- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT06717295
El estudio CCANED-CIPHER: detección temprana del cáncer y seguimiento de la respuesta al tratamiento mediante perfiles transcriptómicos de plaquetas y células inmunitarias basados en IA (CCANED-CIPHER)
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Descripción detallada
Descripción detallada El estudio CCANED-CIPHER tiene como objetivo revolucionar el diagnóstico del cáncer y el seguimiento del tratamiento mediante el desarrollo y la evaluación de una herramienta de detección temprana del cáncer basada en inteligencia artificial que perfila biomarcadores de ARN de plaquetas y células inmunitarias en muestras de sangre. Este enfoque no invasivo aprovecha los métodos de biopsia líquida para mejorar la detección temprana del cáncer y proporcionar información sobre las respuestas terapéuticas.
Fase 1 (CCANED): Detección Temprana del Cáncer
Objetivo:
Identificar biomarcadores de ARN derivados de plaquetas específicos que puedan distinguir a individuos con cánceres comunes de controles sanos mediante análisis transcriptómico impulsado por IA.
Metodología:
Reclutamiento de participantes: inscriba a 3500 pacientes con diagnósticos confirmados de varios cánceres comunes y 1500 controles libres de cáncer emparejados por edad y sexo.
Recolección de muestras: obtenga una única muestra de sangre de cada participante al inicio del estudio.
Análisis de laboratorio:
Aislamiento de plaquetas: extraiga plaquetas de muestras de sangre. Secuenciación de ARN: realice perfiles transcriptómicos para identificar patrones de expresión de ARN.
Análisis de datos:
Integración de IA: utilice algoritmos de aprendizaje automático para analizar datos de ARN e identificar biomarcadores indicativos de la presencia de cáncer.
Evaluación estadística: evaluar la sensibilidad y especificidad de la herramienta de diagnóstico y evaluar su capacidad para diferenciar entre tipos de cáncer.
Resultados esperados:
Identificación de biomarcadores de ARN confiables para la detección temprana del cáncer. Validación de la precisión y viabilidad de la herramienta de diagnóstico basada en IA en un entorno clínico.
Fase 2 (CIPHER): Monitoreo de la respuesta terapéutica
Objetivo:
Evaluar cómo los biomarcadores de ARN de células inmunitarias y plaquetas se correlacionan con las respuestas terapéuticas, proporcionando información sobre la eficacia del tratamiento y la posible recaída.
Metodología:
Reclutamiento de participantes: inscribir a 1000 pacientes con cáncer diagnosticados con CHC o NSCLC en los estadios I a IV.
Colección de muestras:
Línea de base: recolecte muestras de sangre antes de iniciar la terapia. Seguimiento: muestras adicionales a las 6 semanas y 6 meses después del inicio de la terapia.
Análisis de laboratorio:
Aislamiento de células inmunes y plaquetas: extraiga estos componentes de muestras de sangre.
Perfiles transcriptómicos: analice los cambios en la expresión del ARN a lo largo del tiempo.
Análisis de datos:
Estudios de correlación: evaluar asociaciones entre biomarcadores de ARN y respuestas al tratamiento clínico.
Modelado predictivo: desarrolle modelos que integren perfiles de ARN de plaquetas y células inmunitarias para predecir resultados.
Resultados esperados:
Identificación de biomarcadores que se correlacionen con las respuestas al tratamiento y la supervivencia libre de progresión.
Desarrollo de modelos predictivos de recaída y resistencia a medicamentos.
Importancia del estudio
El estudio CCANED-CIPHER aborda necesidades críticas en oncología proporcionando:
Diagnóstico no invasivo: análisis de sangre que reduce la necesidad de biopsias de tejido invasivas.
Detección temprana: potencial para identificar cánceres en una etapa más temprana y más tratable.
Medicina personalizada: estrategias de tratamiento personalizadas basadas en perfiles de biomarcadores individuales.
Monitoreo mejorado: capacidad mejorada para monitorear la efectividad del tratamiento y ajustar las terapias en consecuencia.
Conocimientos predictivos: detección temprana de recaída o resistencia a los medicamentos, lo que permite intervenciones clínicas rápidas.
Impacto esperado y aplicaciones futuras Al integrar tecnologías avanzadas de inteligencia artificial con métodos innovadores de biopsia líquida, el estudio CCANED-CIPHER tiene como objetivo mejorar significativamente la detección del cáncer y los resultados de los pacientes. La identificación de biomarcadores de ARN específicos de plaquetas y células inmunitarias tiene el potencial de transformar las prácticas actuales en oncología, ofreciendo un enfoque más eficiente, preciso y amigable para el paciente para la atención del cáncer.
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Javier Toledo, Medical Degree
- Número de teléfono: +44 (0)1223 496000
- Correo electrónico: research@dysplasiadx.com
Copia de seguridad de contactos de estudio
- Nombre: Osagie Izuogu, PhD
- Número de teléfono: +44 (0)1223 496000
- Correo electrónico: info@dysplasiadx.com
Ubicaciones de estudio
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Rosario, Argentina
- Activo, no reclutando
- Various Cancer Centres
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Lagos, Nigeria
- Reclutamiento
- NSIA- Lagos University Teaching Hospital Cancer Centre
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Contacto:
- Adewumi Alabi, Oncology
- Número de teléfono: +2348052843206
- Correo electrónico: aalabi@nlcc.ng
-
Contacto:
- Solomon Rotimi, Ph.D
- Correo electrónico: solomon@dysplasiadx.com
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Cambridge, Reino Unido, CB22 3AT
- Inscripción por invitación
- Babraham Research Institute
-
London, Reino Unido, W1W 7LT
- Reclutamiento
- Dysplasia Diagnostics Limited
-
Contacto:
- Chief Medical Officer, Medical
- Número de teléfono: +447494946013
- Correo electrónico: research@dysplasiadx.com
-
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
- Adulto
- Adulto Mayor
Acepta Voluntarios Saludables
Método de muestreo
Población de estudio
El estudio CCANED-CIPHER incluirá una población diversa y geográficamente dispersa para garantizar la generalización y solidez de sus hallazgos. El estudio se divide en dos fases y utiliza hasta 10 centros médicos en todo el mundo en el Reino Unido (Reino Unido), Europa, América y Asia.
Fase 1 (CCANED):
Participantes: 5.000 adultos de 40 años o más.
- Pacientes con cáncer: 3500 personas con diagnósticos confirmados de cánceres comunes.
- Controles saludables: 1.500 personas libres de cáncer de la misma edad.
Estrategia de reclutamiento: los participantes serán identificados e inscritos a través de los centros médicos participantes, asegurando una muestra representativa en diferentes ubicaciones geográficas.
Fase 2 (CIPHER):
Participantes: 1000 adultos de 40 años o más diagnosticados con CHC o NSCLC en los estadios I a IV.
Estrategia de reclutamiento: Los pacientes con cáncer serán reclutados de los centros oncológicos participantes, lo que garantiza una amplia representación de las etapas de la enfermedad y los antecedentes del tratamiento.
Descripción
Fase 1 (CCANED)
Criterios de inclusión:
- Edad: Adultos de 40 años o más.
- Diagnóstico confirmado de uno de los siguientes cánceres comunes: cáncer de pulmón de células no pequeñas (NSCLC), glioblastoma multiforme (GBM), cáncer colorrectal, carcinoma hepatocelular (HCC), cáncer de mama, cáncer de próstata, cáncer de ovario, cáncer de páncreas.
Criterios de exclusión:
- Actualmente embarazada.
- Presencia de alguna enfermedad infecciosa activa.
- Uso de fármacos anticoagulantes o antiplaquetarios en las últimas 2 semanas.
- Cualquier condición médica o psicológica que pueda afectar la capacidad del participante para cumplir con los procedimientos del estudio.
Fase 2 (CIFRADO)
Criterios de inclusión:
- Adultos de 40 años o más.
- Diagnóstico confirmado de: carcinoma hepatocelular (CHC), cáncer de pulmón de células no pequeñas (NSCLC)
- Voluntad de proporcionar muestras de sangre en los intervalos especificados (línea de base, 6 semanas y 6 meses después del inicio de la terapia).
Criterios de exclusión:
- Presencia de otra neoplasia maligna a menos que haya estado en remisión durante al menos 5 años.
- Condiciones comórbidas significativas no controladas que pueden interferir con la participación o los resultados del estudio.
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
Cohortes e Intervenciones
Grupo / Cohorte |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
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Pacientes con cáncer (Fase 1)
Este grupo incluirá 3500 personas con diagnósticos confirmados de cánceres comunes, como cáncer de pulmón de células no pequeñas (NSCLC), glioblastoma multiforme (GBM), cáncer colorrectal, carcinoma hepatocelular (HCC), cáncer de mama, cáncer de próstata, cáncer de ovario y cáncer de páncreas. Cáncer.
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Procedimiento: Los participantes se someterán a una única extracción de sangre al inicio del estudio. Análisis de muestra: Aislamiento de plaquetas: las plaquetas se extraerán de las muestras de sangre recolectadas. Análisis de ARN: el ARN de las plaquetas aisladas se extraerá y analizará utilizando perfiles transcriptómicos basados en IA para identificar biomarcadores asociados con el cáncer. |
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Individuos sanos
Este grupo estará formado por 1.500 individuos libres de cáncer de la misma edad y sexo que servirán como controles.
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Procedimiento: Los participantes se someterán a una única extracción de sangre al inicio del estudio. Análisis de muestra: Aislamiento de plaquetas: las plaquetas se extraerán de las muestras de sangre recolectadas. Análisis de ARN: el ARN de las plaquetas aisladas se extraerá y analizará utilizando perfiles transcriptómicos basados en IA para identificar biomarcadores asociados con el cáncer. |
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Pacientes con cáncer sometidos a tratamiento
Esta cohorte incluirá 1000 pacientes diagnosticados con carcinoma hepatocelular (CHC) o cáncer de pulmón de células no pequeñas (NSCLC) en los estadios I a IV que están a punto de comenzar la terapia estándar contra el cáncer.
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Procedimiento: Los participantes se someterán a una única extracción de sangre al inicio del estudio. Análisis de muestra: Aislamiento de plaquetas: las plaquetas se extraerán de las muestras de sangre recolectadas. Análisis de ARN: el ARN de las plaquetas aisladas se extraerá y analizará utilizando perfiles transcriptómicos basados en IA para identificar biomarcadores asociados con el cáncer. Procedimientos: Recolección de muestras de sangre: a los participantes se les extraerán muestras de sangre en tres momentos: Valor inicial: antes del inicio de la terapia. 6 semanas después del inicio de la terapia: para monitorear la respuesta temprana al tratamiento. 6 meses después del inicio de la terapia: para evaluar los resultados terapéuticos a más largo plazo. Análisis de muestra: Aislamiento de plaquetas y células inmunitarias: Plaquetas: Extraídas de cada muestra de sangre para seguir monitoreando los perfiles de ARN. Células inmunes: Separadas de las muestras de sangre para analizar la respuesta inmune a la terapia. Análisis de ARN: ARN de plaquetas: analizado para observar cambios en los perfiles transcriptómicos a lo largo del tiempo utilizando herramientas basadas en inteligencia artificial. ARN de células inmunitarias: examinado para evaluar los cambios transcriptómicos asociados con las respuestas terapéuticas. Correlación de datos: Evaluación de la respuesta terapéutica: los perfiles de ARN de plaquetas y células inmunitarias se correlacionarán con los resultados clínicos para identificar biomarcadores que predicen la eficacia del tratamiento, la supervivencia libre de progresión, la recaída y la resistencia a los medicamentos. |
¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Identificación de biomarcadores de ARN plaquetario que distinguen a los pacientes con cáncer de los controles
Periodo de tiempo: Línea de base (punto temporal único)
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Utilice análisis transcriptómico del ARN plaquetario basado en IA para identificar biomarcadores que diferencien entre pacientes con cáncer y controles libres de cáncer.
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Línea de base (punto temporal único)
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Identificación de biomarcadores de ARN que se correlacionan con la respuesta terapéutica (Fase 2)
Periodo de tiempo: Desde el inicio hasta los 6 meses posteriores al inicio de la terapia
|
Identificar biomarcadores de ARN de células inmunes y plaquetas que se correlacionan con la respuesta al tratamiento clínico, según lo medido por criterios estándar (p. ej., RECIST)
|
Desde el inicio hasta los 6 meses posteriores al inicio de la terapia
|
|
Asociación entre transcriptomas de células inmunitarias y señales plaquetarias basadas en IA
Periodo de tiempo: Desde el inicio hasta los 6 meses posteriores al inicio de la terapia
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Evaluar cómo los cambios en los transcriptomas de las células inmunitarias se asocian con las señales detectadas por la herramienta de perfilado de plaquetas basada en IA.
|
Desde el inicio hasta los 6 meses posteriores al inicio de la terapia
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Sensibilidad y especificidad de la herramienta de diagnóstico basada en IA (Fase 1)
Periodo de tiempo: Base
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Calcule la precisión diagnóstica de la herramienta basada en inteligencia artificial para detectar el cáncer entre los participantes.
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Base
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Viabilidad de la implementación del perfil transcriptómico de plaquetas
Periodo de tiempo: Fase 1 - 2 años
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Evaluar la viabilidad de la recolección, el procesamiento y el análisis de muestras en un entorno clínico.
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Fase 1 - 2 años
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Desarrollo de modelos predictivos para los resultados del tratamiento (Fase 2)
Periodo de tiempo: Fase 2 - Dos años
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Cree y valide modelos predictivos que integren perfiles de ARN de plaquetas y células inmunitarias para predecir la respuesta al tratamiento y la supervivencia libre de progresión.
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Fase 2 - Dos años
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Identificación de biomarcadores predictivos de recaída y resistencia a los medicamentos (Fase 2)
Periodo de tiempo: Desde el inicio hasta los 6 meses posteriores al inicio de la terapia
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Identificar biomarcadores de ARN predictivos de recaída y resistencia a los medicamentos en el seguimiento de 6 meses.
|
Desde el inicio hasta los 6 meses posteriores al inicio de la terapia
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Director de estudio: Solomon Rotimi, PhD, Dysplasia Diagnostics Limited
- Investigador principal: Javier Toledo, Medical Degree, Dysplasia Diagnostics Limited
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Smerage JB, Barlow WE, Hortobagyi GN, Winer EP, Leyland-Jones B, Srkalovic G, Tejwani S, Schott AF, O'Rourke MA, Lew DL, Doyle GV, Gralow JR, Livingston RB, Hayes DF. Circulating tumor cells and response to chemotherapy in metastatic breast cancer: SWOG S0500. J Clin Oncol. 2014 Nov 1;32(31):3483-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2561. Epub 2014 Jun 2.
- Bettegowda C, Sausen M, Leary RJ, Kinde I, Wang Y, Agrawal N, Bartlett BR, Wang H, Luber B, Alani RM, Antonarakis ES, Azad NS, Bardelli A, Brem H, Cameron JL, Lee CC, Fecher LA, Gallia GL, Gibbs P, Le D, Giuntoli RL, Goggins M, Hogarty MD, Holdhoff M, Hong SM, Jiao Y, Juhl HH, Kim JJ, Siravegna G, Laheru DA, Lauricella C, Lim M, Lipson EJ, Marie SK, Netto GJ, Oliner KS, Olivi A, Olsson L, Riggins GJ, Sartore-Bianchi A, Schmidt K, Shih lM, Oba-Shinjo SM, Siena S, Theodorescu D, Tie J, Harkins TT, Veronese S, Wang TL, Weingart JD, Wolfgang CL, Wood LD, Xing D, Hruban RH, Wu J, Allen PJ, Schmidt CM, Choti MA, Velculescu VE, Kinzler KW, Vogelstein B, Papadopoulos N, Diaz LA Jr. Detection of circulating tumor DNA in early- and late-stage human malignancies. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra24. doi: 10.1126/scitranslmed.3007094.
- Pantel K, Alix-Panabieres C. Liquid biopsy and minimal residual disease - latest advances and implications for cure. Nat Rev Clin Oncol. 2019 Jul;16(7):409-424. doi: 10.1038/s41571-019-0187-3.
- Mok TS, Wu YL, Thongprasert S, Yang CH, Chu DT, Saijo N, Sunpaweravong P, Han B, Margono B, Ichinose Y, Nishiwaki Y, Ohe Y, Yang JJ, Chewaskulyong B, Jiang H, Duffield EL, Watkins CL, Armour AA, Fukuoka M. Gefitinib or carboplatin-paclitaxel in pulmonary adenocarcinoma. N Engl J Med. 2009 Sep 3;361(10):947-57. doi: 10.1056/NEJMoa0810699. Epub 2009 Aug 19.
- Alix-Panabieres C, Pantel K. Clinical Applications of Circulating Tumor Cells and Circulating Tumor DNA as Liquid Biopsy. Cancer Discov. 2016 May;6(5):479-91. doi: 10.1158/2159-8290.CD-15-1483. Epub 2016 Mar 11.
- Best MG, Sol N, Kooi I, Tannous J, Westerman BA, Rustenburg F, Schellen P, Verschueren H, Post E, Koster J, Ylstra B, Ameziane N, Dorsman J, Smit EF, Verheul HM, Noske DP, Reijneveld JC, Nilsson RJA, Tannous BA, Wesseling P, Wurdinger T. RNA-Seq of Tumor-Educated Platelets Enables Blood-Based Pan-Cancer, Multiclass, and Molecular Pathway Cancer Diagnostics. Cancer Cell. 2015 Nov 9;28(5):666-676. doi: 10.1016/j.ccell.2015.09.018. Epub 2015 Oct 29.
- Cescon DW, Bratman SV, Chan SM, Siu LL. Circulating tumor DNA and liquid biopsy in oncology. Nat Cancer. 2020 Mar;1(3):276-290. doi: 10.1038/s43018-020-0043-5. Epub 2020 Mar 20.
- National Lung Screening Trial Research Team; Aberle DR, Adams AM, Berg CD, Black WC, Clapp JD, Fagerstrom RM, Gareen IF, Gatsonis C, Marcus PM, Sicks JD. Reduced lung-cancer mortality with low-dose computed tomographic screening. N Engl J Med. 2011 Aug 4;365(5):395-409. doi: 10.1056/NEJMoa1102873. Epub 2011 Jun 29.
- Sequist LV, Waltman BA, Dias-Santagata D, Digumarthy S, Turke AB, Fidias P, Bergethon K, Shaw AT, Gettinger S, Cosper AK, Akhavanfard S, Heist RS, Temel J, Christensen JG, Wain JC, Lynch TJ, Vernovsky K, Mark EJ, Lanuti M, Iafrate AJ, Mino-Kenudson M, Engelman JA. Genotypic and histological evolution of lung cancers acquiring resistance to EGFR inhibitors. Sci Transl Med. 2011 Mar 23;3(75):75ra26. doi: 10.1126/scitranslmed.3002003.
- Diehl F, Li M, Dressman D, He Y, Shen D, Szabo S, Diaz LA Jr, Goodman SN, David KA, Juhl H, Kinzler KW, Vogelstein B. Detection and quantification of mutations in the plasma of patients with colorectal tumors. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005 Nov 8;102(45):16368-73. doi: 10.1073/pnas.0507904102. Epub 2005 Oct 28.
- Raposo G, Stoorvogel W. Extracellular vesicles: exosomes, microvesicles, and friends. J Cell Biol. 2013 Feb 18;200(4):373-83. doi: 10.1083/jcb.201211138.
- Arroyo JD, Chevillet JR, Kroh EM, Ruf IK, Pritchard CC, Gibson DF, Mitchell PS, Bennett CF, Pogosova-Agadjanyan EL, Stirewalt DL, Tait JF, Tewari M. Argonaute2 complexes carry a population of circulating microRNAs independent of vesicles in human plasma. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 Mar 22;108(12):5003-8. doi: 10.1073/pnas.1019055108. Epub 2011 Mar 7.
- Oxnard GR, Thress KS, Alden RS, Lawrance R, Paweletz CP, Cantarini M, Yang JC, Barrett JC, Janne PA. Association Between Plasma Genotyping and Outcomes of Treatment With Osimertinib (AZD9291) in Advanced Non-Small-Cell Lung Cancer. J Clin Oncol. 2016 Oct 1;34(28):3375-82. doi: 10.1200/JCO.2016.66.7162. Epub 2016 Jun 27.
- Best MG, Sol N, In 't Veld SGJG, Vancura A, Muller M, Niemeijer AN, Fejes AV, Tjon Kon Fat LA, Huis In 't Veld AE, Leurs C, Le Large TY, Meijer LL, Kooi IE, Rustenburg F, Schellen P, Verschueren H, Post E, Wedekind LE, Bracht J, Esenkbrink M, Wils L, Favaro F, Schoonhoven JD, Tannous J, Meijers-Heijboer H, Kazemier G, Giovannetti E, Reijneveld JC, Idema S, Killestein J, Heger M, de Jager SC, Urbanus RT, Hoefer IE, Pasterkamp G, Mannhalter C, Gomez-Arroyo J, Bogaard HJ, Noske DP, Vandertop WP, van den Broek D, Ylstra B, Nilsson RJA, Wesseling P, Karachaliou N, Rosell R, Lee-Lewandrowski E, Lewandrowski KB, Tannous BA, de Langen AJ, Smit EF, van den Heuvel MM, Wurdinger T. Swarm Intelligence-Enhanced Detection of Non-Small-Cell Lung Cancer Using Tumor-Educated Platelets. Cancer Cell. 2017 Aug 14;32(2):238-252.e9. doi: 10.1016/j.ccell.2017.07.004.
- Tsui NB, Ng EK, Lo YM. Stability of endogenous and added RNA in blood specimens, serum, and plasma. Clin Chem. 2002 Oct;48(10):1647-53.
- Sharma SV, Lee DY, Li B, Quinlan MP, Takahashi F, Maheswaran S, McDermott U, Azizian N, Zou L, Fischbach MA, Wong KK, Brandstetter K, Wittner B, Ramaswamy S, Classon M, Settleman J. A chromatin-mediated reversible drug-tolerant state in cancer cell subpopulations. Cell. 2010 Apr 2;141(1):69-80. doi: 10.1016/j.cell.2010.02.027.
- Redwood N, Beggs D, Morgan WE. Dissemination of tumour cells from fine needle biopsy. Thorax. 1989 Oct;44(10):826-7. doi: 10.1136/thx.44.10.826.
- Mobadersany P, Yousefi S, Amgad M, Gutman DA, Barnholtz-Sloan JS, Velazquez Vega JE, Brat DJ, Cooper LAD. Predicting cancer outcomes from histology and genomics using convolutional networks. Proc Natl Acad Sci U S A. 2018 Mar 27;115(13):E2970-E2979. doi: 10.1073/pnas.1717139115. Epub 2018 Mar 12.
- Lans H, Hoeijmakers JHJ, Vermeulen W, Marteijn JA. The DNA damage response to transcription stress. Nat Rev Mol Cell Biol. 2019 Dec;20(12):766-784. doi: 10.1038/s41580-019-0169-4. Epub 2019 Sep 26.
- Kucab JE, Zou X, Morganella S, Joel M, Nanda AS, Nagy E, Gomez C, Degasperi A, Harris R, Jackson SP, Arlt VM, Phillips DH, Nik-Zainal S. A Compendium of Mutational Signatures of Environmental Agents. Cell. 2019 May 2;177(4):821-836.e16. doi: 10.1016/j.cell.2019.03.001. Epub 2019 Apr 11.
- Joosse SA, Beyer B, Gasch C, Nastaly P, Kuske A, Isbarn H, Horst LJ, Hille C, Gorges TM, Cayrefourcq L, Alix-Panabieres C, Tennstedt P, Riethdorf S, Schlomm T, Pantel K. Tumor-Associated Release of Prostatic Cells into the Blood after Transrectal Ultrasound-Guided Biopsy in Patients with Histologically Confirmed Prostate Cancer. Clin Chem. 2020 Jan 1;66(1):161-168. doi: 10.1373/clinchem.2019.310912.
- Jackson W 3rd, Sosnoski DM, Ohanessian SE, Chandler P, Mobley A, Meisel KD, Mastro AM. Role of Megakaryocytes in Breast Cancer Metastasis to Bone. Cancer Res. 2017 Apr 15;77(8):1942-1954. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-16-1084. Epub 2017 Feb 15.
- Hustedt N, Durocher D. The control of DNA repair by the cell cycle. Nat Cell Biol. 2016 Dec 23;19(1):1-9. doi: 10.1038/ncb3452.
- Hirschhaeuser F, Menne H, Dittfeld C, West J, Mueller-Klieser W, Kunz-Schughart LA. Multicellular tumor spheroids: an underestimated tool is catching up again. J Biotechnol. 2010 Jul 1;148(1):3-15. doi: 10.1016/j.jbiotec.2010.01.012. Epub 2010 Jan 25.
- Gay LJ, Felding-Habermann B. Contribution of platelets to tumour metastasis. Nat Rev Cancer. 2011 Feb;11(2):123-34. doi: 10.1038/nrc3004.
- Chiou YY, Hu J, Sancar A, Selby CP. RNA polymerase II is released from the DNA template during transcription-coupled repair in mammalian cells. J Biol Chem. 2018 Feb 16;293(7):2476-2486. doi: 10.1074/jbc.RA117.000971. Epub 2017 Dec 27.
- Aitken SJ, Anderson CJ, Connor F, Pich O, Sundaram V, Feig C, Rayner TF, Lukk M, Aitken S, Luft J, Kentepozidou E, Arnedo-Pac C, Beentjes SV, Davies SE, Drews RM, Ewing A, Kaiser VB, Khamseh A, Lopez-Arribillaga E, Redmond AM, Santoyo-Lopez J, Sentis I, Talmane L, Yates AD; Liver Cancer Evolution Consortium; Semple CA, Lopez-Bigas N, Flicek P, Odom DT, Taylor MS. Pervasive lesion segregation shapes cancer genome evolution. Nature. 2020 Jul;583(7815):265-270. doi: 10.1038/s41586-020-2435-1. Epub 2020 Jun 24.
- Gerlinger M, Rowan AJ, Horswell S, Math M, Larkin J, Endesfelder D, Gronroos E, Martinez P, Matthews N, Stewart A, Tarpey P, Varela I, Phillimore B, Begum S, McDonald NQ, Butler A, Jones D, Raine K, Latimer C, Santos CR, Nohadani M, Eklund AC, Spencer-Dene B, Clark G, Pickering L, Stamp G, Gore M, Szallasi Z, Downward J, Futreal PA, Swanton C. Intratumor heterogeneity and branched evolution revealed by multiregion sequencing. N Engl J Med. 2012 Mar 8;366(10):883-892. doi: 10.1056/NEJMoa1113205.
- Siravegna G, Mussolin B, Buscarino M, Corti G, Cassingena A, Crisafulli G, Ponzetti A, Cremolini C, Amatu A, Lauricella C, Lamba S, Hobor S, Avallone A, Valtorta E, Rospo G, Medico E, Motta V, Antoniotti C, Tatangelo F, Bellosillo B, Veronese S, Budillon A, Montagut C, Racca P, Marsoni S, Falcone A, Corcoran RB, Di Nicolantonio F, Loupakis F, Siena S, Sartore-Bianchi A, Bardelli A. Clonal evolution and resistance to EGFR blockade in the blood of colorectal cancer patients. Nat Med. 2015 Jul;21(7):795-801. doi: 10.1038/nm.3870. Epub 2015 Jun 1.
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- Cáncer de páncreas, adulto
- Técnicas de investigación
- Técnicas de laboratorio clínico
- Técnicas y procedimientos de diagnóstico
- Diagnóstico
- Pruebas hematológicas
Otros números de identificación del estudio
- CCANED-CIPHER
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
producto fabricado y exportado desde los EE. UU.
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