- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT04622423
Avanserte terapier for levermetastaser (LiMeT)
Avanserte immungen- og celleterapier for levermetastaser
Levermetastaser (MTS) er den viktigste dødsårsaken for pasienter som er rammet av kolorektalt karsinom (CRC) og pankreas duktalt adenokarsinom (PDAC), og representerer dermed det største udekkede kliniske behovet for disse maligne sykdommer.
Basert på foreløpige og publiserte data, antar etterforskerne at innovative immun-, gen- og celleterapitilnærminger kan overvinne det tolerogene levermikromiljøet og representere kraftige terapeutiske verktøy for lever-MTS av PDAC og CRC.
Etterforskerne har derfor planlagt en observasjonsstudie for å registrere distinkte kohorter av pasienter (dvs. metastatisk CRC, metastatisk og ikke-metastatisk PDAC) og finkarakterisere, gjennom integrerte state-of-the-art-omics, immun og ikke-immun mikromiljø av deres primære svulster og/eller levermetastaser, samt korrelerer endringer i aktiveringsstatus og fenotype til perifere blodleukocytter. Friske frivillige vil bli registrert som negative kontroller.
Etterforskerne tar sikte på å identifisere: i) handlingsbare tumorassosierte antigener (TAA) og lokale immunundertrykkende og regulatoriske veier; ii) biologiske parametere for tidlig diagnose av tilbakefall; iii) effekten av terapier på utformingen av antitumorimmunresponser.
Data som samles inn vil være medvirkende til generering av nye legemidler for avansert terapi (ATMP). Faktisk er denne protokollen en del av et translasjonsprogram med flere partnere, støttet av AIRC 5 per Mille 2019-bevilgningen, fokusert på utvikling, validering og implementering for klinisk testing av ATMP-er for å forbedre kuren av CRC og PDAC og muligens hjelpe studien av andre solide svulster.
Dessuten vil den systematiske og langsiktige oppfølgingen av innrullerte pasienter muligens peke på tidlige prediktorer for differensiell prognose og pasientkategorier som er kvalifisert for skreddersydde terapier, inkludert de med de nye ATMPene.
Studieoversikt
Status
Detaljert beskrivelse
Bakgrunn og begrunnelse - CRC og PDAC er henholdsvis den andre og fjerde vanligste årsaken til kreftdød. Pasienter som rammes av disse kreftformene dør av lever-MTS. Konvensjonelle terapier er aktive i begge primærtumorer, men mislykkes ved metastatisk sykdom. Effektiviteten av immunterapi ved blokkering av immunsjekkpunkt og adoptiv celleterapi med tumorspesifikke T-celler er bare delvis eller midlertidig ved MTS fra solide svulster, på grunn av lokale immunsuppressive mekanismer. Dette er spesielt relevant for hepatisk MTS, der et naturlig tolerogent miljø ytterligere kan opprettholde immunsuppresjon indusert av kreftceller og infiltrerende immunceller, slik som tumorassosierte makrofager (TAM), myeloid-avledede suppressorceller (MDSC), nøytrofiler og regulatorisk T. eller B-celler.
I denne forbindelse tyder bevis på at progresjon av primær eller metastatisk CRC korrelerer med dårlig immuninfiltrasjon og betennelse. Dessuten støtter våre publiserte resultater i primær PDAC en korrelasjon mellom tumorprogresjon og en sterk type 2 antiinflammatorisk/immunsuppressiv signatur. Effekten av kjemoterapi er kjent for å stole også på reaktivering og/eller repolarisering av tumormålrettede immunresponser. Pre-kirurgisk kjemoterapi kan indusere gunstige effekter og potensielt målrettede endringer i immunprofilen til CRC eller PDAC MTS.
Etterforskerne antar at en kombinasjon av: i) direkte kreftcelledrap ved adoptivt overførte tumorspesifikke T-celler og ii) indirekte kontroll av tumorprogresjon via omprogrammering av tumormikromiljøet vil kontrollere lever-MTS av CRC og PDAC.
Derfor foreslår etterforskerne en grundig karakterisering av det metastatiske miljøet i disse to krefttypene for rasjonelt å forme, på grunnlag av likheter og forskjeller, innovative ATMPer.
Eksperimentelle resultater oppnådd fra biologiske prøver vil bli korrelert: i) med kliniske data fra pasienter på tidspunktet for registrering og under oppfølgingen av dem; og ii) for en undergruppe av pasienter, med biokjemiske og immunologiske data fra perifere blodprøver rutinemessig samlet inn som en del av deres kliniske oppfølging, med det ekstra målet å identifisere nye biologiske parametere og/eller signaturer for å hjelpe stratifiseringen av pasienter og skreddersøm av behandlinger.
Mål - Etterforskerne ønsker å studere:
- tumormutasjonsbyrden og sammensetningen av det metastatiske tumormikromiljøet i leveren;
- de hemmende veiene som begrenser immunitet i lever-MTS;
- den antigene og klonale bredden av anti-tumor T-celleresponser;
- de romlige-temporelle variasjonene av effektor- og regulatoriske immunceller ved terapi;
- egenskapene til tumorceller og deres mikromiljø i lever MTS versus (vs) primær tumor;
- de longitudinelle variasjonene av kliniske parametere samt blodavledede biologiske og immunologiske markører under medisinsk oppfølging av pasienter.
- I tillegg ønsker de å samle inn og biobanke pasientprøver for å støtte valideringen og utvalget av de nye ATMPene utviklet av de andre partnerne i translasjonsprogrammet.
Hovedmålene vil være:
- å identifisere immunundertrykkende/utmattelsesveier
- å utvikle et bibliotek med tumorspesifikk TCR (N≥5/tumortype) og identifisere nye CAR-mål (N≥1/tumortype) i CRC og PDAC MTS
Studiedesign - Denne kliniske protokollen tar sikte på å dypt karakterisere MTS-tumorceller og deres mikromiljø, inkludert muligens informative dynamiske modifikasjoner fra pro-tumor til anti-tumor-profiler som kan følge kjemoterapi, som administreres før kirurgi (neo-adjuvans) til en betydelig brøkdel av pasientene. PDAC- og CRC MTS-pasienter vil derfor bli preget av enten tverrsnitts- eller longitudinelle undersøkelser på kjemoterapi-naive vs -behandlede pasienter.
I tillegg tar etterforskerne sikte på å sammenligne hepatisk MTS med primærtumor, for å fremheve dynamiske kvalitative modifikasjoner i kreftceller, immuninfiltrater og ikke-immun mikromiljø som kan lette sykdomsprogresjon mot metastatisk spredning. Disse modifikasjonene kan tilby en mulighet for optimal anvendelse av våre ATMP-er. Til dette formålet vil primære ikke-metastatiske PDAC-pasienter som gjennomgår kirurgisk reseksjon bli registrert i denne studien og følges opp for å overvåke utviklingen av metakron lever-MTS, som, når det er mulig, vil bli karakterisert og sammenlignet med deres matchede/ikke-matchede, tidligere innsamlede primærtumorprøver. Perifere blodprøver på tidspunktet for lever-MTS-diagnose vil også bli samlet inn og analysert. Også hos de CRC MTS-pasientene som gjennomgår synkron reseksjon av primær CRC og lever-MTS, vil sammenlignende analyser bli utført på tumor fra begge steder, noe som tillater intra- og interpasientprofilering av begge tumornisjer.
Dessuten vil resultater fra forskningsanalyser på flere nivåer være korrelert med kliniske data samlet inn fra alle pasienter på tidspunktet for registrering i studien og under deres kliniske oppfølging, når det er mulig i opptil 2 år, med tanke på PDAC-pasienter, og 3 år , med tanke på CRC.
Spesielt for metastaserende CRC-pasienter vil den kliniske oppfølgingen være assosiert med samtidig innsamling av blodprøver ved serietidspunkter, som vil bli prospektivt biobanket for ytterligere analyser rettet mot: i) å studere biologiske og immunologiske korrelater av pasientens kliniske status; ii) å evaluere nøkkeldiskriminanter som tidligere er identifisert i blodprøver analysert på tidspunktet for lever-MTS-operasjon, for å tjene som tidlige prediktorer for leverprogresjon eller -residiv og muligens som indikatorer for terapeutisk stratifisering.
Etterforskerne forventer å samle inn vev/blodprøver og kliniske data fra minst:
- 200 metastatiske CRC-pasienter (enten synkrone eller metakrone);
- 150 ikke-metastatiske PDAC-pasienter;
- 75 synkrone PDAC MTS-pasienter og ca. 20 metakrone PDAC MTS-pasienter, sistnevnte opprinnelig registrert som primære ikke-metastatiske pasienter for den longitudinelle studien, for totalt 95 metastatiske PDAC-pasienter;
- 30 friske frivillige, som negative kontroller.
Ulike biologiske prøver (perifert blod, primært og/eller metastatisk tumorvev, portalblod) vil bli samlet inn i løpet av standard diagnostisk og terapeutisk behandling av disse pasientene, og vil delvis bli direkte analysert og delvis biobanket for videre studier . Parallelt vil det samles inn kliniske data fra pasienter på tidspunktet for registrering i studien og, når det er mulig, for en oppfølgingsperiode på opptil 2 år, for PDAC-pasienter, og 3 år, for CRC-pasienter.
Den statistiske analysen av innsamlede data vil bli utført gjennom hele den kliniske studien, med start 6 måneder etter innrullering av den første pasienten til 6 måneder etter avsluttet pasientoppfølging, i totalt 7 år. Studiet vil vare i 7 år.
Ulike biologiske prøver (perifert blod, primært og/eller metastatisk tumorvev, portalblod) vil bli samlet inn i løpet av standard diagnostisk og terapeutisk behandling av disse pasientene, og vil delvis bli direkte analysert og delvis biobanket for videre studier . Parallelt vil det samles inn kliniske data fra pasienter siden registreringstidspunktet i studien for en oppfølgingsperiode på 2 år, for PDAC-pasienter, og på 3 år, for CRC-pasienter.
Den statistiske analysen av de innsamlede kliniske og eksperimentelle dataene vil bli utført under hele den kliniske studiens varighet, med start 6 måneder etter innrulleringen av den første pasienten til slutten av pasientens oppfølging, i totalt 7 år. Studiet vil vare i 7 år.
Forskningsaktivitetene vil bli organisert og integrert i 6 arbeidspakker (WPs):
- Innsamling og biobanking av materialet fra pasienter med CRC og PDAC MTS til leveren og med primær ikke-metastatisk resektabel PDAC.
- Definisjon av tumormutasjonsbyrden, epigenetisk og genekspresjonsprofil til CRC og PDAC metastatisk lever på bulk og på enkeltcellenivå.
- Evaluering av den molekylære og cellulære sammensetningen av CRC og, hvis mulig, PDAC-lever MTS ved hjelp av romlige transkriptomiske teknologier (NICHE-seq og Visium).
- Karakterisering av immunlandskapene til CRC og, hvis mulig, PDAC-lever MTS ved høydimensjonal flowcytometri.
- Validering av de molekylære resultatene oppnådd i 2) og 4).
- Definisjon av det antigene landskapet og TCR-repertoaret til CRC og PDAC lever MTS.
Resultatene oppnådd av de ovennevnte WPene vil bli krysset med kliniske oppfølgingsdata og tjene til å kalibrere programaktivitetene fokusert på utvikling av nye ATMPs.
Studietype
Registrering (Antatt)
Kontakter og plasseringer
Studiekontakt
- Navn: Chiara Bonini, MD
- Telefonnummer: 0226434790
- E-post: bonini.chiara@hsr.it
Studer Kontakt Backup
- Navn: Giulia Di Lullo, PhD
- Telefonnummer: 0226433823
- E-post: dilullo.giulia@hsr.it
Studiesteder
-
-
Milan
-
Milan, Milan, Italia, 26431
- Rekruttering
- IRCCS San Raffaele
-
Underetterforsker:
- Luca Antonio Aldrighetti, Professor
-
Underetterforsker:
- Monica Casucci, Dr.
-
Underetterforsker:
- Francesco De Cobelli, Professor
-
Underetterforsker:
- Paolo Dellabona, Dr.
-
Underetterforsker:
- Claudio Doglioni, Professor
-
Underetterforsker:
- Massimo Falconi, Professor
-
Underetterforsker:
- Matteo Iannacone, Professor
-
Underetterforsker:
- Renato Ostuni, Professor
-
Underetterforsker:
- Lorenzo Piemonti, Professor
-
Underetterforsker:
- Maria Pia Protti, Dr.
-
Underetterforsker:
- Michele Reni, Dr.
-
Underetterforsker:
- Giovanni Tonon, Dr.
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Prøvetakingsmetode
Studiepopulasjon
Beskrivelse
Inklusjons- og eksklusjonskriterier - CRC-pasienter
Inklusjonskriterier:
- Pasienter med histologisk eller cytologisk bekreftet diagnose av CRC som er metastatisk til leveren (stadium IV sykdom, AJCC)
- Pasienter med indikasjon for kirurgisk reseksjon og/eller cellegiftbehandling
- Alder ≥18
- ECOG PS 0-1 ved påmelding
- Skriftlig informert samtykke
- Pasienter vil bli behandlet i IRCCS San Raffaele
Ekskluderingskriterier:
- Graviditet eller amming
- Manglende evne til å gi et skriftlig informert samtykke
- Ekstraepatisk sykdom med unntak av utvalgte tilfeller der sameksistens av ekstrahepatisk sykdom ikke utgjør et eksklusjonskriterium for leverresektiv kirurgi (for eksempel hos pasienter med ekstraepatiske lesjoner i remisjon eller i alle fall stabilisert ved kjemoterapi)
- Alvorlige komorbiditeter (f.eks. hjertesykdommer, historie med psykiatriske funksjonshemninger, HIV, autoimmune lidelser)
- Samtidig eller tidligere annen malignitet innen 5 år etter studiestart, bortsett fra helbredet basal eller plateepitelhudkreft, overfladisk blærekreft, prostata intraepitelial neoplasma, karsinom in situ i livmorhalsen eller annen ikke-invasiv eller indolent malignitet
- Andre forhold (medisinske eller psykiatriske) som etter etterforskernes vurdering vil gjøre pasienten til en upassende kandidat for studien
Inklusjons- og eksklusjonskriterier - PDAC-pasienter
Inklusjonskriterier:
- Pasienter med klinisk/radiologisk diagnose/mistenke for adenokarsinom i bukspyttkjertelen som er metastaserende til leveren, med påfølgende cytologisk/histologisk bekreftelse (stadium IV sykdom, AJCC)
- Alder ≥18
- Karnofsky ytelsesstatus ≥50
- Pasienter med metastatisk adenokarsinom i bukspyttkjertelen med histologiske prøver fra hellevermetastasebiopsi eller kjerneleverbiopsi samlet ved IRCCS San Raffaele og lagret i den institusjonelle biobanken Centro Risorse Biologiche (CRB-OSR)
- Skriftlig informert samtykke
- Pasienter med klinisk/radiologisk diagnose av ikke-metastatisk primær PDAC som vil gjennomgå bukspyttkjertelreseksjon ved IRCCS San Raffaele
Ekskluderingskriterier:
- Alvorlige komorbiditeter (f.eks. hjertesykdommer, historie med psykiatriske funksjonshemninger) som representerer en absolutt kontraindikasjon for hel- eller kjernelevermetastasebiopsi
- Graviditet eller amming
- Manglende evne til å gi et skriftlig informert samtykke
- Pasienter med metastatisk adenokarsinom i bukspyttkjertelen som er registrert i andre forskningsstudier som innebærer analyse av den histologiske prøven med levermetastase
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Observasjonsmodeller: Kohort
- Tidsperspektiver: Potensielle
Kohorter og intervensjoner
Gruppe / Kohort |
|---|
|
PDAC lever-MTS
Voksne pasienter med klinisk/radiologisk diagnose/mistenke for PDAC som er metastaserende til leveren, med påfølgende cytologisk/histologisk bekreftelse (stadium IV sykdom, AJCC) fra leverreseksjon/metastasektomi eller kjerneleverbiopsi.
|
|
CRC lever-MTS
Voksne pasienter med histologisk eller cytologisk bekreftet diagnose CRC metastaserende til leveren med indikasjon for kirurgisk reseksjon (på forhånd eller etter neoadjuvant terapi).
|
|
Primær ikke-MTS PDAC
Voksne pasienter med klinisk/radiologisk diagnose av primær ikke-metastatisk PDAC, kandidater for kirurgisk reseksjon med radikal hensikt av primærtumoren (forhåndskirurgi eller etter neoadjuvant terapi).
Disse pasientene vil bli overvåket for tidlig diagnose av metakron lever PDAC MTS ved oppfølgingstesting.
|
|
Friske frivillige
Negativ kontroll for den kliniske studien.
|
|
IPMN
Voksne pasienter med en diagnose av Intraduktal Papillær Mucinøs Neoplasi (IPMN), som anses som forstadier til kreft og kan utvikle seg til invasiv kreft. Hovedkanal-IPMN krever vanligvis kirurgisk reseksjon, mens sidegrenstilfeller kan overvåkes med oppfølging. |
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Definisjon av tumormutasjonsbelastning, epigenetisk og genekspresjonsprofil av CRC og PDAC metastatisk lever på bulk og på enkeltcellenivå
Tidsramme: Etter levermetastase/primær tumorreseksjon/biopsi, vanligvis innen 12 måneder
|
CRC/PDAC MTS-prøver vil bli analysert av:
Naive vs kjemoterapi-behandlede lesjoner så vel som primære vs MTS-lesjoner vil bli sammenlignet for å evaluere henholdsvis kjemoterapi-induserte modifikasjoner og den molekylære utviklingen i de distinkte tumorstedene. |
Etter levermetastase/primær tumorreseksjon/biopsi, vanligvis innen 12 måneder
|
|
Karakterisering av immunlandskapene til CRC og, hvis mulig, PDAC-lever MTS ved høydimensjonal flowcytometri
Tidsramme: For vevsprøver: umiddelbart etter tumorvevsreseksjon/biopsi (analyser på ferske prøver); for blodprøver: etter blodprøvetaking, vanligvis innen 12 måneder (analyser på ferske og/eller tinte prøver)
|
Enkeltcellesuspensjon av CRC og PDAC MTS og sammenkoblede autologe PBMC-er og portalblod høstet før og etter preoperativ kjemoterapi, vil bli analysert ved hjelp av en serie parallelle polykromatiske høydimensjonale 28-farge-flowcytometripaneler for å studere:
Når det er tilgjengelig, vil matchede primære vs MTS-lesjoner bli sammenlignet for å evaluere immunlandskapene i de distinkte tumorstedene. |
For vevsprøver: umiddelbart etter tumorvevsreseksjon/biopsi (analyser på ferske prøver); for blodprøver: etter blodprøvetaking, vanligvis innen 12 måneder (analyser på ferske og/eller tinte prøver)
|
|
Histologisk validering av de molekylære resultatene oppnådd i 1. og 2.
Tidsramme: Etter levermetastase/primær tumorreseksjon/biopsi, vanligvis innen 12 måneder
|
Validering av relevante markører og molekylære veier når det gjelder anatomisk fordeling, utført ved polykromatisk immunofluorens (IF, opptil 6 farger) og immunhistokjemi (IHC, opptil 4 farger) farging på MTS CRC og PDAC biopsier, perilesjonelt parenkym og, når tilgjengelig, samsvarte primære tumorprøver.
I tillegg til multiplex IF og IHC, vil noen prøver karakteriseres dypere med avanserte romlige proteomikkteknologier, som GeoMx Digital Spatial Profiler (Nanostring).
|
Etter levermetastase/primær tumorreseksjon/biopsi, vanligvis innen 12 måneder
|
|
Definisjon av det antigene landskapet og TCR-repertoaret til CRC og PDAC lever MTS
Tidsramme: Etter levermetastase/primær tumorreseksjon/biopsi, vanligvis innen 12 måneder
|
Identifisering av tumorreaktive TCR-er vil bli forfulgt gjennom forskjellige og komplementære strategier:
|
Etter levermetastase/primær tumorreseksjon/biopsi, vanligvis innen 12 måneder
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Evaluering av den molekylære og cellulære sammensetningen av CRC og, hvis mulig, PDAC-lever MTS ved hjelp av romlige transkriptomiske teknologier (NICHE-seq og Visium)
Tidsramme: Etter levermetastase/primær tumorreseksjon/biopsi, vanligvis innen 12 måneder
|
Påføring av NICHE-seq på ferskt isolert humant vev ved bruk av fotoaktiverbare (bur) fluoroforer som kan trenge gjennom cellene, spesielt ved å sammenligne ≥5 kjemoterapibehandlede vs ≥5 naive CRC MTS-prøver og ≥3 PDAC MTS-prøver for å belyse den høye orden romlig organisering av immuncelletyper i NICHE-seq området og deres molekylære veier, samtidig.
NICHE-seq og konvensjonell encellet RNA-sekvens vil fortsette side ved side for å sammenligne resultatene.
Noen utvalgte prøver vil bli analysert med mer avanserte romlige transkriptomiske teknikker utviklet de siste årene, som Visium Spatial Gene Expression (10X Genomics).
|
Etter levermetastase/primær tumorreseksjon/biopsi, vanligvis innen 12 måneder
|
|
Innsamling av kliniske oppfølgingsdata
Tidsramme: CRC-pasienter: gjennom den postoperative oppfølgingen, i maksimalt 36 måneder; PDAC-pasienter: gjennom den postoperative oppfølgingen, i maksimalt 24 måneder
|
Total overlevelse (OS), sykdomsfri overlevelse (DFS) og andre oppfølgingsparametere (pasientens status, CEA-nivåer, Ca 19-9-nivåer, adjuvant kjemoterapi etter operasjon, dato og sted for tilbakefall, behandling ved residiv) vil bli samlet inn og muligens korrelert med markørene og veiene identifisert og validert i primære utfallsmål.
|
CRC-pasienter: gjennom den postoperative oppfølgingen, i maksimalt 36 måneder; PDAC-pasienter: gjennom den postoperative oppfølgingen, i maksimalt 24 måneder
|
|
Innsamling og biobanking av oppfølgingsprøver fra pasienter med CRC og metakron PDAC MTS til leveren
Tidsramme: CRC: under postoperativ oppfølging (opptil 36 måneder), med seks måneders intervaller; PDAC: under postoperativ oppfølging (opptil 24 måneder), ved tilbakefall av leveren
|
|
CRC: under postoperativ oppfølging (opptil 36 måneder), med seks måneders intervaller; PDAC: under postoperativ oppfølging (opptil 24 måneder), ved tilbakefall av leveren
|
|
Biobanking av bioprøver samlet fra CRC- og PDAC-pasienter og fra friske givere
Tidsramme: Gjennom hele protokollen (7 år)
|
Biobankprøver vil bli studert som beskrevet i 1-5, men muligens også med nye toppmoderne teknologier utviklet i neste fremtid. Dessuten vil de bli brukt til å sette opp in vitro og in vivo systemer (f.eks. pasientavledede organoider, vevschips, muligens pasientavledede xenograft-modeller) for å validere effektiviteten og sikkerheten til de nye ATMP-ene utviklet av forskningsprogram. |
Gjennom hele protokollen (7 år)
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Samarbeidspartnere
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Chiara Bonini, MD, Vita-Salute San Raffaele University, IRCCS San Raffaele
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Galon J, Costes A, Sanchez-Cabo F, Kirilovsky A, Mlecnik B, Lagorce-Pages C, Tosolini M, Camus M, Berger A, Wind P, Zinzindohoue F, Bruneval P, Cugnenc PH, Trajanoski Z, Fridman WH, Pages F. Type, density, and location of immune cells within human colorectal tumors predict clinical outcome. Science. 2006 Sep 29;313(5795):1960-4. doi: 10.1126/science.1129139.
- Lambert AW, Pattabiraman DR, Weinberg RA. Emerging Biological Principles of Metastasis. Cell. 2017 Feb 9;168(4):670-691. doi: 10.1016/j.cell.2016.11.037.
- Le DT, Durham JN, Smith KN, Wang H, Bartlett BR, Aulakh LK, Lu S, Kemberling H, Wilt C, Luber BS, Wong F, Azad NS, Rucki AA, Laheru D, Donehower R, Zaheer A, Fisher GA, Crocenzi TS, Lee JJ, Greten TF, Duffy AG, Ciombor KK, Eyring AD, Lam BH, Joe A, Kang SP, Holdhoff M, Danilova L, Cope L, Meyer C, Zhou S, Goldberg RM, Armstrong DK, Bever KM, Fader AN, Taube J, Housseau F, Spetzler D, Xiao N, Pardoll DM, Papadopoulos N, Kinzler KW, Eshleman JR, Vogelstein B, Anders RA, Diaz LA Jr. Mismatch repair deficiency predicts response of solid tumors to PD-1 blockade. Science. 2017 Jul 28;357(6349):409-413. doi: 10.1126/science.aan6733. Epub 2017 Jun 8.
- Kitamura T, Qian BZ, Pollard JW. Immune cell promotion of metastasis. Nat Rev Immunol. 2015 Feb;15(2):73-86. doi: 10.1038/nri3789.
- Zheng C, Zheng L, Yoo JK, Guo H, Zhang Y, Guo X, Kang B, Hu R, Huang JY, Zhang Q, Liu Z, Dong M, Hu X, Ouyang W, Peng J, Zhang Z. Landscape of Infiltrating T Cells in Liver Cancer Revealed by Single-Cell Sequencing. Cell. 2017 Jun 15;169(7):1342-1356.e16. doi: 10.1016/j.cell.2017.05.035.
- Zitvogel L, Galluzzi L, Smyth MJ, Kroemer G. Mechanism of action of conventional and targeted anticancer therapies: reinstating immunosurveillance. Immunity. 2013 Jul 25;39(1):74-88. doi: 10.1016/j.immuni.2013.06.014.
- De Monte L, Reni M, Tassi E, Clavenna D, Papa I, Recalde H, Braga M, Di Carlo V, Doglioni C, Protti MP. Intratumor T helper type 2 cell infiltrate correlates with cancer-associated fibroblast thymic stromal lymphopoietin production and reduced survival in pancreatic cancer. J Exp Med. 2011 Mar 14;208(3):469-78. doi: 10.1084/jem.20101876. Epub 2011 Feb 21.
- Galluzzi L, Buque A, Kepp O, Zitvogel L, Kroemer G. Immunological Effects of Conventional Chemotherapy and Targeted Anticancer Agents. Cancer Cell. 2015 Dec 14;28(6):690-714. doi: 10.1016/j.ccell.2015.10.012.
- Nordby T, Hugenschmidt H, Fagerland MW, Ikdahl T, Buanes T, Labori KJ. Follow-up after curative surgery for pancreatic ductal adenocarcinoma: asymptomatic recurrence is associated with improved survival. Eur J Surg Oncol. 2013 Jun;39(6):559-66. doi: 10.1016/j.ejso.2013.02.020. Epub 2013 Mar 14.
- Tzeng CW, Fleming JB, Lee JE, Wang X, Pisters PW, Vauthey JN, Varadhachary G, Wolff RA, Katz MH. Yield of clinical and radiographic surveillance in patients with resected pancreatic adenocarcinoma following multimodal therapy. HPB (Oxford). 2012 Jun;14(6):365-72. doi: 10.1111/j.1477-2574.2012.00445.x. Epub 2012 Feb 28.
- Tjaden C, Michalski CW, Strobel O, Giese N, Hennche AK, Buchler MW, Hackert T. Clinical Impact of Structured Follow-up After Pancreatic Surgery. Pancreas. 2016 Jul;45(6):895-9. doi: 10.1097/MPA.0000000000000564.
- McGranahan N, Rosenthal R, Hiley CT, Rowan AJ, Watkins TBK, Wilson GA, Birkbak NJ, Veeriah S, Van Loo P, Herrero J, Swanton C; TRACERx Consortium. Allele-Specific HLA Loss and Immune Escape in Lung Cancer Evolution. Cell. 2017 Nov 30;171(6):1259-1271.e11. doi: 10.1016/j.cell.2017.10.001. Epub 2017 Oct 26.
- Fruh M, Peters S. Genomic Features of Response to Combination Immunotherapy in Lung Cancer. Cancer Cell. 2018 May 14;33(5):791-793. doi: 10.1016/j.ccell.2018.04.005.
- Norelli M, Camisa B, Barbiera G, Falcone L, Purevdorj A, Genua M, Sanvito F, Ponzoni M, Doglioni C, Cristofori P, Traversari C, Bordignon C, Ciceri F, Ostuni R, Bonini C, Casucci M, Bondanza A. Monocyte-derived IL-1 and IL-6 are differentially required for cytokine-release syndrome and neurotoxicity due to CAR T cells. Nat Med. 2018 Jun;24(6):739-748. doi: 10.1038/s41591-018-0036-4. Epub 2018 May 28.
- Escobar G, Barbarossa L, Barbiera G, Norelli M, Genua M, Ranghetti A, Plati T, Camisa B, Brombin C, Cittaro D, Annoni A, Bondanza A, Ostuni R, Gentner B, Naldini L. Interferon gene therapy reprograms the leukemia microenvironment inducing protective immunity to multiple tumor antigens. Nat Commun. 2018 Jul 24;9(1):2896. doi: 10.1038/s41467-018-05315-0.
- Medaglia C, Giladi A, Stoler-Barak L, De Giovanni M, Salame TM, Biram A, David E, Li H, Iannacone M, Shulman Z, Amit I. Spatial reconstruction of immune niches by combining photoactivatable reporters and scRNA-seq. Science. 2017 Dec 22;358(6370):1622-1626. doi: 10.1126/science.aao4277. Epub 2017 Dec 7.
- Lepore M, Mori L, De Libero G. The Conventional Nature of Non-MHC-Restricted T Cells. Front Immunol. 2018 Jun 14;9:1365. doi: 10.3389/fimmu.2018.01365. eCollection 2018.
- Cortesi F, Delfanti G, Grilli A, Calcinotto A, Gorini F, Pucci F, Luciano R, Grioni M, Recchia A, Benigni F, Briganti A, Salonia A, De Palma M, Bicciato S, Doglioni C, Bellone M, Casorati G, Dellabona P. Bimodal CD40/Fas-Dependent Crosstalk between iNKT Cells and Tumor-Associated Macrophages Impairs Prostate Cancer Progression. Cell Rep. 2018 Mar 13;22(11):3006-3020. doi: 10.1016/j.celrep.2018.02.058.
- Noviello M, Manfredi F, Ruggiero E, Perini T, Oliveira G, Cortesi F, De Simone P, Toffalori C, Gambacorta V, Greco R, Peccatori J, Casucci M, Casorati G, Dellabona P, Onozawa M, Teshima T, Griffioen M, Halkes CJM, Falkenburg JHF, Stolzel F, Altmann H, Bornhauser M, Waterhouse M, Zeiser R, Finke J, Cieri N, Bondanza A, Vago L, Ciceri F, Bonini C. Bone marrow central memory and memory stem T-cell exhaustion in AML patients relapsing after HSCT. Nat Commun. 2019 Mar 25;10(1):1065. doi: 10.1038/s41467-019-08871-1.
- Tran E, Ahmadzadeh M, Lu YC, Gros A, Turcotte S, Robbins PF, Gartner JJ, Zheng Z, Li YF, Ray S, Wunderlich JR, Somerville RP, Rosenberg SA. Immunogenicity of somatic mutations in human gastrointestinal cancers. Science. 2015 Dec 11;350(6266):1387-90. doi: 10.1126/science.aad1253. Epub 2015 Oct 29.
- Mennonna D, Maccalli C, Romano MC, Garavaglia C, Capocefalo F, Bordoni R, Severgnini M, De Bellis G, Sidney J, Sette A, Gori A, Longhi R, Braga M, Ghirardelli L, Baldari L, Orsenigo E, Albarello L, Zino E, Fleischhauer K, Mazzola G, Ferrero N, Amoroso A, Casorati G, Parmiani G, Dellabona P. T cell neoepitope discovery in colorectal cancer by high throughput profiling of somatic mutations in expressed genes. Gut. 2017 Mar;66(3):454-463. doi: 10.1136/gutjnl-2015-309453. Epub 2015 Dec 17.
- Ruggiero E, Nicolay JP, Fronza R, Arens A, Paruzynski A, Nowrouzi A, Urenden G, Lulay C, Schneider S, Goerdt S, Glimm H, Krammer PH, Schmidt M, von Kalle C. High-resolution analysis of the human T-cell receptor repertoire. Nat Commun. 2015 Sep 1;6:8081. doi: 10.1038/ncomms9081.
- Schumacher TN, Schreiber RD. Neoantigens in cancer immunotherapy. Science. 2015 Apr 3;348(6230):69-74. doi: 10.1126/science.aaa4971.
- Newman AM, Liu CL, Green MR, Gentles AJ, Feng W, Xu Y, Hoang CD, Diehn M, Alizadeh AA. Robust enumeration of cell subsets from tissue expression profiles. Nat Methods. 2015 May;12(5):453-7. doi: 10.1038/nmeth.3337. Epub 2015 Mar 30.
- Manici S, Sturniolo T, Imro MA, Hammer J, Sinigaglia F, Noppen C, Spagnoli G, Mazzi B, Bellone M, Dellabona P, Protti MP. Melanoma cells present a MAGE-3 epitope to CD4(+) cytotoxic T cells in association with histocompatibility leukocyte antigen DR11. J Exp Med. 1999 Mar 1;189(5):871-6. doi: 10.1084/jem.189.5.871.
- Tran E, Turcotte S, Gros A, Robbins PF, Lu YC, Dudley ME, Wunderlich JR, Somerville RP, Hogan K, Hinrichs CS, Parkhurst MR, Yang JC, Rosenberg SA. Cancer immunotherapy based on mutation-specific CD4+ T cells in a patient with epithelial cancer. Science. 2014 May 9;344(6184):641-5. doi: 10.1126/science.1251102.
- Tran E, Robbins PF, Lu YC, Prickett TD, Gartner JJ, Jia L, Pasetto A, Zheng Z, Ray S, Groh EM, Kriley IR, Rosenberg SA. T-Cell Transfer Therapy Targeting Mutant KRAS in Cancer. N Engl J Med. 2016 Dec 8;375(23):2255-2262. doi: 10.1056/NEJMoa1609279.
- Lim WA, June CH. The Principles of Engineering Immune Cells to Treat Cancer. Cell. 2017 Feb 9;168(4):724-740. doi: 10.1016/j.cell.2017.01.016.
- Balachandran VP, Luksza M, Zhao JN, Makarov V, Moral JA, Remark R, Herbst B, Askan G, Bhanot U, Senbabaoglu Y, Wells DK, Cary CIO, Grbovic-Huezo O, Attiyeh M, Medina B, Zhang J, Loo J, Saglimbeni J, Abu-Akeel M, Zappasodi R, Riaz N, Smoragiewicz M, Kelley ZL, Basturk O; Australian Pancreatic Cancer Genome Initiative; Garvan Institute of Medical Research; Prince of Wales Hospital; Royal North Shore Hospital; University of Glasgow; St Vincent's Hospital; QIMR Berghofer Medical Research Institute; University of Melbourne, Centre for Cancer Research; University of Queensland, Institute for Molecular Bioscience; Bankstown Hospital; Liverpool Hospital; Royal Prince Alfred Hospital, Chris O'Brien Lifehouse; Westmead Hospital; Fremantle Hospital; St John of God Healthcare; Royal Adelaide Hospital; Flinders Medical Centre; Envoi Pathology; Princess Alexandria Hospital; Austin Hospital; Johns Hopkins Medical Institutes; ARC-Net Centre for Applied Research on Cancer; Gonen M, Levine AJ, Allen PJ, Fearon DT, Merad M, Gnjatic S, Iacobuzio-Donahue CA, Wolchok JD, DeMatteo RP, Chan TA, Greenbaum BD, Merghoub T, Leach SD. Identification of unique neoantigen qualities in long-term survivors of pancreatic cancer. Nature. 2017 Nov 23;551(7681):512-516. doi: 10.1038/nature24462. Epub 2017 Nov 8.
- Mlecnik B, Van den Eynde M, Bindea G, Church SE, Vasaturo A, Fredriksen T, Lafontaine L, Haicheur N, Marliot F, Debetancourt D, Pairet G, Jouret-Mourin A, Gigot JF, Hubert C, Danse E, Dragean C, Carrasco J, Humblet Y, Valge-Archer V, Berger A, Pages F, Machiels JP, Galon J. Comprehensive Intrametastatic Immune Quantification and Major Impact of Immunoscore on Survival. J Natl Cancer Inst. 2018 Jan 1;110(1). doi: 10.1093/jnci/djx123.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Antatt)
Studiet fullført (Antatt)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Nøkkelord
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Sykdommer i det endokrine systemet
- Neoplasmer etter nettsted
- Neoplasmer
- Tarmsykdommer
- Neoplasmer etter histologisk type
- Gastrointestinale neoplasmer
- Neoplasmer i fordøyelsessystemet
- Sykdommer i fordøyelsessystemet
- Gastrointestinale sykdommer
- Intestinale neoplasmer
- Rektale sykdommer
- Neoplasmer i endokrine kjertel
- Pankreassykdommer
- Neoplasmer, kjertel og epitel
- Kolonsykdommer
- Neoplasmer, duktale, lobulære og medullære
- Neoplasmer i bukspyttkjertelen
- Intraduktale neoplasmer i bukspyttkjertelen
- Kolorektale neoplasmer
Andre studie-ID-numre
- LiMeT
- 22737 (Annet stipend/finansieringsnummer: Italian Association for Cancer Research (AIRC), 5XMille call)
- 101118936 - ERC-2023-SyG (Annet stipend/finansieringsnummer: European Research Council (ERC))
- FRRB 2024 (Annet stipend/finansieringsnummer: Fondazione Regionale per la Ricerca Biomedica (FRRB))
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .