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후두 근육에서의 차등 SERCA 발현

2025년 2월 14일 업데이트: Mohammed Elrabie Ahmed, Sohag University

쥐 후두 근육에서 SERCA 및 미오신 중쇄 이소 형의 차등 발현

5 개의 ILM에서 SERCA 및 MHC 이소 형 (SERCA1, SERCA2, MHC I 및 MHCII) 발현 및 공동 발현의 면역-국소화를 면역 조직 화학을 갖는 젊은 및 노인 래트 모두에서 조사되었다. ILM에 대한 Denervation 효과에 대한 특별한 우려가 제기되었습니다.

연구 개요

상태

완전한

정황

상세 설명

이 연구에서,이 연구에서, 수컷 성인 Wistar 쥐 (Shimizu Laboratory Supplies Co., Kyoto, Japan), 8-12 주령, 무게는 280-350 g (n = 10)을 어린 쥐로 사용 하였다. 또한, 24 개월 된 래트 (n = 10)는 노화 된 모델로 사용되었다.

동물 조직 제조 동물을 펜 토 바르 비탈 나트륨 (복용량 30-60 mg/kg)의 복강 내 주사로 마취시키고 0.01 M 인산염-완충 식염수 (PBS)로 심장 관류 후 4% 파라 포름 알데히드로 고정시켰다. 후두를 즉시 절제하고 (4 ℃)에서 약 12 ​​시간 동안 동일한 고정 장치에 담았다. 조직을 파라핀으로 가공하고 마이크로톰 (8-10 μm 두께)을 사용하여 절단시켰다.

연구 된 본질적인 후두 근육은 1) 내측 및 측면 갑상선 텐 노이드 (MTA, LTA), (2) 측면 크리코 아레 텐이 노이드 (LCA), (3) 우수한 크리코 아레 텐이드 (SCA), (4) 후부 크리코 아레 텐이드 (PCA) 및 (5)였다. 미세 점화 (CT).

면역 조직 화학 (IHC) 연구자들은 냉동 섹션에서 실패한 빠른 섬유 유형 식별에 직면 한 후 파라핀 섹션으로 이동했습니다. 탈 파라핀 화 된 섹션을 PBS 중 3% H2O2와 10 분 동안 인큐베이션 한 후 전자 레인지 처리 (시트 레이트 완충액에서 500 와트에서 5 분 x 3 회)를 배양 하였다. 이어서, 1 차 항체에서 배양하기 전에 30 분 동안 차단 용액 (0.3m 글리신, 50mM 염화 암모늄 및 1% BSA)에서 섹션을 인큐베이션 하였다. 섹션을 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체와 함께 인큐베이션 한 다음 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor와 함께 인큐베이션 하였다. 실온에서 1 시간 동안 ® 594 당나귀 항-염소 IgG 2 차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 ​​-SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제와 1 차 또는 2 차 항체의 혼합물로 수행되었다.

면역 염색 된 조직 섹션을 FV-1000 레이저 공 초점 현미경 (일본 도쿄 올림푸스)을 사용하여 검사 하였다. ImageJ 1.46 소프트웨어를 사용하여 각 항체에 대한 양성 세포의 백분율을 수동으로 계산하고 계산했습니다.

8-12 주 동안, 노화 된 래트, 나트륨 펜토 바르 비탈로 마취 하의 표준 작동 현미경을 사용하여 중간 선 절개를 통해 후두에 접근 하였다. 올바른 재발 및 우수한 후두 신경의 확인 후, 오른쪽 재발 성 후두 신경에서 1cm 세그먼트를 제거하고 양쪽 끝이 결찰되었다. 올바른 우수한 후두 신경도 나뉘어졌다. 방해받은 쥐 그룹은 2, 4, 8 및 12 주 후에 희생되었다. 후두를 수집하고 위에서 설명한 동일한 절차를 사용하여 IHC를 위해 준비 하였다 (각 그룹에서 n = 5).

멀티 컬러 파이버 타이핑을 사용한 MHC 하위 유형 :

연구가 시작될 때 우리는 냉동 섹션을 시도했습니다. 자가 형광 및 배경 노이즈를 감소시키기위한 여러 기술의 시험 후, 연구자들은 우수한 염색을 가하지 못했습니다. 그런 다음, 연구자들은 MHC 하위 유형을 중단하고 파라핀-매립 블록 통계 분석으로 이동시켰다. 각 래트 항체의 양성 세포 백분율에 대한 이용 가능한 데이터를 SPSS 통계 소프트웨어 버전 16을 사용하여 통계적으로 분석 하였다. 통계적 비교는 짝을 이루지 않은 양측 학생의 t- 검정을 사용하여 수행되었으며 p <0.05에서 유의 한 것으로 간주되었다.

일방적 인 분산 분석 (ANOVA)에 이어 Scheffe의 사후 검사를 수행하여 대측 측면에서 각 근육에 대한 MHC 및 SERCA 조성물을 반대쪽 측면과 나이가 들어감에 따라 젊게 비교했습니다. 제시된 값은 평균 ± SD (표준 편차)이며 SD는 쥐를 가로 질러 있습니다.

연구 유형

중재적

등록 (실제)

40

단계

  • 해당 없음

연락처 및 위치

이 섹션에서는 연구를 수행하는 사람들의 연락처 정보와 이 연구가 수행되는 장소에 대한 정보를 제공합니다.

연구 장소

      • Sohag, 이집트, 82524
        • Sohag University

참여기준

연구원은 적격성 기준이라는 특정 설명에 맞는 사람을 찾습니다. 이러한 기준의 몇 가지 예는 개인의 일반적인 건강 상태 또는 이전 치료입니다.

자격 기준

공부할 수 있는 나이

  • 어린이

건강한 자원 봉사자를 받아들입니다

아니

설명

포함 기준 :

  • 무게는 280-350g (n = 10) 인 8-12 주령을 어린 쥐로 사용 하였다. 또한, 24 개월 된 래트 (n = 10)는 노화 된 모델로 사용되었다.

제외 기준 :

-

공부 계획

이 섹션에서는 연구 설계 방법과 연구가 측정하는 내용을 포함하여 연구 계획에 대한 세부 정보를 제공합니다.

연구는 어떻게 설계됩니까?

디자인 세부사항

  • 주 목적: 특수 증상
  • 할당: 무작위
  • 중재 모델: 병렬 할당
  • 마스킹: 하나의

무기와 개입

참가자 그룹 / 팔
개입 / 치료
실험적: 어린 쥐
수컷 성인 Wistar 쥐 (Shimizu Laboratory Supplies Co., Kyoto, Cyoto), 8-12 주령, 무게는 280-350g (n = 10) 인 anti-serca1 또는 -serca2 및 -serca2 및 -serca2를 갖는 젊은 쥐 면역 조직 화학 (IHC)으로 사용되었습니다. 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체를 세척하고 인큐베이션했습니다. Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor® 594 실온에서 1 시간 동안 당나귀 항-염소 IgG 이차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 ​​-SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
우리는 냉동 섹션에서 빠른 섬유 유형의 식별에 실패한 후 파라핀 섹션으로 이동했습니다. 탈 파라핀 화 된 섹션을 PBS 중 3% H2O2와 10 분 동안 인큐베이션 한 후 전자 레인지 처리 (시트 레이트 완충액에서 500 와트에서 5 분 x 3 회)를 배양 하였다. 이어서, 1 차 항체에서 배양하기 전에 30 분 동안 차단 용액 (0.3m 글리신, 50mM 염화 암모늄 및 1% BSA)에서 섹션을 인큐베이션 하였다. 섹션을 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체와 함께 인큐베이션 한 다음 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor와 함께 인큐베이션 하였다. 실온에서 1 시간 동안 ® 594 당나귀 항-염소 IgG 2 차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 ​​-SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
실험적: 오래된 쥐
24 개월 된 래트 (n = 10)는 노화 된 모델로 사용되었다. 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 항체를 갖는 면역 조직 화학 (IHC)은 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체를 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당장 항-마우스 IgG와 함께 배양했습니다. Fluor® 594 실온에서 1 시간 동안 당나귀 항-염소 IgG 이차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 ​​-SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
우리는 냉동 섹션에서 빠른 섬유 유형의 식별에 실패한 후 파라핀 섹션으로 이동했습니다. 탈 파라핀 화 된 섹션을 PBS 중 3% H2O2와 10 분 동안 인큐베이션 한 후 전자 레인지 처리 (시트 레이트 완충액에서 500 와트에서 5 분 x 3 회)를 배양 하였다. 이어서, 1 차 항체에서 배양하기 전에 30 분 동안 차단 용액 (0.3m 글리신, 50mM 염화 암모늄 및 1% BSA)에서 섹션을 인큐베이션 하였다. 섹션을 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체와 함께 인큐베이션 한 다음 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor와 함께 인큐베이션 하였다. 실온에서 1 시간 동안 ® 594 당나귀 항-염소 IgG 2 차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 ​​-SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
활성 비교기: 변성 된 쥐

8-12 주 동안, 노화 된 래트, 후두는 나트륨 펜토 바르 비탈로 마취 하의 표준 작동 현미경을 사용하여 중간 선 절개를 통해 접근 하였다. 올바른 재발 및 우수한 후두 신경의 확인 후, 오른쪽 재발 성 후두 신경에서 1cm 세그먼트를 제거하고 양쪽 끝이 결찰되었다. 올바른 우수한 후두 신경도 나뉘어졌다. 방해받은 쥐 그룹은 2, 4, 8 및 12 주 후에 희생되었다. 후두를 수집하고 위에서 설명한 동일한 절차를 사용하여 IHC를 위해 준비 하였다 (각 그룹에서 n = 5).

항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 항체를 갖는 면역 조직 화학 (IHC)은 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체를 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당장 항-마우스 IgG와 함께 배양했습니다. Fluor® 594 실온에서 1 시간 동안 당나귀 항-염소 IgG 이차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 ​​-SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서.

우리는 냉동 섹션에서 빠른 섬유 유형의 식별에 실패한 후 파라핀 섹션으로 이동했습니다. 탈 파라핀 화 된 섹션을 PBS 중 3% H2O2와 10 분 동안 인큐베이션 한 후 전자 레인지 처리 (시트 레이트 완충액에서 500 와트에서 5 분 x 3 회)를 배양 하였다. 이어서, 1 차 항체에서 배양하기 전에 30 분 동안 차단 용액 (0.3m 글리신, 50mM 염화 암모늄 및 1% BSA)에서 섹션을 인큐베이션 하였다. 섹션을 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체와 함께 인큐베이션 한 다음 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor와 함께 인큐베이션 하였다. 실온에서 1 시간 동안 ® 594 당나귀 항-염소 IgG 2 차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 ​​-SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.

연구는 무엇을 측정합니까?

주요 결과 측정

결과 측정
측정값 설명
기간
SERCA 및 MHC 이소 형의 면역-국소화
기간: 6 개월
5 개의 ILM에서 SERCA 및 MHC 이소 형 (SERCA1, SERCA2, MHC I 및 MHCII) 발현 및 공동 발현의 면역-국소화
6 개월

공동 작업자 및 조사자

여기에서 이 연구와 관련된 사람과 조직을 찾을 수 있습니다.

스폰서

수사관

  • 연구 책임자: Mohammed E Ahmed, Sohag University

간행물 및 유용한 링크

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연구 기록 날짜

이 날짜는 ClinicalTrials.gov에 대한 연구 기록 및 요약 결과 제출의 진행 상황을 추적합니다. 연구 기록 및 보고된 결과는 공개 웹사이트에 게시되기 전에 특정 품질 관리 기준을 충족하는지 확인하기 위해 국립 의학 도서관(NLM)에서 검토합니다.

연구 주요 날짜

연구 시작 (실제)

2024년 1월 25일

기본 완료 (실제)

2025년 1월 25일

연구 완료 (실제)

2025년 2월 1일

연구 등록 날짜

최초 제출

2025년 2월 7일

QC 기준을 충족하는 최초 제출

2025년 2월 14일

처음 게시됨 (실제)

2025년 3월 25일

연구 기록 업데이트

마지막 업데이트 게시됨 (실제)

2025년 3월 25일

QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출

2025년 2월 14일

마지막으로 확인됨

2025년 2월 1일

추가 정보

이 연구와 관련된 용어

기타 연구 ID 번호

  • sohag-5-24-2023-01

개별 참가자 데이터(IPD) 계획

개별 참가자 데이터(IPD)를 공유할 계획입니까?

아니요

약물 및 장치 정보, 연구 문서

미국 FDA 규제 의약품 연구

아니

미국 FDA 규제 기기 제품 연구

아니

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