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研究膜联蛋白 A1 的表达及其作为口腔癌预后标志物的潜在用途

2006年8月16日 更新者:National Taiwan University Hospital

最近的研究表明,ANXA1 表达失调与肿瘤发生有关。 ANXA1 蛋白的过度表达存在于多种人类肿瘤中,例如乳腺癌 10、肝脏 11、胰腺癌 14 和神经胶质肿瘤 15。 相反,在 ESCC4、5、胃癌 6、乳腺癌 7、头颈 SCC8 和前列腺癌 9 中已报道 ANXA1 蛋白表达水平降低。 以前没有关于口腔癌中ANXA1蛋白表达的研究报道。 此外,尽管已经描述了不同类型肿瘤中膜联蛋白表达的改变,但尚未确定 ANXA1 与患者总体生存率之间的相关性。

ANXA1 是致癌酪氨酸激酶(例如 EGF 受体和肝细胞生长因子 (HGF) 受体 c-met)的主要细胞底物。 此前,我们已经表明 HGF 和 c-met 的表达与台湾 OSCC 的进展显着相关。 Kermorgant 等人。最近表明 PKC 控制依赖 HGF 的 c-met 流量、信号和细胞迁移。 先前的研究表明,丝裂原佛波醇-12-肉豆蔻酸酯 13-乙酸酯 (PMA) 以 PKCdelta 依赖性方式诱导 ANXA1 核转位,ANXA1 核转位可能参与细胞增殖和分化的调节。 然而,尚不清楚 HGF 是否可以诱导 ANXA1 核转位以及这与口腔鳞状细胞癌的发病机制有何关系。

在这项研究中,我们旨在使用免疫组织化学技术研究 HGF 是否诱导 ANXA1 蛋白向 OSCC 细胞核的易位以及 ANXA1 核定位在 OSCC 癌变中的作用。 数据表明 HGF 诱导的 ANXA1 蛋白核转位的新机制可能在口腔鳞状细胞癌的发病机制和预后中发挥重要作用。

研究概览

地位

完全的

详细说明

材料与方法

经医院审查委员会批准后,我们​​在台湾台北国立台湾大学医院病理科获得了 115 名原发性口腔 SCC 患者和 66 名口腔 ED 患者的福尔马林固定、石蜡包埋标本。 口腔 SCC 和 ED 的诊断基于苏木精和伊红染色组织切片的组织学检查。 所有患者于1997年至2004年期间在台大医院口腔颌面外科或耳鼻喉科接受病灶全切除术。 标本取自切口活检或病灶的全手术切除。 如果淋巴结被诊断为 SCC 阳性,则治疗方案中还包括颈清扫术和术后放疗。 在初始活检之前,没有患者接受过任何癌症治疗。 病历中还记录了患者口腔习惯的详细信息,包括每天摄入的 AQ、香烟和酒精以及这些习惯的持续时间。 在获得知情同意后,在拔除阻生下第三磨牙期间,从非 AQ 咀嚼者和非吸烟者那里获得了 20 个正常口腔粘膜 (NOM) 活检标本,并用作健康对照。

细胞培养 Dulbecco 改良 Eagle 培养基 (DMEM) 和胎牛血清 (FBS) 购自 Life Technologies, Inc. (Gaithersburg, MD, USA)。 PD98059、Ly294002、SB203580 和肝细胞生长因子 (HGF) 是 Sigma (St Louis, MO, USA) 的产品。 抗 ANX-1 单克隆抗体购自 BD Biosciences(列克星敦,肯塔基州,美国)。 细胞培养 SAS 细胞在补充有 10% 热灭活胎牛血清、青霉素 (100 UAmL)1) 和链霉素 (100 lgAmL)1) 的 DMEM 中维持在 37 o C、5% CO2 气氛下。 对于蛋白质印迹分析,将细胞以每盘 2 x 106 个细胞的密度接种到 10 厘米的盘中。 18-24 小时后,细胞在不含 FBS 的相同培养基中进一步生长 24 小时。 在指定的时间用 HGF 处理血清饥饿的细胞。 对于免疫染色,在用 HGF 刺激之前,将在盖玻片 (22 x 22 mm) 上生长的 2 x 105 个细胞饥饿 24 小时。

用 PD098059、Ly294002 和 SB203580 预处理细胞在完全培养基中铺板过夜,然后洗涤。 将在无血清 DMEM 中培养的细胞用 50M PD098059(ERK 抑制剂)、30M Ly294002(PI-3 激酶抑制剂)和 20M SB203580(p38 抑制剂)预处理分别3小时,然后用40ng HGF处理3小时。 通过免疫组织化学和使用 ANXA1 抗体的蛋白质印迹检查细胞。

免疫细胞化学 (IHC) 评估福尔马林固定、石蜡包埋的肿瘤样本的膜联蛋白 A1 表达。遵循 IHC 程序作为参考18,单克隆一抗抗膜联蛋白 AI(1:600 稀释),针对 N-膜联蛋白 1 的末端是从信号源 (BD Biosciences) 获得的。 由两位病理学家(Jeng 和 Lin)使用免疫组织化学确定的蛋白质易位评分为阴性(0 分)、阳性(1 分),细胞质蛋白表达评分为阴性(0 分)、弱(1 分)、中度(评分2),或强(得分 3)使用之前已经过验证的系统。

在盖玻片上生长的 SAS 细胞用 3.7% 多聚甲醛固定 15 分钟,并用 PBS 中的 0.2% Triton X-100(0.58M Na2HPO4、0.17 M Na H2PO4、0.68 M NaCl,pH=7.4)(PBST)透化 5 分钟. PBST洗涤细胞3次后,细胞在含1%牛血清白蛋白的PBS中封闭30 min。 通过与抗 ANX-1 单克隆抗体(1:800 稀释)孵育 2 小时进行免疫染色。 用PBST洗涤细胞3次后,将细胞与TRITC缀合的兔抗(小鼠IgG)Ig孵育1小时。 盖玻片用 PBST 清洗、固定并使用 Leica TCS SP2 共聚焦显微镜(Leica Microsystems,Wetzlar GmBH,德国)进行检查。

细胞分级 将 SAS 细胞以 2x 106 个细胞/培养皿接种到 10cm 培养皿中,并在 DMEM 中培养 18-24 小时。 细胞在无血清培养基中饥饿 24 小时。 在用 HGF 处理给定时间后,收获细胞并用冰冷的 PBS 洗涤。 然后将细胞重悬于 100 μL 裂解缓冲液(10 mM Hepes、10 mM NaCl、0.1 mM EDTA、0.1 mM EGTA、1% NP-40、0.5 mM 苯甲基磺酰氟、0.1 mM 二硫苏糖醇、0.1 mM 原钒酸钠和蛋白酶)中抑制剂)并在冰上孵育 10 分钟。 通过在 4 o C 下以 2000 g 离心 5 分钟收集细胞核。收集上清液作为胞质部分。 测定每个样品的蛋白质浓度。

annexin A1 蛋白表达的评价首先通过口腔 ED 和 SCC 的临床病理参数显示 ANXA1 表达分布在四类(0-25%、26-50%、51-75% 和 76-100%)与核转位并且使用方差分析进一步检查平均表达水平与这些临床病理学参数之间的相关性。 Kaplan-Meier 乘积限值法用于评估癌细胞中 ANXA1 核染色的预后意义以及其他临床病理学参数。 使用 Statistica 程序(StatSoft Inc.,USA)的对数秩检验进行组间累积存活率的比较。 使用 Cox 回归模型进行多变量分析,以使用 SAS 8.0(SAS Institute Inc.,USA)评估不同变量的额外预后值。 小于 0.05 的 P 值被认为具有统计学意义。

研究类型

观察性的

联系人和位置

本节提供了进行研究的人员的详细联系信息,以及有关进行该研究的地点的信息。

学习地点

      • Taipei、台湾、100
        • National Taiwan University Hospital

参与标准

研究人员寻找符合特定描述的人,称为资格标准。这些标准的一些例子是一个人的一般健康状况或先前的治疗。

资格标准

适合学习的年龄

26年 至 85年 (成人、OLDER_ADULT)

接受健康志愿者

有资格学习的性别

全部

描述

纳入标准:

正常、发育不良、鳞状细胞癌

排除标准:

学习计划

本节提供研究计划的详细信息,包括研究的设计方式和研究的衡量标准。

研究是如何设计的?

设计细节

合作者和调查者

在这里您可以找到参与这项研究的人员和组织。

调查人员

  • 首席研究员:Mark YP Kuo, PHD、National Taiwan University , Dental Department

出版物和有用的链接

负责输入研究信息的人员自愿提供这些出版物。这些可能与研究有关。

有用的网址

研究记录日期

这些日期跟踪向 ClinicalTrials.gov 提交研究记录和摘要结果的进度。研究记录和报告的结果由国家医学图书馆 (NLM) 审查,以确保它们在发布到公共网站之前符合特定的质量控制标准。

研究主要日期

学习开始

2005年1月1日

研究完成

2005年12月1日

研究注册日期

首次提交

2006年8月15日

首先提交符合 QC 标准的

2006年8月15日

首次发布 (估计)

2006年8月16日

研究记录更新

最后更新发布 (估计)

2006年8月17日

上次提交的符合 QC 标准的更新

2006年8月16日

最后验证

2006年8月1日

更多信息

与本研究相关的术语

此信息直接从 clinicaltrials.gov 网站检索,没有任何更改。如果您有任何更改、删除或更新研究详细信息的请求,请联系 register@clinicaltrials.gov. clinicaltrials.gov 上实施更改,我们的网站上也会自动更新.

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