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Die Ätiologie und das Fortschreiten von Hirntumoren

18. März 2013 aktualisiert von: Tampere University Hospital

Die Ätiologie und das Fortschreiten von Hirntumoren – molekulargenetische Veränderungen und Vererbung

Das Hauptziel der Studie besteht darin, einen Rahmen zu präsentieren, der DNA-, RNA- und Gewebedaten integriert, um genetische Ereignisse zu identifizieren und zu priorisieren, die klinisch relevante neue therapeutische Ziele und prognostische Biomarker für verschiedene Arten von Hirntumoren darstellen. Die Forscher untersuchen die Regulierung des neoplastischen Zellwachstums durch Onkogene, Tumorsuppressor- und andere krebsbezogene Gene mithilfe moderner molekulargenetischer Methoden wie chromogener In-situ-Hybridisierung, vergleichender genomischer Hybridisierung (CGH), Array-CGH, ​​cDNA-Microarray usw. In diesen Studien verwenden die Forscher krankheitsspezifische Gewebe-Microarrays (TMA), die die Forscher seit 1999 konstruiert haben. Bisher wurden bis zu 3000 verschiedene Hirntumoren in unseren TMAs untersucht. Diese ermöglichen die gleichzeitige Analyse molekularer Ziele in großen Mengen auf DNA-, mRNA- und Proteinebene. Die Forschungsgruppe hat ihr Interesse auch auf die neoplastische Entwicklung von Gliomen konzentriert, insbesondere auf ihre erblichen und umweltbedingten Faktoren.

Studienübersicht

Status

Abgeschlossen

Detaillierte Beschreibung

Ziele der Studie:

  1. Sammeln von ausreichend Hirntumor-Gewebematerial für morphologische, Protein-, RNA- und DNA-Analysen mit hohem Durchsatz.
  2. Kombination gewebebezogener Ergebnisse dieser Analysen mit klinischen Daten, um das Potenzial der neuen Biomarker zur Beurteilung von Diagnose, Prognose und Vererbung von Hirntumoren zu untersuchen.

Materialen und Methoden

In Paraffin eingebettetes Tumormaterial

Paraffinblöcke von mehr als 4.000 Hirntumoren wurden im Labor für Pathologie des Universitätsklinikums Tampere (Abteilung für Pathologie im Fimlab-Labor) gesammelt. Sie wurden in erster Linie für Zwecke der klinischen Diagnose verwendet, aber sobald die Zustimmung des Patienten oder der Behörde eingeholt wurde, kann der Überschuss des Materials für Forschungszwecke verwendet werden. Ein Neuropathologe hat die repräsentativste Region jedes Tumors auf einem Gewebeträger markiert. Mithilfe dieser Markierungen werden Tumorgeweberegionen dann in den Gewebe-Microarray-Block (Micro-Array Technology, Beecher Instruments, Inc.) biopsiert. Bis zu 1.000 histologische Proben können in einem Gewebe-Microarray-Block gesammelt werden, der in 200 Gewebeschnitte geschnitten werden kann. Diese Abschnitte können in verschiedenen Arten von Analysen verwendet werden (Immunhistochemie, Fluoreszenz und Chromogen-in-situ-Hybridisierung und andere histologische Untersuchungen). Zu den Vorteilen der Methode zählen ihre hohe Kapazität, das Automatisierungspotenzial, die begrenzte Schädigung des ursprünglichen Gewebeblocks und optimierte Bedingungen für molekularbiologische Analysen. Den ersten finnischen TMA-Block haben wir 1999 hergestellt. Bisher wurden bis zu 3000 verschiedene Hirntumoren in unseren TMAs untersucht, von denen 2000 Gliome und Meningeome für diese Studie verwendet werden. Im Folgenden finden Sie Beispiele für Projekte, in denen die Methode zum Einsatz kommt. Ähnliche Strategien werden in der vorliegenden Studie verwendet:

  1. Wir haben den Zusammenhang zwischen Carboanhydrasen und Hirntumoren untersucht. Carboanhydrase IX (CA IX) ist ein Hypoxie-induziertes Enzym, das mit der Tumorentstehung assoziiert ist. CA IX-Immunpositivität wurde bei 80 % der 362 astrozytären Gliome gefunden, die in Gewebe-Microarray-Blöcken gesammelt wurden. Laut multifaktorieller Überlebensanalyse war die CA IX-Intensität ein signifikanter und unabhängiger Prognosefaktor. CA IX ist ein möglicher Kandidat für eine gezielte Therapie.
  2. Mit der cDNA-Microarray-Methode ist es möglich, die Expression mehrerer Krebsgene in einer Hybridisierung zu analysieren. Die cDNA-CGH-Microarray-Methode nutzt gleichzeitig die cDNA-Microarray-Methode und die vergleichende genomische Hybridisierung. Mit dieser Methode können wir die Beziehung zwischen der Anzahl der Genkopien und der Expression des jeweiligen amplifizierten Gens untersuchen und außerdem mit hoher Auflösung die Gene in Zelllinien definieren, die amplifiziert und überexprimiert werden. Die Analyse liefert ein genaueres Bild der Beziehung zwischen Veränderungen in der Genkopienzahl und ihrer Expression in verschiedenen Arten von Tumoren. Mit diesen Methoden haben wir mehrere neue Krebsgenkandidaten gefunden, die möglicherweise an der Pathogenese von Neuroblastomen beteiligt sind. Um die Rolle dieser Gene sicherzustellen, haben wir Mikroarray-Blöcke für Neuroblastomgewebe gebaut und FISH- und IHC-Analysen mit diesen TMAs durchgeführt. Es gelang uns, eine Amplifikationsregion zu charakterisieren, die in fast der Hälfte der Tumorproben von Neuroblastom-Patienten vorkam und signifikant mit dem Überleben der Patienten assoziiert war.

    Mikroarrays aus frischem Gewebe und gefrorenem Gewebe

    Unser Team in der Abteilung für Pathologie hat Schritte unternommen, um molekularbiologische und genetische Studien vorzubereiten, die frische Gewebearchive erfordern. Zu diesem Zweck haben wir Hirntumorgewebe für moderne Methoden der Krebsdiagnose und -forschung systematisch gesammelt und erfasst. Die Verarbeitung, Lagerung und Archivierung von Hirntumorgewebe aus neurochirurgischen Operationssälen

    Die Untersuchungen des Universitätsklinikums Tampere erfolgen zentral im Labor für gefrorenes Gewebe der Abteilung für Pathologie. Diese Arbeit läuft seit 1992 und mittlerweile wurden mehr als 1.000 frische Tumorproben gesammelt. Das Probenmaterial dient der genauen Tumordiagnose in der Phase der Primärdiagnose (z.B. genetische 1p19q-LOH-Analyse von Oligodendrogliomen). Unsere neuartige gefrorene Gewebeanwendung dient mehreren neuen molekularpathologischen Methoden. Wir haben eine völlig neue Methode entwickelt, die auf der Snap-Frozen-Technik basiert, und Dutzende Proben aus verschiedenen Hirnlokalisationen hergestellt (Frozen Brain Array). Im Folgenden finden Sie ein Beispiel für ein Projekt, bei dem die Methode des gefrorenen Gewebes verwendet wurde. Ähnliche Prinzipien sollen in der vorliegenden Studie verwendet werden:

  3. Wir haben eine neue Methode entwickelt, die die Differentialdiagnose von Hirntumoren während einer Operation erleichtert. Mit der Ultrarapid Ki-67-Färbemethode kann der Proliferationsmarker Ki-67 intraoperativ mit der Snap-Frozen-Technik und der Lichtmikroskopie innerhalb von 10 – 15 Minuten analysiert werden. Wir konnten die Anwendbarkeit der Methode anhand von gefrorenen Gewebeschnitten von Gliomen überprüfen, die zuvor in unserer Gewebebank gesammelt wurden. Anhand ihrer Proliferationsindizes konnten die Gliome in verschiedene Malignitätsgrade und Prognosegruppen eingeteilt werden. Diese hochspezifische Diagnosemethode kann beispielsweise dann angewendet werden, wenn therapeutische Medikamente in ein intrakranielles Operationsfeld eingebracht werden.

    Extrahierte RNA und DNA

    Unser Labor ist gut ausgestattet und auf RNA- und DNA-Studien vorbereitet. Nach der Extraktion werden RNA und DNA archiviert und zur späteren Verwendung bei -700 °C aufbewahrt. Beispiel für Projekte, die diese Methode verwenden:

  4. Die Kopplungsanalyse bietet ein leistungsstarkes Werkzeug zur Lokalisierung von Genen, die für familiäre Krankheiten prädisponieren, vorausgesetzt, es gibt genügend Familien mit der betreffenden Krankheit. Zur Kopplungsanalyse werden die polymorphen Regionen des Genoms anhand von Markern chromosomaler Regionen untersucht, die von den Gründereltern der Familie an alle Mitglieder mit Gliomen in der Familie weitergegeben wurden. Für die Kopplungsanalyse haben wir Blut- und DNA-Proben von sehr seltenen Gliomfamilien (mit insgesamt 183 Mitgliedern) gesammelt. Auf der Grundlage einer genomweiten Verknüpfungsanalyse fanden wir einen neuen Chromosomenort, der signifikant mit dem familiären Gliom assoziiert war. Der nächste Schritt unserer Studie ist die Tiefensequenzierung der Proben von Patienten mit familiärem Gliom.

Datensammlung

Unser neuroonkologisches Material in der Abteilung für Pathologie des Universitätsklinikums Tampere umfasst 5.000 Gewebeproben (4.000 Paraffin- und 1.000 gefrorene Gewebeproben). Dies ist ein zu großer Datensatz, als dass er von einzelnen Forschern in ihren eigenen Datenbanken verwaltet werden könnte. Unser Ziel ist es daher, ein neues integriertes Forschungsdatensystem zur effektiven Verwaltung des in den letzten 30 Jahren gesammelten Gewebematerials zu entwickeln, einschließlich eines detaillierten Registers aller Proben. Das Register umfasst auch digitales Fotomaterial von TMA und anderen histologischen Objektträgern sowie virtuelle Mikroskopie-Objektträger. Die relevanten klinischen Daten der Patienten (z. B. mindestens dreijährige Nachbeobachtung von Gliom- und Meningeompatienten, die zwischen 1983 und 2009 operiert wurden) werden mit Genehmigung der finnischen Behörden und des Universitätsklinikums Tampere mit den Gewebedaten kombiniert.

Das Projekt beachtet die Helsinki-Erklärung, die aktuelle finnische Gesetzgebung und die vom Universitätskrankenhaus Tampere festgelegten Grundsätze des Datenschutzes. Diese Studie ist retrospektiv und rein beobachtend. Die Zuordnung des medizinischen Eingriffs liegt nicht im Ermessen des Prüfers. Die Entnahme von Proben zu Forschungszwecken erforderte in der Studie zu familiären Gliomen die Einverständniserklärung jedes einzelnen Patienten. Die Archivierung von diagnostischem Material in einer Gewebebank stellt keine ethischen Probleme dar. Für Forschungszwecke wird nur überschüssiges Material aus diagnostischen Proben verwendet, entweder mit der Einwilligung des Patienten nach Aufklärung oder mit Genehmigung der zuständigen finnischen Behörden (der Nationalen Behörde für gerichtsmedizinische Angelegenheiten Finnlands). Die Ethikkommission des Universitätsklinikums Tampere hat die Genehmigung für unser Projekt erteilt (R07042). Die Studie zu familiären Gliomen wird im Rahmen einer gesonderten Genehmigung durchgeführt (Ministerium für Soziales und Gesundheit, Tagebuch Nr. 127/08/95). Forschungsgenehmigungen wurden auch auf der Grundlage des finnischen Gewebegesetzes eingeholt (Valvira: Tagebuch Nr. 7796/05.01.00.06/2011).

Studientyp

Beobachtungs

Einschreibung (Tatsächlich)

2000

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

1 Monat bis 85 Jahre (Kind, Erwachsene, Älterer Erwachsener)

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Studienberechtigte Geschlechter

Alle

Probenahmeverfahren

Nicht-Wahrscheinlichkeitsprobe

Studienpopulation

Gliom- und Meningeom-Patienten

Beschreibung

Einschlusskriterien: alle Gliom- und Meningeompatienten 1983–2009

Ausschlusskriterien:

-

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

Kohorten und Interventionen

Gruppe / Kohorte
Gliom- und Meningeompatienten
Gliom- und Meningeompatienten des Universitätsklinikums Tampere während des Studienzeitraums

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Zeitfenster
Der prognostische Wert neuer Biomarker bei Hirntumoren
Zeitfenster: September 1983 – Dezember 2009
September 1983 – Dezember 2009

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Zeitfenster
Vererbung von Hirntumoren
Zeitfenster: September 1983 – Dezember 2000
September 1983 – Dezember 2000

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Mitarbeiter

Ermittler

  • Hauptermittler: Hannu K Haapasalo, MD, Fimlab Laboratories, Tampere University Hospital, Tampere, Finland

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn

1. September 1983

Primärer Abschluss (Tatsächlich)

1. Dezember 2009

Studienabschluss (Tatsächlich)

1. März 2012

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

12. März 2013

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

13. März 2013

Zuerst gepostet (Schätzen)

14. März 2013

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Schätzen)

19. März 2013

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

18. März 2013

Zuletzt verifiziert

1. März 2013

Mehr Informationen

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

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