- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT02657811
Incubación de lapso de tiempo para el cultivo de embriones: morfocinética y estabilidad ambiental
Incubación de lapso de tiempo para el cultivo de embriones: el impacto de la morfocinética y la estabilidad ambiental en los resultados reproductivos
El cultivo y selección de embriones ha sido un reto continuo en evolución desde el nacimiento de la Fecundación In Vitro (FIV). Tradicionalmente, la calidad del embrión y su supuesta idoneidad para la transferencia se evaluaban en función de las características morfológicas. Sin embargo, el consenso sobre los puntos de tiempo óptimos para la evaluación de embriones y sobre las características 'preferibles' ha sido un desafío. Junto a esto, ha estado el desafío de lograr el equilibrio entre múltiples puntos de evaluación y, al mismo tiempo, estabilizar el entorno del embrión para el crecimiento. En la incubación estándar, cada nueva evaluación morfológica de los embriones en cultivo crea teóricamente una interrupción adicional del cultivo.
Más recientemente, se introdujeron las incubadoras de lapso de tiempo (TLI) como un nuevo sistema de cultivo de embriones que intenta limitar las alteraciones del cultivo. Estas incubadoras se han integrado con imágenes digitales, lo que permite una limitación sustancial en el manejo de embriones y alteraciones ambientales. También han introducido nuevos parámetros morfocinéticos para la evaluación de embriones y para optimizar la selección de embriones. Hasta el momento, un número limitado de estudios ha examinado los resultados clínicos y el valor de los sistemas de monitoreo de lapso de tiempo en comparación con las incubadoras más ubicuas (p. multicámara) para los resultados reproductivos. En particular, el valor aislado de la morfocinética en la evaluación de embriones y de este nuevo entorno de cultivo estable en TLI aún está en duda.
Los objetivos de este estudio son evaluar prospectivamente y comparar los resultados de fertilidad cuando los embriones se cultivan en el sistema TLI frente a las incubadoras de mesa (BI) más tradicionales. Evaluaremos específicamente el valor agregado del TLI cerrado y aislado en comparación con el BI en los resultados reproductivos, así como el valor de la clasificación morfocinética en la FIV.
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Descripción detallada
Investigar objetivos:
Ahora estamos llegando a una nueva era con la oportunidad de avanzar hacia entornos de cultivo teóricamente mejores y mejoras en las medidas de evaluación de embriones.
Los objetivos de este estudio de investigación serán evaluar y comparar los resultados reproductivos al aislar una de las dos nuevas intervenciones introducidas por el sistema Time-Lapse Incubator (TLI). La primera será una evaluación del entorno TLI en comparación con el entorno estándar de Bench Incubator (BI). El segundo será una evaluación de la clasificación morfocinética adicional de los embriones en comparación con la clasificación morfológica tradicional sola.
Aunque el objetivo principal de este estudio se centrará en las tasas de embarazo clínico y las transferencias de embriones frescos, se realizarán más investigaciones con embriones congelados de este estudio para evaluar también las tasas de embarazo acumulativas por ciclo de recogida de ovocitos (OPU) en el futuro.
Métodos El estudio actual será un estudio prospectivo, aleatorizado y doble ciego utilizando tres brazos de pacientes. El primer brazo incluirá pacientes aleatorizados para el cultivo de embriones en una incubadora de mesa de tres gases (Miri, Benchtop Multi-room incubator). Estos embriones se someterán a múltiples evaluaciones utilizando microscopía óptica y evaluación morfológica tradicional de acuerdo con los criterios aceptados. El segundo brazo incluirá pacientes aleatorizados para el cultivo de embriones en una incubadora de lapso de tiempo (Miri TL, Incubadora de lapso de tiempo). Estos embriones permanecerán en el TLI y se someterán a una evaluación y clasificación morfológica y morfocinética según un modelo de puntuación multivariable. No se eliminarán de la incubación mientras dure el cultivo. El tercer grupo incluirá pacientes que también se aleatorizarán para el cultivo de embriones en una incubadora de lapso de tiempo (Miri TL, Incubadora de lapso de tiempo). Estos embriones permanecerán en el TLI y solo se someterán a una evaluación morfológica tradicional de acuerdo con los criterios aceptados sin imágenes adicionales. Tampoco se retirarán de la incubación durante la duración del cultivo. Los puntos de tiempo y los parámetros evaluados serán idénticos a los del brazo 1 del estudio.
El médico y el equipo de enfermería evaluarán los criterios de idoneidad, inclusión y exclusión de los pacientes antes de iniciar un ciclo de FIV/ICSI en nuestro centro. Una vez que se considere que el paciente es elegible, un miembro del equipo de atención analizará los detalles del estudio con el paciente.
Los sujetos de estudio aprobados se someterán a hiperestimulación ovárica controlada estándar (HOC). Los protocolos y sus correspondientes medicamentos serán decididos a criterio del médico tratante. Estos pueden incluir un protocolo de agonista prolongado de la hormona liberadora de gonadotropina (GnRH) y un protocolo de antagonista de GnRH. La aspiración folicular se realizará en la unidad de FIV mediante aspiración con aguja transvaginal. Se recomendará la preparación del endometrio y el soporte de la fase lútea según nuestro protocolo departamental. El número de embriones para transferir se definirá antes del inicio del ciclo, según la Sociedad de Obstetricia y Ginecología de Israel.
La aleatorización de los pacientes se realizará después de que se haya asegurado la administración de gonadotropina coriónica humana (hCG), antes de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI). El procedimiento de aleatorización se realizará mediante aleatorización generada por computadora.
Después de la aspiración folicular y la transferencia al laboratorio, se examinará el líquido folicular para detectar la presencia de ovocitos. A continuación, se evaluará la madurez de los ovocitos y cualquier característica morfológicamente anormal. A continuación, se realizará la ICSI con semen fresco de la pareja correspondiente.
A continuación, los embriones se colocarán en medios de cultivo. Los embriones dentro de los medios de cultivo se colocarán en la incubadora Miri Benchtop o Miri Timelapse según su grupo de aleatorización correspondiente. Tenga en cuenta que el entorno de las incubadoras Miri de sobremesa y Miri TL se considerará idéntico. concentración de oxígeno y concentraciones de dióxido de carbono fijadas en 5% y 5,5% respectivamente.
Los embriones en el brazo 1 del estudio (incubadora Miri Benchtop) serán evaluados morfológicamente por microscopía óptica en puntos de tiempo predefinidos y de acuerdo con los criterios aceptados por uno de los embriólogos de laboratorio capacitados. Los puntos de tiempo para la evaluación serán a las 16 - 20 horas post-ICSI (para fertilización normal), a las 44 - 48 horas (día 2) post-ICSI, y luego a las 64 - 72 horas (día 3) post-ICSI. Los parámetros evaluados incluirán el número de celdas, el tamaño de las celdas, la simetría de las celdas y el porcentaje de fragmentación. Se anotará cualquier anormalidad grave. A continuación, los embriones se clasificarán el día 3 según estos parámetros evaluados y se transferirán según la clasificación preferencial. Si se ha predeterminado la transferencia de embriones para el día 5, se realizará una evaluación adicional aproximadamente a las 116 horas.
Los embriólogos del brazo 2 del estudio (incubadora Miri TL) serán evaluados morfológica y morfocinéticamente por los mismos embriólogos del laboratorio utilizando imágenes digitales generadas por el sistema de imágenes de lapso de tiempo integrado de la incubadora. La evaluación y la puntuación se realizarán según nuestro sistema de clasificación de puntuación. Inicialmente se realizará un cribado morfológico de los embriones con el fin de descartar o excluir aquellos que claramente no sean viables para la transferencia. A continuación, se utilizarán parámetros morfocinéticos para clasificar las categorías de puntuación de los embriones restantes desde un máximo de 4,0 hasta un mínimo de -2,0, en orden de hipotético potencial de implantación decreciente.
Los embriólogos en el brazo 3 del estudio (incubadora Miri TL) serán evaluados morfológicamente por los embriólogos utilizando imágenes digitales generadas por el sistema de imágenes de lapso de tiempo integrado de la incubadora. Como se señaló anteriormente, los puntos de tiempo y los parámetros evaluados serán idénticos a los del brazo 1 del estudio. Las decisiones sobre embriones para transferencia también serán idénticas.
Para cada paciente, los embriones se seleccionarán para la transferencia en función únicamente de su puntuación morfológica (Brazo 1 y 3) o mediante la puntuación del árbol de decisiones morfocinéticas (Brazo 2). El número de embriones para la transferencia habrá sido predeterminado (como se indicó anteriormente).
Aquellos embriones no seleccionados y considerados aptos para una futura transferencia serán sometidos a criopreservación por vitrificación.
El cegamiento del estudio actual se asegurará en múltiples puntos. Los ginecólogos que realizan la recuperación de ovocitos y la transferencia de embriones no conocerán el grupo de pacientes predefinido y aleatorizado. Los pacientes no serán conscientes de su grupo de aleatorización. Los estadísticos también estarán cegados al grupo de aleatorización al calcular los resultados del embarazo. Lamentablemente, no será posible garantizar el cegamiento de los embriólogos que realizan las evaluaciones morfológicas y morfocinéticas.
Cálculo del tamaño de la muestra:
La tasa de embarazo en nuestra Unidad de FIV en el subgrupo de pacientes con características demográficas y clínicas similares a las incluidas en el estudio, se sitúa en torno al 40%. Suponiendo que en el grupo TLI la tasa de embarazo aumente un 10 %, el tamaño de muestra necesario por grupo es de 124 pacientes por brazo, con un riesgo alfa del 5 % y una potencia del 80 %.
Estadísticas:
El análisis estadístico se hará por intención de tratar.
Tipo de estudio
Inscripción (Anticipado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Ruth Ronn, M.D. C.M.
- Número de teléfono: 972-2-655-5111
- Correo electrónico: RuthRonn@szmc.org.il
Copia de seguridad de contactos de estudio
- Nombre: Talia Eldar-Geva, M.D. Ph.D.
- Número de teléfono: 972-2-655-5111
- Correo electrónico: gevat@szmc.org.il
Ubicaciones de estudio
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-
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Jerusalem, Israel, 9103102
- Reclutamiento
- Shaare Zedek Medical Center
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Contacto:
- Ruth Ronn, M.D. C.M.
- Número de teléfono: 972-2-655-5111
- Correo electrónico: RuthRonn@szmc.org.il
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Contacto:
- Talia Eldar-Geva, M.D. PhD.
- Número de teléfono: 972-2-655-5111
- Correo electrónico: gevat@szmc.org.il
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
Pacientes que requieren tecnologías de reproducción asistida por una o más de las siguientes razones:
- Infertilidad por factor masculino
- Infertilidad inexplicable
- Infertilidad por factor mecánico
- Infertilidad ovulatoria
- Pacientes que se someten a un tratamiento de fertilidad solo en el Centro Médico Shaare Zedek.
- Pacientes que intentan embarazo con gametos autólogos.
- Pacientes que reciben transferencias de embriones de acuerdo con las pautas de la Sociedad de Obstetricia y Ginecología de Israel sobre el número de embriones para transferir durante la fertilización in vitro.
- Pacientes que se someten a su primer o segundo ciclo de ICSI (acumulativo a todas las demás instituciones involucradas en el tratamiento anterior) desde su embarazo anterior.
- Criterios de IMC: >18 y
Criterio de exclusión:
Un diagnóstico de infertilidad que incluye lo siguiente:
- Infertilidad grave por factor masculino que requiere aspiración testicular, biopsia testicular para la extracción de espermatozoides o menos de 1000 espermatozoides por eyaculado.
- Hidrosálpinx no tratado
- Revestimiento endometrial persistentemente delgado o factor endometrial
- Endometriosis severa
- Reserva ovárica baja (≤8 folículos antrales (AFC) que miden de 2 a 10 mm de diámetro en los días 2 a 4 del ciclo menstrual, u hormona estimulante del folículo (FSH) en el día 3 ≥10 miliunidades internacionales (mIU)/mL)
- Alto riesgo de síndrome de hiperestimulación ovárica (nivel de estradiol >13 000 pmol/L o >20 folículos de ≥16 mm de diámetro durante la hiperestimulación ovárica controlada, ≥20 ovocitos recolectados).
- Pacientes que obtienen agonista de GnRH para la maduración folicular final
- Pacientes que requieren diagnóstico genético preimplantacional (DGP)
- Pacientes que requieren la congelación de todos los ovocitos o embriones
- Más de 2 ciclos previos de FIV desde el embarazo anterior
- fumadores actuales
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Tratamiento
- Asignación: Aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Triple
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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Comparador activo: Banco de incubación
Estos embriones se distribuirán aleatoriamente en la incubadora de mesa.
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Banco de incubación: evaluación morfológica Estos embriones se someterán a múltiples evaluaciones utilizando microscopía óptica y evaluación morfológica tradicional.
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Comparador activo: Incubación de lapso de tiempo
Estos embriones se distribuirán aleatoriamente en la incubadora de intervalos de tiempo.
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Incubación con lapso de tiempo: evaluación morfológica/morfocinética Estos embriones permanecerán en el TLI y se someterán a una evaluación y clasificación tanto morfológica como morfocinética de acuerdo con un modelo multivariable jerárquico.
No se eliminarán de la incubación mientras dure el cultivo.
Incubación con lapso de tiempo: evaluación morfológica Estos embriones permanecerán en el TLI y solo se someterán a una evaluación morfológica tradicional de acuerdo con los criterios aceptados sin imágenes adicionales.
Tampoco se retirarán de la incubación durante la duración del cultivo.
Los puntos de tiempo y los parámetros evaluados serán idénticos a los del brazo 1 del estudio.
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Comparador activo: Incubación de lapso de tiempo - Modificado
Estos embriones se distribuirán aleatoriamente en la incubadora de mesa.
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Incubación con lapso de tiempo: evaluación morfológica/morfocinética Estos embriones permanecerán en el TLI y se someterán a una evaluación y clasificación tanto morfológica como morfocinética de acuerdo con un modelo multivariable jerárquico.
No se eliminarán de la incubación mientras dure el cultivo.
Incubación con lapso de tiempo: evaluación morfológica Estos embriones permanecerán en el TLI y solo se someterán a una evaluación morfológica tradicional de acuerdo con los criterios aceptados sin imágenes adicionales.
Tampoco se retirarán de la incubación durante la duración del cultivo.
Los puntos de tiempo y los parámetros evaluados serán idénticos a los del brazo 1 del estudio.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Tasa de embarazo en curso
Periodo de tiempo: 12 semanas de gestación
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El número de mujeres con un embarazo viable (incluidos el saco gestacional y los latidos cardíacos fetales) a las 12 semanas de gestación dividido por el número de mujeres con transferencia de embriones.
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12 semanas de gestación
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Morfología embrionaria - Número de pronúcleos presentes después de la fertilización
Periodo de tiempo: Día 1 después de la fecundación
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Número de pronúcleos presentes en el embrión 1 día después de la fecundación.
Parámetro de evaluación morfológica utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 1 después de la fecundación
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Morfología embrionaria - Número de células presentes
Periodo de tiempo: Día 2 y Día 3 después de la fecundación
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Número de células presentes en el embrión 2 y 3 días después de la fecundación.
Parámetro de evaluación morfológica utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 2 y Día 3 después de la fecundación
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Morfología embrionaria - % fragmentación
Periodo de tiempo: Día 2 y Día 3 después de la fecundación
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Porcentaje de fragmentación en el embrión 2 y 3 días después de la fecundación.
Parámetro de evaluación morfológica utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 2 y Día 3 después de la fecundación
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Morfología embrionaria - Presencia de multinucleación
Periodo de tiempo: Día 2 después de la fecundación
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Presencia de multinucleación en el embrión el día 2 después de la fertilización.
Parámetro de evaluación morfológica utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 2 después de la fecundación
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Morfología embrionaria - Simetría
Periodo de tiempo: Día 2 y Día 3 después de la fecundación
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Simetría en el embrión 2 y 3 días después de la fecundación.
Parámetro de evaluación morfológica utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 2 y Día 3 después de la fecundación
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Morfología embrionaria - Etapa de desarrollo en el día 5
Periodo de tiempo: Día 5 después de la fecundación
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Etapa de desarrollo en el embrión 5 días después de la fertilización.
Caracterizado como: blastocisto temprano, blastocisto, expandido, eclosionado/eclosionado u otro.
Parámetro de evaluación morfológica utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 5 después de la fecundación
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Morfología embrionaria: grado de masa celular interna (ICM)
Periodo de tiempo: Día 5 después de la fecundación
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Grado ICM en el embrión 5 días después de la fecundación.
Parámetro de evaluación morfológica utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 5 después de la fecundación
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Morfología embrionaria - Grado de trofoectodermo
Periodo de tiempo: Día 5 después de la fecundación
|
Grado de trofoectodermo en el embrión 5 días después de la fecundación.
Parámetro de evaluación morfológica utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 5 después de la fecundación
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Morfocinética embrionaria - División abrupta
Periodo de tiempo: Día 0 a Día 3 después de la fecundación
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Presencia o ausencia de división abrupta del embrión de una a tres o más células: un parámetro de evaluación morfocinético utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 0 a Día 3 después de la fecundación
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Morfocinética del embrión: tiempo de escisión del embrión de cinco blastómeros
Periodo de tiempo: Día 0 a Día 3 después de la fecundación
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Presencia o ausencia de un intervalo de tiempo óptimo para la división en embriones de cinco blastómeros (48,8-56,6 horas): un parámetro de evaluación morfocinética que se utiliza para calificar la calidad del embrión.
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Día 0 a Día 3 después de la fecundación
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Morfocinética del embrión - Tiempo de embrión de dos a cuatro blastómeros
Periodo de tiempo: Día 1 a Día 3 después de la fertilización
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Presencia o ausencia del tiempo óptimo de duración de la división de 2 a 3 células y posterior división a 4 células (0-0,76 horas): un parámetro de evaluación morfocinética utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 1 a Día 3 después de la fertilización
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Morfocinética embrionaria - Tiempo de embrión de dos a tres blastómeros
Periodo de tiempo: Día 1 a Día 3 después de la fertilización
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Presencia o ausencia de tiempo óptimo de duración de la división de embrión de dos células a tres células (0-11,9
horas): un parámetro de evaluación morfocinética utilizado para calificar la calidad del embrión.
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Día 1 a Día 3 después de la fertilización
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Características del ovocito - Presencia de cuerpo polar
Periodo de tiempo: Recuperación de ovocitos hasta la fertilización - menos de 1 día
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Presencia de cuerpo polar del ovocito el día de la extracción del ovocito
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Recuperación de ovocitos hasta la fertilización - menos de 1 día
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Tasa bioquímica de embarazo
Periodo de tiempo: 14 días después de la transferencia de embriones
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El número de mujeres con β-hCG positivo aproximadamente 14 días después de la transferencia de embriones dividido por el número de mujeres con transferencia de embriones.
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14 días después de la transferencia de embriones
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Tasa acumulada de embarazo en curso
Periodo de tiempo: Un año desde la recolección de ovocitos
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Número acumulado de mujeres con un embarazo viable a las 12 semanas (donde el embarazo se obtuvo con embriones frescos y vitrificados del mismo ciclo de estimulación ovárica) dividido por el número de mujeres que se sometieron a un ciclo de recolección de ovocitos.
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Un año desde la recolección de ovocitos
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Tasa de nacidos vivos
Periodo de tiempo: Un año y cuarenta semanas
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El porcentaje de todos los ciclos de recogida de ovocitos (OPU) que conducen a un nacimiento vivo El marco de tiempo aproximado será el tiempo de un ciclo de estimulación ovárica más el embarazo a término
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Un año y cuarenta semanas
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Tasa de aborto espontáneo
Periodo de tiempo: Primeras 20 semanas de gestación
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Pérdida de un embrión o feto antes de las 20 semanas de gestación o con un peso inferior a 500 gramos.
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Primeras 20 semanas de gestación
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Ruth Ronn, M.D. C.M., Shaare Zedek Medical Center
- Investigador principal: Talia Eldar-Geva, M.D. Ph.D., Shaare Zedek Medical Center
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Hum Reprod. 2011 Jun;26(6):1270-83. doi: 10.1093/humrep/der037. Epub 2011 Apr 18.
- Fujiwara M, Takahashi K, Izuno M, Duan YR, Kazono M, Kimura F, Noda Y. Effect of micro-environment maintenance on embryo culture after in-vitro fertilization: comparison of top-load mini incubator and conventional front-load incubator. J Assist Reprod Genet. 2007 Jan;24(1):5-9. doi: 10.1007/s10815-006-9088-3. Epub 2006 Dec 13.
- Zhang JQ, Li XL, Peng Y, Guo X, Heng BC, Tong GQ. Reduction in exposure of human embryos outside the incubator enhances embryo quality and blastulation rate. Reprod Biomed Online. 2010 Apr;20(4):510-5. doi: 10.1016/j.rbmo.2009.12.027. Epub 2009 Dec 28.
- Basile N, Morbeck D, Garcia-Velasco J, Bronet F, Meseguer M. Type of culture media does not affect embryo kinetics: a time-lapse analysis of sibling oocytes. Hum Reprod. 2013 Mar;28(3):634-41. doi: 10.1093/humrep/des462. Epub 2013 Jan 12.
- Meseguer M, Herrero J, Tejera A, Hilligsoe KM, Ramsing NB, Remohi J. The use of morphokinetics as a predictor of embryo implantation. Hum Reprod. 2011 Oct;26(10):2658-71. doi: 10.1093/humrep/der256. Epub 2011 Aug 9.
- Meseguer M, Rubio I, Cruz M, Basile N, Marcos J, Requena A. Embryo incubation and selection in a time-lapse monitoring system improves pregnancy outcome compared with a standard incubator: a retrospective cohort study. Fertil Steril. 2012 Dec;98(6):1481-9.e10. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.08.016. Epub 2012 Sep 10.
- Kirkegaard K, Ahlstrom A, Ingerslev HJ, Hardarson T. Choosing the best embryo by time lapse versus standard morphology. Fertil Steril. 2015 Feb;103(2):323-32. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.11.003. Epub 2014 Dec 17.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine and the Practice Committee of the Society for Assisted Reproductive Technology. Criteria for number of embryos to transfer: a committee opinion. Fertil Steril. 2013 Jan;99(1):44-46. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.09.038. Epub 2012 Oct 22.
- Swain JE. Decisions for the IVF laboratory: comparative analysis of embryo culture incubators. Reprod Biomed Online. 2014 May;28(5):535-47. doi: 10.1016/j.rbmo.2014.01.004. Epub 2014 Jan 27.
- Armstrong S, Arroll N, Cree LM, Jordan V, Farquhar C. Time-lapse systems for embryo incubation and assessment in assisted reproduction. Cochrane Database Syst Rev. 2015 Feb 27;(2):CD011320. doi: 10.1002/14651858.CD011320.pub2.
- Lemmen JG, Agerholm I, Ziebe S. Kinetic markers of human embryo quality using time-lapse recordings of IVF/ICSI-fertilized oocytes. Reprod Biomed Online. 2008 Sep;17(3):385-91. doi: 10.1016/s1472-6483(10)60222-2.
- Wong CC, Loewke KE, Bossert NL, Behr B, De Jonge CJ, Baer TM, Reijo Pera RA. Non-invasive imaging of human embryos before embryonic genome activation predicts development to the blastocyst stage. Nat Biotechnol. 2010 Oct;28(10):1115-21. doi: 10.1038/nbt.1686. Epub 2010 Oct 3.
- Dal Canto M, Coticchio G, Mignini Renzini M, De Ponti E, Novara PV, Brambillasca F, Comi R, Fadini R. Cleavage kinetics analysis of human embryos predicts development to blastocyst and implantation. Reprod Biomed Online. 2012 Nov;25(5):474-80. doi: 10.1016/j.rbmo.2012.07.016. Epub 2012 Aug 2.
- Cruz M, Garrido N, Herrero J, Perez-Cano I, Munoz M, Meseguer M. Timing of cell division in human cleavage-stage embryos is linked with blastocyst formation and quality. Reprod Biomed Online. 2012 Oct;25(4):371-81. doi: 10.1016/j.rbmo.2012.06.017. Epub 2012 Jul 7.
- Hlinka D, Kalatova B, Uhrinova I, Dolinska S, Rutarova J, Rezacova J, Lazarovska S, Dudas M. Time-lapse cleavage rating predicts human embryo viability. Physiol Res. 2012;61(5):513-25. doi: 10.33549/physiolres.932287. Epub 2012 Aug 8.
- Rubio I, Kuhlmann R, Agerholm I, Kirk J, Herrero J, Escriba MJ, Bellver J, Meseguer M. Limited implantation success of direct-cleaved human zygotes: a time-lapse study. Fertil Steril. 2012 Dec;98(6):1458-63. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.07.1135. Epub 2012 Aug 25.
- Azzarello A, Hoest T, Mikkelsen AL. The impact of pronuclei morphology and dynamicity on live birth outcome after time-lapse culture. Hum Reprod. 2012 Sep;27(9):2649-57. doi: 10.1093/humrep/des210. Epub 2012 Jun 26.
- Aguilar J, Motato Y, Escriba MJ, Ojeda M, Munoz E, Meseguer M. The human first cell cycle: impact on implantation. Reprod Biomed Online. 2014 Apr;28(4):475-84. doi: 10.1016/j.rbmo.2013.11.014. Epub 2013 Dec 11.
- Hashimoto S, Kato N, Saeki K, Morimoto Y. Selection of high-potential embryos by culture in poly(dimethylsiloxane) microwells and time-lapse imaging. Fertil Steril. 2012 Feb;97(2):332-7. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.11.042. Epub 2012 Jan 2.
- Conaghan J, Chen AA, Willman SP, Ivani K, Chenette PE, Boostanfar R, Baker VL, Adamson GD, Abusief ME, Gvakharia M, Loewke KE, Shen S. Improving embryo selection using a computer-automated time-lapse image analysis test plus day 3 morphology: results from a prospective multicenter trial. Fertil Steril. 2013 Aug;100(2):412-9.e5. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.04.021. Epub 2013 May 28.
- VerMilyea MD, Tan L, Anthony JT, Conaghan J, Ivani K, Gvakharia M, Boostanfar R, Baker VL, Suraj V, Chen AA, Mainigi M, Coutifaris C, Shen S. Computer-automated time-lapse analysis results correlate with embryo implantation and clinical pregnancy: a blinded, multi-centre study. Reprod Biomed Online. 2014 Dec;29(6):729-36. doi: 10.1016/j.rbmo.2014.09.005. Epub 2014 Sep 21.
- Rubio I, Galan A, Larreategui Z, Ayerdi F, Bellver J, Herrero J, Meseguer M. Clinical validation of embryo culture and selection by morphokinetic analysis: a randomized, controlled trial of the EmbryoScope. Fertil Steril. 2014 Nov;102(5):1287-1294.e5. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.07.738. Epub 2014 Sep 11.
- Yang Z, Zhang J, Salem SA, Liu X, Kuang Y, Salem RD, Liu J. Selection of competent blastocysts for transfer by combining time-lapse monitoring and array CGH testing for patients undergoing preimplantation genetic screening: a prospective study with sibling oocytes. BMC Med Genomics. 2014 Jun 22;7:38. doi: 10.1186/1755-8794-7-38.
- Morbeck DE, Krisher RL, Herrick JR, Baumann NA, Matern D, Moyer T. Composition of commercial media used for human embryo culture. Fertil Steril. 2014 Sep;102(3):759-766.e9. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.05.043. Epub 2014 Jul 4.
- Ciray HN, Aksoy T, Goktas C, Ozturk B, Bahceci M. Time-lapse evaluation of human embryo development in single versus sequential culture media--a sibling oocyte study. J Assist Reprod Genet. 2012 Sep;29(9):891-900. doi: 10.1007/s10815-012-9818-7. Epub 2012 Jun 20.
- Goodman LR, Goldberg J, Falcone T, Austin C, Desai N. Does the addition of time-lapse morphokinetics in the selection of embryos for transfer improve pregnancy rates? A randomized controlled trial. Fertil Steril. 2016 Feb;105(2):275-85.e10. doi: 10.1016/j.fertnstert.2015.10.013. Epub 2015 Oct 29.
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