- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT02657811
Incubação Time-Lapse para Cultura de Embriões - Morfocinética e Estabilidade Ambiental
Incubação de lapso de tempo para cultura de embriões - o impacto da morfocinética e estabilidade ambiental nos resultados reprodutivos
A cultura e seleção de embriões tem sido um desafio contínuo na evolução desde o nascimento da Fertilização In Vitro (FIV). Tradicionalmente, a qualidade do embrião e sua suposta adequação para transferência eram avaliadas com base em características morfológicas. No entanto, o consenso quanto aos pontos de tempo ideais para a avaliação do embrião e quanto às características 'preferíveis' tem sido um desafio. Paralelamente, existe o desafio de alcançar o equilíbrio entre vários pontos de avaliação, mas estabilizar o ambiente do embrião para o crescimento. Na incubação padrão, cada nova avaliação morfológica de embriões em cultura teoricamente cria uma interrupção adicional na cultura.
Mais recentemente, as incubadoras de lapso de tempo (TLI) foram introduzidas como um novo sistema de cultura de embriões na tentativa de limitar os distúrbios da cultura. Essas incubadoras foram integradas com imagens digitais, permitindo uma limitação substancial no manuseio de embriões e distúrbios ambientais. Eles também introduziram novos parâmetros morfocinéticos para avaliação de embriões e para otimizar a seleção de embriões. Até agora, um número limitado de estudos examinou os resultados clínicos e o valor dos sistemas de monitoramento de lapso de tempo versus as incubadoras mais onipresentes (por exemplo, multicâmara) para resultados reprodutivos. Em particular, o valor isolado da morfocinética na avaliação do embrião e deste novo ambiente de cultura estável em TLI ainda está em questão.
Os objetivos deste estudo são avaliar prospectivamente e comparar os resultados de fertilidade quando os embriões são cultivados no sistema TLI versus incubadoras de bancada (BI) mais tradicionais. Avaliaremos especificamente o valor agregado do TLI fechado e isolado em comparação com o BI nos resultados reprodutivos, bem como o valor da classificação morfocinética na fertilização in vitro.
Visão geral do estudo
Status
Condições
Descrição detalhada
Objetivos de pesquisa:
Agora estamos alcançando uma nova era com a oportunidade de avançar para ambientes de cultura teoricamente melhores e melhorias nas medidas de avaliação de embriões.
Os objetivos deste estudo de pesquisa serão avaliar e comparar os resultados reprodutivos no isolamento de uma das duas novas intervenções introduzidas pelo sistema Time-Lapse Incubator (TLI). A primeira será uma avaliação do ambiente TLI em comparação com o ambiente padrão da Bench Incubator (BI). A segunda será uma avaliação da classificação morfocinética adicionada de embriões em comparação com a classificação morfológica tradicional sozinha.
Embora o objetivo principal deste estudo se concentre nas taxas de gravidez clínica e transferências de embriões frescos, pesquisas adicionais usando embriões congelados deste estudo serão realizadas para também avaliar as taxas de gravidez cumulativas por ciclo de captação de oócitos (OPU) no futuro.
Métodos O estudo atual será um estudo prospectivo randomizado e duplo-cego usando três braços de pacientes. O primeiro braço incluirá pacientes randomizados para cultura de embriões em uma incubadora de bancada trigás (Miri, Benchtop Multi-room incubator). Esses embriões serão submetidos a múltiplas avaliações usando microscopia de luz e avaliação morfológica tradicional de acordo com critérios aceitos. O segundo braço incluirá pacientes randomizados para cultura de embriões em uma incubadora de lapso de tempo (Miri TL, incubadora de lapso de tempo). Esses embriões permanecerão no TLI e passarão por avaliação morfológica e morfocinética e classificação de acordo com um modelo de pontuação multivariável. Eles não serão removidos da incubação durante a cultura. O terceiro braço incluirá pacientes também randomizados para cultura de embriões em uma incubadora de lapso de tempo (Miri TL, Time-Lapse Incubator). Esses embriões permanecerão no TLI e serão submetidos apenas à avaliação morfológica tradicional de acordo com os critérios aceitos, sem imagens adicionais. Eles também não serão removidos da incubação durante a cultura. Os pontos de tempo e os parâmetros avaliados serão idênticos aos do braço 1 do estudo.
Os pacientes serão avaliados quanto à adequação, critérios de inclusão e exclusão pelo médico e pela equipe de enfermagem antes do início de um ciclo de fertilização in vitro/ICSI em nosso centro. Assim que o paciente for considerado elegível, um membro da equipe de atendimento discutirá os detalhes do estudo com o paciente.
As participantes do estudo aprovadas serão submetidas a hiperestimulação ovariana controlada padrão (COH). Os protocolos e suas respectivas medicações serão decididos a critério do médico assistente. Estes podem incluir protocolo longo de agonista do hormônio liberador de gonadotropina (GnRH) e protocolo de antagonista de GnRH. A aspiração folicular será realizada na unidade de fertilização in vitro por meio de aspiração transvaginal com agulha. A preparação endometrial e o suporte da fase lútea serão recomendados de acordo com nosso protocolo departamental. O número de embriões para transferência será definido antes do início do ciclo, de acordo com a Sociedade Israelita de Obstetrícia e Ginecologia.
A randomização dos pacientes ocorrerá após a administração de Gonadotrofina Coriônica Humana (hCG) já ter sido assegurada, antes da Injeção Intracitoplasmática de Espermatozoides (ICSI). O procedimento de randomização será realizado usando randomização gerada por computador.
Após aspiração folicular e transferência para o laboratório, o líquido folicular será examinado quanto à presença de ovócitos. Os oócitos serão então avaliados quanto à maturidade e quaisquer características morfologicamente anormais. A ICSI será então realizada com esperma fresco do parceiro correspondente.
Os embriões serão então colocados em meios de cultura. Os embriões dentro do meio de cultura serão então colocados na incubadora Miri Benchtop ou Miri Timelapse de acordo com seu grupo correspondente de randomização. Observe que o ambiente das incubadoras de bancada Miri e Miri TL serão considerados idênticos. concentração de oxigênio e concentrações de dióxido de carbono fixadas em 5% e 5,5%, respectivamente.
Os embriões no braço 1 do estudo (incubadora de bancada Miri) serão avaliados morfologicamente por microscopia de luz em pontos de tempo pré-definidos e de acordo com critérios aceitos por um dos embriologistas de laboratório treinados. Os pontos de tempo para avaliação serão 16 - 20 horas pós-ICSI (para fertilização normal), 44 - 48 horas (dia 2) pós-ICSI e, em seguida, 64 - 72 horas (dia 3) pós-ICSI. Os parâmetros avaliados incluirão número de células, tamanho da célula, simetria da célula e fragmentação percentual. Qualquer anormalidade grosseira será anotada. Os embriões serão classificados no dia 3 de acordo com esses parâmetros avaliados e transferidos de acordo com a classificação preferencial. Se a transferência do embrião tiver sido predeterminada para o dia 5, uma avaliação adicional ocorrerá aproximadamente às 116 horas.
Os embriões no braço 2 do estudo (incubadora Miri TL) serão avaliados morfologicamente e morfocineticamente pelos mesmos embriologistas de laboratório, usando imagens digitais geradas pelo sistema de imagem de lapso de tempo integrado da incubadora. A avaliação e pontuação serão realizadas de acordo com nosso sistema de classificação de pontuação. A triagem morfológica dos embriões será inicialmente realizada a fim de descartar ou excluir aqueles claramente inviáveis para transferência. Os parâmetros morfocinéticos serão então usados para classificar as categorias de pontuação dos embriões remanescentes de um máximo de 4,0 a um mínimo de -2,0, em ordem hipotética de diminuição do potencial de implantação.
Os embriões no braço 3 do estudo (incubadora Miri TL) serão avaliados morfologicamente pelos embriologistas usando imagens digitais geradas pelo sistema de imagem de lapso de tempo integrado da incubadora. Conforme observado acima, os pontos de tempo e os parâmetros avaliados serão idênticos aos do braço 1 do estudo. As decisões sobre embriões para transferência também serão idênticas.
Para cada paciente, os embriões serão selecionados para transferência com base apenas em sua pontuação morfológica (Arm 1 e 3) ou pela pontuação da árvore de decisão morfocinética (Arm 2). O número de embriões para transferência terá sido pré-determinado (conforme observado acima).
Os embriões não selecionados e considerados adequados para futura transferência serão submetidos à criopreservação por vitrificação.
O cegamento do estudo atual será assegurado em vários pontos. Os ginecologistas que realizam a coleta de oócitos e a transferência de embriões serão cegos para o grupo de pacientes predefinido e randomizado. Os pacientes não terão conhecimento de seu grupo de randomização. Os estatísticos também serão cegos para o grupo de randomização no cálculo dos resultados da gravidez. Infelizmente, não será possível garantir o cegamento dos embriologistas que realizam as avaliações morfológicas e morfocinéticas.
Cálculo do tamanho da amostra:
A taxa de gravidez na nossa Unidade de FIV, no subgrupo de doentes com características demográficas e clínicas semelhantes às incluídas no estudo, é de cerca de 40%. Assumindo que no grupo TLI a taxa de gravidez aumentará em 10%, o tamanho da amostra necessário por grupo é de 124 pacientes por braço, com um risco alfa de 5% e um poder de 80%.
Estatisticas:
A análise estatística será feita por intenção de tratar.
Tipo de estudo
Inscrição (Antecipado)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Ruth Ronn, M.D. C.M.
- Número de telefone: 972-2-655-5111
- E-mail: RuthRonn@szmc.org.il
Estude backup de contato
- Nome: Talia Eldar-Geva, M.D. Ph.D.
- Número de telefone: 972-2-655-5111
- E-mail: gevat@szmc.org.il
Locais de estudo
-
-
-
Jerusalem, Israel, 9103102
- Recrutamento
- Shaare Zedek Medical Center
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Contato:
- Ruth Ronn, M.D. C.M.
- Número de telefone: 972-2-655-5111
- E-mail: RuthRonn@szmc.org.il
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Contato:
- Talia Eldar-Geva, M.D. PhD.
- Número de telefone: 972-2-655-5111
- E-mail: gevat@szmc.org.il
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Descrição
Critério de inclusão:
Pacientes que necessitam de tecnologias de reprodução assistida por um ou mais dos seguintes motivos:
- Infertilidade de fator masculino
- Infertilidade inexplicável
- Infertilidade por fator mecânico
- Infertilidade ovulatória
- Pacientes submetidos a tratamento de fertilidade apenas no Centro Médico Shaare Zedek.
- Pacientes que tentam engravidar com gametas autólogos.
- Pacientes que recebem transferências de embriões de acordo com a diretriz da Sociedade de Obstetrícia e Ginecologia de Israel sobre o número de embriões para transferência durante a fertilização in vitro.
- Pacientes submetidos ao seu primeiro ou segundo ciclo de ICSI (cumulativo a todas as outras instituições envolvidas no tratamento anterior) desde a gravidez anterior.
- Critérios de IMC: >18 e
Critério de exclusão:
Um diagnóstico de infertilidade que inclui o seguinte:
- Infertilidade masculina grave que requer aspiração testicular, biópsia testicular para recuperação de esperma ou menos de 1.000 espermatozóides por ejaculação.
- hidrossalpinge não tratada
- Revestimento endometrial persistentemente fino ou fator endometrial
- Endometriose grave
- Baixa reserva ovariana (≤8 folículos antrais com contagem de folículos (AFC) medindo 2 a 10 mm de diâmetro no dia 2-4 do ciclo menstrual, ou dia 3 hormônio folículo estimulante (FSH) ≥10 mili-unidade internacional (mIU) /mL)
- Alto risco de síndrome de hiperestimulação ovariana (nível de estradiol >13.000 pmol/L ou >20 folículos ≥16 mm de diâmetro durante hiperestimulação ovariana controlada, ≥20 oócitos coletados).
- Pacientes recebendo agonista de GnRH para maturação folicular final
- Pacientes que necessitam de diagnóstico genético pré-implantacional (PGD)
- Pacientes que requerem congelamento de todos os oócitos ou embriões
- Mais de 2 ciclos anteriores de fertilização in vitro desde a gravidez anterior
- Fumantes atuais
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Tratamento
- Alocação: Randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
- Mascaramento: Triplo
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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Comparador Ativo: Incubação de bancada
Esses embriões serão randomizados para a incubadora de bancada.
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Incubação em Bancada - Avaliação Morfológica Estes embriões serão submetidos a múltiplas avaliações por microscopia de luz e avaliação morfológica tradicional.
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Comparador Ativo: Incubação de Lapso de Tempo
Esses embriões serão randomizados para a Incubadora Time Lapse.
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Time Lapse Incubation - Avaliação Morfológica/Morfocinética Esses embriões permanecerão no TLI e passarão por avaliação morfológica e morfocinética e classificação de acordo com um modelo multivariável hierárquico.
Eles não serão removidos da incubação durante a cultura.
Incubação com intervalo de tempo - Avaliação morfológica Esses embriões permanecerão no TLI e serão submetidos apenas à avaliação morfológica tradicional de acordo com os critérios aceitos, sem imagens adicionais.
Eles também não serão removidos da incubação durante a cultura.
Os pontos de tempo e os parâmetros avaliados serão idênticos aos do braço 1 do estudo.
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Comparador Ativo: Incubação de Lapso de Tempo - Modificada
Esses embriões serão randomizados para a incubadora de bancada.
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Time Lapse Incubation - Avaliação Morfológica/Morfocinética Esses embriões permanecerão no TLI e passarão por avaliação morfológica e morfocinética e classificação de acordo com um modelo multivariável hierárquico.
Eles não serão removidos da incubação durante a cultura.
Incubação com intervalo de tempo - Avaliação morfológica Esses embriões permanecerão no TLI e serão submetidos apenas à avaliação morfológica tradicional de acordo com os critérios aceitos, sem imagens adicionais.
Eles também não serão removidos da incubação durante a cultura.
Os pontos de tempo e os parâmetros avaliados serão idênticos aos do braço 1 do estudo.
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Taxa de gravidez em curso
Prazo: 12 semanas de gestação
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O número de mulheres com gravidez viável (incluindo saco gestacional e batimentos cardíacos fetais) na 12ª semana de gestação dividido pelo número de mulheres com transferência de embrião.
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12 semanas de gestação
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Morfologia do embrião - Número de pronúcleos presentes após a fertilização
Prazo: 1º dia pós-fertilização
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Número de pronúcleos presentes no embrião 1 dia após a fertilização.
Parâmetro de avaliação morfológica usado para classificar a qualidade do embrião.
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1º dia pós-fertilização
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Morfologia do embrião - Número de células presentes
Prazo: Dia 2 e Dia 3 pós-fertilização
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Número de células presentes no embrião 2 e 3 dias após a fertilização.
Parâmetro de avaliação morfológica usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 2 e Dia 3 pós-fertilização
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Morfologia do embrião - % fragmentação
Prazo: Dia 2 e Dia 3 pós-fertilização
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Porcentagem de fragmentação no embrião 2 e 3 dias após a fertilização.
Parâmetro de avaliação morfológica usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 2 e Dia 3 pós-fertilização
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Morfologia do embrião - Presença de multinucleação
Prazo: Dia 2 pós-fertilização
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Presença de multinucleação no embrião no dia 2 após a fertilização.
Parâmetro de avaliação morfológica usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 2 pós-fertilização
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Morfologia do embrião - Simetria
Prazo: Dia 2 e Dia 3 pós-fertilização
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Simetria no embrião 2 e 3 dias após a fertilização.
Parâmetro de avaliação morfológica usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 2 e Dia 3 pós-fertilização
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Morfologia do embrião - Estágio de desenvolvimento no dia 5
Prazo: Dia 5 pós-fertilização
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Estágio de desenvolvimento do embrião 5 dias após a fertilização.
Caracterizado como: Blastocisto precoce, Blastocisto, Expandido, Eclodido/Hatching ou outro.
Parâmetro de avaliação morfológica usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 5 pós-fertilização
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Morfologia do embrião - grau de massa celular interna (ICM)
Prazo: Dia 5 pós-fertilização
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Grau ICM no embrião 5 dias após a fertilização.
Parâmetro de avaliação morfológica usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 5 pós-fertilização
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Morfologia do embrião - grau trofectoderma
Prazo: Dia 5 pós-fertilização
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Grau de trofectoderma no embrião 5 dias após a fertilização.
Parâmetro de avaliação morfológica usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 5 pós-fertilização
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Morfocinética do embrião - Divisão abrupta
Prazo: Dia 0 ao Dia 3 pós-fertilização
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Presença ou ausência de divisão abrupta do embrião de uma a três ou mais células: um parâmetro de avaliação morfocinética usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 0 ao Dia 3 pós-fertilização
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Morfocinética do embrião - Tempo de clivagem em embrião de cinco blastômeros
Prazo: Dia 0 ao Dia 3 pós-fertilização
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Presença ou ausência de intervalo de tempo ideal para clivagem em embrião de cinco blastômeros (48,8-56,6 horas): um parâmetro de avaliação morfocinética usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 0 ao Dia 3 pós-fertilização
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Morfocinética do embrião - Tempo de embrião de dois a quatro blastômeros
Prazo: Dia 1 ao Dia 3 pós-fertilização
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Presença ou ausência de tempo ideal de duração da divisão de 2 para 3 células e subseqüente divisão para 4 células (0-0,76 horas): um parâmetro de avaliação morfocinética usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 1 ao Dia 3 pós-fertilização
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Morfocinética do embrião - Tempo de embrião de dois a três blastômeros
Prazo: Dia 1 ao Dia 3 pós-fertilização
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Presença ou ausência de tempo ideal de duração da divisão de embrião de duas células para três células (0-11,9
horas): um parâmetro de avaliação morfocinética usado para classificar a qualidade do embrião.
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Dia 1 ao Dia 3 pós-fertilização
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Características oocitárias - Presença de corpos polares
Prazo: Recuperação de oócitos até a fertilização - menos de 1 dia
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Presença do corpo polar do oócito no dia da coleta do oócito
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Recuperação de oócitos até a fertilização - menos de 1 dia
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Taxa de gravidez bioquímica
Prazo: 14 dias após a transferência do embrião
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O número de mulheres com β-hCG positivo aproximadamente 14 dias após a transferência do embrião dividido pelo número de mulheres com transferência do embrião.
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14 dias após a transferência do embrião
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Taxa cumulativa de gravidez contínua
Prazo: Um ano a partir da captação do oócito
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Número cumulativo de mulheres com gravidez viável em 12 semanas (onde a gravidez foi obtida com embriões frescos e vitrificados do mesmo ciclo de estimulação ovariana) dividido pelo número de mulheres submetidas a um ciclo de captação de oócitos.
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Um ano a partir da captação do oócito
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Taxa de nascidos vivos
Prazo: Um ano e quarenta semanas
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A porcentagem de todos os ciclos de coleta de oócitos (OPU) que levam a um nascimento vivo O período de tempo aproximado será o tempo de um ciclo de estimulação ovariana mais gravidez a termo
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Um ano e quarenta semanas
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Taxa de aborto espontâneo
Prazo: Primeiras 20 semanas de gestação
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Perda de um embrião ou feto antes de 20 semanas de gestação ou com peso inferior a 500 gramas.
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Primeiras 20 semanas de gestação
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Ruth Ronn, M.D. C.M., Shaare Zedek Medical Center
- Investigador principal: Talia Eldar-Geva, M.D. Ph.D., Shaare Zedek Medical Center
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Hum Reprod. 2011 Jun;26(6):1270-83. doi: 10.1093/humrep/der037. Epub 2011 Apr 18.
- Fujiwara M, Takahashi K, Izuno M, Duan YR, Kazono M, Kimura F, Noda Y. Effect of micro-environment maintenance on embryo culture after in-vitro fertilization: comparison of top-load mini incubator and conventional front-load incubator. J Assist Reprod Genet. 2007 Jan;24(1):5-9. doi: 10.1007/s10815-006-9088-3. Epub 2006 Dec 13.
- Zhang JQ, Li XL, Peng Y, Guo X, Heng BC, Tong GQ. Reduction in exposure of human embryos outside the incubator enhances embryo quality and blastulation rate. Reprod Biomed Online. 2010 Apr;20(4):510-5. doi: 10.1016/j.rbmo.2009.12.027. Epub 2009 Dec 28.
- Basile N, Morbeck D, Garcia-Velasco J, Bronet F, Meseguer M. Type of culture media does not affect embryo kinetics: a time-lapse analysis of sibling oocytes. Hum Reprod. 2013 Mar;28(3):634-41. doi: 10.1093/humrep/des462. Epub 2013 Jan 12.
- Meseguer M, Herrero J, Tejera A, Hilligsoe KM, Ramsing NB, Remohi J. The use of morphokinetics as a predictor of embryo implantation. Hum Reprod. 2011 Oct;26(10):2658-71. doi: 10.1093/humrep/der256. Epub 2011 Aug 9.
- Meseguer M, Rubio I, Cruz M, Basile N, Marcos J, Requena A. Embryo incubation and selection in a time-lapse monitoring system improves pregnancy outcome compared with a standard incubator: a retrospective cohort study. Fertil Steril. 2012 Dec;98(6):1481-9.e10. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.08.016. Epub 2012 Sep 10.
- Kirkegaard K, Ahlstrom A, Ingerslev HJ, Hardarson T. Choosing the best embryo by time lapse versus standard morphology. Fertil Steril. 2015 Feb;103(2):323-32. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.11.003. Epub 2014 Dec 17.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine and the Practice Committee of the Society for Assisted Reproductive Technology. Criteria for number of embryos to transfer: a committee opinion. Fertil Steril. 2013 Jan;99(1):44-46. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.09.038. Epub 2012 Oct 22.
- Swain JE. Decisions for the IVF laboratory: comparative analysis of embryo culture incubators. Reprod Biomed Online. 2014 May;28(5):535-47. doi: 10.1016/j.rbmo.2014.01.004. Epub 2014 Jan 27.
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- Wong CC, Loewke KE, Bossert NL, Behr B, De Jonge CJ, Baer TM, Reijo Pera RA. Non-invasive imaging of human embryos before embryonic genome activation predicts development to the blastocyst stage. Nat Biotechnol. 2010 Oct;28(10):1115-21. doi: 10.1038/nbt.1686. Epub 2010 Oct 3.
- Dal Canto M, Coticchio G, Mignini Renzini M, De Ponti E, Novara PV, Brambillasca F, Comi R, Fadini R. Cleavage kinetics analysis of human embryos predicts development to blastocyst and implantation. Reprod Biomed Online. 2012 Nov;25(5):474-80. doi: 10.1016/j.rbmo.2012.07.016. Epub 2012 Aug 2.
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- Hlinka D, Kalatova B, Uhrinova I, Dolinska S, Rutarova J, Rezacova J, Lazarovska S, Dudas M. Time-lapse cleavage rating predicts human embryo viability. Physiol Res. 2012;61(5):513-25. doi: 10.33549/physiolres.932287. Epub 2012 Aug 8.
- Rubio I, Kuhlmann R, Agerholm I, Kirk J, Herrero J, Escriba MJ, Bellver J, Meseguer M. Limited implantation success of direct-cleaved human zygotes: a time-lapse study. Fertil Steril. 2012 Dec;98(6):1458-63. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.07.1135. Epub 2012 Aug 25.
- Azzarello A, Hoest T, Mikkelsen AL. The impact of pronuclei morphology and dynamicity on live birth outcome after time-lapse culture. Hum Reprod. 2012 Sep;27(9):2649-57. doi: 10.1093/humrep/des210. Epub 2012 Jun 26.
- Aguilar J, Motato Y, Escriba MJ, Ojeda M, Munoz E, Meseguer M. The human first cell cycle: impact on implantation. Reprod Biomed Online. 2014 Apr;28(4):475-84. doi: 10.1016/j.rbmo.2013.11.014. Epub 2013 Dec 11.
- Hashimoto S, Kato N, Saeki K, Morimoto Y. Selection of high-potential embryos by culture in poly(dimethylsiloxane) microwells and time-lapse imaging. Fertil Steril. 2012 Feb;97(2):332-7. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.11.042. Epub 2012 Jan 2.
- Conaghan J, Chen AA, Willman SP, Ivani K, Chenette PE, Boostanfar R, Baker VL, Adamson GD, Abusief ME, Gvakharia M, Loewke KE, Shen S. Improving embryo selection using a computer-automated time-lapse image analysis test plus day 3 morphology: results from a prospective multicenter trial. Fertil Steril. 2013 Aug;100(2):412-9.e5. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.04.021. Epub 2013 May 28.
- VerMilyea MD, Tan L, Anthony JT, Conaghan J, Ivani K, Gvakharia M, Boostanfar R, Baker VL, Suraj V, Chen AA, Mainigi M, Coutifaris C, Shen S. Computer-automated time-lapse analysis results correlate with embryo implantation and clinical pregnancy: a blinded, multi-centre study. Reprod Biomed Online. 2014 Dec;29(6):729-36. doi: 10.1016/j.rbmo.2014.09.005. Epub 2014 Sep 21.
- Rubio I, Galan A, Larreategui Z, Ayerdi F, Bellver J, Herrero J, Meseguer M. Clinical validation of embryo culture and selection by morphokinetic analysis: a randomized, controlled trial of the EmbryoScope. Fertil Steril. 2014 Nov;102(5):1287-1294.e5. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.07.738. Epub 2014 Sep 11.
- Yang Z, Zhang J, Salem SA, Liu X, Kuang Y, Salem RD, Liu J. Selection of competent blastocysts for transfer by combining time-lapse monitoring and array CGH testing for patients undergoing preimplantation genetic screening: a prospective study with sibling oocytes. BMC Med Genomics. 2014 Jun 22;7:38. doi: 10.1186/1755-8794-7-38.
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