- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk forsøg NCT04622423
Avancerede terapier for levermetastaser (LiMeT)
Avancerede immungen- og celleterapier for levermetastaser
Levermetastaser (MTS) er hovedårsagen til dødsfald for patienter, der er ramt af kolorektalt karcinom (CRC) og pancreas duktalt adenokarcinom (PDAC), og repræsenterer således det største udækkede kliniske behov for disse maligniteter.
Baseret på foreløbige og offentliggjorte data antager efterforskerne, at innovative immun-, gen- og celleterapitilgange kan overvinde det tolerogene levermikromiljø og repræsentere kraftfulde terapeutiske værktøjer til lever-MTS af PDAC og CRC.
Efterforskerne har derfor planlagt en observationel klinisk undersøgelse for at indskrive forskellige kohorter af patienter (dvs. metastatisk CRC, metastatisk og ikke-metastatisk PDAC) og fint karakterisere, gennem integreret state-of-the-art-omics, immun og ikke-immun. mikromiljø af deres primære tumor- og/eller levermetastaser samt korrelere ændringer i aktiveringsstatus og fænotype af perifere blodleukocytter. Raske frivillige vil blive tilmeldt som negative kontroller.
Efterforskerne sigter mod at identificere: i) handlingsbare tumorassocierede antigener (TAA'er) og lokale immunsuppressive og regulatoriske veje; ii) biologiske parametre for tidlig diagnose af tilbagefald; iii) virkningen af terapier på udformningen af antitumorimmunresponser.
De indsamlede data vil være medvirkende til udviklingen af nye lægemidler til avanceret terapi (ATMP'er). Faktisk er denne protokol en del af et multi-partner translationelt program, støttet af AIRC 5 per Mille 2019-bevillingen, fokuseret på udvikling, validering og implementering til klinisk testning af ATMP'er for at forbedre helbredelsen af CRC og PDAC og muligvis hjælpe undersøgelsen af andre solide tumorer.
Desuden vil den systematiske og langsigtede opfølgning af indskrevne patienter muligvis pege på tidlige prædiktorer for differentiel prognose og patientkategorier, der er kvalificerede til skræddersyede terapier, herunder dem med de nye ATMP'er.
Studieoversigt
Status
Detaljeret beskrivelse
Baggrund og begrundelse - CRC og PDAC er henholdsvis den anden og fjerde hyppigste årsag til kræftdød. Patienter ramt af disse kræftformer dør af lever-MTS. Konventionelle terapier er aktive i begge primære tumorer, men mislykkes ved metastatisk sygdom. Effektiviteten af immunterapi ved blokade af immuncheckpoint og adoptiv celleterapi med tumorspecifikke T-celler er kun delvis eller midlertidig i MTS fra solide tumorer på grund af lokale immunsuppressive mekanismer. Dette er især relevant for hepatisk MTS, hvor et naturligt tolerogent miljø yderligere kan opretholde immunsuppression induceret af cancerceller og infiltrerende immunceller, såsom tumorassocierede makrofager (TAM'er), myeloid-afledte suppressorceller (MDSC'er), neutrofiler og regulatorisk T eller B-celler.
I denne henseende tyder beviser på, at progression af primær eller metastatisk CRC korrelerer med dårlig immuninfiltration og inflammation. Desuden understøtter vores offentliggjorte resultater i primær PDAC en sammenhæng mellem tumorprogression og en stærk type 2 antiinflammatorisk/immunsuppressiv signatur. Effekten af kemoterapi vides også at være afhængig af reaktivering og/eller repolarisering af tumormålrettede immunresponser. Præ-kirurgisk kemoterapi kan inducere gavnlige virkninger og potentielt målrettede ændringer i immunprofilen af CRC eller PDAC MTS.
Forskerne antager, at en kombination af: i) direkte cancercelledrab ved adoptivt overførte tumorspecifikke T-celler og ii) indirekte kontrol af tumorprogression via omprogrammering af tumormikromiljøet ville kontrollere hepatisk MTS af CRC og PDAC.
Således foreslår efterforskerne en grundig karakterisering af det metastatiske miljø i disse to cancertyper for rationelt at forme, på grundlag af ligheder og forskelle, innovative ATMP'er.
Eksperimentelle resultater opnået fra biologiske prøver vil blive korreleret: i) med kliniske data fra patienter på tidspunktet for indskrivning og under deres opfølgning; og ii) for en undergruppe af patienter med biokemiske og immunologiske data fra perifere blodprøver, der rutinemæssigt er indsamlet som en del af deres kliniske opfølgning, med det yderligere formål at identificere nye biologiske parametre og/eller signaturer for at hjælpe med stratificering af patienter og skræddersyet behandlinger.
Mål - Efterforskerne ønsker at studere:
- tumormutationsbyrden og sammensætningen af det metastatiske tumormikromiljø i leveren;
- de hæmmende veje, der begrænser immunitet i lever-MTS;
- den antigene og klonale bredde af antitumor-T-celleresponser;
- de rumlige-temporale variationer af effektor- og regulatoriske immunceller efter terapi;
- tumorcellernes karakteristika og deres mikromiljø i lever-MTS versus (vs) primær tumor;
- de longitudinelle variationer af kliniske parametre samt blodafledte biologiske og immunologiske markører under den medicinske opfølgning af patienter.
- Desuden ønsker de at indsamle og biobank patienters prøver for at understøtte valideringen og udvælgelsen af de nye ATMP'er udviklet af de andre partnere i det translationelle program.
De primære mål vil være:
- at identificere immunsuppressive/udmattelsesveje
- at udvikle et bibliotek af tumorspecifik TCR (N≥5/tumortype) og identificere nye CAR-mål (N≥1/tumortype) i CRC og PDAC MTS
Studiedesign - Denne kliniske protokol sigter mod dybt at karakterisere MTS-tumorceller og deres mikromiljø, herunder muligvis informative dynamiske modifikationer fra pro-tumor til anti-tumor-profiler, der kan følge kemoterapi, som administreres før kirurgi (neo-adjuvans) til en væsentlig brøkdel af patienterne. PDAC- og CRC MTS-patienter vil derfor blive karakteriseret ved enten tværsnits- eller longitudinelle undersøgelser på kemoterapi-naive vs -behandlede patienter.
Derudover sigter efterforskerne på at sammenligne hepatisk MTS med primær tumor for at fremhæve dynamiske kvalitative modifikationer i cancerceller, immuninfiltrater og ikke-immun mikromiljø, der kunne lette sygdomsprogression mod metastatisk spredning. Disse ændringer kan give mulighed for optimal anvendelse af vores ATMP'er. Til dette formål vil primære ikke-metastatiske PDAC-patienter, der gennemgår kirurgisk resektion, blive optaget i denne undersøgelse og følges op til overvågning af udviklingen af metakron lever-MTS, der, når det er muligt, vil blive karakteriseret og sammenlignet med deres matchede/ikke matchede, tidligere indsamlede primære tumorprøver. Perifere blodprøver på tidspunktet for lever-MTS-diagnose vil også blive indsamlet og analyseret. Også hos de CRC MTS-patienter, der gennemgår synkron resektion af primær CRC og hepatisk MTS, vil der blive udført sammenlignende analyser på tumor fra begge steder, hvilket muliggør intra- og inter-patientprofilering af begge tumornicher.
Desuden vil resultater fra forskningsanalyser på flere niveauer blive korreleret med kliniske data indsamlet fra alle patienter på tidspunktet for indskrivning i undersøgelsen og under deres kliniske opfølgning, når det er muligt i op til 2 år, PDAC-patienter taget i betragtning, og 3 år , i betragtning af CRC.
Især for metastaserende CRC-patienter vil den kliniske opfølgning være forbundet med samtidig indsamling af blodprøver på serielle tidspunkter, som prospektivt vil blive biobanket til yderligere analyser rettet mod: i) at studere biologiske og immunologiske korrelater af patientens kliniske status; ii) evaluering af nøglediskriminanter, der tidligere er identificeret i blodprøver analyseret på tidspunktet for lever-MTS-kirurgi, for at tjene som tidlige forudsigere for leverprogression eller -tilbagefald og muligvis som indikatorer for terapeutisk stratificering.
Efterforskerne forventer at indsamle vævs-/blodprøver og kliniske data fra mindst:
- 200 metastatiske CRC-patienter (enten synkrone eller metakrone);
- 150 ikke-metastaserende PDAC-patienter;
- 75 synkrone PDAC MTS-patienter og omkring 20 metakrone PDAC MTS-patienter, sidstnævnte oprindeligt indskrevet som primære ikke-metastatiske patienter til det longitudinelle studie, for i alt 95 metastaserende PDAC-patienter;
- 30 raske frivillige, som negative kontroller.
Forskellige biologiske prøver (perifert blod, primært og/eller metastatisk tumorvæv, portalblod) vil blive indsamlet i løbet af den standarddiagnostiske og terapeutiske behandling af disse patienter og vil delvis blive analyseret direkte og delvist biobanket til yderligere undersøgelser . Parallelt hermed vil der blive indsamlet kliniske data fra patienter på tidspunktet for optagelse i undersøgelsen og, når det er muligt, for en opfølgningsperiode på op til 2 år for PDAC-patienter og 3 år for CRC-patienter.
Den statistiske analyse af indsamlede data vil blive udført gennem hele det kliniske studie, startende 6 måneder efter indskrivningen af den første patient til 6 måneder efter afslutningen af patienternes opfølgning, i i alt 7 år. Studiet vil vare 7 år.
Forskellige biologiske prøver (perifert blod, primært og/eller metastatisk tumorvæv, portalblod) vil blive indsamlet i løbet af den standarddiagnostiske og terapeutiske behandling af disse patienter og vil delvis blive analyseret direkte og delvist biobanket til yderligere undersøgelser . Sideløbende hermed vil kliniske data blive indsamlet fra patienter siden indskrivningstidspunktet i undersøgelsen i en opfølgningsperiode på 2 år for PDAC-patienter og 3 år for CRC-patienter.
Den statistiske analyse af de indsamlede kliniske og eksperimentelle data vil blive udført under hele det kliniske studie, startende 6 måneder efter indskrivningen af den første patient indtil afslutningen af patienternes opfølgning, i i alt 7 år. Studiet vil vare 7 år.
Forskningsaktiviteterne vil blive organiseret og integreret i 6 arbejdspakker (WP'er):
- Indsamling og biobanking af materialet fra patienter med CRC og PDAC MTS til leveren og med primær ikke-metastatisk resektabel PDAC.
- Definition af tumormutationsbyrden, epigenetisk og genekspressionsprofil af CRC- og PDAC-metastatisk lever på bulk- og enkeltcelleniveau.
- Evaluering af den molekylære og cellulære sammensætning af CRC og, hvis muligt, PDAC-lever MTS ved hjælp af rumlige transkriptomiske teknologier (NICHE-seq og Visium).
- Karakterisering af immunlandskaberne i CRC og, hvis muligt, PDAC-lever MTS ved højdimensionel flowcytometri.
- Validering af de molekylære resultater opnået i 2) og 4).
- Definition af det antigene landskab og TCR-repertoire af CRC og PDAC lever MTS.
Resultaterne opnået af de ovennævnte WP'er vil blive krydset med kliniske opfølgningsdata og tjene til at kalibrere programaktiviteterne fokuseret på udvikling af nye ATMP'er.
Undersøgelsestype
Tilmelding (Anslået)
Kontakter og lokationer
Studiekontakt
- Navn: Chiara Bonini, MD
- Telefonnummer: 0226434790
- E-mail: bonini.chiara@hsr.it
Undersøgelse Kontakt Backup
- Navn: Giulia Di Lullo, PhD
- Telefonnummer: 0226433823
- E-mail: dilullo.giulia@hsr.it
Studiesteder
-
-
Milan
-
Milan, Milan, Italien, 26431
- Rekruttering
- IRCCS San Raffaele
-
Underforsker:
- Luca Antonio Aldrighetti, Professor
-
Underforsker:
- Monica Casucci, Dr.
-
Underforsker:
- Francesco De Cobelli, Professor
-
Underforsker:
- Paolo Dellabona, Dr.
-
Underforsker:
- Claudio Doglioni, Professor
-
Underforsker:
- Massimo Falconi, Professor
-
Underforsker:
- Matteo Iannacone, Professor
-
Underforsker:
- Renato Ostuni, Professor
-
Underforsker:
- Lorenzo Piemonti, Professor
-
Underforsker:
- Maria Pia Protti, Dr.
-
Underforsker:
- Michele Reni, Dr.
-
Underforsker:
- Giovanni Tonon, Dr.
-
-
Deltagelseskriterier
Berettigelseskriterier
Aldre berettiget til at studere
Tager imod sunde frivillige
Prøveudtagningsmetode
Studiebefolkning
Beskrivelse
Inklusions- og eksklusionskriterier - CRC-patienter
Inklusionskriterier:
- Patienter med histologisk eller cytologisk bekræftet diagnose af CRC metastaserende til leveren (stadie IV sygdom, AJCC)
- Patienter med indikation til kirurgisk resektion og/eller kemoterapibehandling
- Alder ≥18
- ECOG PS 0-1 ved tilmelding
- Skriftligt informeret samtykke
- Patienterne vil blive behandlet i IRCCS San Raffaele
Ekskluderingskriterier:
- Graviditet eller amning
- Manglende evne til at give et skriftligt informeret samtykke
- Ekstraepatisk sygdom med undtagelse af udvalgte tilfælde, hvor sameksistensen af ekstrahepatisk sygdom ikke udgør et udelukkelseskriterium for leverresektiv kirurgi (f.eks. hos patienter med ekstraepatiske læsioner i remission eller under alle omstændigheder stabiliseret ved kemoterapi)
- Alvorlige komorbiditeter (f. hjertesygdomme, historie med psykiatriske handicap, HIV, autoimmune lidelser)
- Samtidig eller tidligere anden malignitet inden for 5 år efter studiestart, undtagen helbredt basal- eller pladecellehudkræft, overfladisk blærekræft, prostata intraepitelial neoplasma, carcinom in-situ i livmoderhalsen eller anden ikke-invasiv eller indolent malignitet
- Andre tilstande (medicinske eller psykiatriske), som efter efterforskernes vurdering ville gøre patienten til en upassende kandidat til undersøgelsen
Inklusions- og eksklusionskriterier - PDAC-patienter
Inklusionskriterier:
- Patienter med klinisk/radiologisk diagnose/mistanke om pancreas adenocarcinom metastaserende til leveren, med efterfølgende cytologisk/histologisk bekræftelse (stadie IV sygdom, AJCC)
- Alder ≥18
- Karnofsky præstationsstatus ≥50
- Metastatiske pancreasadenokarcinompatienter med histologiske prøver fra hellevermetastasebiopsi eller kerneleverbiopsi indsamlet på IRCCS San Raffaele og opbevaret i den institutionelle biobank Centro Risorse Biologiche (CRB-OSR)
- Skriftligt informeret samtykke
- Patienter med klinisk/radiologisk diagnose af ikke-metastatisk primær PDAC, der vil gennemgå bugspytkirtelresektion på IRCCS San Raffaele
Ekskluderingskriterier:
- Alvorlige komorbiditeter (f.eks. hjertesygdomme, historie med psykiatriske handicap), der repræsenterer en absolut kontraindikation for hel- eller kernelevermetastasebiopsi
- Graviditet eller amning
- Manglende evne til at give et skriftligt informeret samtykke
- Patienter med metastatisk adenokarcinom i bugspytkirtlen, der er indskrevet i andre forskningsforsøg, der indebærer analyse af den histologiske prøve med levermetastase
Studieplan
Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?
Design detaljer
- Observationsmodeller: Kohorte
- Tidsperspektiver: Fremadrettet
Kohorter og interventioner
Gruppe / kohorte |
|---|
|
PDAC lever-MTS
Voksne patienter med klinisk/radiologisk diagnose/mistænkte for PDAC metastaserende til leveren, med efterfølgende cytologisk/histologisk bekræftelse (stadie IV sygdom, AJCC) fra leverresektion/metastasektomi eller kerneleverbiopsi.
|
|
CRC lever-MTS
Voksne patienter med histologisk eller cytologisk bekræftet diagnose CRC metastaserende til leveren med indikation for kirurgisk resektion (forud eller efter neoadjuverende terapi).
|
|
Primær ikke-MTS PDAC
Voksne patienter med klinisk/radiologisk diagnose af primær ikke-metastatisk PDAC, kandidater til kirurgisk resektion med radikal hensigt af den primære tumor (forudgående kirurgi eller efter neoadjuverende terapi).
Disse patienter vil blive overvåget for tidlig diagnose af metakron lever PDAC MTS ved opfølgende test.
|
|
Sunde frivillige
Negativ kontrol for det kliniske studie.
|
|
IPMN
Voksne patienter med en diagnose af Intraductal Papillary Mucinous Neoplasms (IPMN), som betragtes som forstadier til kræft og kan udvikle sig til invasiv kræft. Hovedgangs-IPMN'er kræver normalt kirurgisk fjernelse, mens sidegangstilfælde kan overvåges med overvågning. |
Hvad måler undersøgelsen?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Definition af tumormutationsbyrde, epigenetisk og genekspressionsprofil af CRC- og PDAC-metastatisk lever på bulk- og enkeltcelleniveau
Tidsramme: Efter levermetastaser/primær tumorresektion/biopsi, normalt inden for 12 måneder
|
CRC/PDAC MTS prøver vil blive analyseret af:
Naive vs kemoterapi-behandlede læsioner såvel som primære vs MTS-læsioner vil blive sammenlignet for at evaluere henholdsvis kemoterapi-inducerede modifikationer og den molekylære udvikling i de forskellige tumorsteder. |
Efter levermetastaser/primær tumorresektion/biopsi, normalt inden for 12 måneder
|
|
Karakterisering af immunlandskaberne i CRC og om muligt PDAC-lever MTS ved højdimensionel flowcytometri
Tidsramme: For vævsprøver: umiddelbart efter tumorvævsresektion/biopsi (analyser på friske prøver); for blodprøver: efter blodudtagning, normalt inden for 12 måneder (analyser på friske og/eller optøede prøver)
|
Enkeltcellesuspension af CRC og PDAC MTS og parrede autologe PBMC'er og portalblod høstet før og efter præoperatorisk kemoterapi, vil blive analyseret af en række parallelle polykromatiske højdimensionelle 28 farveflowcytometripaneler for at studere:
Når de er tilgængelige, vil matchede primære vs MTS-læsioner blive sammenlignet for at evaluere immunlandskaberne i de forskellige tumorsteder. |
For vævsprøver: umiddelbart efter tumorvævsresektion/biopsi (analyser på friske prøver); for blodprøver: efter blodudtagning, normalt inden for 12 måneder (analyser på friske og/eller optøede prøver)
|
|
Histologisk validering af de molekylære resultater opnået i 1. og 2.
Tidsramme: Efter levermetastaser/primær tumorresektion/biopsi, normalt inden for 12 måneder
|
Validering af relevante markører og molekylære veje med hensyn til anatomisk fordeling, udført ved polykromatisk immunofluorens (IF, op til 6 farver) og immunhistokemi (IHC, op til 4 farver) farvninger på MTS CRC og PDAC biopsier, perilesionelt parenkym og, når det er tilgængeligt, matchede primære tumorprøver.
Ud over multiplex IF og IHC vil nogle prøver blive karakteriseret mere dybt med avancerede rumlige proteomiske teknologier, såsom GeoMx Digital Spatial Profiler (Nanostring).
|
Efter levermetastaser/primær tumorresektion/biopsi, normalt inden for 12 måneder
|
|
Definition af det antigene landskab og TCR-repertoire af CRC og PDAC lever MTS
Tidsramme: Efter levermetastaser/primær tumorresektion/biopsi, normalt inden for 12 måneder
|
Identifikation af tumorreaktive TCR'er vil blive forfulgt gennem forskellige og komplementære strategier:
|
Efter levermetastaser/primær tumorresektion/biopsi, normalt inden for 12 måneder
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Evaluering af den molekylære og cellulære sammensætning af CRC og, hvis muligt, PDAC lever MTS ved hjælp af rumlige transkriptomiske teknologier (NICHE-seq og Visium)
Tidsramme: Efter levermetastaser/primær tumorresektion/biopsi, normalt inden for 12 måneder
|
Anvendelse af NICHE-seq på frisk isoleret humant væv ved hjælp af fotoaktiverbare (bure) fluoroforer, der er i stand til at trænge ind i cellerne, især ved at sammenligne ≥5 kemoterapibehandlede vs ≥5 naive CRC MTS-prøver og ≥3 PDAC MTS-prøver for at belyse den høje orden rumlig organisering af immuncelletyper i NICHE-seq området og deres molekylære veje på samme tid.
NICHE-seq og konventionel enkeltcellet RNA-seq vil fortsætte side om side for at sammenligne resultater.
Nogle udvalgte prøver vil blive analyseret med mere avancerede rumlige transkriptomiske teknikker udviklet i de senere år, såsom Visium Spatial Gene Expression (10X Genomics).
|
Efter levermetastaser/primær tumorresektion/biopsi, normalt inden for 12 måneder
|
|
Indsamling af kliniske opfølgningsdata
Tidsramme: CRC-patienter: gennem hele den postoperative opfølgning i maksimalt 36 måneder; PDAC-patienter: gennem hele den postoperative opfølgning, i maksimalt 24 måneder
|
Samlet overlevelse (OS), sygdomsfri overlevelse (DFS) og andre opfølgningsparametre (patientens status, CEA-niveauer, Ca 19-9-niveauer, adjuverende kemoterapi efter operation, dato og sted for tilbagefald, behandling ved recidiv) vil blive indsamlet og muligvis korreleret med de markører og veje, der er identificeret og valideret i primære resultatmål.
|
CRC-patienter: gennem hele den postoperative opfølgning i maksimalt 36 måneder; PDAC-patienter: gennem hele den postoperative opfølgning, i maksimalt 24 måneder
|
|
Indsamling og biobanking af opfølgningsprøver fra patienter med CRC og metakron PDAC MTS til leveren
Tidsramme: CRC: under den postoperative opfølgning (op til 36 måneder), med seks måneders intervaller; PDAC: under den postoperative opfølgning (op til 24 måneder), på tidspunktet for levergentagelse
|
|
CRC: under den postoperative opfølgning (op til 36 måneder), med seks måneders intervaller; PDAC: under den postoperative opfølgning (op til 24 måneder), på tidspunktet for levergentagelse
|
|
Biobanking af bioprøver indsamlet fra CRC- og PDAC-patienter og fra raske donorer
Tidsramme: Gennem hele protokollen (7 år)
|
Biobankede prøver vil blive undersøgt som beskrevet i 1-5, men muligvis også med nye state-of-the-art teknologier udviklet i den næste fremtid. Desuden vil de blive brugt til at opsætte in vitro og in vivo systemer (f.eks. patient-afledte organoider, vævschips, muligvis patient-afledte xenograft-modeller) for at validere effektiviteten og sikkerheden af de nye ATMP'er udviklet af forskningsprogram. |
Gennem hele protokollen (7 år)
|
Samarbejdspartnere og efterforskere
Sponsor
Samarbejdspartnere
Efterforskere
- Ledende efterforsker: Chiara Bonini, MD, Vita-Salute San Raffaele University, IRCCS San Raffaele
Publikationer og nyttige links
Generelle publikationer
- Galon J, Costes A, Sanchez-Cabo F, Kirilovsky A, Mlecnik B, Lagorce-Pages C, Tosolini M, Camus M, Berger A, Wind P, Zinzindohoue F, Bruneval P, Cugnenc PH, Trajanoski Z, Fridman WH, Pages F. Type, density, and location of immune cells within human colorectal tumors predict clinical outcome. Science. 2006 Sep 29;313(5795):1960-4. doi: 10.1126/science.1129139.
- Lambert AW, Pattabiraman DR, Weinberg RA. Emerging Biological Principles of Metastasis. Cell. 2017 Feb 9;168(4):670-691. doi: 10.1016/j.cell.2016.11.037.
- Le DT, Durham JN, Smith KN, Wang H, Bartlett BR, Aulakh LK, Lu S, Kemberling H, Wilt C, Luber BS, Wong F, Azad NS, Rucki AA, Laheru D, Donehower R, Zaheer A, Fisher GA, Crocenzi TS, Lee JJ, Greten TF, Duffy AG, Ciombor KK, Eyring AD, Lam BH, Joe A, Kang SP, Holdhoff M, Danilova L, Cope L, Meyer C, Zhou S, Goldberg RM, Armstrong DK, Bever KM, Fader AN, Taube J, Housseau F, Spetzler D, Xiao N, Pardoll DM, Papadopoulos N, Kinzler KW, Eshleman JR, Vogelstein B, Anders RA, Diaz LA Jr. Mismatch repair deficiency predicts response of solid tumors to PD-1 blockade. Science. 2017 Jul 28;357(6349):409-413. doi: 10.1126/science.aan6733. Epub 2017 Jun 8.
- Kitamura T, Qian BZ, Pollard JW. Immune cell promotion of metastasis. Nat Rev Immunol. 2015 Feb;15(2):73-86. doi: 10.1038/nri3789.
- Zheng C, Zheng L, Yoo JK, Guo H, Zhang Y, Guo X, Kang B, Hu R, Huang JY, Zhang Q, Liu Z, Dong M, Hu X, Ouyang W, Peng J, Zhang Z. Landscape of Infiltrating T Cells in Liver Cancer Revealed by Single-Cell Sequencing. Cell. 2017 Jun 15;169(7):1342-1356.e16. doi: 10.1016/j.cell.2017.05.035.
- Zitvogel L, Galluzzi L, Smyth MJ, Kroemer G. Mechanism of action of conventional and targeted anticancer therapies: reinstating immunosurveillance. Immunity. 2013 Jul 25;39(1):74-88. doi: 10.1016/j.immuni.2013.06.014.
- De Monte L, Reni M, Tassi E, Clavenna D, Papa I, Recalde H, Braga M, Di Carlo V, Doglioni C, Protti MP. Intratumor T helper type 2 cell infiltrate correlates with cancer-associated fibroblast thymic stromal lymphopoietin production and reduced survival in pancreatic cancer. J Exp Med. 2011 Mar 14;208(3):469-78. doi: 10.1084/jem.20101876. Epub 2011 Feb 21.
- Galluzzi L, Buque A, Kepp O, Zitvogel L, Kroemer G. Immunological Effects of Conventional Chemotherapy and Targeted Anticancer Agents. Cancer Cell. 2015 Dec 14;28(6):690-714. doi: 10.1016/j.ccell.2015.10.012.
- Nordby T, Hugenschmidt H, Fagerland MW, Ikdahl T, Buanes T, Labori KJ. Follow-up after curative surgery for pancreatic ductal adenocarcinoma: asymptomatic recurrence is associated with improved survival. Eur J Surg Oncol. 2013 Jun;39(6):559-66. doi: 10.1016/j.ejso.2013.02.020. Epub 2013 Mar 14.
- Tzeng CW, Fleming JB, Lee JE, Wang X, Pisters PW, Vauthey JN, Varadhachary G, Wolff RA, Katz MH. Yield of clinical and radiographic surveillance in patients with resected pancreatic adenocarcinoma following multimodal therapy. HPB (Oxford). 2012 Jun;14(6):365-72. doi: 10.1111/j.1477-2574.2012.00445.x. Epub 2012 Feb 28.
- Tjaden C, Michalski CW, Strobel O, Giese N, Hennche AK, Buchler MW, Hackert T. Clinical Impact of Structured Follow-up After Pancreatic Surgery. Pancreas. 2016 Jul;45(6):895-9. doi: 10.1097/MPA.0000000000000564.
- McGranahan N, Rosenthal R, Hiley CT, Rowan AJ, Watkins TBK, Wilson GA, Birkbak NJ, Veeriah S, Van Loo P, Herrero J, Swanton C; TRACERx Consortium. Allele-Specific HLA Loss and Immune Escape in Lung Cancer Evolution. Cell. 2017 Nov 30;171(6):1259-1271.e11. doi: 10.1016/j.cell.2017.10.001. Epub 2017 Oct 26.
- Fruh M, Peters S. Genomic Features of Response to Combination Immunotherapy in Lung Cancer. Cancer Cell. 2018 May 14;33(5):791-793. doi: 10.1016/j.ccell.2018.04.005.
- Norelli M, Camisa B, Barbiera G, Falcone L, Purevdorj A, Genua M, Sanvito F, Ponzoni M, Doglioni C, Cristofori P, Traversari C, Bordignon C, Ciceri F, Ostuni R, Bonini C, Casucci M, Bondanza A. Monocyte-derived IL-1 and IL-6 are differentially required for cytokine-release syndrome and neurotoxicity due to CAR T cells. Nat Med. 2018 Jun;24(6):739-748. doi: 10.1038/s41591-018-0036-4. Epub 2018 May 28.
- Escobar G, Barbarossa L, Barbiera G, Norelli M, Genua M, Ranghetti A, Plati T, Camisa B, Brombin C, Cittaro D, Annoni A, Bondanza A, Ostuni R, Gentner B, Naldini L. Interferon gene therapy reprograms the leukemia microenvironment inducing protective immunity to multiple tumor antigens. Nat Commun. 2018 Jul 24;9(1):2896. doi: 10.1038/s41467-018-05315-0.
- Medaglia C, Giladi A, Stoler-Barak L, De Giovanni M, Salame TM, Biram A, David E, Li H, Iannacone M, Shulman Z, Amit I. Spatial reconstruction of immune niches by combining photoactivatable reporters and scRNA-seq. Science. 2017 Dec 22;358(6370):1622-1626. doi: 10.1126/science.aao4277. Epub 2017 Dec 7.
- Lepore M, Mori L, De Libero G. The Conventional Nature of Non-MHC-Restricted T Cells. Front Immunol. 2018 Jun 14;9:1365. doi: 10.3389/fimmu.2018.01365. eCollection 2018.
- Cortesi F, Delfanti G, Grilli A, Calcinotto A, Gorini F, Pucci F, Luciano R, Grioni M, Recchia A, Benigni F, Briganti A, Salonia A, De Palma M, Bicciato S, Doglioni C, Bellone M, Casorati G, Dellabona P. Bimodal CD40/Fas-Dependent Crosstalk between iNKT Cells and Tumor-Associated Macrophages Impairs Prostate Cancer Progression. Cell Rep. 2018 Mar 13;22(11):3006-3020. doi: 10.1016/j.celrep.2018.02.058.
- Noviello M, Manfredi F, Ruggiero E, Perini T, Oliveira G, Cortesi F, De Simone P, Toffalori C, Gambacorta V, Greco R, Peccatori J, Casucci M, Casorati G, Dellabona P, Onozawa M, Teshima T, Griffioen M, Halkes CJM, Falkenburg JHF, Stolzel F, Altmann H, Bornhauser M, Waterhouse M, Zeiser R, Finke J, Cieri N, Bondanza A, Vago L, Ciceri F, Bonini C. Bone marrow central memory and memory stem T-cell exhaustion in AML patients relapsing after HSCT. Nat Commun. 2019 Mar 25;10(1):1065. doi: 10.1038/s41467-019-08871-1.
- Tran E, Ahmadzadeh M, Lu YC, Gros A, Turcotte S, Robbins PF, Gartner JJ, Zheng Z, Li YF, Ray S, Wunderlich JR, Somerville RP, Rosenberg SA. Immunogenicity of somatic mutations in human gastrointestinal cancers. Science. 2015 Dec 11;350(6266):1387-90. doi: 10.1126/science.aad1253. Epub 2015 Oct 29.
- Mennonna D, Maccalli C, Romano MC, Garavaglia C, Capocefalo F, Bordoni R, Severgnini M, De Bellis G, Sidney J, Sette A, Gori A, Longhi R, Braga M, Ghirardelli L, Baldari L, Orsenigo E, Albarello L, Zino E, Fleischhauer K, Mazzola G, Ferrero N, Amoroso A, Casorati G, Parmiani G, Dellabona P. T cell neoepitope discovery in colorectal cancer by high throughput profiling of somatic mutations in expressed genes. Gut. 2017 Mar;66(3):454-463. doi: 10.1136/gutjnl-2015-309453. Epub 2015 Dec 17.
- Ruggiero E, Nicolay JP, Fronza R, Arens A, Paruzynski A, Nowrouzi A, Urenden G, Lulay C, Schneider S, Goerdt S, Glimm H, Krammer PH, Schmidt M, von Kalle C. High-resolution analysis of the human T-cell receptor repertoire. Nat Commun. 2015 Sep 1;6:8081. doi: 10.1038/ncomms9081.
- Schumacher TN, Schreiber RD. Neoantigens in cancer immunotherapy. Science. 2015 Apr 3;348(6230):69-74. doi: 10.1126/science.aaa4971.
- Newman AM, Liu CL, Green MR, Gentles AJ, Feng W, Xu Y, Hoang CD, Diehn M, Alizadeh AA. Robust enumeration of cell subsets from tissue expression profiles. Nat Methods. 2015 May;12(5):453-7. doi: 10.1038/nmeth.3337. Epub 2015 Mar 30.
- Manici S, Sturniolo T, Imro MA, Hammer J, Sinigaglia F, Noppen C, Spagnoli G, Mazzi B, Bellone M, Dellabona P, Protti MP. Melanoma cells present a MAGE-3 epitope to CD4(+) cytotoxic T cells in association with histocompatibility leukocyte antigen DR11. J Exp Med. 1999 Mar 1;189(5):871-6. doi: 10.1084/jem.189.5.871.
- Tran E, Turcotte S, Gros A, Robbins PF, Lu YC, Dudley ME, Wunderlich JR, Somerville RP, Hogan K, Hinrichs CS, Parkhurst MR, Yang JC, Rosenberg SA. Cancer immunotherapy based on mutation-specific CD4+ T cells in a patient with epithelial cancer. Science. 2014 May 9;344(6184):641-5. doi: 10.1126/science.1251102.
- Tran E, Robbins PF, Lu YC, Prickett TD, Gartner JJ, Jia L, Pasetto A, Zheng Z, Ray S, Groh EM, Kriley IR, Rosenberg SA. T-Cell Transfer Therapy Targeting Mutant KRAS in Cancer. N Engl J Med. 2016 Dec 8;375(23):2255-2262. doi: 10.1056/NEJMoa1609279.
- Lim WA, June CH. The Principles of Engineering Immune Cells to Treat Cancer. Cell. 2017 Feb 9;168(4):724-740. doi: 10.1016/j.cell.2017.01.016.
- Balachandran VP, Luksza M, Zhao JN, Makarov V, Moral JA, Remark R, Herbst B, Askan G, Bhanot U, Senbabaoglu Y, Wells DK, Cary CIO, Grbovic-Huezo O, Attiyeh M, Medina B, Zhang J, Loo J, Saglimbeni J, Abu-Akeel M, Zappasodi R, Riaz N, Smoragiewicz M, Kelley ZL, Basturk O; Australian Pancreatic Cancer Genome Initiative; Garvan Institute of Medical Research; Prince of Wales Hospital; Royal North Shore Hospital; University of Glasgow; St Vincent's Hospital; QIMR Berghofer Medical Research Institute; University of Melbourne, Centre for Cancer Research; University of Queensland, Institute for Molecular Bioscience; Bankstown Hospital; Liverpool Hospital; Royal Prince Alfred Hospital, Chris O'Brien Lifehouse; Westmead Hospital; Fremantle Hospital; St John of God Healthcare; Royal Adelaide Hospital; Flinders Medical Centre; Envoi Pathology; Princess Alexandria Hospital; Austin Hospital; Johns Hopkins Medical Institutes; ARC-Net Centre for Applied Research on Cancer; Gonen M, Levine AJ, Allen PJ, Fearon DT, Merad M, Gnjatic S, Iacobuzio-Donahue CA, Wolchok JD, DeMatteo RP, Chan TA, Greenbaum BD, Merghoub T, Leach SD. Identification of unique neoantigen qualities in long-term survivors of pancreatic cancer. Nature. 2017 Nov 23;551(7681):512-516. doi: 10.1038/nature24462. Epub 2017 Nov 8.
- Mlecnik B, Van den Eynde M, Bindea G, Church SE, Vasaturo A, Fredriksen T, Lafontaine L, Haicheur N, Marliot F, Debetancourt D, Pairet G, Jouret-Mourin A, Gigot JF, Hubert C, Danse E, Dragean C, Carrasco J, Humblet Y, Valge-Archer V, Berger A, Pages F, Machiels JP, Galon J. Comprehensive Intrametastatic Immune Quantification and Major Impact of Immunoscore on Survival. J Natl Cancer Inst. 2018 Jan 1;110(1). doi: 10.1093/jnci/djx123.
Datoer for undersøgelser
Studer store datoer
Studiestart (Faktiske)
Primær færdiggørelse (Anslået)
Studieafslutning (Anslået)
Datoer for studieregistrering
Først indsendt
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først opslået (Faktiske)
Opdateringer af undersøgelsesjournaler
Sidste opdatering sendt (Faktiske)
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidst verificeret
Mere information
Begreber relateret til denne undersøgelse
Nøgleord
Yderligere relevante MeSH-vilkår
- Sygdomme i det endokrine system
- Neoplasmer efter sted
- Neoplasmer
- Tarmsygdomme
- Neoplasmer efter histologisk type
- Gastrointestinale neoplasmer
- Neoplasmer i fordøjelsessystemet
- Sygdomme i fordøjelsessystemet
- Gastrointestinale sygdomme
- Intestinale neoplasmer
- Endetarmssygdomme
- Neoplasmer i endokrine kirtler
- Pancreassygdomme
- Neoplasmer, kirtel og epitel
- Tyktarmssygdomme
- Neoplasmer, duktale, lobulære og medullære
- Bugspytkirtel neoplasmer
- Pancreas intraduktale neoplasmer
- Kolorektale neoplasmer
Andre undersøgelses-id-numre
- LiMeT
- 22737 (Andet bevillings-/finansieringsnummer: Italian Association for Cancer Research (AIRC), 5XMille call)
- 101118936 - ERC-2023-SyG (Andet bevillings-/finansieringsnummer: European Research Council (ERC))
- FRRB 2024 (Andet bevillings-/finansieringsnummer: Fondazione Regionale per la Ricerca Biomedica (FRRB))
Plan for individuelle deltagerdata (IPD)
Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?
Lægemiddel- og udstyrsoplysninger, undersøgelsesdokumenter
Studerer et amerikansk FDA-reguleret lægemiddelprodukt
Studerer et amerikansk FDA-reguleret enhedsprodukt
Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .