Ta strona została przetłumaczona automatycznie i dokładność tłumaczenia nie jest gwarantowana. Proszę odnieść się do angielska wersja za tekst źródłowy.

Badanie kliniczne konsolidacji leczenia jodem I 131 Tositumomab w leczeniu szpiczaka mnogiego

23 kwietnia 2025 zaktualizowane przez: University of Michigan Rogel Cancer Center

Badanie kliniczne fazy II konsolidującego leczenia jodem I 131 Tositumomab w leczeniu szpiczaka mnogiego

To badanie jest przeznaczone dla pacjentów z nowo rozpoznanym szpiczakiem mnogim lub z nawrotem choroby. Głównym celem tego badania jest sprawdzenie, jak ich choroba reaguje na leczenie konsolidacyjne (leczenie mające na celu dalszą redukcję komórek nowotworowych) radioaktywnym przeciwciałem (białkiem) o nazwie jod I 131 tositumomab (znany pod nazwą handlową Bexxar®), a także przyjrzenie się skutki uboczne, które występują przy tego typu leczeniu. Badacze będą również przyglądać się, jak długo choroba reaguje na leczenie, czy w ogóle reaguje i jak długo przeżywają pacjenci, którzy przeszli to leczenie.

Bexxar jest przeciwciałem monoklonalnym (białkiem), do którego przyłączony jest radioaktywny jod 131. Przeciwciało monoklonalne zawarte w leku Bexxar (tositumomab) jest skierowane przeciwko białku zwanemu CD20, które znajduje się na powierzchni różnych komórek B, w tym komórek chłoniaka i niektórych komórek szpiczaka. Przeciwciało podaje się we wlewie i trafia do tych komórek. Radioaktywny jod przyłączony do przeciwciała dostarcza promieniowanie bezpośrednio do tych komórek, które działa uszkadzająco lub zabijająco na komórki nowotworowe. Około 20-25% pacjentów ze szpiczakiem mnogim ma to białko na powierzchni swoich komórek nowotworowych. Ponadto białko to znaleziono na powierzchni komórek macierzystych szpiczaka. Chociaż komórki macierzyste szpiczaka stanowią mniejszość wszystkich komórek szpiczaka (mniej niż 5%), komórki te są oporne na chemioterapię i uważa się, że są odpowiedzialne za nawrót choroby po chemioterapii. W tym badaniu Bexxar będzie stosowany po zakończeniu cyklu chemioterapii przez pacjentów, u których w organizmie pozostały komórki szpiczaka. Badacze mają nadzieję, że leczenie Bexxarem zmniejszy i być może wyeliminuje resztkowe komórki szpiczaka oporne na chemioterapię.

Przegląd badań

Status

Zakończony

Warunki

Interwencja / Leczenie

Szczegółowy opis

Szpiczak mnogi zajmuje drugie miejsce wśród nowotworów hematologicznych w Stanach Zjednoczonych (Munshi i in., 2001). Ponieważ nie istnieje uleczalna opcja, pacjenci z chorobą we wczesnym stadium są zwykle obserwowani bez leczenia, dopóki choroba nie postępuje lub nie pojawią się objawy.

Większość pacjentów zareaguje na początkową chemioterapię, jednak u wszystkich leczonych pacjentów po każdym kolejnym kursie chemioterapii następuje wielokrotny nawrót z krótszymi remisjami (Rajkumar i in., 2002a). Schematy najczęściej stosowane w terapii początkowej obejmują melfalan i prednizon (MP), które indukują remisję u około 50% pacjentów (Alexanian i in., 1969), VAD-winkrystyna, adriamycyna i deksametazon z odsetkiem odpowiedzi w zakresie 50% (Salmon i in., 1994; Barlogie i in., 1984; Alexanian i in., 1986), pulsy deksametazonu, a ostatnio wprowadzono kombinacje talidomidu z deksametazonem (Rajkumar i in., 2002b; Weber i in., 2003). Wszystkie te schematy mają porównywalne wskaźniki odpowiedzi. Z wyjątkiem niedawnego raportu, który wykazał lepszy odsetek odpowiedzi na kombinację talidomidu z deksametazonem w porównaniu z pulsami deksametazonu (Rajkumar i in., 2004), wiele innych badań porównawczych nie wykazało wyższości żadnego z tych schematów pod względem całkowitego przeżycia. Całkowite odpowiedzi na którykolwiek z tych schematów leczenia obserwuje się rzadko (< 5%). Pacjenci, którzy ukończyli terapię wstępną, zwykle przechodzą na chemioterapię wysokodawkową ze wspomaganiem autologicznym przeszczepem komórek macierzystych. Alternatywnie, pacjenci mogą zostać objęci schematem leczenia podtrzymującego lub mogą być obserwowani. Z wyjątkiem jednego badania, w którym co drugi dzień stosowano dużą dawkę prednizonu (Berenson i in., 2002), nie ma przekonujących dowodów na to, że leczenie podtrzymujące wpływa na naturalną historię choroby (Kyle, 2002; The Myeloma Trialists' Collaborative Group, 2001).

Wielu badaczy stosowało chemioterapię w wysokich dawkach jako konsolidację szpiczaka mnogiego (Barlogie i in., 1986; Cunningham i in., 1994; Harousseau i in., 1995). Randomizowane badanie przeprowadzone przez French Myeloma Intergroup (IFM 90) dostarczyło dowodów na to, że leczenie chemioterapią w dużych dawkach i autologicznym przeszczepem komórek macierzystych (ASCT) po początkowej terapii skutkuje znacznie dłuższym czasem przeżycia bez zdarzeń (mediana 28 vs. 18 miesięcy) i całkowitym przeżyciem (57 vs. 42 miesiące) w porównaniu z konwencjonalną chemioterapią (Attal i in., 1996). Korzyści z autotransplantacji zaobserwowano u pacjentów w każdym wieku (Siegel i in., 1999). Niedawno podobne wyniki uzyskano z dużego randomizowanego badania przeprowadzonego w Wielkiej Brytanii (Childs i in., 2003). Na podstawie tych badań, u pacjentów kwalifikujących się do przeszczepu, konsolidacja terapii początkowej z terapią dużymi dawkami, po której następuje ASCT, jest uważana za standard opieki (Wytyczne NCCN 2004). Jednak ASCT nie powoduje wyleczenia nawet u pacjentów, u których uzyskano całkowitą odpowiedź (CR), co obserwuje się u 20-30% pacjentów, którzy ukończyli ASCT. Pewną rolę może odgrywać zanieczyszczenie autologicznego zbioru komórek macierzystych komórkami szpiczaka złośliwego. Na poparcie tego poglądu, syngeniczne przeszczepy szpiku kostnego dały lepsze i trwalsze wyniki niż te obserwowane w przypadku ASCT (Gahrton i in., 1999). Inną przyczyną niepowodzenia autologicznego przeszczepu komórek macierzystych jest nieskuteczna eradykacja klonu szpiczaka za pomocą wysokodawkowej chemioterapii. W celu zapewnienia skuteczniejszej eliminacji złośliwych klonów niektórzy badacze opracowali zintensyfikowane schematy leczenia. Lepsze wyniki odnotowano przy użyciu Total Therapy, która obejmuje sekwencję zabiegów, w tym tandemową ASCT (Barlogie i in., 1999, Barlogie i in., 2004). Pogląd, że intensyfikacja terapii poprawia wyniki, został potwierdzony w niedawnym randomizowanym badaniu, które wykazało, że konsolidacja początkowej terapii za pomocą tandemowego autologicznego przeszczepu komórek macierzystych była lepsza niż konsolidacja za pomocą pojedynczego autologicznego przeszczepu komórek macierzystych, co zmierzono na podstawie poprawy czasu trwania odpowiedzi i ogólnego przeżycia (Attal i wsp., 2003). W przeciwieństwie do ASCT, allogeniczny przeszczep komórek macierzystych może zapewnić produkty z komórek macierzystych wolne od komórek złośliwych, jak również korzyści wynikające z efektu przeszczep przeciwko szpiczakowi.

Jednak bardzo wysoką śmiertelność w ciągu roku (30-60%) odnotowano we wczesnych badaniach nad allogenicznymi przeszczepami szpiku kostnego, z przeżyciem wolnym od choroby tylko u 15-30% pacjentów i bez lepszego przeżycia w porównaniu z ASCT (Bensinger i in., 1996; Bjorkstrand i in., 1996; Barlogie i in., 1995). Nowsze badania, w tym przeszczepy allogeniczne z niemieloablacyjnymi schematami kondycjonowania, dostarczają bardziej zachęcających wyników (Reynolds i in., 2001; Badros i in., 2002). Ostatnio skojarzone leczenie ASCT, po którym nastąpił niemieloablacyjny allogeniczny przeszczep komórek macierzystych, wykazało bardzo obiecujące wyniki i poprawiło, choć nadal znaczącą toksyczność, z częstością CR w zakresie 55-60% (Kroger i in., 2002; Maloney i in. , 2003). Jest zbyt wcześnie, aby określić, czy lepsze reakcje przy użyciu tego podejścia spowodują zwiększenie przeżycia.

Pojawiające się dane sugerują, że osiągnięcie CR lub bliskiej CR (nCR) spowoduje trwalszą remisję i dłuższe przeżycie. Niedawna analiza długoterminowych wyników leczenia pacjentów w randomizowanym francuskim badaniu IMG90 wyraźnie wskazuje, że najdłużej przeżywają ci pacjenci, którzy osiągają co najmniej bardzo dobrą odpowiedź częściową lub całkowitą (Harousseau, 2003). W wieku 7 lat 60% pacjentów żyło w grupie, która osiągnęła CR lub zbliżoną do CR. Natomiast w grupie pacjentów, którzy osiągnęli > PR, ale mniej niż CR lub blisko CR, żyło tylko 30%, a wśród pacjentów, którzy mieli mniej niż PR, nikt nie przeżył. Podobne wyniki uzyskano ostatnio u pacjentów, którzy przeszli allogeniczny przeszczep komórek macierzystych (Corradini i in., 2003). Nie jest jasne, czy CR w odpowiedzi na początkową terapię i przed przeszczepem może mieć podobny wpływ na ogólne wyniki. Niezależnie od konkretnego podejścia do przeszczepu, krzywe przeżycia nie osiągają plateau i oczekuje się, że u wszystkich pacjentów nastąpi nawrót, niezależnie od metody intensyfikacji terapii, prawdopodobnie z powodu utrzymywania się resztkowej populacji klonogennych komórek szpiczaka opornych na chemioterapię.

W przypadku pacjentów, u których doszło do nawrotu choroby lub którzy są oporni na terapię, nie ma uzgodnionego standardowego leczenia (Anderson i in., 2002; Kyle, 2002). Możliwości leczenia obejmują chemioterapię ratunkową, autologiczny przeszczep komórek macierzystych (jeśli nie wykonano go wcześniej lub jako drugi przeszczep) lub allogeniczny przeszczep komórek macierzystych, o pełnej lub niskiej intensywności (Kyle, 2002). Chemioterapia ratunkowa jest najczęściej stosowana w praktyce klinicznej. Wśród różnych schematów ratunkowych zastosowano zarówno monoterapię, jak i terapię skojarzoną. Monoterapia deksametazonem lub innymi steroidami podawanymi jako terapia pulsacyjna dawała odpowiedzi w zakresie 35-40% (Alexanian i in., 1983; Gertz i in., 1995). Talidomid stosowany jako pojedynczy środek wykazał 32% odsetek odpowiedzi w tej populacji pacjentów (Singhal i in., 1999). Niedawno VELCADE jako pojedynczy środek indukował co najmniej minimalne odpowiedzi (tj. > 25% zmniejszenie ilości białka monoklonalnego) u 35% pacjentów i co najmniej stabilizację choroby u 59% pacjentów z nawracającym/opornym na leczenie szpiczakiem mnogim przy zastosowaniu ścisłych kryteriów SWOG (Richardson i in., 2003). Historycznie terapie skojarzone wykazują wyższe wskaźniki odpowiedzi. Wykazano, że VAD jest skutecznym schematem u pacjentów opornych na środki alkilujące, z odsetkiem odpowiedzi wynoszącym 60% (Lokhorst i in., 1989). Podobny schemat o nazwie DVd, z Doxilem, winkrystyną i deksametazonem, wykazał porównywalną skuteczność i akceptowalną toksyczność (Hussein i in., 2002; Rifkin i in., 2004). Nowsze kombinacje, w tym kombinacje VELCADE, talidomidu i Revlimidu (analog talidomidu) są obiecujące i wydają się być w stanie wywołać wyższy odsetek odpowiedzi i całkowitą remisję, jak wynika z niepublikowanych jeszcze raportów z różnych spotkań (Agarwal i in., 2003; Orlowski i in. wsp., 2003; Richardson i wsp., 2003; Richardson i wsp., 2004).

Klonogenne komórki szpiczaka mnogiego:

Szpiczak charakteryzuje się nagromadzeniem złośliwych komórek plazmatycznych w szpiku kostnym. Liczne obserwacje wykazały, że złośliwe komórki plazmatyczne mają niską zdolność proliferacyjną i uważa się, że zdecydowana większość populacji komórek złośliwych w szpiczaku jest reprezentowana przez końcowo zróżnicowane komórki plazmatyczne, podobne do ich normalnych odpowiedników (Barlogie i in., 1989). Nie jest jasne, czy te terminalnie zróżnicowane złośliwe komórki plazmatyczne są zdolne do samoodnawiania. W ciągu ostatniej dekady kilka badań wykazało, że szpiczak mnogi, podobnie jak inne nowotwory złośliwe, może składać się z heterogennej populacji komórek nowotworowych (Bakkus i in., 1994; Billadeau i in., 1996).

Badania klonotypowe zidentyfikowały populację krążących komórek B w próbkach krwi pacjentów ze szpiczakiem (Bergsagel i in., 1995, Chen i Epstein, 1996), dzielących ten sam klonotypowy region CDR3, który jest wykrywany w złośliwych komórkach plazmatycznych szpiku kostnego (Pilarski i in., 1996, Szczepek i in., 1998). Dalsze badania dostarczyły dodatkowych informacji na temat ewolucji klonu szpiczaka, potwierdzając pogląd o heterogeniczności populacji klonalnych komórek szpiczaka (Taylor i in., 2002). Składnik komórek B klonu szpiczaka okazał się klonogenny u myszy z ksenoprzeszczepem (Pilarski i in., 2000; Reiman i in., 2001). Ponadto komórki klonotypowe z fenotypem komórek B wykazują ekspresję antygenów CD19+/CD20+ i mogą stanowić rezerwuar choroby, która utrzymuje się po terapii, w tym chemioterapii wysokimi dawkami (Kiel i in., 1999; Rottenburger i in., 1999; Pilarski i in., 2002).

Większość komórek szpiczaka wykazuje ekspresję CD138, wysoce specyficznego antygenu powierzchniowego terminalnie zróżnicowanych komórek plazmatycznych, który jest nieobecny w wysoce proliferacyjnym normalnym osoczu i wcześniejszych stadiach komórek B (Jego i in., 2001). Na podstawie tych obserwacji wysunięto hipotezę, że klonogenne komórki szpiczaka powinny być pozbawione ekspresji CD138. Wykorzystując podzbiory komórek CD138+ i CD138- wyizolowanych z linii komórkowych szpiczaka iz próbek pacjentów ze szpiczakiem pierwotnym, Matsui i in. (2004) wykazali, że tylko mniejszość wszystkich komórek szpiczaka ma fenotyp CD138- (<5%). Jednak tylko CD138- ma potencjał klonogenny, jak wykazano w testach tworzenia kolonii w metylocelulozie i po przeszczepie myszom NOD/SCID. Ponadto komórki te wykazują ekspresję antygenów komórek B, w tym CD19 i CD20, a ich wzrost można zahamować przez leczenie in vitro rytuksymabem, przeciwciałem skierowanym przeciwko antygenowi CD20 (Matsui i in., 2004).

Uzasadnienie terapii anty-CD20 w szpiczaku:

Niedawne obserwacje, że komórki klonogenne w szpiczaku wykazują ekspresję CD20 (Kiel i in., 1999, Rottenburger i in., 1999) oraz że ich wzrost może być hamowany in vitro przez rytuksymab, przeciwciało anty-CD20 (Matsui i in., 2004), dostarczają uzasadnienia do stosowania terapii ukierunkowanej na CD20 u pacjentów ze szpiczakiem. Ponadto komórki klonotypowe CD19+/CD20+ wydają się być bardziej oporne niż komórki CD19-/CD20- na powszechnie stosowane schematy chemioterapii szpiczaka, w tym terapię wysokimi dawkami z przeszczepem komórek macierzystych (Kiel i in., 1999, Rottenburger i in., 1999). Dlatego ukierunkowane na CD20+ leczenie szpiczaka uzupełniałoby chemioterapię poprzez celowanie w oporne na chemioterapię klonogenne komórki szpiczaka.

Poprzednie badania wykazały, że terapia rytuksymabem, nieznakowanym przeciwciałem anty-CD20, może być aktywna w przypadku szpiczaka mnogiego (Hussein i wsp. 1999, Treon i wsp., 2002).

W tym badaniu proponujemy zastosować terapię Bexxarem, znakowanym radioaktywnie przeciwciałem anty-CD20. Schemat terapeutyczny Bexxar składa się z mysiego przeciwciała monoklonalnego anty-CD20 Tositumomab i Jod I 131 Tositumomab. Jod I 131 Tositumomab jest radiojodem pochodną tositumomabu, który został kowalencyjnie połączony z jodem-131.

Postawiliśmy hipotezę, że znakowane radioaktywnie przeciwciało anty-CD20 będzie bardziej skuteczne niż przeciwciało nieznakowane (tj. rytuksymab) w eradykacji wysoce radiowrażliwych komórek szpiczaka, podobnie jak obserwowano w chłoniaku nieziarniczym (Horning i in., 2000; Davis i in., 2001 Flinn i in., 2001; Witzig i in., 2002). Przypuszcza się, że wyższa skuteczność znakowanego radioaktywnie przeciwciała anty-CD20, w porównaniu z przeciwciałem nieznakowanym, może wynikać z „efektu krzyżowego ognia”, ponieważ promieniowanie jest dostarczane nie tylko do komórek docelowych, ale także do sąsiednich komórek, zarówno eksprymujących, jak i nieekspresjonujących CD20 (Vose i in., 1999). W proponowanym projekcie Bexxar zastosujemy po zakończeniu cyklu chemioterapii wstępnej u nowo zdiagnozowanych pacjentów lub cyklu chemioterapii ratunkowej, pod warunkiem uzyskania przez pacjentów przynajmniej częściowej odpowiedzi na wcześniejszą terapię (tj. > 50% redukcji masy guza) i osiągnąć plateau odpowiedzi na wcześniejszą terapię. Wykorzystując pacjentów w okresie stabilnej choroby, będziemy mieli większą szansę zaobserwować efekty radioimmunoterapii wobec komórek CD20+, które stanowią mniejszość wszystkich komórek nowotworowych. Ponadto ocenimy wpływ terapii Bexxarem na klonogenne komórki szpiczaka za pomocą testów klonogennych, jak opisano w Metodach.

Przewidujemy, że większość nowo zdiagnozowanych pacjentów będzie kwalifikować się, a następnie przejdzie do autologicznego przeszczepu komórek macierzystych w ramach standardowej terapii szpiczaka (Wytyczne NCCN 2004), jeśli zgodnie z hipotezą leczenie bexxarem ma potencjał do wyeliminowania klonogennych komórek macierzystych szpiczaka; komórki macierzyste pobrane po leczeniu bexxarem powinny zostać pozbawione ponownie zaludniających się komórek szpiczaka. Dlatego ta kombinacja chemioterapii i terapii celowanej przeciwko komórkom klonogennym może mieć potencjał eliminacji klonów szpiczaka. Chociaż kolekcje komórek macierzystych i autologiczne przeszczepy komórek macierzystych były stosowane bez widocznych trudności w przeszłości u pacjentów leczonych radiokoniugatami anty-CD20 (Ratanatharatorn i in., 2001; Kaminski i in., 2001; Ansell i in., 2002), planujemy w celu pobrania zapasowych komórek macierzystych przed rozpoczęciem leczenia produktem Bexxar, aby umożliwić wykonanie standardowego przeszczepu komórek macierzystych w mało prawdopodobnych przypadkach niepowodzenia pobrania komórek macierzystych po podaniu leku Bexxar. Radioimmunoterapię anty-CD20 stosowano wcześniej w połączeniu z chemioterapią bez dodatkowej toksyczności (Emmanoulides i in., 2001; Gregory i in., 2001, Press i in., 2003).

Radioimmunoterapia nowotworów B-komórkowych:

Znakowane radioaktywnie przeciwciała monoklonalne są skuteczne w leczeniu nowotworów komórek B z następujących powodów: limfocyty B, komórki chłoniaka i szpiczaka są z natury wrażliwe na radioterapię (Parker i in., 1980); lokalna emisja promieniowania jonizującego przez znakowane radioaktywnie przeciwciała może zabijać komórki z docelowym antygenem lub bez niego w bliskiej odległości od związanego przeciwciała; a promieniowanie penetrujące może rozwiązać problem ograniczonego dostępu w guzach o dużej masie lub słabo unaczynionych.

Wczesne badania przeciwciał terapeutycznych znakowanych radioaktywnie dla chłoniaka z komórek B przeprowadzono z przeciwciałami jodowanymi (Press i in., 1989; Kaminski i in., 1993; Wahl i in., 1994; Press i in., 1995). Obecnie zatwierdzono dwa schematy leczenia nawrotowego/opornego i transformowanego chłoniaka grudkowego. Schemat leczenia produktem Bexxar obejmuje mysie przeciwciało anty-CD20 Tositumomab jodowane jodem I 131. Główne działanie przeciwnowotworowe pochodzi z wysokoenergetycznych cząstek beta emitowanych przez I 131. Ponadto I 131 emituje również niskoenergetyczne promieniowanie gamma, co pozwala na pomiary kamerą gamma i obliczenie indywidualnej dawki radioaktywnego znacznika dla danego pacjenta w fazie terapeutycznej (patrz poniżej). W preparacie Zevalin mysie przeciwciało anty-CD20 ibrytumomab jest kowalencyjnie połączone z 90itrem (90Y), który jest czystym emiterem beta. Brak promieniowania gamma od 90Y nie pozwala na ocenę dozymetryczną i u wszystkich pacjentów stosuje się ustaloną dawkę Zevalin w zależności od masy ciała. U niektórych pacjentów może to spowodować podanie zbyt małej dawki lub przedawkowanie.

Oprócz leczenia chłoniaka grudkowego trwają badania nad możliwością leczenia Bexxarem lub Zevalinem innych nowotworów złośliwych z komórek B. W szczególności radioimmunoterapia anty-CD20 wydaje się bardzo obiecująca jako część leczenia chłoniaka z komórek płaszcza, chłoniaka wielkokomórkowego i makroglobulinemii Waldenstroma.

Jod I 131 Tositumomab

Tło:

Tositumomab jest mysim przeciwciałem monoklonalnym IgG2a lambda skierowanym przeciwko antygenowi CD20, który znajduje się na powierzchni prawidłowych i złośliwych limfocytów B. Tositumomab jest wytwarzany w wolnej od antybiotyków hodowli komórek ssaków i składa się z dwóch mysich łańcuchów ciężkich gamma 2a, z których każdy zawiera 451 aminokwasów, oraz dwóch łańcuchów lekkich lambda, z których każdy zawiera 220 aminokwasów. Przybliżona masa cząsteczkowa tositumomabu wynosi 150 kD. Badania in vitro wykazały, że po związaniu się z antygenem CD20 tositumomab jest zdolny do indukowania apoptozy. Ponadto tositumomab indukuje cytotoksyczność komórkową zależną od przeciwciał (ADCC) i cytotoksyczność komórkową zależną od dopełniacza (CDC). Jod I 131 Tositumomab jest radiojodem pochodną tositumomabu, który został kowalencyjnie połączony z jodem-131. Niezwiązany jod promieniotwórczy i inne reagenty zostały usunięte na etapach oczyszczania chromatograficznego. Czynnik ten wywołuje działanie cytotoksyczne poprzez działanie przeciwnowotworowe promieniowania jonizującego, jak również bardziej bezpośrednie działanie przeciwnowotworowe przeciwciała. Celem leczenia jodem I 131 Tositumomabem jest selektywne dostarczanie radioterapii do wrażliwych na promieniowanie komórek nowotworowych, minimalizując w ten sposób toksyczność dla zdrowych narządów.

Doświadczenie kliniczne Bexxar:

Schemat dawkowania i maksymalna tolerowana dawka Bexxaru zostały ustalone w jednoośrodkowym badaniu fazy I/II przeprowadzonym na Uniwersytecie Michigan (Kamiński i in., 2000). Badanie RIT-II-001 obejmowało 47 pacjentów i zostało zaprojektowane w celu walidacji metodologii dawkowania opracowanej w Michigan (Vose i in., 2000). W badaniu RIT-II-002 losowo przydzielono 78 pacjentów do grup otrzymujących schemat tositumomab i I 131-tositumomab lub nieznakowany tositumomab w celu określenia wartości dodanej składnika radionuklidowego (Davis i in., 2001). Pacjenci leczeni w ramieniu z przeciwciałami znakowanymi radioaktywnie wykazywali wyższy ogólny odsetek odpowiedzi (OR = 55% vs. 19%) i odsetek całkowitej odpowiedzi (CR = 33% vs. 8%). Do badania RIT-II-004 włączono 60 pacjentów z chorobą oporną na chemioterapię (brak odpowiedzi lub odpowiedź utrzymująca się krócej niż 6 miesięcy do ostatniej otrzymanej chemioterapii) w celu oceny skuteczności schematu terapeutycznego Bexxar w tej populacji pacjentów (Kamiński i in., 2001 ). Liczba pacjentów, u których uzyskano dłuższy czas trwania odpowiedzi na szczepionkę Bexxar, była około 5 razy większa niż liczba pacjentów, u których chemioterapia trwała dłużej (p <0,001). Ponadto pacjenci leczeni produktem Bexxar osiągnęli wyższy odsetek całkowitej odpowiedzi (OR) (47% w porównaniu do 12%) i wskaźnik całkowitej odpowiedzi (CR) (20% w porównaniu z 2%) niż pacjenci leczeni chemioterapią. Podsumowując, wszystkie 4 wstępne badania, w tym badanie fazy I/II, wykazały wysoki odsetek odpowiedzi i czas trwania odpowiedzi u pacjentów z nawracającym lub opornym na leczenie chłoniakiem grudkowym o niskim stopniu złośliwości lub grudkowym, w tym chłoniakiem grudkowym z transformacją, wcześniej leczonym chemioterapią. Co najbardziej niezwykłe, pacjenci, którzy uzyskali całkowitą odpowiedź, często doświadczali szczególnie długiego czasu trwania odpowiedzi, trwającego latami. W uznaniu niezwykłej aktywności FDA zatwierdziła 3 stycznia 2005 r. rozszerzone wskazanie do schematu terapeutycznego Bexxar.

Typ studiów

Interwencyjne

Zapisy (Rzeczywisty)

16

Faza

  • Faza 2

Kontakty i lokalizacje

Ta sekcja zawiera dane kontaktowe osób prowadzących badanie oraz informacje o tym, gdzie badanie jest przeprowadzane.

Lokalizacje studiów

    • Michigan
      • Ann Arbor, Michigan, Stany Zjednoczone, 48109
        • University of Michigan

Kryteria uczestnictwa

Badacze szukają osób, które pasują do określonego opisu, zwanego kryteriami kwalifikacyjnymi. Niektóre przykłady tych kryteriów to ogólny stan zdrowia danej osoby lub wcześniejsze leczenie.

Kryteria kwalifikacji

Wiek uprawniający do nauki

18 lat i starsze (Dorosły, Starszy dorosły)

Akceptuje zdrowych ochotników

Nie

Opis

Kryteria przyjęcia:

  • Wiek ≥ 18 lat
  • Oczekiwane przeżycie ≥ 6 miesięcy
  • Stan sprawności przed badaniem 0, 1 lub 2 według Światowej Organizacji Zdrowia (WHO)
  • Nowo rozpoznany lub nawracający/oporny szpiczak z histologicznym potwierdzeniem szpiczaka mnogiego przez Wydział Patologii Centrum Onkologii Uniwersytetu Michigan (UMCC)
  • Nie więcej niż 3 linie leczenia szpiczaka u pacjentów z nawrotem choroby
  • Udokumentowany szpiczak mnogi w stadium II lub III (Durie i Salmon, 1975) przed rozpoczęciem terapii pierwszego rzutu
  • Co najmniej 4 cykle pierwszego rzutu (dla nowo zdiagnozowanych pacjentów) lub ratunkowego (dla pacjentów z nawrotem/oporności) przed terapią i przy plateau przynajmniej częściowej odpowiedzi (Blade i wsp., 1999) przez co najmniej 2 oznaczenia w odstępie 6 tygodni
  • Co najmniej 21 dni od pierwszego dnia ostatniego cyklu i całkowity powrót do zdrowia po wszystkich toksycznościach związanych z wcześniejszą operacją, radioterapią, chemioterapią lub immunoterapią
  • Mierzalne białka M z większą niż 1 g/dl białka monoklonalnego w surowicy i/lub większą niż 0,5 g/24-godzinne wydalanie łańcuchów lekkich z moczem
  • Akceptowalny stan hematologiczny w ciągu dwóch tygodni przed rejestracją pacjenta, w tym:

    • Bezwzględna liczba neutrofili ([neutrofile segmentowane + prążki] x całkowita liczba krwinek białych [WBC]) ≥ 1500/mm3;
    • Liczba płytek krwi ≥ 150 000/mm3; ci pacjenci otrzymają całkowitą dawkę leku Bexxar wynoszącą 75 cGy; lub
    • Liczba płytek krwi od 100 000/mm3 do 149 000/mm3; ci pacjenci otrzymają całkowitą dawkę leku Bexxar wynoszącą 65 cGy na organizm;
    • U pacjentów wcześniej leczonych ASCT całkowita dawka na organizm wyniesie 55 cGy u pacjentów z liczbą płytek krwi > 150 000 i 45 cGy u pacjentów z liczbą płytek krwi 100 000-149 000.
  • Pacjentki, które nie są w ciąży ani nie karmią piersią
  • Mężczyźni i kobiety w wieku rozrodczym, którzy stosują akceptowane metody kontroli urodzeń (zgodnie z ustaleniami lekarza prowadzącego)
  • Pacjenci, którzy wcześniej przyjmowali leki fazy II, jeśli nie przewiduje się długoterminowej toksyczności, a pacjent nie przyjmował leku przez co najmniej trzy tygodnie i nie zaobserwowano znaczącej toksyczności po leczeniu
  • Pacjenci, u których stwierdzono szpiczaka w < 25% szpiku kostnego w ciągu sześciu tygodni od rejestracji (na podstawie obustronnej biopsji gruboigłowej).

Kryteria wyłączenia:

  • Pacjenci z zaburzeniami rezerwy szpiku kostnego, na co wskazuje jeden lub więcej z poniższych objawów:

    • liczba płytek krwi < 100 000 komórek/mm3;
    • Hipokomórkowy szpik kostny;
    • Wyraźne zmniejszenie liczby prekursorów szpiku kostnego jednej lub więcej linii komórkowych (granulocytarnych, megakariocytarnych, erytroidalnych);
    • Historia nieudanego pobrania komórek macierzystych;
    • Zespół mielodysplastyczny (MDS) lub dowody innych niż szpiczakowe nieprawidłowości klonogennych;
    • Wcześniejsza radioimmunoterapia;
    • Wcześniejsza terapia anty-CD20;
    • Inne niż nowotwory złośliwe szpiczaka, z wyjątkiem chłoniaka nieziarniczego B-komórkowego, raka podstawnokomórkowego i płaskonabłonkowego skóry oraz raka szyjki macicy i piersi in situ, chyba że pacjent jest wolny od raka przez > 3 lata;
    • Zajęcie ośrodkowego układu nerwowego (OUN);
    • Pacjenci ze stwierdzonym zakażeniem wirusem HIV;
    • Pacjenci z wysiękiem opłucnowym;
    • Pacjenci z nieprawidłową czynnością wątroby: bilirubina całkowita > 2,0 mg/dl;
    • Pacjenci z nieprawidłową czynnością nerek: stężenie kreatyniny w surowicy > 2,0 mg/dl;
    • Pacjenci, którzy otrzymali wcześniej radioterapię wiązkami zewnętrznymi do > 25% aktywnego szpiku kostnego (zajęte pole lub regionalnie);
    • Pacjenci, którzy otrzymali terapię G-CSF lub GM-CSF w ciągu dwóch tygodni przed leczeniem;
    • Poważna niezłośliwa choroba lub infekcja, które w opinii badacza i/lub sponsora mogłyby zagrozić innym celom protokołu;
    • Duża operacja, inna niż operacja diagnostyczna, w ciągu czterech tygodni;
    • Obecność reaktywności przeciwciał anty-mysich (HAMA). Wynik ten musi być dostępny przed rozpoczęciem leczenia w przypadku pacjentów z wcześniejszą ekspozycją na mysie przeciwciała lub białka.

Plan studiów

Ta sekcja zawiera szczegółowe informacje na temat planu badania, w tym sposób zaprojektowania badania i jego pomiary.

Jak projektuje się badanie?

Szczegóły projektu

  • Główny cel: Leczenie
  • Przydział: Nie dotyczy
  • Model interwencyjny: Zadanie dla jednej grupy
  • Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)

Broń i interwencje

Grupa uczestników / Arm
Interwencja / Leczenie
Eksperymentalny: Bexxar leczniczy
Schemat terapeutyczny Bexxar jest dostarczany w dwóch zestawach wlewów dożylnych podawanych w odstępie 7-14 dni. Nieradioaktywny tositumomab podaje się zarówno przed wlewem „dozymetrycznym”, jak i „terapeutycznym”, aby poprawić dystrybucję tych dawek w organizmie. Początkowo podaje się śladowe ilości radioaktywnego jodu 131 tositumomabu, aby umożliwić lekarzom ocenę usuwania promieniowania z ciała pacjenta za pomocą skanów z kamery gamma. Obliczenia dokonane na podstawie tych zindywidualizowanych współczynników klirensu promieniowania pozwalają na dostosowanie dawki terapeutycznej (podanej 7-14 dni po infuzji dozymetrycznej) dla każdego pacjenta. Dawka terapeutyczna zawiera tositumomab znakowany ilością jodu 131 tositumomabu obliczoną na podstawie skanów wykonanych po podaniu dawki dozymetrycznej.
Schemat terapeutyczny Bexxar jest dostarczany w dwóch zestawach wlewów dożylnych podawanych w odstępie 7-14 dni. Nieradioaktywny tositumomab podaje się zarówno przed wlewem „dozymetrycznym”, jak i „terapeutycznym”, aby poprawić dystrybucję tych dawek w organizmie. Początkowo podaje się śladowe ilości radioaktywnego jodu 131 związanego z tositumomabem, aby umożliwić lekarzom ocenę klirensu promieniowania z organizmu za pomocą skanów gamma. Obliczenia dokonane na podstawie tych zindywidualizowanych współczynników klirensu promieniowania pozwalają na dostosowanie dawki terapeutycznej (podanej 7-14 dni po infuzji dozymetrycznej) dla każdego pacjenta. Dawka terapeutyczna zawiera tositumomab oznaczony ilością tositumomabu jodu 131 obliczoną specjalnie dla pacjenta na podstawie badań obrazowych wykonanych po podaniu dawki dozymetrycznej.
Inne nazwy:
  • Bexxar

Co mierzy badanie?

Podstawowe miary wyniku

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
Odsetek pacjentów z obiektywną odpowiedzią
Ramy czasowe: 3 miesiące

Głównym celem jest określenie odsetka obiektywnych odpowiedzi (odsetka pacjentów z obiektywną odpowiedzią) definiowanych jako utrzymująca się redukcja białek monoklonalnych o ponad 25% w stosunku do poziomu sprzed podania Bexxaru.

Obiektywną odpowiedzią może być:

Minimalna odpowiedź (MR) - 25-49% redukcja poziomu białka monoklonalnego w surowicy dla co najmniej 2 oznaczeń.

Częściowa odpowiedź (PR) - 50-89% obniżenie poziomu białka monoklonalnego w surowicy dla co najmniej 2 oznaczeń.

Całkowita odpowiedź (CR) — brak pierwotnego białka monoklonalnego w surowicy i moczu w co najmniej 2 oznaczeniach metodą immunofiksacji.

3 miesiące

Miary wyników drugorzędnych

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
Liczba uczestników z pełną odpowiedzią (CR)
Ramy czasowe: 6 miesięcy

Określ współczynnik konwersji do pełnej odpowiedzi (CR). CR wymaga wszystkich poniższych elementów:

  • Brak oryginalnego białka monoklonalnego w surowicy i moczu w co najmniej 2 oznaczeniach metodą immunofiksacji. Obecność prążków oligoklonalnych zgodnych z oligoklonalną rekonstytucją immunologiczną nie wyklucza CR.
  • Mniej niż 5% komórek plazmatycznych w szpiku kostnym w co najmniej 2 oznaczeniach. Powtórne badanie szpiku kostnego nie jest wymagane u pacjentów ze szpiczakiem wydzielniczym, u których utrzymuje się brak białka monoklonalnego w immunofiksacji.
  • Brak wzrostu wielkości lub liczby zmian kostnych litycznych (rozwój złamania kompresyjnego nie wyklucza odpowiedzi).
  • Zniknięcie wszystkich plazmocytom tkanek miękkich.
  • Pacjenci, u których spełnione są niektóre, ale nie wszystkie kryteria CR, są klasyfikowani jako nCR, PR lub VGPR (patrz poniżej), pod warunkiem spełnienia pozostałych kryteriów dla nCR, VGPR lub PR.
6 miesięcy
Czas trwania odpowiedzi
Ramy czasowe: do około 15 lat po leczeniu
Okres wolny od progresji choroby (PD) (czas trwania odpowiedzi): mierzony u osoby reagującej od dnia, w którym po raz pierwszy odnotowano odpowiedź całkowitą, odpowiedź całkowitą, niepotwierdzoną (CRu) lub odpowiedź częściową (PR) do pierwszego dnia w którego obserwuje się postępującą chorobę. Trwająca przerwa wolna od PD występuje, gdy jest osoba reagująca, u której nie odnotowano progresji choroby.
do około 15 lat po leczeniu
Czas przeżycia bez progresji
Ramy czasowe: do około 15 lat po leczeniu
Postęp choroby lub zgon z powodu szpiczaka mnogiego od rozpoczęcia leczenia w ramach badania
do około 15 lat po leczeniu
Czas do niepowodzenia leczenia
Ramy czasowe: do około 15 lat po leczeniu
Spośród pacjentów, którzy początkowo zareagowali (całkowicie lub częściowo) na leczenie, w jakim późniejszym momencie (mierzonym w miesiącach) doszło do progresji choroby lub rozpoczęcia innego leczenia
do około 15 lat po leczeniu

Współpracownicy i badacze

Tutaj znajdziesz osoby i organizacje zaangażowane w to badanie.

Współpracownicy

Śledczy

  • Główny śledczy: Mark Kaminski, MD, University of Michigan

Daty zapisu na studia

Daty te śledzą postęp w przesyłaniu rekordów badań i podsumowań wyników do ClinicalTrials.gov. Zapisy badań i zgłoszone wyniki są przeglądane przez National Library of Medicine (NLM), aby upewnić się, że spełniają określone standardy kontroli jakości, zanim zostaną opublikowane na publicznej stronie internetowej.

Główne daty studiów

Rozpoczęcie studiów

1 sierpnia 2005

Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)

1 sierpnia 2013

Ukończenie studiów (Rzeczywisty)

4 września 2024

Daty rejestracji na studia

Pierwszy przesłany

24 sierpnia 2005

Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości

24 sierpnia 2005

Pierwszy wysłany (Szacowany)

25 sierpnia 2005

Aktualizacje rekordów badań

Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)

30 kwietnia 2025

Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości

23 kwietnia 2025

Ostatnia weryfikacja

1 kwietnia 2025

Więcej informacji

Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .

Subskrybuj