回腸タンパク質消化率を測定するための二重同位体法の検証 (VALDIM)
調査の概要
詳細な説明
試験食は、30 gの2H卵タンパク質と800 mgの[U-13C]スピルリナまたは400 mgの13C遊離AA混合物を含む60 gの凍結乾燥全卵粉末からなり、水と混合してオムレツとして調理します。 2H 卵パウダーは、バンガロール (インド) にあるセント ジョンズ研究所の協力者によって製造されました。 セライト(酸不溶性灰、Advanced Minerals Corporation)を、廃液中の食事の回収をチェックするための難消化性マーカーとして食事に添加する。 試験食は、被験者のグループに応じて、ボーラスまたはプラトー給餌(繰り返しのミニ食)として与えられます。 600 g の 2H 標識凍結乾燥卵は、毎日の飼料とともに均一に 2H 標識された AA 混合物を 60 日間経口投与された採卵鶏から得られます。 人間が消費する際の安全性を確保するために、微生物学的分析が行われます。
研究終了時には18人のボランティアが参加し、アヴィセンヌ病院(フランス)の人間栄養研究センターで検査を受けることになる。 主な参加基準は、18 ~ 45 歳、体格指数 (BMI) 18 ~ 30 kg/m2 の男性と女性です。 主な除外基準は、消化器または肝臓の病状、卵に対するアレルギー、ラテックスに対するアレルギー、妊婦です。 挿管という侵襲的な手順のため、研究者らは通常の40%の脱落者に対応するために30人のボランティアを募集する予定だ。
被験者は n = 6 の 3 つのグループに分けられます。
- ボーラス-spi、n = 6、ボランティアは、13C-スピルリナを参照タンパク質として使用し、t = 0で一度にボーラスとして試験食を摂取します。
- プラトー-spi、n = 6、ボランティアは、参照タンパク質として 13C-スピルリナを使用して、プラトー給餌プロトコルでテスト食事を摂取します。
- プラトーAA、n = 6、ボランティアは、13Cを含まないAA混合物を参照「タンパク質」として、プラトー給餌プロトコルでテスト食事を摂取します。
実験の 1 週間前に、ボランティアはタンパク質摂取量を制御するために体重に合わせた標準的な食事に従います (体重 1 kg あたりタンパク質 1.3 g)。
ボランティアは実験前日の朝にアヴィセンヌ病院の人間栄養研究センターに到着します。 彼らには、腸管を24時間通過できるトリプルルーメン腸管が装備されます。 内腔の 1 つは放射線不透過性であり、腸内の非吸収性マーカーを灌流するのに役立ちます (スローマーカー法)。 2 番目のルーメンは、チューブの移動を容易にする重り付きバルーンを膨張させるために使用されます。 3 番目のルーメンは、灌流部位の 15 cm 下の流出液の連続吸引専用です。 廃液中の非吸収性マーカーの測定により、廃液の流量を決定することができます。
実験当日、回腸末端におけるチューブの位置を確認するために、X線撮影によってチューブの位置がチェックされます。 採血のために前腕の静脈にカテーテルが挿入されます。 非吸収性マーカーであるポリエチレングリコール (PEG) 4000 (20 g/l) の灌流は、1 ml/分の流速で開始されます。 腸の流れと回腸基底サンプルを 30 分間収集します。 基礎血漿と尿サンプルが収集されます。
t = 0 では、グループ「Bolus-spi」のボランティアは 20 分以内にすべてのテスト食事を消費します。 グループ「Plateau-spi」および「Plateau-AA」のボランティアの場合、試験食は 22 等分に分割され、最初の食事を 6 つのミニポーションの初回摂取量として消費します。 その後、7.5 時間にわたって 30 分ごとに 1 回分のミニポーションを摂取します。 一部は食事分析に当てられます。 t = 8 まで、腸内容物は吸引によって継続的に収集され、30 分ごとにプールされます。 血液は、4 時間の間は 1 時間ごとに、t = 5 から t = 8 までは 30 分ごとにサンプリングされます。 尿は、t=8 まで 2 時間ごとに収集されます (比例プールの各時点で尿排出量の総量が記録されます)。 呼気サンプルは 30 分ごとに収集されます。 二酸化炭素排出量 (VCO2) は、間接熱量測定 (Canopy) によって 10 分間、1 時間ごとに評価されます。 尿サンプルは、実験の開始時および研究プロトコル中に収集されます。 糞便サンプルは実験開始前と次の 24 時間以内に収集されます。 経鼻回腸チューブは、t = 8 での最後の排液収集後に除去されます。経鼻回腸チューブは、t = 8 での最後の排液収集後に除去されます。
次の分析が実行されます。
- 濁度法による消化物サンプル中の PEG-4000 の濃度
- 熱分解分析装置と組み合わせた同位体比質量分析法 (IRMS) による、食事および消化物サンプル中の総水素含有量と 2H 濃縮度
- IRMS と組み合わせた元素分析装置 (EA) による食事および消化物サンプル中の総炭素含有量と 13C 濃縮
- 超高速液体クロマトグラフィー (UHPLC) による食事および消化物サンプル中の AA 濃度
- 液体クロマトグラフィーとタンデム質量分析 (LC-MS/MS) を組み合わせた、13C-AA および 2H-AA の血漿および食事サンプルの濃縮
- ガスクロマトグラフィー燃焼同位体比質量分析法 (GC-C-IRMS) による消化物および食事サンプル中の 13C-AA および 2H-AA の濃縮
- プールされた (0 ~ 8 時間) 消化物サンプル中のセライト含有量
- Multiflow-IRMS による呼気サンプル中の 13CO2
- 消化物、血漿、尿、糞便サンプルのアミノ酸ドームとペプチドドーム
分析の一部(LC-MS/MSによる13C-AAおよび2H-AA濃縮血漿および食事、オミクス分析)は、バンガロール(インド)のセントジョンズ研究所の協力者によって行われます。
研究の種類
入学 (推定)
段階
- 適用できない
連絡先と場所
研究連絡先
- 名前:Juliane Calvez, PhD
- 電話番号:+33144088677
- メール:juliane.calvez@agroparistech.fr
研究連絡先のバックアップ
- 名前:Claire Gaudichon, Prof
- 電話番号:+33144081829
- メール:claire.gaudichon@agroparistech.fr
研究場所
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Bobigny、フランス、93000
- 募集
- Centre de Recherche sur Volontaires (CRV) de l'hôpital Avicenne
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コンタクト:
- Juliane Calvez, PhD
- メール:juliane.calvez@agroparistech.fr
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参加基準
適格基準
就学可能な年齢
健康ボランティアの受け入れ
説明
包含基準:
- 18<BMI<30
- 健康
- フランスの社会保障制度に加入している
- 女性の場合: 避妊の使用
- 署名されたインフォームドコンセント
除外基準:
- あらゆる食物アレルギー
- ラテックスアレルギー
- HIV、C型肝炎ウイルス抗体、B型肝炎ウイルス表面抗原、およびコア抗体に対する血清学陽性
- グルテン不耐症
- 貧血
- 薬物の使用
- アルコールの摂取量が多い
- 高血圧、糖尿病、消化器疾患、肝臓または腎臓の病気、重度の心臓病
- 妊娠
- 高度なスポーツの練習 (>7 時間/週)
- 研究前3か月以内の献血
- 研究前の3か月以内に臨床研究に参加したこと
- インフォームドコンセントに署名がありません
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:基礎科学
- 割り当て:ランダム化
- 介入モデル:並列代入
- マスキング:なし(オープンラベル)
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
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実験的:ボーラススピ
ボランティアは、13C-スピルリナを参照タンパク質として使用し、t = 0で一度にボーラスとして試験食を摂取します。
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アミノ酸の消化率は、経鼻回腸挿管装置による回腸消化物の収集と二重同位体法による血漿サンプルによって各アーム内で測定されます。
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実験的:高原スピ
ボランティアは、13C-スピルリナを参照タンパク質として使用し、プラトー給餌プロトコルでテスト食事を摂取します。
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アミノ酸の消化率は、経鼻回腸挿管装置による回腸消化物の収集と二重同位体法による血漿サンプルによって各アーム内で測定されます。
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実験的:プラトーAA
ボランティアは、13Cを含まないAA混合物を参照「タンパク質」として、プラトー給餌プロトコルで試験食を摂取します。
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アミノ酸の消化率は、経鼻回腸挿管装置による回腸消化物の収集と二重同位体法による血漿サンプルによって各アーム内で測定されます。
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この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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実際の回腸アミノ酸消化率
時間枠:-最初の食事から30分〜8時間後
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アミノ酸濃度 (mmol) とそれらの個々の 2H 濃縮 (原子 %) の測定により、内腔内に残っている食事性アミノ酸を測定できます。 回腸サンプルで回収された食事性アミノ酸は非吸収とみなされ、摂取されたアミノ酸の % として表されます。これにより、実際の回腸アミノ酸消化率 (100 - 吸収されなかった食事性アミノ酸) を計算できます。 |
-最初の食事から30分〜8時間後
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間接的なアミノ酸消化率
時間枠:-最初の食事から30分〜8時間後
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最初の食事後 (グループに応じて) 5 時間から 8 時間または 0 時間から 8 時間の食事および血漿中の個々のアミノ酸 2H 濃縮 (原子 %) および 13C 濃縮 (原子 %) が次のように評価されます。それらの比率を計算します。 食事 AAi の比率 = 2H 食事 AAi / 13C 食事 AAi 血漿 AAi 比率 = 2H 血漿 AAi / 13C 血漿 AAi 食事と血漿の比率の比率は、スピルリナアミノ酸または遊離アミノ酸の既知の消化率 (グループに応じて %) によって補正され、次の式で凍結乾燥卵タンパク質の間接アミノ酸消化率が決定されます。 間接回腸アミノ酸消化率 (%) = AAi 回腸消化率 スピルリナまたは遊離 AA 混合物 (%) x 血漿 AAi 比 / 食事 AAi 比 |
-最初の食事から30分〜8時間後
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二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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タンパク質摂取に応じた尿、便、血漿の個々のアミノ酸濃度
時間枠:-最初の食事から30分〜8時間後
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非侵襲性または低侵襲性の消化性マーカーの特性評価のための、プロテインミール摂取前後の血漿、尿および糞便サンプル中のアミノ酸濃度(mmol)の測定およびバイオインフォマティクス分析
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-最初の食事から30分〜8時間後
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タンパク質摂取に反応した血漿、尿および糞便のペプチドドーム
時間枠:-最初の食事から30分〜8時間後
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非侵襲性または低侵襲性の消化率マーカーの特性評価のための、プロテインミール摂取前後の血漿、尿および糞便サンプル中のペプチドの配列決定およびバイオインフォマティクス分析
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-最初の食事から30分〜8時間後
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タンパク質摂取に反応する腸内細菌叢
時間枠:食前および食後24時間
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プロテインミール摂取前後の糞便サンプルの微生物DNA配列決定
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食前および食後24時間
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協力者と研究者
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (推定)
研究の完了 (推定)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (実際)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
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