- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT02657811
Incubazione time-lapse per coltura embrionale - Morfocinetica e stabilità ambientale
Incubazione time-lapse per la coltura embrionale - L'impatto della morfocinetica e della stabilità ambientale sugli esiti riproduttivi
La coltura e la selezione degli embrioni è stata una sfida continua in evoluzione sin dalla nascita della fecondazione in vitro (FIV). Tradizionalmente, la qualità dell'embrione e la sua presunta idoneità al trasferimento venivano valutate in base alle caratteristiche morfologiche. Tuttavia, il consenso sui punti temporali ottimali per la valutazione dell'embrione e sulle caratteristiche "preferibili" è stato difficile. Accanto a questo c'è stata la sfida di raggiungere l'equilibrio tra molteplici punti di valutazione, stabilizzando al tempo stesso l'ambiente embrionale per la crescita. Nell'incubazione standard, ogni nuova valutazione morfologica degli embrioni in coltura crea teoricamente un'ulteriore interruzione della coltura.
Più recentemente, gli incubatori time-lapse (TLI) sono stati introdotti come un nuovo sistema di coltura dell'embrione che tenta di limitare i disturbi della coltura. Questi incubatori sono stati integrati con l'imaging digitale, consentendo una sostanziale limitazione nella manipolazione degli embrioni e nei disturbi ambientali. Hanno inoltre introdotto nuovi parametri morfocinetici nella valutazione degli embrioni e nell'ottimizzazione della selezione degli embrioni. Finora, un numero limitato di studi ha esaminato i risultati clinici e il valore dei sistemi di monitoraggio time lapse rispetto agli incubatori più diffusi (ad es. multicamera) per gli esiti riproduttivi. In particolare, il valore isolato della morfocinetica nella valutazione dell'embrione e di questo nuovo ambiente di coltura stabile in TLI sono ancora in discussione.
Gli obiettivi di questo studio sono valutare e confrontare in modo prospettico i risultati della fertilità quando gli embrioni vengono coltivati nel sistema TLI rispetto agli incubatori da banco più tradizionali (BI). Valuteremo specificamente il valore aggiunto del TLI chiuso e isolato rispetto alla BI sugli esiti riproduttivi, nonché il valore del grading morfocinetico nella fecondazione in vitro.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
Gli obiettivi della ricerca:
Ora stiamo raggiungendo una nuova era con l'opportunità di avanzare verso ambienti di coltura teoricamente migliori e miglioramenti sulle misure di valutazione degli embrioni.
Gli obiettivi di questo studio di ricerca saranno valutare e confrontare i risultati riproduttivi nell'isolare uno dei due nuovi interventi introdotti dal sistema Time-Lapse Incubator (TLI). Il primo sarà una valutazione dell'ambiente TLI rispetto all'ambiente Bench Incubator (BI) standard. Il secondo sarà una valutazione del grading morfocinetico aggiunto degli embrioni rispetto al solo grading morfologico tradizionale.
Sebbene l'obiettivo principale di questo studio si concentri sui tassi di gravidanza clinica e sui trasferimenti di embrioni freschi, saranno condotte ulteriori ricerche utilizzando embrioni congelati da questo studio per valutare anche i tassi di gravidanza cumulativi per ciclo di prelievo di ovociti (OPU) in futuro.
Metodi L'attuale studio sarà uno studio prospettico randomizzato e in doppio cieco utilizzando tre bracci di pazienti. Il primo braccio includerà pazienti randomizzati alla coltura dell'embrione in un incubatore da banco tri-gas (Miri, incubatore multi-room da banco). Questi embrioni saranno sottoposti a valutazioni multiple utilizzando la microscopia ottica e la valutazione morfologica tradizionale secondo criteri accettati. Il secondo braccio includerà pazienti randomizzati alla coltura di embrioni in un incubatore time-lapse (Miri TL, Time-Lapse Incubator). Questi embrioni rimarranno nel TLI e saranno sottoposti a valutazione e classificazione sia morfologica che morfocinetica secondo un modello di punteggio multivariato. Non saranno rimossi dall'incubazione per la durata della coltura. Il terzo braccio includerà anche pazienti randomizzati alla coltura di embrioni in un incubatore time-lapse (Miri TL, Time-Lapse Incubator). Questi embrioni rimarranno nel TLI e saranno sottoposti solo alla tradizionale valutazione morfologica secondo criteri accettati senza ulteriori immagini. Inoltre, non verranno rimossi dall'incubazione per la durata della coltura. I punti temporali e i parametri valutati saranno identici a quelli del braccio 1 dello studio.
I pazienti saranno valutati per criteri di idoneità, inclusione ed esclusione dal medico e dal team infermieristico prima dell'inizio di un ciclo di fecondazione in vitro/ICSI presso il nostro centro. Una volta che il paziente è ritenuto idoneo, un membro del team di assistenza discuterà i dettagli dello studio con il paziente.
I soggetti dello studio approvati saranno sottoposti a iperstimolazione ovarica controllata standard (COH). I protocolli ei relativi farmaci saranno decisi a discrezione del medico curante. Questi possono includere il protocollo dell'agonista dell'ormone di rilascio delle gonadotropine lunghe (GnRH) e il protocollo dell'antagonista del GnRH. L'aspirazione follicolare verrà eseguita nell'unità di fecondazione in vitro tramite agoaspirazione transvaginale. La preparazione dell'endometrio e il supporto della fase luteale saranno raccomandati secondo il nostro protocollo dipartimentale. Il numero di embrioni per il trasferimento sarà definito prima dell'inizio del ciclo, secondo The Israel Society of Obstetrics & Gynecology.
La randomizzazione dei pazienti avverrà dopo che la somministrazione di gonadotropina corionica umana (hCG) è già stata assicurata, prima dell'iniezione intracitoplasmatica di spermatozoi (ICSI). La procedura di randomizzazione verrà eseguita utilizzando la randomizzazione generata dal computer.
Dopo l'aspirazione follicolare e il trasferimento in laboratorio, il fluido follicolare verrà esaminato per la presenza di ovociti. Gli ovociti verranno quindi valutati per maturità e per qualsiasi caratteristica morfologicamente anomala. L'ICSI verrà quindi eseguita utilizzando lo sperma fresco del partner corrispondente.
Gli embrioni verranno quindi collocati nei terreni di coltura. Gli embrioni all'interno dei terreni di coltura verranno quindi collocati nell'incubatore Miri Benchtop o Miri Timelapse in base al corrispondente gruppo di randomizzazione. Si noti che l'ambiente degli incubatori da banco Miri e Miri TL sarà considerato identico. concentrazione di ossigeno e concentrazioni di anidride carbonica fissate rispettivamente al 5% e al 5,5%.
Gli embrioni nel braccio 1 dello studio (incubatore da banco Miri) saranno valutati morfologicamente mediante microscopia ottica in punti temporali predefiniti e secondo criteri accettati da uno degli embriologi di laboratorio addestrati. I punti temporali per la valutazione saranno a 16-20 ore post-ICSI (per la fertilizzazione normale), a 44-48 ore (giorno 2) post-ICSI e quindi a 64-72 ore (giorno 3) post-ICSI. I parametri valutati includeranno il numero di cella, la dimensione della cella, la simmetria della cella e la frammentazione percentuale. Eventuali anomalie grossolane saranno annotate. Gli embrioni verranno quindi classificati il giorno 3 in base a questi parametri valutati e trasferiti in base alla classificazione preferenziale. Se il trasferimento dell'embrione è stato predeterminato per il giorno 5, un'ulteriore valutazione avrà luogo a circa 116 ore.
Gli embrioni nel braccio 2 dello studio (incubatore Miri TL) saranno valutati morfologicamente e morfocineticamente dagli stessi embriologi del laboratorio utilizzando immagini digitali generate dal sistema integrato di imaging time-lapse dell'incubatore. La valutazione e il punteggio saranno eseguiti secondo il nostro sistema di classificazione dei punteggi. Lo screening morfologico degli embrioni verrà inizialmente eseguito al fine di scartare o escludere quelli chiaramente non idonei al trasferimento. I parametri morfocinetici verranno quindi utilizzati per classificare le categorie di punteggio degli embrioni rimanenti da un massimo di 4.0 a un minimo di -2.0, in ordine di ipotetico potenziale decrescente di impianto.
Gli embrioni nel braccio 3 dello studio (incubatore Miri TL) saranno valutati morfologicamente dagli embriologi utilizzando immagini digitali generate dal sistema integrato di imaging time-lapse dell'incubatore. Come notato sopra, i punti temporali e i parametri valutati saranno identici a quelli del braccio 1 dello studio. Anche le decisioni sugli embrioni da trasferire saranno identiche.
Per ogni paziente, gli embrioni saranno selezionati per il trasferimento in base al solo punteggio morfologico (Braccio 1 e 3) o in base al punteggio dell'albero decisionale morfocinetico (Braccio 2). Il numero di embrioni per il trasferimento sarà stato predeterminato (come indicato sopra).
Gli embrioni non selezionati e ritenuti idonei per il futuro trasferimento saranno sottoposti a crioconservazione mediante vetrificazione.
L'accecamento dello studio in corso sarà assicurato in più punti. I ginecologi che eseguono il prelievo di ovociti e il trasferimento di embrioni saranno all'oscuro del gruppo di pazienti predefinito e randomizzato. I pazienti non saranno a conoscenza del loro gruppo di randomizzazione. Gli statistici saranno anche ciechi rispetto al gruppo di randomizzazione nel calcolo degli esiti della gravidanza. Purtroppo non sarà possibile garantire l'accecamento di quegli embriologi che eseguono le valutazioni morfologiche e morfocinetiche.
Calcolo della dimensione del campione:
Il tasso di gravidanza nella nostra Unità IVF nel sottogruppo di pazienti con caratteristiche demografiche e cliniche simili a quelle incluse nello studio, è di circa il 40%. Supponendo che nel gruppo TLI il tasso di gravidanza aumenti del 10%, la dimensione del campione richiesta per gruppo è di 124 pazienti per braccio, con un rischio alfa del 5% e una potenza dell'80%.
Statistiche:
L'analisi statistica sarà effettuata per intenzione di trattare.
Tipo di studio
Iscrizione (Anticipato)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
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Jerusalem, Israele, 9103102
- Reclutamento
- Shaare Zedek Medical Center
-
Contatto:
- Ruth Ronn, M.D. C.M.
- Numero di telefono: 972-2-655-5111
- Email: RuthRonn@szmc.org.il
-
Contatto:
- Talia Eldar-Geva, M.D. PhD.
- Numero di telefono: 972-2-655-5111
- Email: gevat@szmc.org.il
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Sessi ammissibili allo studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
Pazienti che richiedono tecnologie di riproduzione assistita per uno o più dei seguenti motivi:
- Infertilità da fattore maschile
- Infertilità inspiegabile
- Infertilità da fattore meccanico
- Infertilità ovulatoria
- Pazienti sottoposti a trattamento per la fertilità solo presso il Shaare Zedek Medical Center.
- Pazienti che tentano una gravidanza con gameti autologhi.
- Pazienti che ricevono trasferimenti di embrioni secondo le linee guida della Società Israeliana di Ostetricia e Ginecologia sul numero di embrioni da trasferire durante la fecondazione in vitro.
- Pazienti sottoposte al loro primo o secondo ciclo ICSI (cumulativo a tutte le altre istituzioni coinvolte nel trattamento precedente) dalla loro precedente gravidanza.
- Criteri BMI: >18 e
Criteri di esclusione:
Una diagnosi di infertilità che include quanto segue:
- Infertilità grave da fattore maschile che richiede aspirazione testicolare, biopsia testicolare per il recupero dello sperma o meno di 1000 spermatozoi per eiaculato.
- Idrosalpinge non trattata
- Rivestimento endometriale persistentemente sottile o fattore endometriale
- Endometriosi grave
- Bassa riserva ovarica (≤8 follicoli antral follicle count (AFC) che misurano da 2 a 10 mm di diametro il giorno 2-4 del ciclo mestruale, o il giorno 3 ormone follicolo-stimolante (FSH) ≥10 milli-unità internazionale (mIU) /mL)
- Alto rischio di sindrome da iperstimolazione ovarica (livello di estradiolo >13.000 pmol/L o >20 follicoli di diametro ≥16 mm durante l'iperstimolazione ovarica controllata, raccolta di ≥20 ovociti).
- Pazienti che ottengono agonisti del GnRH per la maturazione follicolare finale
- Pazienti che necessitano di diagnosi genetica preimpianto (PGD)
- Pazienti che richiedono il congelamento di tutti gli ovociti o embrioni
- Più di 2 precedenti cicli di fecondazione in vitro dalla precedente gravidanza
- Attuali fumatori
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: Randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Triplicare
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
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Comparatore attivo: Incubazione da banco
Questi embrioni saranno randomizzati all'incubatore da banco.
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Incubazione al banco - Valutazione morfologica Questi embrioni saranno sottoposti a valutazioni multiple utilizzando la microscopia ottica e la valutazione morfologica tradizionale.
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Comparatore attivo: Incubazione Time Lapse
Questi embrioni saranno randomizzati all'incubatore Time Lapse.
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Time Lapse Incubation - Valutazione morfologica/morfocinetica Questi embrioni rimarranno nel TLI e saranno sottoposti a valutazione e classificazione sia morfologica che morfocinetica secondo un modello gerarchico multivariabile.
Non saranno rimossi dall'incubazione per la durata della coltura.
Incubazione Time Lapse - Valutazione morfologica Questi embrioni rimarranno nel TLI e saranno sottoposti solo alla tradizionale valutazione morfologica secondo i criteri accettati senza ulteriori immagini.
Inoltre, non verranno rimossi dall'incubazione per la durata della coltura.
I punti temporali e i parametri valutati saranno identici a quelli del braccio 1 dello studio.
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Comparatore attivo: Incubazione Time Lapse - Modificata
Questi embrioni saranno randomizzati all'incubatore da banco.
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Time Lapse Incubation - Valutazione morfologica/morfocinetica Questi embrioni rimarranno nel TLI e saranno sottoposti a valutazione e classificazione sia morfologica che morfocinetica secondo un modello gerarchico multivariabile.
Non saranno rimossi dall'incubazione per la durata della coltura.
Incubazione Time Lapse - Valutazione morfologica Questi embrioni rimarranno nel TLI e saranno sottoposti solo alla tradizionale valutazione morfologica secondo i criteri accettati senza ulteriori immagini.
Inoltre, non verranno rimossi dall'incubazione per la durata della coltura.
I punti temporali e i parametri valutati saranno identici a quelli del braccio 1 dello studio.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Tasso di gravidanza in corso
Lasso di tempo: 12 settimane di gestazione
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Il numero di donne con una gravidanza praticabile (compreso sacco gestazionale e battito cardiaco fetale) a 12 settimane di gestazione diviso per il numero di donne che hanno un trasferimento di embrioni.
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12 settimane di gestazione
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Morfologia embrionale - Numero di pronuclei presenti dopo la fecondazione
Lasso di tempo: Giorno 1 post-fertilizzazione
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Numero di pronuclei presenti nell'embrione 1 giorno dopo la fecondazione.
Parametro di valutazione morfologica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Giorno 1 post-fertilizzazione
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Morfologia dell'embrione - Numero di cellule presenti
Lasso di tempo: Giorno 2 e Giorno 3 post-fecondazione
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Numero di cellule presenti nell'embrione 2 e 3 giorni dopo la fecondazione.
Parametro di valutazione morfologica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Giorno 2 e Giorno 3 post-fecondazione
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Morfologia dell'embrione - % di frammentazione
Lasso di tempo: Giorno 2 e Giorno 3 post-fecondazione
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Frammentazione percentuale nell'embrione 2 e 3 giorni dopo la fecondazione.
Parametro di valutazione morfologica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Giorno 2 e Giorno 3 post-fecondazione
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Morfologia embrionale - Presenza di multi nucleazione
Lasso di tempo: Giorno 2 post-fecondazione
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Presenza di multinucleazione nell'embrione il giorno 2 dopo la fecondazione.
Parametro di valutazione morfologica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Giorno 2 post-fecondazione
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Morfologia embrionale - Simmetria
Lasso di tempo: Giorno 2 e Giorno 3 post-fecondazione
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Simmetria nell'embrione 2 e 3 giorni dopo la fecondazione.
Parametro di valutazione morfologica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Giorno 2 e Giorno 3 post-fecondazione
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Morfologia dell'embrione - Stadio di sviluppo al giorno 5
Lasso di tempo: Giorno 5 post-fecondazione
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Stadio di sviluppo nell'embrione 5 giorni dopo la fecondazione.
Caratterizzato come: blastocisti precoce, blastocisti, espansa, covata/covata o altro.
Parametro di valutazione morfologica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Giorno 5 post-fecondazione
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Morfologia dell'embrione - Grado di massa cellulare interna (ICM).
Lasso di tempo: Giorno 5 post-fecondazione
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Grado ICM nell'embrione 5 giorni dopo la fecondazione.
Parametro di valutazione morfologica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Giorno 5 post-fecondazione
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Morfologia embrionale - Grado trofectodermico
Lasso di tempo: Giorno 5 post-fecondazione
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Grado di trofectoderma nell'embrione 5 giorni dopo la fecondazione.
Parametro di valutazione morfologica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Giorno 5 post-fecondazione
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Morfocinetica dell'embrione - Divisione brusca
Lasso di tempo: Dal giorno 0 al giorno 3 dopo la fecondazione
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Presenza o assenza di brusca divisione dell'embrione da una a tre o più cellule: un parametro di valutazione morfocinetica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Dal giorno 0 al giorno 3 dopo la fecondazione
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Morfocinetica dell'embrione - Tempo di scissione dell'embrione a cinque blastomeri
Lasso di tempo: Dal giorno 0 al giorno 3 dopo la fecondazione
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Presenza o assenza di un intervallo di tempo ottimale per la scissione dell'embrione a cinque blastomeri (48,8-56,6 ore): un parametro di valutazione morfocinetica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Dal giorno 0 al giorno 3 dopo la fecondazione
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Morfocinetica dell'embrione - Tempo dall'embrione da due a quattro blastomeri
Lasso di tempo: Dal giorno 1 al giorno 3 dopo la fecondazione
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Presenza o assenza di durata ottimale della divisione da 2 a 3 cellule e successiva divisione a 4 cellule (0-0,76 ore): un parametro di valutazione morfocinetica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Dal giorno 1 al giorno 3 dopo la fecondazione
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Morfocinetica dell'embrione - Tempo dall'embrione da due a tre blastomeri
Lasso di tempo: Dal giorno 1 al giorno 3 dopo la fecondazione
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Presenza o assenza di durata temporale ottimale della divisione da embrione bicellulare a tricellulare (0-11.9
ore): un parametro di valutazione morfocinetica utilizzato per classificare la qualità dell'embrione.
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Dal giorno 1 al giorno 3 dopo la fecondazione
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Caratteristiche degli ovociti - Presenza del corpo polare
Lasso di tempo: Recupero degli ovociti fino alla fecondazione - meno di 1 giorno
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Presenza del corpo polare dell'ovocita il giorno del prelievo dell'ovocita
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Recupero degli ovociti fino alla fecondazione - meno di 1 giorno
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Tasso di gravidanza biochimica
Lasso di tempo: 14 giorni dopo il trasferimento dell'embrione
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Il numero di donne con β-hCG positivo circa 14 giorni dopo il trasferimento di embrioni diviso per il numero di donne che hanno effettuato un trasferimento di embrioni.
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14 giorni dopo il trasferimento dell'embrione
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Tasso cumulativo di gravidanze in corso
Lasso di tempo: Un anno dal prelievo degli ovociti
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Numero cumulativo di donne con una gravidanza praticabile a 12 settimane (dove la gravidanza è stata ottenuta con embrioni freschi e vetrificati dallo stesso ciclo di stimolazione ovarica) diviso per il numero di donne che hanno subito un ciclo di prelievo di ovociti.
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Un anno dal prelievo degli ovociti
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Tasso di natalità in diretta
Lasso di tempo: Un anno e quaranta settimane
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La percentuale di tutti i cicli di prelievo di ovociti (OPU) che portano a un parto vivo L'intervallo di tempo approssimativo sarà il tempo di un ciclo di stimolazione ovarica più la gravidanza a termine
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Un anno e quaranta settimane
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Tasso di aborti spontanei
Lasso di tempo: Prime 20 settimane di gestazione
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Perdita di un embrione o di un feto prima della 20a settimana di gestazione o di peso inferiore a 500 grammi.
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Prime 20 settimane di gestazione
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Ruth Ronn, M.D. C.M., Shaare Zedek Medical Center
- Investigatore principale: Talia Eldar-Geva, M.D. Ph.D., Shaare Zedek Medical Center
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Hum Reprod. 2011 Jun;26(6):1270-83. doi: 10.1093/humrep/der037. Epub 2011 Apr 18.
- Fujiwara M, Takahashi K, Izuno M, Duan YR, Kazono M, Kimura F, Noda Y. Effect of micro-environment maintenance on embryo culture after in-vitro fertilization: comparison of top-load mini incubator and conventional front-load incubator. J Assist Reprod Genet. 2007 Jan;24(1):5-9. doi: 10.1007/s10815-006-9088-3. Epub 2006 Dec 13.
- Zhang JQ, Li XL, Peng Y, Guo X, Heng BC, Tong GQ. Reduction in exposure of human embryos outside the incubator enhances embryo quality and blastulation rate. Reprod Biomed Online. 2010 Apr;20(4):510-5. doi: 10.1016/j.rbmo.2009.12.027. Epub 2009 Dec 28.
- Basile N, Morbeck D, Garcia-Velasco J, Bronet F, Meseguer M. Type of culture media does not affect embryo kinetics: a time-lapse analysis of sibling oocytes. Hum Reprod. 2013 Mar;28(3):634-41. doi: 10.1093/humrep/des462. Epub 2013 Jan 12.
- Meseguer M, Herrero J, Tejera A, Hilligsoe KM, Ramsing NB, Remohi J. The use of morphokinetics as a predictor of embryo implantation. Hum Reprod. 2011 Oct;26(10):2658-71. doi: 10.1093/humrep/der256. Epub 2011 Aug 9.
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- Swain JE. Decisions for the IVF laboratory: comparative analysis of embryo culture incubators. Reprod Biomed Online. 2014 May;28(5):535-47. doi: 10.1016/j.rbmo.2014.01.004. Epub 2014 Jan 27.
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- Aguilar J, Motato Y, Escriba MJ, Ojeda M, Munoz E, Meseguer M. The human first cell cycle: impact on implantation. Reprod Biomed Online. 2014 Apr;28(4):475-84. doi: 10.1016/j.rbmo.2013.11.014. Epub 2013 Dec 11.
- Hashimoto S, Kato N, Saeki K, Morimoto Y. Selection of high-potential embryos by culture in poly(dimethylsiloxane) microwells and time-lapse imaging. Fertil Steril. 2012 Feb;97(2):332-7. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.11.042. Epub 2012 Jan 2.
- Conaghan J, Chen AA, Willman SP, Ivani K, Chenette PE, Boostanfar R, Baker VL, Adamson GD, Abusief ME, Gvakharia M, Loewke KE, Shen S. Improving embryo selection using a computer-automated time-lapse image analysis test plus day 3 morphology: results from a prospective multicenter trial. Fertil Steril. 2013 Aug;100(2):412-9.e5. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.04.021. Epub 2013 May 28.
- VerMilyea MD, Tan L, Anthony JT, Conaghan J, Ivani K, Gvakharia M, Boostanfar R, Baker VL, Suraj V, Chen AA, Mainigi M, Coutifaris C, Shen S. Computer-automated time-lapse analysis results correlate with embryo implantation and clinical pregnancy: a blinded, multi-centre study. Reprod Biomed Online. 2014 Dec;29(6):729-36. doi: 10.1016/j.rbmo.2014.09.005. Epub 2014 Sep 21.
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