- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT06717295
CCANED-CIPHER-studien: Tidlig kreftdeteksjon og behandlingsresponsovervåking ved bruk av AI-basert blodplate- og immuncelle-transskriptomisk profilering (CCANED-CIPHER)
Studieoversikt
Status
Forhold
Detaljert beskrivelse
Detaljert beskrivelse CCANED-CIPHER-studien har som mål å revolusjonere kreftdiagnostikk og behandlingsovervåking ved å utvikle og evaluere et AI-basert tidlig kreftdeteksjonsverktøy som profilerer RNA-biomarkører fra blodplater og immunceller i blodprøver. Denne ikke-invasive tilnærmingen utnytter flytende biopsimetoder for å forbedre tidlig kreftdeteksjon og gi innsikt i terapeutiske responser.
Fase 1 (CCANED): Tidlig kreftoppdagelse
Objektiv:
For å identifisere spesifikke blodplateavledede RNA-biomarkører som kan skille individer med vanlige kreftformer fra friske kontroller ved bruk av AI-drevet transkriptomisk analyse.
Metodikk:
Deltakerrekruttering: Registrer 3500 pasienter med bekreftede diagnoser av ulike vanlige kreftformer og 1500 kreftfrie kontroller matchet etter alder og kjønn.
Prøvetaking: Ta en enkelt blodprøve fra hver deltaker ved baseline.
Laboratorieanalyse:
Blodplateisolering: Trekk ut blodplater fra blodprøver. RNA-sekvensering: Utfør transkriptomisk profilering for å identifisere RNA-ekspresjonsmønstre.
Dataanalyse:
AI-integrasjon: Bruk maskinlæringsalgoritmer for å analysere RNA-data og identifisere biomarkører som indikerer krefttilstedeværelse.
Statistisk evaluering: Vurder sensitivitet og spesifisitet til det diagnostiske verktøyet, og evaluer dets evne til å skille mellom krefttyper.
Forventede resultater:
Identifikasjon av pålitelige RNA-biomarkører for tidlig kreftdeteksjon. Validering av det AI-baserte diagnostiske verktøyets nøyaktighet og gjennomførbarhet i en klinisk setting.
Fase 2 (CIPHER): Terapeutisk responsovervåking
Objektiv:
For å evaluere hvordan RNA-biomarkører fra immunceller og blodplater korrelerer med terapeutiske responser, og gir innsikt i behandlingseffektivitet og potensielt tilbakefall.
Metodikk:
Deltakerrekruttering: Registrer 1000 kreftpasienter diagnostisert med HCC eller NSCLC på tvers av stadier I til IV.
Eksempelsamling:
Grunnlinje: Ta blodprøver før behandlingsstart. Oppfølging: Ytterligere prøver 6 uker og 6 måneder etter behandlingsstart.
Laboratorieanalyse:
Isolering av immunceller og blodplater: Trekk ut disse komponentene fra blodprøver.
Transkriptomisk profilering: Analyser endringer i RNA-uttrykk over tid.
Dataanalyse:
Korrelasjonsstudier: Evaluer assosiasjoner mellom RNA-biomarkører og kliniske behandlingsresponser.
Prediktiv modellering: Utvikle modeller som integrerer blodplate- og immuncelle-RNA-profiler for å forutsi utfall.
Forventede resultater:
Identifikasjon av biomarkører som korrelerer med behandlingsresponser og progresjonsfri overlevelse.
Utvikling av prediktive modeller for tilbakefall og medikamentresistens.
Studiens betydning
CCANED-CIPHER-studien adresserer kritiske behov innen onkologi ved å tilby:
Ikke-invasiv diagnostikk: En blodprøve som reduserer behovet for invasive vevsbiopsier.
Tidlig oppdagelse: Potensial for å identifisere kreftformer på et tidligere, mer behandlingsbart stadium.
Personlig medisin: Skreddersydde behandlingsstrategier basert på individuelle biomarkørprofiler.
Forbedret overvåking: Forbedret evne til å overvåke behandlingseffektivitet og justere terapier deretter.
Prediktiv innsikt: Tidlig påvisning av tilbakefall eller medikamentresistens, som muliggjør raske kliniske intervensjoner.
Forventet effekt og fremtidige bruksområder Ved å integrere avanserte AI-teknologier med innovative flytende biopsimetoder, har CCANED-CIPHER-studien som mål å forbedre kreftdeteksjon og pasientresultater betydelig. Identifikasjonen av spesifikke RNA-biomarkører fra blodplater og immunceller har potensial til å transformere gjeldende praksis innen onkologi, og tilby en mer effektiv, nøyaktig og pasientvennlig tilnærming til kreftbehandling.
Studietype
Registrering (Antatt)
Kontakter og plasseringer
Studiekontakt
- Navn: Javier Toledo, Medical Degree
- Telefonnummer: +44 (0)1223 496000
- E-post: research@dysplasiadx.com
Studer Kontakt Backup
- Navn: Osagie Izuogu, PhD
- Telefonnummer: +44 (0)1223 496000
- E-post: info@dysplasiadx.com
Studiesteder
-
-
-
Rosario, Argentina
- Aktiv, ikke rekrutterende
- Various Cancer Centres
-
-
-
-
-
Lagos, Nigeria
- Rekruttering
- NSIA- Lagos University Teaching Hospital Cancer Centre
-
Ta kontakt med:
- Adewumi Alabi, Oncology
- Telefonnummer: +2348052843206
- E-post: aalabi@nlcc.ng
-
Ta kontakt med:
- Solomon Rotimi, Ph.D
- E-post: solomon@dysplasiadx.com
-
-
-
-
-
Cambridge, Storbritannia, CB22 3AT
- Påmelding etter invitasjon
- Babraham Research Institute
-
London, Storbritannia, W1W 7LT
- Rekruttering
- Dysplasia Diagnostics Limited
-
Ta kontakt med:
- Chief Medical Officer, Medical
- Telefonnummer: +447494946013
- E-post: research@dysplasiadx.com
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
- Voksen
- Eldre voksen
Tar imot friske frivillige
Prøvetakingsmetode
Studiepopulasjon
CCANED-CIPHER-studien vil registrere en mangfoldig, geografisk spredt befolkning for å sikre generaliserbarheten og robustheten til funnene. Studien er delt inn i to faser, og bruker opptil 10 medisinske sentre globalt over hele Storbritannia (Storbritannia), Europa, Amerika og Asia.
Fase 1 (CCANED):
Deltakere: 5000 voksne i alderen 40 år eller eldre.
- Kreftpasienter: 3500 personer med bekreftede diagnoser av vanlige kreftformer.
- Sunne kontroller: 1500 alderstilpassede kreftfrie individer.
Rekrutteringsstrategi: Deltakerne vil bli identifisert og registrert gjennom de deltakende medisinske sentrene, noe som sikrer et representativt utvalg på tvers av forskjellige geografiske steder.
Fase 2 (CIPHER):
Deltakere: 1000 voksne i alderen 40 år eller eldre diagnostisert med HCC eller NSCLC på tvers av stadier I til IV.
Rekrutteringsstrategi: Kreftpasienter vil bli rekruttert fra de deltakende kreftsentrene, noe som sikrer en bred representasjon av sykdomsstadier og behandlingsbakgrunn.
Beskrivelse
Fase 1 (CCANED)
Inkluderingskriterier:
- Alder: Voksne i alderen 40 år eller eldre.
- Bekreftet diagnose av en av følgende vanlige kreftformer: ikke-småcellet lungekreft (NSCLC), Glioblastoma Multiforme (GBM), tykktarmskreft, hepatocellulært karsinom (HCC), brystkreft, prostatakreft, eggstokkreft, bukspyttkjertelkreft.
Ekskluderingskriterier:
- For tiden gravid.
- Tilstedeværelse av aktive smittsomme sykdommer.
- Bruk av antikoagulantia eller blodplatehemmere innen de siste 2 ukene.
- Eventuelle medisinske eller psykologiske forhold som kan påvirke deltakerens evne til å overholde studieprosedyrer.
Fase 2 (CIPHER)
Inkluderingskriterier:
- Voksne i alderen 40 år eller eldre.
- Bekreftet diagnose av: Hepatocellulært karsinom (HCC), ikke-småcellet lungekreft (NSCLC)
- Vilje til å gi blodprøver med spesifiserte intervaller (baseline, 6 uker og 6 måneder etter behandlingsstart).
Ekskluderingskriterier:
- Tilstedeværelse av en annen malignitet med mindre den har vært i remisjon i minst 5 år.
- Betydelige ukontrollerte komorbide tilstander som kan forstyrre studiedeltakelse eller utfall.
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
Kohorter og intervensjoner
Gruppe / Kohort |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Kreftpasienter (fase 1)
Denne armen vil omfatte 3500 individer med bekreftede diagnoser av vanlige kreftformer som ikke-småcellet lungekreft (NSCLC), Glioblastoma Multiforme (GBM), kolorektal kreft, hepatocellulært karsinom (HCC), brystkreft, prostatakreft, eggstokkreft og bukspyttkjertelkreft Kreft.
|
Prosedyre: Deltakerne vil gjennomgå en enkelt blodprøve ved baseline. Eksempelanalyse: Blodplateisolering: Blodplater vil bli ekstrahert fra de innsamlede blodprøvene. RNA-analyse: RNA fra de isolerte blodplatene vil bli ekstrahert og analysert ved bruk av AI-basert transkriptomisk profilering for å identifisere biomarkører assosiert med kreft. |
|
Friske individer
Denne armen vil bestå av 1500 alders- og kjønnsmatchede kreftfrie individer som fungerer som kontroller.
|
Prosedyre: Deltakerne vil gjennomgå en enkelt blodprøve ved baseline. Eksempelanalyse: Blodplateisolering: Blodplater vil bli ekstrahert fra de innsamlede blodprøvene. RNA-analyse: RNA fra de isolerte blodplatene vil bli ekstrahert og analysert ved bruk av AI-basert transkriptomisk profilering for å identifisere biomarkører assosiert med kreft. |
|
Kreftpasienter under behandling
Denne kohorten vil inkludere 1000 pasienter diagnostisert med hepatocellulært karsinom (HCC) eller ikke-småcellet lungekreft (NSCLC) på tvers av stadier I til IV som er i ferd med å starte standard kreftbehandling.
|
Prosedyre: Deltakerne vil gjennomgå en enkelt blodprøve ved baseline. Eksempelanalyse: Blodplateisolering: Blodplater vil bli ekstrahert fra de innsamlede blodprøvene. RNA-analyse: RNA fra de isolerte blodplatene vil bli ekstrahert og analysert ved bruk av AI-basert transkriptomisk profilering for å identifisere biomarkører assosiert med kreft. Prosedyrer: Blodprøvesamling: Deltakerne vil få tatt blodprøver på tre tidspunkt: Grunnlinje: Før behandlingsstart. 6 uker etter terapistart: For å overvåke tidlig behandlingsrespons. 6 måneder etter terapistart: For å vurdere langsiktige terapeutiske resultater. Eksempelanalyse: Isolering av blodplater og immunceller: Blodplater: Ekstrahert fra hver blodprøve for å fortsette å overvåke RNA-profiler. Immunceller: Separert fra blodprøvene for å analysere immunrespons på terapi. RNA-analyse: Blodplate-RNA: Analysert for å observere endringer i transkriptomiske profiler over tid ved bruk av AI-baserte verktøy. Immuncelle-RNA: Undersøkt for å vurdere transkriptomiske endringer assosiert med terapeutiske responser. Datakorrelasjon: Terapeutisk responsvurdering: RNA-profiler fra blodplater og immunceller vil bli korrelert med kliniske resultater for å identifisere biomarkører som forutsier behandlingseffektivitet, progresjonsfri overlevelse, tilbakefall og medikamentresistens. |
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Identifikasjon av blodplate-RNA-biomarkører som skiller kreftpasienter fra kontroller
Tidsramme: Grunnlinje (enkelt tidspunkt)
|
Bruk AI-basert transkriptomisk analyse av blodplate-RNA for å identifisere biomarkører som skiller mellom kreftpasienter og kreftfrie kontroller.
|
Grunnlinje (enkelt tidspunkt)
|
|
Identifikasjon av RNA-biomarkører som korrelerer med terapeutisk respons (fase 2)
Tidsramme: Baseline til 6 måneder etter behandlingsstart
|
Identifiser RNA-biomarkører fra immunceller og blodplater som korrelerer med klinisk behandlingsrespons, målt ved standardkriterier (f.eks. RECIST)
|
Baseline til 6 måneder etter behandlingsstart
|
|
Assosiasjon mellom immuncelle-transkriptomer og AI-baserte blodplatesignaler
Tidsramme: Baseline til 6 måneder etter behandlingsstart
|
Evaluer hvordan endringer i immuncelle-transkriptomer er assosiert med signaler oppdaget av det AI-baserte blodplateprofileringsverktøyet.
|
Baseline til 6 måneder etter behandlingsstart
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Sensitivitet og spesifisitet til det AI-baserte diagnoseverktøyet (fase 1)
Tidsramme: Grunnlinje
|
Beregn den diagnostiske nøyaktigheten til det AI-baserte verktøyet for å oppdage kreft blant deltakerne.
|
Grunnlinje
|
|
Gjennomførbarhet for trombocyttranskriptomisk profilering
Tidsramme: Fase 1 - 2 år
|
Vurder det praktiske ved prøveinnsamling, prosessering og analyse i en klinisk setting.
|
Fase 1 - 2 år
|
|
Utvikling av prediktive modeller for behandlingsresultater (fase 2)
Tidsramme: Fase 2 - To år
|
Lag og valider prediktive modeller som integrerer blodplate- og immuncelle-RNA-profiler for å forutsi behandlingsrespons og progresjonsfri overlevelse.
|
Fase 2 - To år
|
|
Identifikasjon av biomarkører som forutsier tilbakefall og medikamentresistens (fase 2)
Tidsramme: Baseline til 6 måneder etter behandlingsstart
|
Identifiser RNA-biomarkører som forutsier tilbakefall og medikamentresistens ved 6-måneders oppfølging.
|
Baseline til 6 måneder etter behandlingsstart
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Etterforskere
- Studieleder: Solomon Rotimi, PhD, Dysplasia Diagnostics Limited
- Hovedetterforsker: Javier Toledo, Medical Degree, Dysplasia Diagnostics Limited
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Smerage JB, Barlow WE, Hortobagyi GN, Winer EP, Leyland-Jones B, Srkalovic G, Tejwani S, Schott AF, O'Rourke MA, Lew DL, Doyle GV, Gralow JR, Livingston RB, Hayes DF. Circulating tumor cells and response to chemotherapy in metastatic breast cancer: SWOG S0500. J Clin Oncol. 2014 Nov 1;32(31):3483-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2561. Epub 2014 Jun 2.
- Bettegowda C, Sausen M, Leary RJ, Kinde I, Wang Y, Agrawal N, Bartlett BR, Wang H, Luber B, Alani RM, Antonarakis ES, Azad NS, Bardelli A, Brem H, Cameron JL, Lee CC, Fecher LA, Gallia GL, Gibbs P, Le D, Giuntoli RL, Goggins M, Hogarty MD, Holdhoff M, Hong SM, Jiao Y, Juhl HH, Kim JJ, Siravegna G, Laheru DA, Lauricella C, Lim M, Lipson EJ, Marie SK, Netto GJ, Oliner KS, Olivi A, Olsson L, Riggins GJ, Sartore-Bianchi A, Schmidt K, Shih lM, Oba-Shinjo SM, Siena S, Theodorescu D, Tie J, Harkins TT, Veronese S, Wang TL, Weingart JD, Wolfgang CL, Wood LD, Xing D, Hruban RH, Wu J, Allen PJ, Schmidt CM, Choti MA, Velculescu VE, Kinzler KW, Vogelstein B, Papadopoulos N, Diaz LA Jr. Detection of circulating tumor DNA in early- and late-stage human malignancies. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra24. doi: 10.1126/scitranslmed.3007094.
- Pantel K, Alix-Panabieres C. Liquid biopsy and minimal residual disease - latest advances and implications for cure. Nat Rev Clin Oncol. 2019 Jul;16(7):409-424. doi: 10.1038/s41571-019-0187-3.
- Mok TS, Wu YL, Thongprasert S, Yang CH, Chu DT, Saijo N, Sunpaweravong P, Han B, Margono B, Ichinose Y, Nishiwaki Y, Ohe Y, Yang JJ, Chewaskulyong B, Jiang H, Duffield EL, Watkins CL, Armour AA, Fukuoka M. Gefitinib or carboplatin-paclitaxel in pulmonary adenocarcinoma. N Engl J Med. 2009 Sep 3;361(10):947-57. doi: 10.1056/NEJMoa0810699. Epub 2009 Aug 19.
- Alix-Panabieres C, Pantel K. Clinical Applications of Circulating Tumor Cells and Circulating Tumor DNA as Liquid Biopsy. Cancer Discov. 2016 May;6(5):479-91. doi: 10.1158/2159-8290.CD-15-1483. Epub 2016 Mar 11.
- Best MG, Sol N, Kooi I, Tannous J, Westerman BA, Rustenburg F, Schellen P, Verschueren H, Post E, Koster J, Ylstra B, Ameziane N, Dorsman J, Smit EF, Verheul HM, Noske DP, Reijneveld JC, Nilsson RJA, Tannous BA, Wesseling P, Wurdinger T. RNA-Seq of Tumor-Educated Platelets Enables Blood-Based Pan-Cancer, Multiclass, and Molecular Pathway Cancer Diagnostics. Cancer Cell. 2015 Nov 9;28(5):666-676. doi: 10.1016/j.ccell.2015.09.018. Epub 2015 Oct 29.
- Cescon DW, Bratman SV, Chan SM, Siu LL. Circulating tumor DNA and liquid biopsy in oncology. Nat Cancer. 2020 Mar;1(3):276-290. doi: 10.1038/s43018-020-0043-5. Epub 2020 Mar 20.
- National Lung Screening Trial Research Team; Aberle DR, Adams AM, Berg CD, Black WC, Clapp JD, Fagerstrom RM, Gareen IF, Gatsonis C, Marcus PM, Sicks JD. Reduced lung-cancer mortality with low-dose computed tomographic screening. N Engl J Med. 2011 Aug 4;365(5):395-409. doi: 10.1056/NEJMoa1102873. Epub 2011 Jun 29.
- Sequist LV, Waltman BA, Dias-Santagata D, Digumarthy S, Turke AB, Fidias P, Bergethon K, Shaw AT, Gettinger S, Cosper AK, Akhavanfard S, Heist RS, Temel J, Christensen JG, Wain JC, Lynch TJ, Vernovsky K, Mark EJ, Lanuti M, Iafrate AJ, Mino-Kenudson M, Engelman JA. Genotypic and histological evolution of lung cancers acquiring resistance to EGFR inhibitors. Sci Transl Med. 2011 Mar 23;3(75):75ra26. doi: 10.1126/scitranslmed.3002003.
- Diehl F, Li M, Dressman D, He Y, Shen D, Szabo S, Diaz LA Jr, Goodman SN, David KA, Juhl H, Kinzler KW, Vogelstein B. Detection and quantification of mutations in the plasma of patients with colorectal tumors. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005 Nov 8;102(45):16368-73. doi: 10.1073/pnas.0507904102. Epub 2005 Oct 28.
- Raposo G, Stoorvogel W. Extracellular vesicles: exosomes, microvesicles, and friends. J Cell Biol. 2013 Feb 18;200(4):373-83. doi: 10.1083/jcb.201211138.
- Arroyo JD, Chevillet JR, Kroh EM, Ruf IK, Pritchard CC, Gibson DF, Mitchell PS, Bennett CF, Pogosova-Agadjanyan EL, Stirewalt DL, Tait JF, Tewari M. Argonaute2 complexes carry a population of circulating microRNAs independent of vesicles in human plasma. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 Mar 22;108(12):5003-8. doi: 10.1073/pnas.1019055108. Epub 2011 Mar 7.
- Oxnard GR, Thress KS, Alden RS, Lawrance R, Paweletz CP, Cantarini M, Yang JC, Barrett JC, Janne PA. Association Between Plasma Genotyping and Outcomes of Treatment With Osimertinib (AZD9291) in Advanced Non-Small-Cell Lung Cancer. J Clin Oncol. 2016 Oct 1;34(28):3375-82. doi: 10.1200/JCO.2016.66.7162. Epub 2016 Jun 27.
- Best MG, Sol N, In 't Veld SGJG, Vancura A, Muller M, Niemeijer AN, Fejes AV, Tjon Kon Fat LA, Huis In 't Veld AE, Leurs C, Le Large TY, Meijer LL, Kooi IE, Rustenburg F, Schellen P, Verschueren H, Post E, Wedekind LE, Bracht J, Esenkbrink M, Wils L, Favaro F, Schoonhoven JD, Tannous J, Meijers-Heijboer H, Kazemier G, Giovannetti E, Reijneveld JC, Idema S, Killestein J, Heger M, de Jager SC, Urbanus RT, Hoefer IE, Pasterkamp G, Mannhalter C, Gomez-Arroyo J, Bogaard HJ, Noske DP, Vandertop WP, van den Broek D, Ylstra B, Nilsson RJA, Wesseling P, Karachaliou N, Rosell R, Lee-Lewandrowski E, Lewandrowski KB, Tannous BA, de Langen AJ, Smit EF, van den Heuvel MM, Wurdinger T. Swarm Intelligence-Enhanced Detection of Non-Small-Cell Lung Cancer Using Tumor-Educated Platelets. Cancer Cell. 2017 Aug 14;32(2):238-252.e9. doi: 10.1016/j.ccell.2017.07.004.
- Tsui NB, Ng EK, Lo YM. Stability of endogenous and added RNA in blood specimens, serum, and plasma. Clin Chem. 2002 Oct;48(10):1647-53.
- Sharma SV, Lee DY, Li B, Quinlan MP, Takahashi F, Maheswaran S, McDermott U, Azizian N, Zou L, Fischbach MA, Wong KK, Brandstetter K, Wittner B, Ramaswamy S, Classon M, Settleman J. A chromatin-mediated reversible drug-tolerant state in cancer cell subpopulations. Cell. 2010 Apr 2;141(1):69-80. doi: 10.1016/j.cell.2010.02.027.
- Redwood N, Beggs D, Morgan WE. Dissemination of tumour cells from fine needle biopsy. Thorax. 1989 Oct;44(10):826-7. doi: 10.1136/thx.44.10.826.
- Mobadersany P, Yousefi S, Amgad M, Gutman DA, Barnholtz-Sloan JS, Velazquez Vega JE, Brat DJ, Cooper LAD. Predicting cancer outcomes from histology and genomics using convolutional networks. Proc Natl Acad Sci U S A. 2018 Mar 27;115(13):E2970-E2979. doi: 10.1073/pnas.1717139115. Epub 2018 Mar 12.
- Lans H, Hoeijmakers JHJ, Vermeulen W, Marteijn JA. The DNA damage response to transcription stress. Nat Rev Mol Cell Biol. 2019 Dec;20(12):766-784. doi: 10.1038/s41580-019-0169-4. Epub 2019 Sep 26.
- Kucab JE, Zou X, Morganella S, Joel M, Nanda AS, Nagy E, Gomez C, Degasperi A, Harris R, Jackson SP, Arlt VM, Phillips DH, Nik-Zainal S. A Compendium of Mutational Signatures of Environmental Agents. Cell. 2019 May 2;177(4):821-836.e16. doi: 10.1016/j.cell.2019.03.001. Epub 2019 Apr 11.
- Joosse SA, Beyer B, Gasch C, Nastaly P, Kuske A, Isbarn H, Horst LJ, Hille C, Gorges TM, Cayrefourcq L, Alix-Panabieres C, Tennstedt P, Riethdorf S, Schlomm T, Pantel K. Tumor-Associated Release of Prostatic Cells into the Blood after Transrectal Ultrasound-Guided Biopsy in Patients with Histologically Confirmed Prostate Cancer. Clin Chem. 2020 Jan 1;66(1):161-168. doi: 10.1373/clinchem.2019.310912.
- Jackson W 3rd, Sosnoski DM, Ohanessian SE, Chandler P, Mobley A, Meisel KD, Mastro AM. Role of Megakaryocytes in Breast Cancer Metastasis to Bone. Cancer Res. 2017 Apr 15;77(8):1942-1954. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-16-1084. Epub 2017 Feb 15.
- Hustedt N, Durocher D. The control of DNA repair by the cell cycle. Nat Cell Biol. 2016 Dec 23;19(1):1-9. doi: 10.1038/ncb3452.
- Hirschhaeuser F, Menne H, Dittfeld C, West J, Mueller-Klieser W, Kunz-Schughart LA. Multicellular tumor spheroids: an underestimated tool is catching up again. J Biotechnol. 2010 Jul 1;148(1):3-15. doi: 10.1016/j.jbiotec.2010.01.012. Epub 2010 Jan 25.
- Gay LJ, Felding-Habermann B. Contribution of platelets to tumour metastasis. Nat Rev Cancer. 2011 Feb;11(2):123-34. doi: 10.1038/nrc3004.
- Chiou YY, Hu J, Sancar A, Selby CP. RNA polymerase II is released from the DNA template during transcription-coupled repair in mammalian cells. J Biol Chem. 2018 Feb 16;293(7):2476-2486. doi: 10.1074/jbc.RA117.000971. Epub 2017 Dec 27.
- Aitken SJ, Anderson CJ, Connor F, Pich O, Sundaram V, Feig C, Rayner TF, Lukk M, Aitken S, Luft J, Kentepozidou E, Arnedo-Pac C, Beentjes SV, Davies SE, Drews RM, Ewing A, Kaiser VB, Khamseh A, Lopez-Arribillaga E, Redmond AM, Santoyo-Lopez J, Sentis I, Talmane L, Yates AD; Liver Cancer Evolution Consortium; Semple CA, Lopez-Bigas N, Flicek P, Odom DT, Taylor MS. Pervasive lesion segregation shapes cancer genome evolution. Nature. 2020 Jul;583(7815):265-270. doi: 10.1038/s41586-020-2435-1. Epub 2020 Jun 24.
- Gerlinger M, Rowan AJ, Horswell S, Math M, Larkin J, Endesfelder D, Gronroos E, Martinez P, Matthews N, Stewart A, Tarpey P, Varela I, Phillimore B, Begum S, McDonald NQ, Butler A, Jones D, Raine K, Latimer C, Santos CR, Nohadani M, Eklund AC, Spencer-Dene B, Clark G, Pickering L, Stamp G, Gore M, Szallasi Z, Downward J, Futreal PA, Swanton C. Intratumor heterogeneity and branched evolution revealed by multiregion sequencing. N Engl J Med. 2012 Mar 8;366(10):883-892. doi: 10.1056/NEJMoa1113205.
- Siravegna G, Mussolin B, Buscarino M, Corti G, Cassingena A, Crisafulli G, Ponzetti A, Cremolini C, Amatu A, Lauricella C, Lamba S, Hobor S, Avallone A, Valtorta E, Rospo G, Medico E, Motta V, Antoniotti C, Tatangelo F, Bellosillo B, Veronese S, Budillon A, Montagut C, Racca P, Marsoni S, Falcone A, Corcoran RB, Di Nicolantonio F, Loupakis F, Siena S, Sartore-Bianchi A, Bardelli A. Clonal evolution and resistance to EGFR blockade in the blood of colorectal cancer patients. Nat Med. 2015 Jul;21(7):795-801. doi: 10.1038/nm.3870. Epub 2015 Jun 1.
Hjelpsomme linker
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Antatt)
Studiet fullført (Antatt)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Antatt)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Nøkkelord
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Urogenitale sykdommer
- Kjønnssykdommer
- Sykdommer i det endokrine systemet
- Genitale neoplasmer, hanner
- Urogenitale neoplasmer
- Neoplasmer etter nettsted
- Kjønnssykdommer, mannlige
- Prostata sykdommer
- Mannlige urogenitale sykdommer
- Kvinnelige urogenitale sykdommer
- Kvinnelige urogenitale sykdommer og graviditetskomplikasjoner
- Tarmsykdommer
- Sykdommer i luftveiene
- Neoplasmer etter histologisk type
- Gastrointestinale neoplasmer
- Neoplasmer i fordøyelsessystemet
- Sykdommer i fordøyelsessystemet
- Gastrointestinale sykdommer
- Intestinale neoplasmer
- Rektale sykdommer
- Kjønnssykdommer, kvinner
- Lungesykdommer
- Neoplasmer i endokrine kjertel
- Leversykdommer
- Neoplasmer, kjertel og epitel
- Adenokarsinom
- Neoplasmer i leveren
- Neoplasmer i luftveiene
- Thoracale neoplasmer
- Kolonsykdommer
- Sykdommer i eggstokkene
- Adnexal sykdommer
- Genitale neoplasmer, kvinnelige
- Gonadal lidelser
- Karsinom
- Astrocytom
- Glioma
- Neoplasmer, Neuroepithelial
- Nevroektodermale svulster
- Neoplasmer, kjønnsceller og embryonale
- Neoplasmer, nervevev
- Karsinom, bronkogent
- Bronkiale neoplasmer
- Neoplasmer
- Prostatiske neoplasmer
- Karsinom, hepatocellulært
- Lungeneoplasmer
- Kolorektale neoplasmer
- Neoplasmer i eggstokkene
- Glioblastom
- Karsinom, ikke-småcellet lunge
- Kreft i bukspyttkjertelen, voksen
- Undersøkelsesteknikker
- Kliniske laboratorieteknikker
- Diagnostiske teknikker og prosedyrer
- Diagnose
- Hematologiske tester
Andre studie-ID-numre
- CCANED-CIPHER
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
produkt produsert i og eksportert fra USA
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .