喉頭筋におけるsercaの微分発現
ラット喉頭筋におけるsercaおよびミオシン重鎖アイソフォームの微分発現
調査の概要
詳細な説明
この研究では、男性の成人のウィスターラット(清水研究所供給Co.、京都、日本)、8〜12週齢、体重280〜350 g(n = 10)を若いラットとして使用しました。 さらに、年齢24ヶ月のラット(n = 10)が高齢モデルとして採用されました。
動物組織の調製動物は、ペントバルビタールナトリウム(用量30〜60 mg/kg)の腹腔内注射で麻酔をかけ、0.01 Mリン酸緩衝生理食塩水(PBS)を含む心臓灌流に続いて4%パラホルムアルデヒドで固定しました。 喉頭をすぐに切除し、同じ固定液に約12時間(4°C)浸しました。 組織をパラフィンで処理し、ミクロトーム(厚さ8〜10μm)を使用して切断しました。
研究された内因性喉頭筋肉は、1)内側および外側甲状腺類(MTA、LTA)、(2)外側クリコアリテノイド(LCA)、(3)優れたクリコアリテノイド(SCA)、(4)後部クリコアリーテノイド(PCA)、および(5)でした。 Crichothyroid(CT)。
免疫組織化学(IHC)調査員は、凍結切片で速い繊維タイプの識別に失敗した後、パラフィン切片に移行しました。 脱パラフィン切片をPBS中の3%H2O2と10分間インキュベートした後、マイクロ波処理を続けました(クエン酸バッファー、pH 6で500ワットで5分×3倍)。 次に、一次抗体にインキュベートする前に、切片をブロッキング溶液(0.3 Mグリシン、50 mM塩化アンモニウム、およびPBS中の1%BSA)で30分間インキュベートしました。 切片を抗SERCA1または-SERCA2および抗MHC Iまたは-MHCII(表1)で4℃で1〜2日間インキュベートし、その後洗浄し、AlexaFluor®488ロビー抗マウスIgGおよびFluorとインキュベートしました。 ®594室温で1時間のドンキー抗ヤギIgG二次ABS。 ダブルIHCは、(抗Serca1 +抗Serca2)および(抗Serca2 +抗MHCII)組み合わせを使用して実行して、共発現を確認しました。 二重IHCでは、同じ希釈液を使用した一次または二次抗体の混合で同じステップが行われました。
免疫染色された組織切片は、FV-1000レーザー共焦点顕微鏡(オリンパス、東京、日本)を使用して検査されました。 ImageJ 1.46ソフトウェアを使用して、各抗体の陽性細胞の割合を手動でカウントおよび計算しました。
8〜12週間の老化したラットでの除神経ラットの免疫組織化学、喉頭は、ペントバルビタールを伴う麻酔下で標準的な動作顕微鏡を使用した正中線切開を介してアプローチされました。 右の再発性および上喉頭神経を特定した後、右の再発性喉頭神経から1 cmのセグメントを除去し、両端を結紮しました。 右上の喉頭神経も分割されました。 除神経されたラット群は、2、4、8、および12週間後に犠牲にされました。 喉頭を収集し、上記と同じ手順を使用してIHCのために準備しました(各グループでn = 5)。
マルチカラーファイバータイピングを使用したMHCサブタイプ:
調査の開始時に、冷凍セクションを試しました。 自己蛍光とバックグラウンドノイズを減らすためのいくつかの技術の試験の後、調査員は良好な染色を行うことができませんでした。 その後、調査員はMHCのサブタイピングを中止し、パラフィン包埋ブロック統計分析に移行しました。各筋肉の相対SERCAおよびMHC組成を計算しました。 各ラット抗体の正の細胞率の利用可能なデータは、SPSS統計ソフトウェアバージョン16を使用して統計的に分析されました。 統計的比較は、対応のない2尾の生徒のt検定を使用して実行され、P <0.05で有意と見なされました。
一元配置分散分析(ANOVA)に続いて、シェフの事後試験が実行され、除神経中の各筋肉のMHCとSERCA組成を対側側と年齢との若いと比較しました。 提示された値は、平均値±SD(標準偏差)であり、SDはラットを越えています。
研究の種類
入学 (実際)
段階
- 適用できない
連絡先と場所
研究場所
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Sohag、エジプト、82524
- Sohag University
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参加基準
適格基準
就学可能な年齢
- 子
健康ボランティアの受け入れ
説明
包含基準:
- 8〜12週齢、体重が280〜350 g(n = 10)の若いラットとして使用されました。 さらに、年齢24ヶ月のラット(n = 10)が高齢モデルとして採用されました。
除外基準:
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研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:診断
- 割り当て:ランダム化
- 介入モデル:並列代入
- マスキング:独身
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
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実験的:若いネズミ
雄の成人Wistarラット(京都、京都、日本、清水ラボサプライズ)、8〜12週齢、体重280〜350 g(n = 10)は、抗SERCA1または-SERCA2を含む若いラット免疫組織化学(IHC)として使用されました。抗MHC Iまたは-MHCII(表1)4℃で1〜2日間の抗体、洗浄して洗浄Alexafluor®488ドンキー抗マウスIgGおよびFluor®594ロバアンチガートIgG二次ABSと室温で1時間インキュベートしました。
ダブルIHCは、(抗Serca1 +抗Serca2)および(抗Serca2 +抗MHCII)組み合わせを使用して実行して、共発現を確認しました。
二重IHCでは、同じ希釈液を伴う一次または二次抗体の混合で同じステップが以前と同じように行われました。
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凍結切片での高速繊維タイプの識別に失敗した後、パラフィンセクションに移行しました。
脱パラフィン切片をPBS中の3%H2O2と10分間インキュベートした後、マイクロ波処理を続けました(クエン酸バッファー、pH 6で500ワットで5分×3倍)。
次に、一次抗体でインキュベーションする前に、ブロッキング溶液(0.3 Mグリシン、50 mM塩化アンモニウム、およびPBS中の1%BSA)でインキュベートしました。
切片を抗SERCA1または-SERCA2および抗MHC Iまたは-MHCII(表1)で4℃で1〜2日間インキュベートし、その後洗浄し、AlexaFluor®488ロビー抗マウスIgGおよびFluorとインキュベートしました。 ®594室温で1時間のドンキー抗ヤギIgG二次ABS。
ダブルIHCは、(抗Serca1 +抗Serca2)および(抗Serca2 +抗MHCII)組み合わせを使用して実行して、共発現を確認しました。
二重IHCでは、同じ希釈液を伴う一次または二次抗体の混合で同じステップが以前と同じように行われました。
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実験的:古いラット
生後24ヶ月のラット(n = 10)が老化モデルとして採用されました。
抗SERCA1または-SERCA2および抗MHC Iまたは-MHCII(表1)を4℃で1〜2日間抗MHC Iまたは-MHCIIによる免疫組織化学(IHC)、その後洗浄し、AlexaFluor®488Donkey Anti-Mouse Iggおよびインキュベートしました。 fluor®594ロバ抗ガートIgG二次ABS室温で1時間。
ダブルIHCは、(抗Serca1 +抗Serca2)および(抗Serca2 +抗MHCII)組み合わせを使用して実行して、共発現を確認しました。
二重IHCでは、同じ希釈液を伴う一次または二次抗体の混合で同じステップが以前と同じように行われました。
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凍結切片での高速繊維タイプの識別に失敗した後、パラフィンセクションに移行しました。
脱パラフィン切片をPBS中の3%H2O2と10分間インキュベートした後、マイクロ波処理を続けました(クエン酸バッファー、pH 6で500ワットで5分×3倍)。
次に、一次抗体でインキュベーションする前に、ブロッキング溶液(0.3 Mグリシン、50 mM塩化アンモニウム、およびPBS中の1%BSA)でインキュベートしました。
切片を抗SERCA1または-SERCA2および抗MHC Iまたは-MHCII(表1)で4℃で1〜2日間インキュベートし、その後洗浄し、AlexaFluor®488ロビー抗マウスIgGおよびFluorとインキュベートしました。 ®594室温で1時間のドンキー抗ヤギIgG二次ABS。
ダブルIHCは、(抗Serca1 +抗Serca2)および(抗Serca2 +抗MHCII)組み合わせを使用して実行して、共発現を確認しました。
二重IHCでは、同じ希釈液を伴う一次または二次抗体の混合で同じステップが以前と同じように行われました。
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アクティブコンパレータ:除神経されたネズミ
8〜12週間の老化したラットで、喉頭は、ペントバルビタールを伴う麻酔下で標準的な動作顕微鏡を使用して正中線切開を通してアプローチされました。 右の再発性および上喉頭神経を特定した後、右の再発性喉頭神経から1 cmのセグメントを除去し、両端を結紮しました。 右上の喉頭神経も分割されました。 除神経されたラット群は、2、4、8、および12週間後に犠牲にされました。 喉頭を収集し、上記と同じ手順を使用してIHCのために準備しました(各グループでn = 5)。 抗SERCA1または-SERCA2および抗MHC Iまたは-MHCII(表1)を4℃で1〜2日間抗MHC Iまたは-MHCIIによる免疫組織化学(IHC)、その後洗浄し、AlexaFluor®488Donkey Anti-Mouse Iggおよびインキュベートしました。 fluor®594ロバ抗ガートIgG二次ABS室温で1時間。 ダブルIHCは、(抗Serca1 +抗Serca2)および(抗Serca2 +抗MHCII)組み合わせを使用して実行して、共発現を確認しました。 ダブルIHCで。 |
凍結切片での高速繊維タイプの識別に失敗した後、パラフィンセクションに移行しました。
脱パラフィン切片をPBS中の3%H2O2と10分間インキュベートした後、マイクロ波処理を続けました(クエン酸バッファー、pH 6で500ワットで5分×3倍)。
次に、一次抗体でインキュベーションする前に、ブロッキング溶液(0.3 Mグリシン、50 mM塩化アンモニウム、およびPBS中の1%BSA)でインキュベートしました。
切片を抗SERCA1または-SERCA2および抗MHC Iまたは-MHCII(表1)で4℃で1〜2日間インキュベートし、その後洗浄し、AlexaFluor®488ロビー抗マウスIgGおよびFluorとインキュベートしました。 ®594室温で1時間のドンキー抗ヤギIgG二次ABS。
ダブルIHCは、(抗Serca1 +抗Serca2)および(抗Serca2 +抗MHCII)組み合わせを使用して実行して、共発現を確認しました。
二重IHCでは、同じ希釈液を伴う一次または二次抗体の混合で同じステップが以前と同じように行われました。
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この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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SERCAおよびMHCアイソフォームの免疫局在化
時間枠:6ヶ月
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5つのILMSでのSERCAおよびMHCアイソフォーム(SERCA1、SERCA2、MHC I、およびMHCII)の発現と共発現の免疫局在化
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6ヶ月
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協力者と研究者
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捜査官
- スタディディレクター:Mohammed E Ahmed、Sohag University
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- Mao VH, Abaza M, Spiegel JR, Mandel S, Hawkshaw M, Heuer RJ, Sataloff RT. Laryngeal myasthenia gravis: report of 40 cases. J Voice. 2001 Mar;15(1):122-30. doi: 10.1016/S0892-1997(01)00012-1.
- Marques MJ, Ferretti R, Vomero VU, Minatel E, Neto HS. Intrinsic laryngeal muscles are spared from myonecrosis in the mdx mouse model of Duchenne muscular dystrophy. Muscle Nerve. 2007 Mar;35(3):349-53. doi: 10.1002/mus.20697.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (実際)
研究の完了 (実際)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (実際)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
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医薬品およびデバイス情報、研究文書
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