- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT02657811
Inkubacja poklatkowa dla hodowli zarodków - morfokinetyka i stabilność środowiska
Inkubacja poklatkowa dla hodowli zarodków - wpływ morfokinetyki i stabilności środowiska na wyniki reprodukcyjne
Hodowla i selekcja zarodków była ciągłym wyzwaniem w ewolucji od czasu narodzin zapłodnienia in vitro (IVF). Tradycyjnie jakość zarodka i jego przypuszczalną przydatność do transferu oceniano na podstawie cech morfologicznych. Jednak konsensus co do optymalnych punktów czasowych do oceny zarodka i „preferowanych” cech był trudny. Oprócz tego wyzwaniem było osiągnięcie równowagi między wieloma punktami oceny, a jednocześnie ustabilizowanie środowiska zarodka dla wzrostu. W standardowej inkubacji każda nowa ocena morfologiczna zarodków w hodowli teoretycznie tworzy dodatkowe zakłócenia w hodowli.
Ostatnio wprowadzono inkubatory poklatkowe (TLI) jako nowy system hodowli zarodków, próbujący ograniczyć zakłócenia w hodowli. Inkubatory te zostały zintegrowane z obrazowaniem cyfrowym, co pozwala na znaczne ograniczenie obsługi zarodków i zakłóceń środowiskowych. Wprowadzili także nowe parametry morfokinetyczne do oceny zarodków i optymalizacji selekcji zarodków. Jak dotąd w ograniczonej liczbie badań zbadano wyniki kliniczne i wartość systemów monitorowania poklatkowego w porównaniu z bardziej wszechobecnymi inkubatorami (np. wielokomorowe) dla wyników reprodukcyjnych. W szczególności nadal kwestionowana jest izolowana wartość morfokinetyki w ocenie zarodków i tego nowego stabilnego środowiska hodowli w TLI.
Celem tego badania jest prospektywna ocena i porównanie wyników płodności, gdy zarodki są hodowane w systemie TLI z bardziej tradycyjnymi inkubatorami stołowymi (BI). W szczególności ocenimy wartość dodaną zamkniętego i izolowanego TLI w porównaniu z BI w zakresie wyników reprodukcyjnych, a także wartość oceny morfokinetycznej w IVF.
Przegląd badań
Status
Warunki
Szczegółowy opis
Cele badań:
Obecnie wkraczamy w nową erę z możliwością przejścia do teoretycznie lepszych środowisk hodowlanych i ulepszeń w zakresie środków oceny zarodków.
Celem tego badania będzie ocena i porównanie wyników reprodukcyjnych w izolacji jednej z dwóch nowych interwencji wprowadzonych przez system Time-Lapse Incubator (TLI). Pierwszym będzie ocena środowiska TLI w porównaniu ze standardowym środowiskiem Bench Incubator (BI). Drugim będzie ocena dodanej oceny morfokinetycznej zarodków w porównaniu z samą klasyfikacją morfologiczną.
Chociaż głównym celem tego badania będzie skupienie się na wskaźnikach ciąż klinicznych i transferach świeżych zarodków, dalsze badania z wykorzystaniem zamrożonych zarodków z tego badania zostaną przeprowadzone w celu oceny skumulowanych wskaźników ciąż na cykl pobierania oocytów (OPU) w przyszłości.
Metody Obecne badanie będzie prospektywnym, randomizowanym i podwójnie zaślepionym badaniem z udziałem trzech grup pacjentów. Pierwsza grupa obejmie pacjentów przydzielonych losowo do hodowli zarodków w inkubatorze trójgazowym (Miri, inkubator Benchtop Multi-room). Zarodki te zostaną poddane wielokrotnej ocenie przy użyciu mikroskopii świetlnej i tradycyjnej oceny morfologicznej zgodnie z przyjętymi kryteriami. Drugie ramię obejmie pacjentów przydzielonych losowo do hodowli zarodków w inkubatorze poklatkowym (Miri TL, Time-Lapse Incubator). Te zarodki pozostaną w TLI i przejdą zarówno ocenę morfologiczną, jak i morfokinetyczną oraz klasyfikację zgodnie z wielowymiarowym modelem punktacji. Nie zostaną usunięte z inkubacji na czas trwania hodowli. Trzecie ramię obejmie również pacjentów przydzielonych losowo do hodowli zarodków w inkubatorze poklatkowym (Miri TL, Time-Lapse Incubator). Zarodki te pozostaną w TLI i zostaną poddane jedynie tradycyjnej ocenie morfologicznej zgodnie z przyjętymi kryteriami, bez dodatkowego obrazowania. Nie zostaną również usunięte z inkubacji na czas trwania hodowli. Punkty czasowe i oceniane parametry będą identyczne jak w ramieniu 1 badania.
Pacjenci będą oceniani pod kątem przydatności, kryteriów włączenia i wyłączenia przez lekarza i zespół pielęgniarski przed rozpoczęciem cyklu IVF/ICSI w naszym ośrodku. Gdy pacjent zostanie uznany za kwalifikującego się, członek zespołu opieki omówi z pacjentem szczegóły badania.
Zatwierdzone osoby do badania zostaną poddane standardowej kontrolowanej hiperstymulacji jajników (COH). Protokoły i odpowiadające im leki zostaną ustalone według uznania lekarza prowadzącego. Mogą one obejmować protokół długiego agonisty hormonu uwalniającego gonadotropinę (GnRH) i protokół antagonisty GnRH. Aspiracja pęcherzyków zostanie przeprowadzona na oddziale IVF przezpochwową aspirację igłą. Przygotowanie endometrium i wspomaganie fazy lutealnej będą zalecane zgodnie z naszym protokołem oddziałowym. Liczba zarodków do przeniesienia zostanie określona przed rozpoczęciem cyklu, zgodnie z Izraelskim Towarzystwem Położnictwa i Ginekologii.
Randomizacja pacjentów nastąpi po zapewnieniu podania ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej (hCG) przed wykonaniem docytoplazmatycznej iniekcji plemnika (ICSI). Procedura randomizacji zostanie przeprowadzona przy użyciu randomizacji generowanej komputerowo.
Po aspiracji pęcherzyków i przekazaniu do laboratorium płyn pęcherzykowy zostanie zbadany na obecność oocytów. Oocyty zostaną następnie ocenione pod kątem dojrzałości i wszelkich nieprawidłowych cech morfologicznych. ICSI zostanie następnie przeprowadzone przy użyciu świeżego nasienia od odpowiedniego partnera.
Embriony zostaną następnie umieszczone w pożywkach hodowlanych. Zarodki w pożywce hodowlanej zostaną następnie umieszczone w inkubatorze Miri Benchtop lub Miri Timelapse zgodnie z odpowiednią grupą randomizacji. Należy pamiętać, że środowisko inkubatorów stołowych Miri i Miri TL będzie uważane za identyczne. stężenia tlenu i stężenia dwutlenku węgla ustawione odpowiednio na 5% i 5,5%.
Zarodki w ramieniu 1 badania (inkubator Miri Benchtop) zostaną ocenione morfologicznie za pomocą mikroskopii świetlnej we wcześniej określonych punktach czasowych i zgodnie z przyjętymi kryteriami przez jednego z przeszkolonych embriologów laboratoryjnych. Punktami czasowymi oceny będą 16 - 20 godzin po ICSI (w przypadku normalnego zapłodnienia), 44 - 48 godzin (dzień 2) po ICSI, a następnie 64 - 72 godziny (dzień 3) po ICSI. Oceniane parametry będą obejmować liczbę komórek, rozmiar komórek, symetrię komórek i procent fragmentacji. Wszelkie poważne nieprawidłowości zostaną odnotowane. Zarodki będą następnie oceniane w dniu 3 zgodnie z tymi ocenionymi parametrami i przenoszone zgodnie z preferencyjną oceną. Jeśli transfer zarodków został ustalony na dzień 5, dodatkowa ocena odbędzie się około 116 godzin.
Zarodki w ramieniu 2 badania (inkubator Miri TL) zostaną ocenione morfologicznie i morfokinetycznie przez tych samych embriologów laboratoryjnych z wykorzystaniem obrazów cyfrowych generowanych przez zintegrowany system obrazowania poklatkowego inkubatora. Ocena i punktacja zostaną przeprowadzone zgodnie z naszym systemem klasyfikacji punktowej. Morfologiczne badania przesiewowe zarodków będą początkowo przeprowadzane w celu odrzucenia lub wykluczenia tych, które wyraźnie nie nadają się do transferu. Parametry morfokinetyczne zostaną następnie wykorzystane do uszeregowania pozostałych kategorii punktacji zarodków od maksimum 4,0 do minimum -2,0, w kolejności hipotetycznego malejącego potencjału implantacji.
Zarodki w ramieniu 3 badania (inkubator Miri TL) zostaną ocenione morfologicznie przez embriologów przy użyciu obrazów cyfrowych generowanych przez zintegrowany system obrazowania poklatkowego inkubatora. Jak wspomniano powyżej, punkty czasowe i oceniane parametry będą identyczne jak w ramieniu 1 badania. Identyczne będą również decyzje dotyczące zarodków do transferu.
W przypadku każdego pacjenta zarodki zostaną wybrane do transferu na podstawie samej oceny morfologicznej (Ramię 1 i 3) lub na podstawie oceny drzewa decyzyjnego morfokinetyki (Ramię 2). Liczba zarodków do przeniesienia zostanie wcześniej ustalona (jak wspomniano powyżej).
Te zarodki, które nie zostaną wybrane i uznane za odpowiednie do przyszłego transferu, zostaną poddane kriokonserwacji przez witryfikację.
Zaślepienie bieżącego badania zostanie zapewnione w wielu punktach. Ginekolodzy wykonujący pobieranie oocytów i transfer zarodków będą zaślepieni na wcześniej zdefiniowaną i randomizowaną grupę pacjentów. Pacjenci nie będą świadomi swojej grupy randomizacji. Statystycy będą również ślepi na grupę randomizacji w obliczaniu wyników ciąży. Niestety nie będzie możliwe zapewnienie zaślepienia embriologów wykonujących oceny morfologiczne i morfokinetyczne.
Obliczenie wielkości próbki:
Wskaźnik ciąż w naszym Oddziale IVF w podgrupie pacjentek o charakterystyce demograficznej i klinicznej zbliżonej do objętej badaniem wynosi około 40%. Zakładając, że w grupie TLI wskaźnik ciąż wzrośnie o 10%, wymagana wielkość próby na grupę wynosi 124 pacjentek na ramię, z ryzykiem alfa 5% i mocą 80%.
Statystyka:
Analiza statystyczna zostanie przeprowadzona z zamiarem leczenia.
Typ studiów
Zapisy (Oczekiwany)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
-
Jerusalem, Izrael, 9103102
- Rekrutacyjny
- Shaare Zedek Medical Center
-
Kontakt:
- Ruth Ronn, M.D. C.M.
- Numer telefonu: 972-2-655-5111
- E-mail: RuthRonn@szmc.org.il
-
Kontakt:
- Talia Eldar-Geva, M.D. PhD.
- Numer telefonu: 972-2-655-5111
- E-mail: gevat@szmc.org.il
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
Pacjenci wymagający technologii wspomaganego rozrodu z jednego lub więcej z następujących powodów:
- Niepłodność czynnika męskiego
- Niewyjaśniona niepłodność
- Czynnik mechaniczny niepłodności
- Niepłodność owulacyjna
- Pacjenci poddawani leczeniu bezpłodności wyłącznie w Centrum Medycznym Shaare Zedek.
- Pacjenci próbujący zajść w ciążę z autologicznymi gametami.
- Pacjenci otrzymujący transfery zarodków zgodnie z wytycznymi Izraelskiego Towarzystwa Położnictwa i Ginekologii dotyczącymi liczby zarodków do przeniesienia podczas zapłodnienia in vitro.
- Pacjentki przechodzące pierwszy lub drugi cykl ICSI (łącznie ze wszystkimi innymi instytucjami zaangażowanymi w wcześniejsze leczenie) od poprzedniej ciąży.
- Kryteria BMI: >18 i
Kryteria wyłączenia:
Diagnoza niepłodności, która obejmuje:
- Ciężka niepłodność męska wymagająca aspiracji jąder, biopsji jąder w celu pobrania plemników lub mniej niż 1000 plemników w ejakulacie.
- Nieleczony hydrosalpinx
- Trwale cienka wyściółka endometrium lub czynnik endometrium
- Ciężka endometrioza
- Niska rezerwa jajnikowa (≤8 liczba pęcherzyków antralnych (AFC) o średnicy od 2 do 10 mm w 2-4 dniu cyklu miesiączkowego lub w 3 dniu hormon folikulotropowy (FSH) ≥10 mili-jednostek międzynarodowych (mIU) /ml)
- Wysokie ryzyko wystąpienia zespołu hiperstymulacji jajników (stężenie estradiolu >13 000 pmol/l lub >20 pęcherzyków o średnicy ≥16 mm podczas kontrolowanej hiperstymulacji jajników, pobrano ≥20 oocytów).
- Pacjenci otrzymujący agonistę GnRH w celu osiągnięcia ostatecznego dojrzewania pęcherzyka
- Pacjenci wymagający preimplantacyjnej diagnostyki genetycznej (PGD)
- Pacjenci, którzy wymagają zamrożenia wszystkich komórek jajowych lub zarodków
- Więcej niż 2 poprzednie cykle IVF od poprzedniej ciąży
- Obecni palacze
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Potroić
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Aktywny komparator: Inkubacja ławkowa
Te zarodki zostaną losowo umieszczone w inkubatorze stołowym.
|
Inkubacja na ławce — ocena morfologiczna Te zarodki zostaną poddane wielokrotnej ocenie przy użyciu mikroskopii świetlnej i tradycyjnej oceny morfologicznej.
|
|
Aktywny komparator: Inkubacja upływu czasu
Te zarodki zostaną losowo przydzielone do inkubatora poklatkowego.
|
Inkubacja poklatkowa — ocena morfologiczna/morfokinetyczna Zarodki te pozostaną w TLI i zostaną poddane zarówno ocenie morfologicznej, jak i morfokinetycznej oraz klasyfikacji zgodnie z hierarchicznym modelem wielu zmiennych.
Nie zostaną usunięte z inkubacji na czas trwania hodowli.
Inkubacja poklatkowa — ocena morfologiczna Te zarodki pozostaną w TLI i zostaną poddane jedynie tradycyjnej ocenie morfologicznej zgodnie z przyjętymi kryteriami, bez dodatkowego obrazowania.
Nie zostaną również usunięte z inkubacji na czas trwania hodowli.
Punkty czasowe i oceniane parametry będą identyczne jak w ramieniu 1 badania.
|
|
Aktywny komparator: Inkubacja poklatkowa — zmodyfikowana
Te zarodki zostaną losowo umieszczone w inkubatorze stołowym.
|
Inkubacja poklatkowa — ocena morfologiczna/morfokinetyczna Zarodki te pozostaną w TLI i zostaną poddane zarówno ocenie morfologicznej, jak i morfokinetycznej oraz klasyfikacji zgodnie z hierarchicznym modelem wielu zmiennych.
Nie zostaną usunięte z inkubacji na czas trwania hodowli.
Inkubacja poklatkowa — ocena morfologiczna Te zarodki pozostaną w TLI i zostaną poddane jedynie tradycyjnej ocenie morfologicznej zgodnie z przyjętymi kryteriami, bez dodatkowego obrazowania.
Nie zostaną również usunięte z inkubacji na czas trwania hodowli.
Punkty czasowe i oceniane parametry będą identyczne jak w ramieniu 1 badania.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Bieżący wskaźnik ciąż
Ramy czasowe: 12 tydzień ciąży
|
Liczba kobiet z ciążą żywą (w tym pęcherzyk ciążowy i bicie serca płodu) w 12 tygodniu ciąży podzielona przez liczbę kobiet, u których wykonano transfer zarodka.
|
12 tydzień ciąży
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Morfologia zarodka - liczba przedjądrzy obecnych po zapłodnieniu
Ramy czasowe: Dzień 1 po zapłodnieniu
|
Liczba przedjądrzy obecnych w zarodku 1 dzień po zapłodnieniu.
Parametr oceny morfologicznej używany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 1 po zapłodnieniu
|
|
Morfologia zarodka - Liczba obecnych komórek
Ramy czasowe: Dzień 2 i dzień 3 po zapłodnieniu
|
Liczba komórek obecnych w zarodku 2 i 3 dni po zapłodnieniu.
Parametr oceny morfologicznej używany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 2 i dzień 3 po zapłodnieniu
|
|
Morfologia zarodka - % fragmentacji
Ramy czasowe: Dzień 2 i dzień 3 po zapłodnieniu
|
Procent fragmentacji zarodka 2 i 3 dnia po zapłodnieniu.
Parametr oceny morfologicznej używany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 2 i dzień 3 po zapłodnieniu
|
|
Morfologia zarodka - Obecność wielu zarodków
Ramy czasowe: Dzień 2 po zapłodnieniu
|
Obecność wielojądrowego zarodka w 2. dobie po zapłodnieniu.
Parametr oceny morfologicznej używany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 2 po zapłodnieniu
|
|
Morfologia zarodka - Symetria
Ramy czasowe: Dzień 2 i dzień 3 po zapłodnieniu
|
Symetria w zarodku 2 i 3 dni po zapłodnieniu.
Parametr oceny morfologicznej używany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 2 i dzień 3 po zapłodnieniu
|
|
Morfologia zarodka - Etap rozwoju w dniu 5
Ramy czasowe: 5 dzień po zapłodnieniu
|
Etap rozwoju zarodka 5 dni po zapłodnieniu.
Charakteryzuje się jako: wczesna blastocysta, blastocysta, ekspandowana, wykluta/wylęgająca się lub inna.
Parametr oceny morfologicznej używany do oceny jakości zarodka.
|
5 dzień po zapłodnieniu
|
|
Morfologia zarodka - ocena masy komórek wewnętrznych (ICM).
Ramy czasowe: 5 dzień po zapłodnieniu
|
Stopień ICM w zarodku 5 dni po zapłodnieniu.
Parametr oceny morfologicznej używany do oceny jakości zarodka.
|
5 dzień po zapłodnieniu
|
|
Morfologia zarodka - stopień Trophektodermy
Ramy czasowe: 5 dzień po zapłodnieniu
|
Stopień trofektodermy w zarodku 5 dni po zapłodnieniu.
Parametr oceny morfologicznej używany do oceny jakości zarodka.
|
5 dzień po zapłodnieniu
|
|
Morfokinetyka zarodka - Nagły podział
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 3 po zapłodnieniu
|
Obecność lub brak nagłego podziału zarodka z jednej do trzech lub więcej komórek: parametr oceny morfokinetycznej stosowany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 0 do dnia 3 po zapłodnieniu
|
|
Morfokinetyka zarodka - Czas rozszczepienia do zarodka pięcioblastomerowego
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 3 po zapłodnieniu
|
Obecność lub brak optymalnego przedziału czasu dla rozszczepienia zarodka pięcioblastomerowego (48,8-56,6 godzin): parametr oceny morfokinetycznej stosowany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 0 do dnia 3 po zapłodnieniu
|
|
Morfokinetyka zarodka - Czas od zarodka dwu- do czteroblastomerowego
Ramy czasowe: Dzień 1 do dnia 3 po zapłodnieniu
|
Obecność lub brak optymalnego czasu trwania podziału z 2 do 3 komórek, a następnie podziału do 4 komórek (0-0,76 godziny): parametr oceny morfokinetycznej stosowany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 1 do dnia 3 po zapłodnieniu
|
|
Morfokinetyka zarodka - Czas od zarodka z dwoma do trzech blastomerów
Ramy czasowe: Dzień 1 do dnia 3 po zapłodnieniu
|
Obecność lub brak optymalnego czasu trwania podziału z zarodka dwukomórkowego do trójkomórkowego (0-11,9
godzin): parametr oceny morfokinetycznej stosowany do oceny jakości zarodka.
|
Dzień 1 do dnia 3 po zapłodnieniu
|
|
Charakterystyka oocytów - Obecność ciała polarnego
Ramy czasowe: Pobranie komórki jajowej do zapłodnienia - mniej niż 1 dzień
|
Obecność oocytu w ciele polarnym w dniu pobrania oocytu
|
Pobranie komórki jajowej do zapłodnienia - mniej niż 1 dzień
|
|
Biochemiczny wskaźnik ciąż
Ramy czasowe: 14 dni po transferze zarodków
|
Liczba kobiet z dodatnim wynikiem β-hCG około 14 dni po transferze zarodka podzielona przez liczbę kobiet, u których wykonano transfer zarodków.
|
14 dni po transferze zarodków
|
|
Skumulowany wskaźnik trwających ciąż
Ramy czasowe: Rok od pobrania komórki jajowej
|
Skumulowana liczba kobiet z żywotną ciążą w 12. tygodniu ciąży (gdzie ciąża została uzyskana ze świeżych i zeszklonych zarodków z tego samego cyklu stymulacji jajników) podzielona przez liczbę kobiet, które przeszły cykl pobierania oocytów.
|
Rok od pobrania komórki jajowej
|
|
Żywy wskaźnik urodzeń
Ramy czasowe: Rok i czterdzieści tygodni
|
Odsetek wszystkich cykli pobierania oocytów (OPU), które prowadzą do żywych narodzin Przybliżony przedział czasowy to czas jednego cyklu stymulacji jajników plus ciąża donoszona
|
Rok i czterdzieści tygodni
|
|
Wskaźnik spontanicznych aborcji
Ramy czasowe: Pierwsze 20 tygodni ciąży
|
Utrata zarodka lub płodu przed 20 tygodniem ciąży lub ważącego mniej niż 500 gramów.
|
Pierwsze 20 tygodni ciąży
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Główny śledczy: Ruth Ronn, M.D. C.M., Shaare Zedek Medical Center
- Główny śledczy: Talia Eldar-Geva, M.D. Ph.D., Shaare Zedek Medical Center
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Hum Reprod. 2011 Jun;26(6):1270-83. doi: 10.1093/humrep/der037. Epub 2011 Apr 18.
- Fujiwara M, Takahashi K, Izuno M, Duan YR, Kazono M, Kimura F, Noda Y. Effect of micro-environment maintenance on embryo culture after in-vitro fertilization: comparison of top-load mini incubator and conventional front-load incubator. J Assist Reprod Genet. 2007 Jan;24(1):5-9. doi: 10.1007/s10815-006-9088-3. Epub 2006 Dec 13.
- Zhang JQ, Li XL, Peng Y, Guo X, Heng BC, Tong GQ. Reduction in exposure of human embryos outside the incubator enhances embryo quality and blastulation rate. Reprod Biomed Online. 2010 Apr;20(4):510-5. doi: 10.1016/j.rbmo.2009.12.027. Epub 2009 Dec 28.
- Basile N, Morbeck D, Garcia-Velasco J, Bronet F, Meseguer M. Type of culture media does not affect embryo kinetics: a time-lapse analysis of sibling oocytes. Hum Reprod. 2013 Mar;28(3):634-41. doi: 10.1093/humrep/des462. Epub 2013 Jan 12.
- Meseguer M, Herrero J, Tejera A, Hilligsoe KM, Ramsing NB, Remohi J. The use of morphokinetics as a predictor of embryo implantation. Hum Reprod. 2011 Oct;26(10):2658-71. doi: 10.1093/humrep/der256. Epub 2011 Aug 9.
- Meseguer M, Rubio I, Cruz M, Basile N, Marcos J, Requena A. Embryo incubation and selection in a time-lapse monitoring system improves pregnancy outcome compared with a standard incubator: a retrospective cohort study. Fertil Steril. 2012 Dec;98(6):1481-9.e10. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.08.016. Epub 2012 Sep 10.
- Kirkegaard K, Ahlstrom A, Ingerslev HJ, Hardarson T. Choosing the best embryo by time lapse versus standard morphology. Fertil Steril. 2015 Feb;103(2):323-32. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.11.003. Epub 2014 Dec 17.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine and the Practice Committee of the Society for Assisted Reproductive Technology. Criteria for number of embryos to transfer: a committee opinion. Fertil Steril. 2013 Jan;99(1):44-46. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.09.038. Epub 2012 Oct 22.
- Swain JE. Decisions for the IVF laboratory: comparative analysis of embryo culture incubators. Reprod Biomed Online. 2014 May;28(5):535-47. doi: 10.1016/j.rbmo.2014.01.004. Epub 2014 Jan 27.
- Armstrong S, Arroll N, Cree LM, Jordan V, Farquhar C. Time-lapse systems for embryo incubation and assessment in assisted reproduction. Cochrane Database Syst Rev. 2015 Feb 27;(2):CD011320. doi: 10.1002/14651858.CD011320.pub2.
- Lemmen JG, Agerholm I, Ziebe S. Kinetic markers of human embryo quality using time-lapse recordings of IVF/ICSI-fertilized oocytes. Reprod Biomed Online. 2008 Sep;17(3):385-91. doi: 10.1016/s1472-6483(10)60222-2.
- Wong CC, Loewke KE, Bossert NL, Behr B, De Jonge CJ, Baer TM, Reijo Pera RA. Non-invasive imaging of human embryos before embryonic genome activation predicts development to the blastocyst stage. Nat Biotechnol. 2010 Oct;28(10):1115-21. doi: 10.1038/nbt.1686. Epub 2010 Oct 3.
- Dal Canto M, Coticchio G, Mignini Renzini M, De Ponti E, Novara PV, Brambillasca F, Comi R, Fadini R. Cleavage kinetics analysis of human embryos predicts development to blastocyst and implantation. Reprod Biomed Online. 2012 Nov;25(5):474-80. doi: 10.1016/j.rbmo.2012.07.016. Epub 2012 Aug 2.
- Cruz M, Garrido N, Herrero J, Perez-Cano I, Munoz M, Meseguer M. Timing of cell division in human cleavage-stage embryos is linked with blastocyst formation and quality. Reprod Biomed Online. 2012 Oct;25(4):371-81. doi: 10.1016/j.rbmo.2012.06.017. Epub 2012 Jul 7.
- Hlinka D, Kalatova B, Uhrinova I, Dolinska S, Rutarova J, Rezacova J, Lazarovska S, Dudas M. Time-lapse cleavage rating predicts human embryo viability. Physiol Res. 2012;61(5):513-25. doi: 10.33549/physiolres.932287. Epub 2012 Aug 8.
- Rubio I, Kuhlmann R, Agerholm I, Kirk J, Herrero J, Escriba MJ, Bellver J, Meseguer M. Limited implantation success of direct-cleaved human zygotes: a time-lapse study. Fertil Steril. 2012 Dec;98(6):1458-63. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.07.1135. Epub 2012 Aug 25.
- Azzarello A, Hoest T, Mikkelsen AL. The impact of pronuclei morphology and dynamicity on live birth outcome after time-lapse culture. Hum Reprod. 2012 Sep;27(9):2649-57. doi: 10.1093/humrep/des210. Epub 2012 Jun 26.
- Aguilar J, Motato Y, Escriba MJ, Ojeda M, Munoz E, Meseguer M. The human first cell cycle: impact on implantation. Reprod Biomed Online. 2014 Apr;28(4):475-84. doi: 10.1016/j.rbmo.2013.11.014. Epub 2013 Dec 11.
- Hashimoto S, Kato N, Saeki K, Morimoto Y. Selection of high-potential embryos by culture in poly(dimethylsiloxane) microwells and time-lapse imaging. Fertil Steril. 2012 Feb;97(2):332-7. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.11.042. Epub 2012 Jan 2.
- Conaghan J, Chen AA, Willman SP, Ivani K, Chenette PE, Boostanfar R, Baker VL, Adamson GD, Abusief ME, Gvakharia M, Loewke KE, Shen S. Improving embryo selection using a computer-automated time-lapse image analysis test plus day 3 morphology: results from a prospective multicenter trial. Fertil Steril. 2013 Aug;100(2):412-9.e5. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.04.021. Epub 2013 May 28.
- VerMilyea MD, Tan L, Anthony JT, Conaghan J, Ivani K, Gvakharia M, Boostanfar R, Baker VL, Suraj V, Chen AA, Mainigi M, Coutifaris C, Shen S. Computer-automated time-lapse analysis results correlate with embryo implantation and clinical pregnancy: a blinded, multi-centre study. Reprod Biomed Online. 2014 Dec;29(6):729-36. doi: 10.1016/j.rbmo.2014.09.005. Epub 2014 Sep 21.
- Rubio I, Galan A, Larreategui Z, Ayerdi F, Bellver J, Herrero J, Meseguer M. Clinical validation of embryo culture and selection by morphokinetic analysis: a randomized, controlled trial of the EmbryoScope. Fertil Steril. 2014 Nov;102(5):1287-1294.e5. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.07.738. Epub 2014 Sep 11.
- Yang Z, Zhang J, Salem SA, Liu X, Kuang Y, Salem RD, Liu J. Selection of competent blastocysts for transfer by combining time-lapse monitoring and array CGH testing for patients undergoing preimplantation genetic screening: a prospective study with sibling oocytes. BMC Med Genomics. 2014 Jun 22;7:38. doi: 10.1186/1755-8794-7-38.
- Morbeck DE, Krisher RL, Herrick JR, Baumann NA, Matern D, Moyer T. Composition of commercial media used for human embryo culture. Fertil Steril. 2014 Sep;102(3):759-766.e9. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.05.043. Epub 2014 Jul 4.
- Ciray HN, Aksoy T, Goktas C, Ozturk B, Bahceci M. Time-lapse evaluation of human embryo development in single versus sequential culture media--a sibling oocyte study. J Assist Reprod Genet. 2012 Sep;29(9):891-900. doi: 10.1007/s10815-012-9818-7. Epub 2012 Jun 20.
- Goodman LR, Goldberg J, Falcone T, Austin C, Desai N. Does the addition of time-lapse morphokinetics in the selection of embryos for transfer improve pregnancy rates? A randomized controlled trial. Fertil Steril. 2016 Feb;105(2):275-85.e10. doi: 10.1016/j.fertnstert.2015.10.013. Epub 2015 Oct 29.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Oczekiwany)
Ukończenie studiów (Oczekiwany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Oszacować)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 0169-15-SZMC
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .