- ICH GCP
- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT04622423
간 전이에 대한 고급 치료법 (LiMeT)
간 전이에 대한 고급 면역 유전자 및 세포 치료법
간 전이(MTS)는 결장직장 암종(CRC) 및 췌장관 선암종(PDAC)에 의해 영향을 받는 환자의 주요 사망 원인이며, 따라서 이러한 악성 종양에 대한 주요 미충족 임상 수요를 나타냅니다.
예비 데이터 및 발표된 데이터를 기반으로 연구자들은 혁신적인 면역, 유전자 및 세포 치료 접근법이 관용원성 간 미세 환경을 극복하고 PDAC 및 CRC의 간 MTS에 대한 강력한 치료 도구를 나타낼 수 있다고 가정합니다.
따라서 연구자들은 관찰 임상 연구를 계획하여 별개의 환자 코호트(즉, 전이성 CRC, 전이성 및 비전이성 PDAC)를 등록하고 통합된 최첨단 오믹스를 통해 면역 및 비면역 원발성 종양 및/또는 간 전이의 미세 환경뿐만 아니라 말초 혈액 백혈구의 활성화 상태 및 표현형의 변화를 연관시킵니다. 건강한 지원자는 음성 대조군으로 등록됩니다.
연구자들은 다음을 식별하는 것을 목표로 합니다. i) 실행 가능한 종양 관련 항원(TAA) 및 국소 면역 억제 및 조절 경로; ii) 재발의 조기 진단을 위한 생물학적 매개변수; iii) 항종양 면역 반응 형성에 대한 요법의 효과.
수집된 데이터는 새로운 첨단 치료 의약품(ATMP) 생성에 중요한 역할을 할 것입니다. 실제로 이 프로토콜은 AIRC 5 per Mille 2019 보조금이 지원하는 다중 파트너 변환 프로그램의 일부이며 CRC 및 PDAC의 치료를 개선하고 연구를 돕기 위해 ATMP의 임상 테스트 개발, 검증 및 구현에 중점을 둡니다. 다른 고형 종양.
또한, 등록된 환자의 체계적이고 장기적인 후속 조치는 차등 예후의 조기 예측 변수와 새로운 ATMP를 포함하는 맞춤형 치료에 적합한 환자 범주를 가리킬 수 있습니다.
연구 개요
상태
상세 설명
배경 및 근거 - CRC와 PDAC는 각각 암 사망의 두 번째와 네 번째로 흔한 원인입니다. 이러한 암의 영향을 받는 환자는 간 MTS로 사망합니다. 기존의 치료법은 원발성 종양에서 활성화되지만 전이성 질환에서는 실패합니다. 면역 체크포인트 차단 및 종양 특이적 T 세포를 사용한 입양 세포 요법에 의한 면역 요법의 효과는 국소 면역 억제 기전으로 인해 고형 종양의 MTS에서 부분적이거나 일시적입니다. 이것은 자연 관용원성 환경이 암 세포 및 종양 관련 대식세포(TAM), 골수 유래 억제 세포(MDSC), 호중구 및 조절 T와 같은 침윤 면역 세포에 의해 유도된 면역 억제를 추가로 유지할 수 있는 간 MTS와 특히 관련이 있습니다. 또는 B 세포.
이와 관련하여 증거는 원발성 또는 전이성 CRC의 진행이 불량한 면역 침윤 및 염증과 관련이 있음을 시사합니다. 또한, 1차 PDAC에서 발표된 결과는 종양 진행과 강력한 2형 항염증/면역억제 시그니처 사이의 상관관계를 뒷받침합니다. 화학요법의 효능은 또한 면역 반응을 표적으로 하는 종양의 재활성화 및/또는 재분극화에 의존하는 것으로 알려져 있습니다. 수술 전 화학 요법은 CRC 또는 PDAC MTS의 면역 프로필에서 유익한 효과와 잠재적으로 목표 가능한 변화를 유도할 수 있습니다.
연구자들은 i) 종양 특이적 T 세포를 입양하여 직접 암 세포를 죽이는 것과 ii) 종양 미세 환경의 재프로그래밍을 통한 간접적인 종양 진행 제어가 CRC와 PDAC의 간 MTS를 제어할 것이라고 가정합니다.
따라서 연구자들은 이 두 가지 암 유형에서 전이성 환경의 철저한 특성화를 제안하여 유사점과 차이점을 기반으로 혁신적인 ATMP를 합리적으로 형성합니다.
생물학적 샘플에서 얻은 실험 결과는 다음과 같이 연관됩니다. i) 등록 시점과 후속 조치에 따른 환자의 임상 데이터와 및 ii) 환자의 계층화를 돕기 위해 새로운 생물학적 매개변수 및/또는 시그니처를 식별하기 위한 추가 목표와 함께 임상 추적의 일부로 일상적으로 수집된 말초 혈액 샘플의 생화학적 및 면역학적 데이터가 있는 환자 하위 그룹의 경우 및 맞춤 치료.
목적 - 조사관은 다음을 연구하기를 원합니다.
- 간에서의 종양 돌연변이 부담 및 전이성 종양 미세환경의 조성;
- 간 MTS에서 면역을 제한하는 억제 경로;
- 항종양 T 세포 반응의 항원성 및 클론성 폭;
- 치료 시 이펙터 및 조절 면역 세포의 시공간적 변화;
- 간 MTS 대 (vs) 원발성 종양에서의 종양 세포 및 미세환경의 특성;
- 환자의 의학적 추적 관찰 동안 혈액 유래 생물학적 및 면역학적 마커뿐만 아니라 임상 매개변수의 종단적 변화.
- 또한, 그들은 번역 프로그램의 다른 파트너가 개발한 새로운 ATMP의 검증 및 선택을 지원하기 위해 환자의 샘플을 수집하고 바이오뱅크하기를 원합니다.
주요 목표는 다음과 같습니다.
- 면역 억제/소진 경로 확인
- 종양 특이적 TCR(N≥5/종양 유형)의 라이브러리를 개발하고 CRC 및 PDAC MTS에서 새로운 CAR 표적(N≥1/종양 유형)을 식별하기 위해
연구 설계 - 이 임상 프로토콜은 MTS 종양 세포와 그 미세 환경을 심도 있게 특성화하는 것을 목표로 합니다. 여기에는 수술 전(신보강제)에서 상당한 수준으로 투여되는 화학 요법을 따를 수 있는 전종양에서 항종양 프로파일로의 유익한 동적 변형을 포함할 수 있습니다. 환자의 일부. 따라서 PDAC 및 CRC MTS 환자는 화학 요법을 받지 않은 환자와 치료를 받은 환자에 대한 횡단면 또는 종단 조사로 특징지어질 것입니다.
또한 연구자들은 간 MTS를 원발성 종양과 비교하는 것을 목표로 하여 암 세포, 면역 침윤 및 전이성 확산으로 질병 진행을 촉진할 수 있는 비면역 미세 환경의 동적 질적 변형을 강조합니다. 이러한 수정은 ATMP의 최적 적용을 위한 기회의 창을 제공할 수 있습니다. 이를 위해 외과적 절제술을 받는 1차 비전이성 PDAC 환자를 이 연구에 등록하고 이시성 간 MTS의 발달을 모니터링하기 위해 후속 조치를 취할 것입니다. 수집된 원발성 종양 샘플. 간 MTS 진단 시 말초 혈액 샘플도 수집 및 분석됩니다. 또한, 1차 CRC 및 간 MTS의 동시 절제술을 받는 CRC MTS 환자에서 비교 분석이 두 부위의 종양에 대해 수행되어 두 종양 적소의 환자 내 및 환자 간 프로파일링이 가능합니다.
또한, 다단계 연구 분석의 결과는 PDAC 환자를 고려하여 최대 2년 동안 가능할 때마다 연구 등록 시점과 임상 추적 기간 동안 모든 환자로부터 수집된 임상 데이터와 상관관계가 있을 것입니다. , CRC를 고려합니다.
특히, 전이성 CRC 환자의 경우, 임상적 후속 조치는 일련의 시점에서 혈액 샘플의 동시 수집과 연관될 것이며, 이는 i) 환자의 임상 상태의 생물학적 및 면역학적 상관 관계를 연구하고; ii) 간 진행 또는 재발의 초기 예측자 및 가능하게는 치료 계층화에 대한 지표로서 역할을 하기 위해 간 MTS 수술 시에 분석된 혈액 샘플에서 이전에 식별된 주요 판별자를 평가합니다.
조사관은 최소한 다음에서 조직/혈액 샘플 및 임상 데이터를 수집할 것으로 예상합니다.
- 200명의 전이성 CRC 환자(동기성 또는 이시성);
- 비전이성 PDAC 환자 150명;
- 75명의 동시성 PDAC MTS 환자 및 약 20명의 이시성 PDAC MTS 환자(후자는 원래 총 95명의 전이성 PDAC 환자에 대해 종단 연구를 위한 1차 비전이성 환자로 등록됨);
- 음성 대조군으로서 30명의 건강한 지원자.
다른 생물학적 샘플(말초 혈액, 원발성 및/또는 전이성 종양 조직, 문맥 혈액)은 해당 환자의 표준 진단 및 치료 과정에서 수집되며 일부는 직접 분석되고 일부는 추가 연구를 위해 바이오뱅크에 보관됩니다. . 동시에 임상 데이터는 연구에 등록할 때 그리고 가능할 때마다 PDAC 환자의 경우 최대 2년, CRC 환자의 경우 최대 3년의 추적 기간 동안 환자로부터 수집됩니다.
수집된 데이터의 통계 분석은 첫 번째 환자 등록 후 6개월부터 환자 추적 종료 후 6개월까지 총 7년 동안 임상 연구 전반에 걸쳐 수행됩니다. 연구는 7년 동안 지속됩니다.
다른 생물학적 샘플(말초 혈액, 원발성 및/또는 전이성 종양 조직, 문맥 혈액)은 해당 환자의 표준 진단 및 치료 과정에서 수집되며 일부는 직접 분석되고 일부는 추가 연구를 위해 바이오뱅크에 보관됩니다. . 동시에 PDAC 환자의 경우 2년, CRC 환자의 경우 3년의 추적 기간 동안 연구 등록 시점부터 환자로부터 임상 데이터를 수집할 것입니다.
수집된 임상 및 실험 데이터의 통계 분석은 첫 환자 등록 후 6개월부터 환자의 추적 관찰이 끝날 때까지 총 7년 동안 임상 연구 기간 내내 수행됩니다. 연구는 7년 동안 지속됩니다.
연구 활동은 6개의 작업 패키지(WP)로 구성되고 통합됩니다.
- CRC 및 PDAC MTS 환자에서 간 및 원발성 비-전이성 절제 가능한 PDAC 환자로부터 물질의 수집 및 바이오뱅킹.
- 벌크 및 단일 세포 수준에서 CRC 및 PDAC 전이성 간의 종양 돌연변이 부담, 후생유전학적 및 유전자 발현 프로필의 정의.
- 공간 전사체학 기술(NICHE-seq 및 Visium)에 의한 CRC 및 가능한 경우 PDAC 간 MTS의 분자 및 세포 구성 평가.
- 고차원 유동 세포 계측법에 의한 CRC 및 가능한 경우 PDAC 간 MTS의 면역 환경 특성화.
- 2) 및 4)에서 얻은 분자 결과의 검증.
- CRC 및 PDAC 간 MTS의 항원성 지형 및 TCR 레퍼토리의 정의.
위에서 언급한 WP에서 얻은 결과는 임상 후속 데이터와 교차되고 새로운 ATMP 개발에 초점을 맞춘 프로그램 활동을 보정하는 역할을 합니다.
연구 유형
등록 (추정된)
연락처 및 위치
연구 연락처
- 이름: Chiara Bonini, MD
- 전화번호: 0226434790
- 이메일: bonini.chiara@hsr.it
연구 연락처 백업
- 이름: Giulia Di Lullo, PhD
- 전화번호: 0226433823
- 이메일: dilullo.giulia@hsr.it
연구 장소
-
-
Milan
-
Milan, Milan, 이탈리아, 26431
- 모병
- IRCCS San Raffaele
-
부수사관:
- Luca Antonio Aldrighetti, Professor
-
부수사관:
- Monica Casucci, Dr.
-
부수사관:
- Francesco De Cobelli, Professor
-
부수사관:
- Paolo Dellabona, Dr.
-
부수사관:
- Claudio Doglioni, Professor
-
부수사관:
- Massimo Falconi, Professor
-
부수사관:
- Matteo Iannacone, Professor
-
부수사관:
- Renato Ostuni, Professor
-
부수사관:
- Lorenzo Piemonti, Professor
-
부수사관:
- Maria Pia Protti, Dr.
-
부수사관:
- Michele Reni, Dr.
-
부수사관:
- Giovanni Tonon, Dr.
-
-
참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
샘플링 방법
연구 인구
설명
포함 및 제외 기준 - CRC 환자
포함 기준:
- 조직학적 또는 세포학적으로 간으로 전이된 CRC 진단이 확인된 환자(4기 질환, AJCC)
- 외과적 절제 및/또는 화학 요법 치료에 적응증이 있는 환자
- 연령 ≥18
- 등록 시 ECOG PS 0-1
- 서면 동의서
- 환자는 IRCCS San Raffaele에서 치료받게 됩니다.
제외 기준:
- 임신 또는 수유
- 서면 동의서를 제공할 수 없음
- 간외 질환의 공존이 간 절제 수술의 배제 기준을 구성하지 않는 선택된 사례를 제외한 외외 질환
- 심각한 합병증(예: 심장 질환, 정신 장애 병력, HIV, 자가 면역 질환)
- 완치된 기저 또는 편평 세포 피부암, 표재성 방광암, 전립선 상피내 신생물, 자궁경부의 상피내암종 또는 기타 비침습성 또는 무통성 악성종양을 제외하고 연구 시작 5년 이내에 동시 또는 이전의 기타 악성종양
- 연구자의 판단에 따라 환자가 연구에 부적합한 후보가 될 수 있는 기타 상태(의학적 또는 정신과적)
포함 및 제외 기준 - PDAC 환자
포함 기준:
- 간으로 전이된 췌장 선암종의 임상/방사선 진단/의심자가 있고 후속 세포학적/조직학적 확인이 있는 환자(4기 질환, AJCC)
- 연령 ≥18
- Karnofsky 성능 상태 ≥50
- 전체 간 전이 생검 또는 IRCCS San Raffaele에서 수집한 핵심 간 생검의 조직학적 표본이 있고 기관 바이오뱅크 Centro Risorse Biologiche(CRB-OSR)에 저장된 전이성 췌장 선암종 환자
- 서면 동의서
- IRCCS San Raffaele에서 췌장 절제술을 받을 비전이성 원발성 PDAC로 임상/방사선 진단을 받은 환자
제외 기준:
- 전체 또는 핵심 간 전이 생검에 대한 절대적 금기 사항을 나타내는 심각한 합병증(예: 심장 질환, 정신 장애 병력)
- 임신 또는 수유
- 서면 동의서를 제공할 수 없음
- 간 전이 조직학적 샘플의 분석을 수반하는 다른 연구 시험에 등록된 전이성 췌장 선암종 환자
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 관찰 모델: 보병대
- 시간 관점: 유망한
코호트 및 개입
그룹/코호트 |
|---|
|
PDAC 간-MTS
임상/방사선 진단/간으로 전이된 PDAC가 의심되는 성인 환자와 간 절제/전이 절제 또는 핵심 간 생검으로 인한 세포학적/조직학적 확인(4기 질환, AJCC).
|
|
CRC 간-MTS
조직학적 또는 세포학적으로 간으로 전이된 CRC 진단이 확인된 성인 환자(선행 또는 신보강 요법 후).
|
|
기본 비 MTS PDAC
원발성 비전이성 PDAC의 임상/방사선학적 진단을 받은 성인 환자, 원발성 종양의 근치적 의도를 가진 외과적 절제 대상자(선행 수술 또는 신보강 요법 후).
이 환자들은 후속 검사를 통해 이시성 간 PDAC MTS의 조기 진단을 위해 모니터링됩니다.
|
|
건강한 자원봉사자
임상 연구를 위한 음성 대조군.
|
|
IPMN
선암으로 진행될 수 있는 전암성 병변으로 간주되는 관내 유두상 점액성 종양(IPMN) 진단을 받은 성인 환자. 주관 IPMN은 일반적으로 수술적 절제가 필요하지만, 분지관의 경우 감시를 통해 경과 관찰이 가능할 수 있습니다. |
연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
벌크 및 단일 세포 수준에서 CRC 및 PDAC 전이성 간의 종양 돌연변이 부담, 후생유전학적 및 유전자 발현 프로필의 정의
기간: 간 전이/원발성 종양 절제/생검 후, 보통 12개월 이내
|
CRC/PDAC MTS 샘플은 다음에 의해 분석됩니다.
나이브 대 화학요법 처리된 병변 및 원발성 대 MTS 병변을 비교하여 각각 별개의 종양 부위에서 화학요법-유도 변형 및 분자 진화를 평가할 것이다. |
간 전이/원발성 종양 절제/생검 후, 보통 12개월 이내
|
|
고차원 유동 세포 계측법에 의한 CRC 및 가능한 경우 PDAC 간 MTS의 면역 환경 특성화
기간: 조직 검체의 경우: 종양 조직 절제/생검 직후(신선한 검체에 대한 분석); 혈액 검체의 경우: 채혈 후, 일반적으로 12개월 이내(신선 및/또는 해동된 검체에 대한 분석)
|
CRC 및 PDAC MTS의 단일 세포 현탁액 및 쌍을 이룬 자가 PBMC 및 수술 전 화학 요법 전후에 수확된 문맥 혈액을 연구하기 위해 일련의 병렬 다색성 고차원 28색 유세포 분석 패널로 분석할 것입니다:
가능할 때마다 일치하는 원발성 병변과 MTS 병변을 비교하여 별개의 종양 부위에서 면역 환경을 평가합니다. |
조직 검체의 경우: 종양 조직 절제/생검 직후(신선한 검체에 대한 분석); 혈액 검체의 경우: 채혈 후, 일반적으로 12개월 이내(신선 및/또는 해동된 검체에 대한 분석)
|
|
1. 및 2에서 얻은 분자 결과의 조직학적 검증.
기간: 간 전이/원발성 종양 절제/생검 후, 보통 12개월 이내
|
MTS CRC 및 PDAC 생검, 병소주위 실질 및 이용 가능한 경우, 일치하는 원발성 종양 샘플.
다중 IF 및 IHC 외에도 일부 표본은 GeoMx Digital Spatial Profiler(Nanostring)와 같은 고급 공간 프로테오믹스 기술로 더 깊이 특성화됩니다.
|
간 전이/원발성 종양 절제/생검 후, 보통 12개월 이내
|
|
CRC 및 PDAC 간 MTS의 항원 환경 및 TCR 레퍼토리 정의
기간: 간 전이/원발성 종양 절제/생검 후, 보통 12개월 이내
|
종양 반응성 TCR의 식별은 다양하고 보완적인 전략을 통해 추구될 것입니다.
|
간 전이/원발성 종양 절제/생검 후, 보통 12개월 이내
|
2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
공간 전사체학 기술(NICHE-seq 및 Visium)에 의한 CRC 및 가능한 경우 PDAC 간 MTS의 분자 및 세포 구성 평가
기간: 간 전이/원발성 종양 절제/생검 후, 보통 12개월 이내
|
세포 내에서 침투할 수 있는 광활성화 가능(케이지) 형광단을 사용하여 신선하게 분리된 인간 조직에 NICHE-seq 적용 NICHE-seq 영역과 그 분자 경로에서 면역 세포 유형의 공간 구성을 동시에.
NICHE-seq 및 기존 단일 세포 RNA seq는 결과를 비교하기 위해 나란히 진행됩니다.
일부 선택된 표본은 Visium Spatial Gene Expression(10X Genomics)과 같이 최근 몇 년 동안 개발된 고급 공간 전사체학 기술로 분석됩니다.
|
간 전이/원발성 종양 절제/생검 후, 보통 12개월 이내
|
|
임상 추적 데이터 수집
기간: CRC 환자: 수술 후 추적 기간 동안 최대 36개월 동안; PDAC 환자: 수술 후 추적 기간 동안 최대 24개월 동안
|
전체 생존(OS), 무병 생존(DFS) 및 기타 후속 매개변수(환자의 상태, CEA 수준, Ca 19-9 수준, 수술 후 보조 화학요법, 재발 날짜 및 부위, 재발 시 치료)를 수집하고 1차 결과 측정에서 확인되고 검증된 마커 및 경로와 상관관계가 있을 수 있습니다.
|
CRC 환자: 수술 후 추적 기간 동안 최대 36개월 동안; PDAC 환자: 수술 후 추적 기간 동안 최대 24개월 동안
|
|
간에서 CRC 및 이시성 PDAC MTS 환자의 후속 샘플 수집 및 바이오뱅킹
기간: CRC: 수술 후 후속 조치(최대 36개월) 동안, 6개월 간격으로; PDAC: 수술 후 추적 기간 동안(최대 24개월), 간 재발 시
|
|
CRC: 수술 후 후속 조치(최대 36개월) 동안, 6개월 간격으로; PDAC: 수술 후 추적 기간 동안(최대 24개월), 간 재발 시
|
|
CRC 및 PDAC 환자와 건강한 기증자로부터 수집한 생체 시료의 바이오뱅킹
기간: 프로토콜 전체(7년)
|
Biobanked 샘플은 1-5에 설명된 대로 연구되지만 아마도 다음 미래에 개발된 새로운 첨단 기술을 사용하여 연구될 것입니다. 또한 연구 프로그램에서 개발한 새로운 ATMP의 효능과 안전성을 검증하기 위해 시험관 내 및 생체 내 시스템(예: 환자 유래 오가노이드, 조직 칩, 환자 유래 이종이식 모델)을 설정하는 데 사용될 것입니다. |
프로토콜 전체(7년)
|
공동 작업자 및 조사자
수사관
- 수석 연구원: Chiara Bonini, MD, Vita-Salute San Raffaele University, IRCCS San Raffaele
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Galon J, Costes A, Sanchez-Cabo F, Kirilovsky A, Mlecnik B, Lagorce-Pages C, Tosolini M, Camus M, Berger A, Wind P, Zinzindohoue F, Bruneval P, Cugnenc PH, Trajanoski Z, Fridman WH, Pages F. Type, density, and location of immune cells within human colorectal tumors predict clinical outcome. Science. 2006 Sep 29;313(5795):1960-4. doi: 10.1126/science.1129139.
- Lambert AW, Pattabiraman DR, Weinberg RA. Emerging Biological Principles of Metastasis. Cell. 2017 Feb 9;168(4):670-691. doi: 10.1016/j.cell.2016.11.037.
- Le DT, Durham JN, Smith KN, Wang H, Bartlett BR, Aulakh LK, Lu S, Kemberling H, Wilt C, Luber BS, Wong F, Azad NS, Rucki AA, Laheru D, Donehower R, Zaheer A, Fisher GA, Crocenzi TS, Lee JJ, Greten TF, Duffy AG, Ciombor KK, Eyring AD, Lam BH, Joe A, Kang SP, Holdhoff M, Danilova L, Cope L, Meyer C, Zhou S, Goldberg RM, Armstrong DK, Bever KM, Fader AN, Taube J, Housseau F, Spetzler D, Xiao N, Pardoll DM, Papadopoulos N, Kinzler KW, Eshleman JR, Vogelstein B, Anders RA, Diaz LA Jr. Mismatch repair deficiency predicts response of solid tumors to PD-1 blockade. Science. 2017 Jul 28;357(6349):409-413. doi: 10.1126/science.aan6733. Epub 2017 Jun 8.
- Kitamura T, Qian BZ, Pollard JW. Immune cell promotion of metastasis. Nat Rev Immunol. 2015 Feb;15(2):73-86. doi: 10.1038/nri3789.
- Zheng C, Zheng L, Yoo JK, Guo H, Zhang Y, Guo X, Kang B, Hu R, Huang JY, Zhang Q, Liu Z, Dong M, Hu X, Ouyang W, Peng J, Zhang Z. Landscape of Infiltrating T Cells in Liver Cancer Revealed by Single-Cell Sequencing. Cell. 2017 Jun 15;169(7):1342-1356.e16. doi: 10.1016/j.cell.2017.05.035.
- Zitvogel L, Galluzzi L, Smyth MJ, Kroemer G. Mechanism of action of conventional and targeted anticancer therapies: reinstating immunosurveillance. Immunity. 2013 Jul 25;39(1):74-88. doi: 10.1016/j.immuni.2013.06.014.
- De Monte L, Reni M, Tassi E, Clavenna D, Papa I, Recalde H, Braga M, Di Carlo V, Doglioni C, Protti MP. Intratumor T helper type 2 cell infiltrate correlates with cancer-associated fibroblast thymic stromal lymphopoietin production and reduced survival in pancreatic cancer. J Exp Med. 2011 Mar 14;208(3):469-78. doi: 10.1084/jem.20101876. Epub 2011 Feb 21.
- Galluzzi L, Buque A, Kepp O, Zitvogel L, Kroemer G. Immunological Effects of Conventional Chemotherapy and Targeted Anticancer Agents. Cancer Cell. 2015 Dec 14;28(6):690-714. doi: 10.1016/j.ccell.2015.10.012.
- Nordby T, Hugenschmidt H, Fagerland MW, Ikdahl T, Buanes T, Labori KJ. Follow-up after curative surgery for pancreatic ductal adenocarcinoma: asymptomatic recurrence is associated with improved survival. Eur J Surg Oncol. 2013 Jun;39(6):559-66. doi: 10.1016/j.ejso.2013.02.020. Epub 2013 Mar 14.
- Tzeng CW, Fleming JB, Lee JE, Wang X, Pisters PW, Vauthey JN, Varadhachary G, Wolff RA, Katz MH. Yield of clinical and radiographic surveillance in patients with resected pancreatic adenocarcinoma following multimodal therapy. HPB (Oxford). 2012 Jun;14(6):365-72. doi: 10.1111/j.1477-2574.2012.00445.x. Epub 2012 Feb 28.
- Tjaden C, Michalski CW, Strobel O, Giese N, Hennche AK, Buchler MW, Hackert T. Clinical Impact of Structured Follow-up After Pancreatic Surgery. Pancreas. 2016 Jul;45(6):895-9. doi: 10.1097/MPA.0000000000000564.
- McGranahan N, Rosenthal R, Hiley CT, Rowan AJ, Watkins TBK, Wilson GA, Birkbak NJ, Veeriah S, Van Loo P, Herrero J, Swanton C; TRACERx Consortium. Allele-Specific HLA Loss and Immune Escape in Lung Cancer Evolution. Cell. 2017 Nov 30;171(6):1259-1271.e11. doi: 10.1016/j.cell.2017.10.001. Epub 2017 Oct 26.
- Fruh M, Peters S. Genomic Features of Response to Combination Immunotherapy in Lung Cancer. Cancer Cell. 2018 May 14;33(5):791-793. doi: 10.1016/j.ccell.2018.04.005.
- Norelli M, Camisa B, Barbiera G, Falcone L, Purevdorj A, Genua M, Sanvito F, Ponzoni M, Doglioni C, Cristofori P, Traversari C, Bordignon C, Ciceri F, Ostuni R, Bonini C, Casucci M, Bondanza A. Monocyte-derived IL-1 and IL-6 are differentially required for cytokine-release syndrome and neurotoxicity due to CAR T cells. Nat Med. 2018 Jun;24(6):739-748. doi: 10.1038/s41591-018-0036-4. Epub 2018 May 28.
- Escobar G, Barbarossa L, Barbiera G, Norelli M, Genua M, Ranghetti A, Plati T, Camisa B, Brombin C, Cittaro D, Annoni A, Bondanza A, Ostuni R, Gentner B, Naldini L. Interferon gene therapy reprograms the leukemia microenvironment inducing protective immunity to multiple tumor antigens. Nat Commun. 2018 Jul 24;9(1):2896. doi: 10.1038/s41467-018-05315-0.
- Medaglia C, Giladi A, Stoler-Barak L, De Giovanni M, Salame TM, Biram A, David E, Li H, Iannacone M, Shulman Z, Amit I. Spatial reconstruction of immune niches by combining photoactivatable reporters and scRNA-seq. Science. 2017 Dec 22;358(6370):1622-1626. doi: 10.1126/science.aao4277. Epub 2017 Dec 7.
- Lepore M, Mori L, De Libero G. The Conventional Nature of Non-MHC-Restricted T Cells. Front Immunol. 2018 Jun 14;9:1365. doi: 10.3389/fimmu.2018.01365. eCollection 2018.
- Cortesi F, Delfanti G, Grilli A, Calcinotto A, Gorini F, Pucci F, Luciano R, Grioni M, Recchia A, Benigni F, Briganti A, Salonia A, De Palma M, Bicciato S, Doglioni C, Bellone M, Casorati G, Dellabona P. Bimodal CD40/Fas-Dependent Crosstalk between iNKT Cells and Tumor-Associated Macrophages Impairs Prostate Cancer Progression. Cell Rep. 2018 Mar 13;22(11):3006-3020. doi: 10.1016/j.celrep.2018.02.058.
- Noviello M, Manfredi F, Ruggiero E, Perini T, Oliveira G, Cortesi F, De Simone P, Toffalori C, Gambacorta V, Greco R, Peccatori J, Casucci M, Casorati G, Dellabona P, Onozawa M, Teshima T, Griffioen M, Halkes CJM, Falkenburg JHF, Stolzel F, Altmann H, Bornhauser M, Waterhouse M, Zeiser R, Finke J, Cieri N, Bondanza A, Vago L, Ciceri F, Bonini C. Bone marrow central memory and memory stem T-cell exhaustion in AML patients relapsing after HSCT. Nat Commun. 2019 Mar 25;10(1):1065. doi: 10.1038/s41467-019-08871-1.
- Tran E, Ahmadzadeh M, Lu YC, Gros A, Turcotte S, Robbins PF, Gartner JJ, Zheng Z, Li YF, Ray S, Wunderlich JR, Somerville RP, Rosenberg SA. Immunogenicity of somatic mutations in human gastrointestinal cancers. Science. 2015 Dec 11;350(6266):1387-90. doi: 10.1126/science.aad1253. Epub 2015 Oct 29.
- Mennonna D, Maccalli C, Romano MC, Garavaglia C, Capocefalo F, Bordoni R, Severgnini M, De Bellis G, Sidney J, Sette A, Gori A, Longhi R, Braga M, Ghirardelli L, Baldari L, Orsenigo E, Albarello L, Zino E, Fleischhauer K, Mazzola G, Ferrero N, Amoroso A, Casorati G, Parmiani G, Dellabona P. T cell neoepitope discovery in colorectal cancer by high throughput profiling of somatic mutations in expressed genes. Gut. 2017 Mar;66(3):454-463. doi: 10.1136/gutjnl-2015-309453. Epub 2015 Dec 17.
- Ruggiero E, Nicolay JP, Fronza R, Arens A, Paruzynski A, Nowrouzi A, Urenden G, Lulay C, Schneider S, Goerdt S, Glimm H, Krammer PH, Schmidt M, von Kalle C. High-resolution analysis of the human T-cell receptor repertoire. Nat Commun. 2015 Sep 1;6:8081. doi: 10.1038/ncomms9081.
- Schumacher TN, Schreiber RD. Neoantigens in cancer immunotherapy. Science. 2015 Apr 3;348(6230):69-74. doi: 10.1126/science.aaa4971.
- Newman AM, Liu CL, Green MR, Gentles AJ, Feng W, Xu Y, Hoang CD, Diehn M, Alizadeh AA. Robust enumeration of cell subsets from tissue expression profiles. Nat Methods. 2015 May;12(5):453-7. doi: 10.1038/nmeth.3337. Epub 2015 Mar 30.
- Manici S, Sturniolo T, Imro MA, Hammer J, Sinigaglia F, Noppen C, Spagnoli G, Mazzi B, Bellone M, Dellabona P, Protti MP. Melanoma cells present a MAGE-3 epitope to CD4(+) cytotoxic T cells in association with histocompatibility leukocyte antigen DR11. J Exp Med. 1999 Mar 1;189(5):871-6. doi: 10.1084/jem.189.5.871.
- Tran E, Turcotte S, Gros A, Robbins PF, Lu YC, Dudley ME, Wunderlich JR, Somerville RP, Hogan K, Hinrichs CS, Parkhurst MR, Yang JC, Rosenberg SA. Cancer immunotherapy based on mutation-specific CD4+ T cells in a patient with epithelial cancer. Science. 2014 May 9;344(6184):641-5. doi: 10.1126/science.1251102.
- Tran E, Robbins PF, Lu YC, Prickett TD, Gartner JJ, Jia L, Pasetto A, Zheng Z, Ray S, Groh EM, Kriley IR, Rosenberg SA. T-Cell Transfer Therapy Targeting Mutant KRAS in Cancer. N Engl J Med. 2016 Dec 8;375(23):2255-2262. doi: 10.1056/NEJMoa1609279.
- Lim WA, June CH. The Principles of Engineering Immune Cells to Treat Cancer. Cell. 2017 Feb 9;168(4):724-740. doi: 10.1016/j.cell.2017.01.016.
- Balachandran VP, Luksza M, Zhao JN, Makarov V, Moral JA, Remark R, Herbst B, Askan G, Bhanot U, Senbabaoglu Y, Wells DK, Cary CIO, Grbovic-Huezo O, Attiyeh M, Medina B, Zhang J, Loo J, Saglimbeni J, Abu-Akeel M, Zappasodi R, Riaz N, Smoragiewicz M, Kelley ZL, Basturk O; Australian Pancreatic Cancer Genome Initiative; Garvan Institute of Medical Research; Prince of Wales Hospital; Royal North Shore Hospital; University of Glasgow; St Vincent's Hospital; QIMR Berghofer Medical Research Institute; University of Melbourne, Centre for Cancer Research; University of Queensland, Institute for Molecular Bioscience; Bankstown Hospital; Liverpool Hospital; Royal Prince Alfred Hospital, Chris O'Brien Lifehouse; Westmead Hospital; Fremantle Hospital; St John of God Healthcare; Royal Adelaide Hospital; Flinders Medical Centre; Envoi Pathology; Princess Alexandria Hospital; Austin Hospital; Johns Hopkins Medical Institutes; ARC-Net Centre for Applied Research on Cancer; Gonen M, Levine AJ, Allen PJ, Fearon DT, Merad M, Gnjatic S, Iacobuzio-Donahue CA, Wolchok JD, DeMatteo RP, Chan TA, Greenbaum BD, Merghoub T, Leach SD. Identification of unique neoantigen qualities in long-term survivors of pancreatic cancer. Nature. 2017 Nov 23;551(7681):512-516. doi: 10.1038/nature24462. Epub 2017 Nov 8.
- Mlecnik B, Van den Eynde M, Bindea G, Church SE, Vasaturo A, Fredriksen T, Lafontaine L, Haicheur N, Marliot F, Debetancourt D, Pairet G, Jouret-Mourin A, Gigot JF, Hubert C, Danse E, Dragean C, Carrasco J, Humblet Y, Valge-Archer V, Berger A, Pages F, Machiels JP, Galon J. Comprehensive Intrametastatic Immune Quantification and Major Impact of Immunoscore on Survival. J Natl Cancer Inst. 2018 Jan 1;110(1). doi: 10.1093/jnci/djx123.
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
기본 완료 (추정된)
연구 완료 (추정된)
연구 등록 날짜
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
마지막으로 확인됨
추가 정보
이 연구와 관련된 용어
추가 관련 MeSH 약관
기타 연구 ID 번호
- LiMeT
- 22737 (기타 보조금/기금 번호: Italian Association for Cancer Research (AIRC), 5XMille call)
- 101118936 - ERC-2023-SyG (기타 보조금/기금 번호: European Research Council (ERC))
- FRRB 2024 (기타 보조금/기금 번호: Fondazione Regionale per la Ricerca Biomedica (FRRB))
개별 참가자 데이터(IPD) 계획
개별 참가자 데이터(IPD)를 공유할 계획입니까?
약물 및 장치 정보, 연구 문서
미국 FDA 규제 의약품 연구
미국 FDA 규제 기기 제품 연구
이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .