플은 IL-22 수준으로 수집됩니다.
|
기준선, 1개월, 3개월
|
2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
ILC(ILC1s, ILC2s, ILC3s)와 Th1/Th2/Th17 세포 면역 사이의 상관 관계를 밝히기 위해
기간: 치료 3개월 후
|
ILC(ILC1s, ILC2s, ILC3s)와 Th1/Th2/Th17 세포 면역 사이의 상관 관계를 밝히기 위해 통년성 알레르기 비염의 치료에서 설하 탈감작의 효능 및 기전을 탐색하고, ILCs(ILC1s, ILC2s, ILC3s)와 Th1/Th2/Th17 세포면역의 상관관계 규명 |
치료 3개월 후
|
공동 작업자 및 조사자
수사관
- 연구 의자: Guangjun Tang, MD, Principal Investigator
- 연구 책임자: Long Chai, MM, Head of Otolaryngology
- 연구 책임자: Fangming Chen, MB, Director
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Bousquet J, Khaltaev N, Cruz AA, Denburg J, Fokkens WJ, Togias A, Zuberbier T, Baena-Cagnani CE, Canonica GW, van Weel C, Agache I, Ait-Khaled N, Bachert C, Blaiss MS, Bonini S, Boulet LP, Bousquet PJ, Camargos P, Carlsen KH, Chen Y, Custovic A, Dahl R, Demoly P, Douagui H, Durham SR, van Wijk RG, Kalayci O, Kaliner MA, Kim YY, Kowalski ML, Kuna P, Le LT, Lemiere C, Li J, Lockey RF, Mavale-Manuel S, Meltzer EO, Mohammad Y, Mullol J, Naclerio R, O'Hehir RE, Ohta K, Ouedraogo S, Palkonen S, Papadopoulos N, Passalacqua G, Pawankar R, Popov TA, Rabe KF, Rosado-Pinto J, Scadding GK, Simons FE, Toskala E, Valovirta E, van Cauwenberge P, Wang DY, Wickman M, Yawn BP, Yorgancioglu A, Yusuf OM, Zar H, Annesi-Maesano I, Bateman ED, Ben Kheder A, Boakye DA, Bouchard J, Burney P, Busse WW, Chan-Yeung M, Chavannes NH, Chuchalin A, Dolen WK, Emuzyte R, Grouse L, Humbert M, Jackson C, Johnston SL, Keith PK, Kemp JP, Klossek JM, Larenas-Linnemann D, Lipworth B, Malo JL, Marshall GD, Naspitz C, Nekam K, Niggemann B, Nizankowska-Mogilnicka E, Okamoto Y, Orru MP, Potter P, Price D, Stoloff SW, Vandenplas O, Viegi G, Williams D; World Health Organization; GA(2)LEN; AllerGen. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) 2008 update (in collaboration with the World Health Organization, GA(2)LEN and AllerGen). Allergy. 2008 Apr;63 Suppl 86:8-160. doi: 10.1111/j.1398-9995.2007.01620.x. No abstract available.
- Brozek JL, Bousquet J, Baena-Cagnani CE, Bonini S, Canonica GW, Casale TB, van Wijk RG, Ohta K, Zuberbier T, Schunemann HJ; Global Allergy and Asthma European Network; Grading of Recommendations Assessment, Development and Evaluation Working Group. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) guidelines: 2010 revision. J Allergy Clin Immunol. 2010 Sep;126(3):466-76. doi: 10.1016/j.jaci.2010.06.047.
- Greiner AN, Hellings PW, Rotiroti G, Scadding GK. Allergic rhinitis. Lancet. 2011 Dec 17;378(9809):2112-22. doi: 10.1016/S0140-6736(11)60130-X. Epub 2011 Jul 23.
- Grossman J. One airway, one disease. Chest. 1997 Feb;111(2 Suppl):11S-16S. doi: 10.1378/chest.111.2_supplement.11s.
- Ke X, Shen Y, Hu X, Yuan XD, Kang HY, Wang XQ, Hong SL. [Association between IL-27 gene polymorphisms and susceptibility to allergic rhinitis]. Lin Chung Er Bi Yan Hou Tou Jing Wai Ke Za Zhi. 2016 May 5;30(9):684-688. doi: 10.13201/j.issn.1001-1781.2016.09.004. Chinese.
- Zhang YT, Zhang X, Li PZ. [Comparison of PedsQL4.0 and RQLQ scales in the assessment of the quality of life in children with allergic rhinitis]. Lin Chung Er Bi Yan Hou Tou Jing Wai Ke Za Zhi. 2017 Jan;31(1):27-29. doi: 10.13201/j.issn.1001-1781.2017.01.008. Chinese.
- Bauchau V, Durham SR. Prevalence and rate of diagnosis of allergic rhinitis in Europe. Eur Respir J. 2004 Nov;24(5):758-64. doi: 10.1183/09031936.04.00013904.
- Bousquet J, Anto JM, Bachert C, Baiardini I, Bosnic-Anticevich S, Walter Canonica G, Melen E, Palomares O, Scadding GK, Togias A, Toppila-Salmi S. Allergic rhinitis. Nat Rev Dis Primers. 2020 Dec 3;6(1):95. doi: 10.1038/s41572-020-00227-0.
- Seidman MD, Gurgel RK, Lin SY, Schwartz SR, Baroody FM, Bonner JR, Dawson DE, Dykewicz MS, Hackell JM, Han JK, Ishman SL, Krouse HJ, Malekzadeh S, Mims JW, Omole FS, Reddy WD, Wallace DV, Walsh SA, Warren BE, Wilson MN, Nnacheta LC; Guideline Otolaryngology Development Group. AAO-HNSF. Clinical practice guideline: Allergic rhinitis. Otolaryngol Head Neck Surg. 2015 Feb;152(1 Suppl):S1-43. doi: 10.1177/0194599814561600.
- Kenney P, Hilberg O, Laursen AC, Peel RG, Sigsgaard T. Preventive effect of nasal filters on allergic rhinitis: A randomized, double-blind, placebo-controlled crossover park study. J Allergy Clin Immunol. 2015 Dec;136(6):1566-1572.e5. doi: 10.1016/j.jaci.2015.05.015. Epub 2015 Jun 30.
- Schwetz S, Olze H, Melchisedech S, Grigorov A, Latza R. Efficacy of pollen blocker cream in the treatment of allergic rhinitis. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 2004 Aug;130(8):979-84. doi: 10.1001/archotol.130.8.979.
- Bozek A, Kolodziejczyk K, Kozlowska R, Canonica GW. Evidence of the efficacy and safety of house dust mite subcutaneous immunotherapy in elderly allergic rhinitis patients: a randomized, double-blind placebo-controlled trial. Clin Transl Allergy. 2017 Dec 1;7:43. doi: 10.1186/s13601-017-0180-9. eCollection 2017.
- Khinchi MS, Poulsen LK, Carat F, Andre C, Hansen AB, Malling HJ. Clinical efficacy of sublingual and subcutaneous birch pollen allergen-specific immunotherapy: a randomized, placebo-controlled, double-blind, double-dummy study. Allergy. 2004 Jan;59(1):45-53. doi: 10.1046/j.1398-9995.2003.00387.x.
- Gidaro GB, Marcucci F, Sensi L, Incorvaia C, Frati F, Ciprandi G. The safety of sublingual-swallow immunotherapy: an analysis of published studies. Clin Exp Allergy. 2005 May;35(5):565-71. doi: 10.1111/j.1365-2222.2005.02240.x.
- Marogna M, Spadolini I, Massolo A, Canonica GW, Passalacqua G. Randomized controlled open study of sublingual immunotherapy for respiratory allergy in real-life: clinical efficacy and more. Allergy. 2004 Nov;59(11):1205-10. doi: 10.1111/j.1398-9995.2004.00508.x.
- Canonica GW, Cox L, Pawankar R, Baena-Cagnani CE, Blaiss M, Bonini S, Bousquet J, Calderon M, Compalati E, Durham SR, van Wijk RG, Larenas-Linnemann D, Nelson H, Passalacqua G, Pfaar O, Rosario N, Ryan D, Rosenwasser L, Schmid-Grendelmeier P, Senna G, Valovirta E, Van Bever H, Vichyanond P, Wahn U, Yusuf O. Sublingual immunotherapy: World Allergy Organization position paper 2013 update. World Allergy Organ J. 2014 Mar 28;7(1):6. doi: 10.1186/1939-4551-7-6.
- Alvarez-Cuesta E, Bousquet J, Canonica GW, Durham SR, Malling HJ, Valovirta E; EAACI, Immunotherapy Task Force. Standards for practical allergen-specific immunotherapy. Allergy. 2006;61 Suppl 82:1-20. doi: 10.1111/j.1398-9995.2006.01219_1.x. No abstract available.
- Cox L, Nelson H, Lockey R, Calabria C, Chacko T, Finegold I, Nelson M, Weber R, Bernstein DI, Blessing-Moore J, Khan DA, Lang DM, Nicklas RA, Oppenheimer J, Portnoy JM, Randolph C, Schuller DE, Spector SL, Tilles S, Wallace D. Allergen immunotherapy: a practice parameter third update. J Allergy Clin Immunol. 2011 Jan;127(1 Suppl):S1-55. doi: 10.1016/j.jaci.2010.09.034. Epub 2010 Dec 3. No abstract available. Erratum In: J Allergy Clin Immunol. 2011 Mar;127(3):840.
- Brozek JL, Bousquet J, Agache I, Agarwal A, Bachert C, Bosnic-Anticevich S, Brignardello-Petersen R, Canonica GW, Casale T, Chavannes NH, Correia de Sousa J, Cruz AA, Cuello-Garcia CA, Demoly P, Dykewicz M, Etxeandia-Ikobaltzeta I, Florez ID, Fokkens W, Fonseca J, Hellings PW, Klimek L, Kowalski S, Kuna P, Laisaar KT, Larenas-Linnemann DE, Lodrup Carlsen KC, Manning PJ, Meltzer E, Mullol J, Muraro A, O'Hehir R, Ohta K, Panzner P, Papadopoulos N, Park HS, Passalacqua G, Pawankar R, Price D, Riva JJ, Roldan Y, Ryan D, Sadeghirad B, Samolinski B, Schmid-Grendelmeier P, Sheikh A, Togias A, Valero A, Valiulis A, Valovirta E, Ventresca M, Wallace D, Waserman S, Wickman M, Wiercioch W, Yepes-Nunez JJ, Zhang L, Zhang Y, Zidarn M, Zuberbier T, Schunemann HJ. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) guidelines-2016 revision. J Allergy Clin Immunol. 2017 Oct;140(4):950-958. doi: 10.1016/j.jaci.2017.03.050. Epub 2017 Jun 8.
- Ren M, Tang Q, Chen F, Xing X, Huang Y, Tan X. Mahuang Fuzi Xixin Decoction Attenuates Th1 and Th2 Responses in the Treatment of Ovalbumin-Induced Allergic Inflammation in a Rat Model of Allergic Rhinitis. J Immunol Res. 2017;2017:8254324. doi: 10.1155/2017/8254324. Epub 2017 Jul 13.
- Zou XL, Chen ZG, Zhang TT, Feng DY, Li HT, Yang HL. Th17/Treg homeostasis, but not Th1/Th2 homeostasis, is implicated in exacerbation of human bronchial asthma. Ther Clin Risk Manag. 2018 Sep 6;14:1627-1636. doi: 10.2147/TCRM.S172262. eCollection 2018.
- Zhang HL, Zheng XY, Zhu J. Th1/Th2/Th17/Treg cytokines in Guillain-Barre syndrome and experimental autoimmune neuritis. Cytokine Growth Factor Rev. 2013 Oct;24(5):443-53. doi: 10.1016/j.cytogfr.2013.05.005. Epub 2013 Jun 21.
- Brown V, Warke TJ, Shields MD, Ennis M. T cell cytokine profiles in childhood asthma. Thorax. 2003 Apr;58(4):311-6. doi: 10.1136/thorax.58.4.311.
- Hirahara K, Nakayama T. CD4+ T-cell subsets in inflammatory diseases: beyond the Th1/Th2 paradigm. Int Immunol. 2016 Apr;28(4):163-71. doi: 10.1093/intimm/dxw006. Epub 2016 Feb 12.
- Jerzynska J, Stelmach W, Rychlik B, Lechanska J, Podlecka D, Stelmach I. The clinical effect of vitamin D supplementation combined with grass-specific sublingual immunotherapy in children with allergic rhinitis. Allergy Asthma Proc. 2016 Mar-Apr;37(2):105-14. doi: 10.2500/aap.2016.37.3921.
- Gluck J, Rogala B, Mazur B. Intracellular production of IL-2, IL-4 and IFN-gamma by peripheral blood CD3+ cells in intermittent allergic rhinitis. Inflamm Res. 2005 Feb;54(2):91-5. doi: 10.1007/s00011-004-1328-3.
- Ciprandi G, Filaci G, Battaglia F, Fenoglio D. Peripheral Th-17 cells in allergic rhinitis: New evidence. Int Immunopharmacol. 2010 Feb;10(2):226-9. doi: 10.1016/j.intimp.2009.11.004. Epub 2009 Nov 16.
- Marshall JS, Warrington R, Watson W, Kim HL. An introduction to immunology and immunopathology. Allergy Asthma Clin Immunol. 2018 Sep 12;14(Suppl 2):49. doi: 10.1186/s13223-018-0278-1. eCollection 2018.
- Spits H, Cupedo T. Innate lymphoid cells: emerging insights in development, lineage relationships, and function. Annu Rev Immunol. 2012;30:647-75. doi: 10.1146/annurev-immunol-020711-075053. Epub 2012 Jan 6.
- Vivier E, Artis D, Colonna M, Diefenbach A, Di Santo JP, Eberl G, Koyasu S, Locksley RM, McKenzie ANJ, Mebius RE, Powrie F, Spits H. Innate Lymphoid Cells: 10 Years On. Cell. 2018 Aug 23;174(5):1054-1066. doi: 10.1016/j.cell.2018.07.017.
- Yagi R, Zhong C, Northrup DL, Yu F, Bouladoux N, Spencer S, Hu G, Barron L, Sharma S, Nakayama T, Belkaid Y, Zhao K, Zhu J. The transcription factor GATA3 is critical for the development of all IL-7Ralpha-expressing innate lymphoid cells. Immunity. 2014 Mar 20;40(3):378-88. doi: 10.1016/j.immuni.2014.01.012. Epub 2014 Mar 13.
- Spits H, Artis D, Colonna M, Diefenbach A, Di Santo JP, Eberl G, Koyasu S, Locksley RM, McKenzie AN, Mebius RE, Powrie F, Vivier E. Innate lymphoid cells--a proposal for uniform nomenclature. Nat Rev Immunol. 2013 Feb;13(2):145-9. doi: 10.1038/nri3365.
- Xu G, Zhang L, Wang DY, Xu R, Liu Z, Han DM, Wang XD, Zuo KJ, Li HB. Opposing roles of IL-17A and IL-25 in the regulation of TSLP production in human nasal epithelial cells. Allergy. 2010 May;65(5):581-9. doi: 10.1111/j.1398-9995.2009.02252.x. Epub 2009 Nov 25.
- Asaka D, Yoshikawa M, Nakayama T, Yoshimura T, Moriyama H, Otori N. Elevated levels of interleukin-33 in the nasal secretions of patients with allergic rhinitis. Int Arch Allergy Immunol. 2012;158 Suppl 1:47-50. doi: 10.1159/000337764. Epub 2012 May 15.
- Wang H, Mobini R, Fang Y, Barrenas F, Zhang H, Xiang Z, Benson M. Allergen challenge of peripheral blood mononuclear cells from patients with seasonal allergic rhinitis increases IL-17RB, which regulates basophil apoptosis and degranulation. Clin Exp Allergy. 2010 Aug;40(8):1194-202. doi: 10.1111/j.1365-2222.2010.03542.x. Epub 2010 Jun 7.
- Zhong H, Fan XL, Yu QN, Qin ZL, Chen D, Xu R, Chen DH, Lin ZB, Wen W, Fu QL. Increased innate type 2 immune response in house dust mite-allergic patients with allergic rhinitis. Clin Immunol. 2017 Oct;183:293-299. doi: 10.1016/j.clim.2017.09.008. Epub 2017 Sep 13.
- Fan D, Wang X, Wang M, Wang Y, Zhang L, Li Y, Fan E, Cao F, Van Crombruggen K, Zhang L. Allergen-Dependent Differences in ILC2s Frequencies in Patients With Allergic Rhinitis. Allergy Asthma Immunol Res. 2016 May;8(3):216-22. doi: 10.4168/aair.2016.8.3.216.
- Lombardi V, Beuraud C, Neukirch C, Moussu H, Morizur L, Horiot S, Luce S, Wambre E, Linsley P, Chollet-Martin S, Baron-Bodo V, Aubier M, Moingeon P. Circulating innate lymphoid cells are differentially regulated in allergic and nonallergic subjects. J Allergy Clin Immunol. 2016 Jul;138(1):305-308. doi: 10.1016/j.jaci.2015.12.1325. Epub 2016 Mar 4. No abstract available.
- Bartemes KR, Kephart GM, Fox SJ, Kita H. Enhanced innate type 2 immune response in peripheral blood from patients with asthma. J Allergy Clin Immunol. 2014 Sep;134(3):671-678.e4. doi: 10.1016/j.jaci.2014.06.024.
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (예상)
기본 완료 (예상)
연구 완료 (예상)
연구 등록 날짜
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
마지막으로 확인됨
추가 정보
이 연구와 관련된 용어
추가 관련 MeSH 약관
기타 연구 ID 번호
- PHAnshun
- gzwkj2023-197 (기타 보조금/기금 번호: Guizhou Provincial Health Commission)
개별 참가자 데이터(IPD) 계획
개별 참가자 데이터(IPD)를 공유할 계획입니까?
IPD 계획 설명
약물 및 장치 정보, 연구 문서
미국 FDA 규제 의약품 연구
미국 FDA 규제 기기 제품 연구
미국에서 제조되어 미국에서 수출되는 제품
이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .