- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT05567653
Wpływ probiotyków na mikroflorę jelitową, aktywację endokannabinoidów i układu odpornościowego oraz objawy zmęczenia u tancerzy
Wpływ 3-miesięcznej suplementacji mieszanki probiotycznej (L. Helveticus R-0052, B. Longum R-0175) na mikroflorę jelitową i metabolizm, aktywację endokannabinoidów i systemów odpornościowych wraz z objawami zmęczenia u profesjonalnych tancerzy
Celem planowanych badań jest ocena dynamiki zmian elementów osi jelitowo-mózgowej (GBA), profilu cytokin oraz markerów układu endokannabinoidowego po suplementacji diety probiotykami Lactobacillus helveticus Rosell-52 i Bifidobacterium longum Rosell- 175 przez profesjonalnych tancerzy. Chociaż w ostatnich latach obserwuje się wzrost zainteresowania wpływem mikroflory jelitowej na adaptację organizmu do bodźców stresowych oraz na ogólny stan zdrowia, brakuje informacji na temat wpływu probiotyków na układy zaangażowane w utrzymanie równowagi neuropsychiatrycznej, takie jak: układ endokannabinoidowy.
W celu określenia zasadności zastosowanej terapii selektywnymi probiotykami oceniane będą: bakterie jelitowe i metabolity bakteryjne w kale, kannabinoidy i receptory kannabinoidowe oraz enzymy we krwi, wskaźniki zaburzeń psychicznych we krwi, cytokiny odpowiedzialne za modulacji osi jelitowo-mózgowej we krwi, a także kwestionariusze dotyczące funkcjonowania przewodu pokarmowego, zmęczenia, stresu i jakości snu.
W badaniu wezmą udział czynni tancerze Teatru Polskiego w Poznaniu, Polskiego Teatru Tańca, Prywatnej Szkoły Sztuki Tańca w Poznaniu oraz studenci Akademii Wychowania Fizycznego na kierunku Taniec. Tancerze to grupa sportowców narażona na szczególne urazy i przeciążenia pracą. Profesjonalni tancerze spędzają wiele godzin tygodniowo na intensywnym treningu fizycznym. Największy odsetek urazów występujących w grupie tancerzy zawodowych to urazy przewlekłe, w tym: stany zapalne tkanek miękkich, naciągnięcia i naderwania mięśni.
Taniec zawodowy jest jedną z najbardziej wymagających fizycznie form aktywności fizycznej, a jednocześnie wiąże się z dużym obciążeniem dla układu nerwowego problemami powodowanymi występami przed publicznością lub subiektywnym jury, częstymi podróżami i zaburzeniami rytmu dobowego rytm.
Przegląd badań
Status
Warunki
Szczegółowy opis
Profesjonalni tancerze są często określani jako sportowcy artystyczni ze względu na ich wysoki poziom aktywności fizycznej i współzawodnictwa. Trening taneczny powyżej 11,5 godziny tygodniowo zwiększa ryzyko kontuzji (u kobiet – głównie urazów kości, u mężczyzn – głównie stłuczeń i urazów ścięgien). Jedną z przyczyn zwiększonej podatności tancerzy na kontuzje jest stres psychiczny. Wyniki obserwacji wskazują, że tancerze często decydują się na kontynuowanie treningu pomimo odczuwania bólu, co ogranicza płynność ich ruchów i prowadzi do dalszego wzrostu stresu. Grupy osób o wysokiej aktywności fizycznej są bardziej narażone na dyspepsję czynnościową (FD) oraz zespół jelita drażliwego (IBS), których występowanie jest skorelowane z przewlekłym stresem. W wyniku przewlekłego stresu i aktywacji osi podwzgórzowo-przysadkowo-nadnerczowej (HPA) dochodzi do inicjacji procesów zapalnych w błonie śluzowej przewodu pokarmowego. Obecność noradrenaliny zwiększa adhezję bakterii i wirusów do nabłonka, co z kolei moduluje układ odpornościowy w jelitach i nasila ich stan zapalny. Działający ogólnoustrojowo kortyzol powoduje wyciek komórek połączeń ścisłych (TJ) i zwiększenie przepuszczalności bariery jelitowej. Stan zapalny stymuluje wydzielanie kortyzolu, który inicjuje dalszy cykl zapalenia i osłabienia funkcji bariery jelitowej. W konsekwencji uwalniane w przebiegu stanu zapalnego cytokiny i mediatory zapalne działają bezpośrednio na zakończenia nerwowe, które przekazują te doprowadzające sygnały nerwowe do mózgu, stając się endogennym stresorem.
Kiedy egzogenne i endogenne czynniki stresowe nakładają się na siebie, wzrasta percepcja stresu przez organizm, co ostatecznie prowadzi do zmian psychologicznych, fizjologicznych i behawioralnych.
Ból i depresja są częstymi chorobami współistniejącymi pochodzenia neuropsychiatrycznego. Jednym z układów regulacyjnych organizmu, który w obu przypadkach jest dysfunkcyjny, jest układ endokannabinoidowy (ECS). Sugeruje się, że choroby te mogą być spowodowane intensywnym i długotrwałym wysiłkiem fizycznym, który zaburza barierę jelitową, powodując zmiany w profilu metabolitów i funkcji mikrobioty jelitowej. Przetrenowanie prowadzi do wzrostu poziomu kortyzolu, adrenaliny i noradrenaliny oraz do translokacji lipopolisacharydu (LPS) poza jelita, zwiększając stężenie cytokin prozapalnych w organizmie. Powoduje to rozregulowanie równowagi pomiędzy serotoniną (5-HT), dopaminą (DA) i kwasem gamma-aminomasłowym (GABA) oraz uczucie zmęczenia. Zmiany te prowadzą do dalszej aktywacji układu endokannabinoidowego i w dłuższej perspektywie osłabienia zdolności adaptacyjnych.
Właściwości neuromodulacyjne układu kannabinoidowego przejawiają się m.in. w krótko- i długoterminowej plastyczności synaptycznej i modulacji przewodnictwa bólowego. Wyniki badań wskazują, że układ endokannabinoidowy, oprócz swojej kluczowej roli w regulacji motoryki jelit, wpływa również na funkcje wydzielnicze przewodu pokarmowego oraz integralność nabłonka jelitowego, co może być alternatywnym sposobem regulacji układu odpornościowego i stanu zapalnego w jelita.
Receptory kannabinoidowe typu 1 (CB1) zlokalizowane są presynaptycznie w błonie komórkowej neuronów ośrodkowego i obwodowego układu nerwowego, a ich aktywacja hamuje uwalnianie wielu neuroprzekaźników, tj. acetylocholiny, noradrenaliny, dopaminy, serotoniny, glutaminianu i kwasu γ-aminomasłowego. Receptory kannabinoidowe typu 2 (CB2) znajdują się głównie na powierzchni komórek układu odpornościowego, zwłaszcza limfocytów B, makrofagów i monocytów. Ich aktywacja hamuje uwalnianie cytokin prozapalnych i zwiększa uwalnianie cytokin przeciwzapalnych.
Receptory kannabinoidowe znajdują się zarówno w układzie odpornościowym, jak i pokarmowym. Endogenne kannabinoidy modyfikują reakcję organizmu na stres, wpływając na oś podwzgórze-przysadka-nadnercza (HPA). Stres prowadzi do zwiększonej aktywności endokannabinoidów, które głównie poprzez receptory kannabinoidowe CB1 prowadzą do zahamowania uwalniania kortykosteroidów. Dodatkowo aktywacja receptorów CB1 w przewodzie pokarmowym zmniejsza nasilenie przewodzenia bólu (nocycepcji), które jest indukowane przez aktywację m.in. Receptory waniloidowe TRPV1. Wykazano, że stan zapalny w obrębie nabłonka jelitowego przewodu pokarmowego powoduje wzrost przewodnictwa nerwowego neuronów zawierających receptory CB1, co przyczynia się do zmiany proporcji tych receptorów w stosunku do TRPV1 zlokalizowanego głównie w błonie komórkowej aferentne zwoje korzeni grzbietowych (DRG). W rezultacie dochodzi do interakcji dwóch różnych receptorów i zniesienia aktywności receptora TRPV1. Mediatory stanu zapalnego uwalniane z nabłonka jelitowego stymulują ból trzewny, podczas gdy aktywacja receptorów CB2 prawdopodobnie osłabia ich działanie.
Istnieją przesłanki, że jakościowa i ilościowa zmiana mikroflory jelitowej może wpływać na aktywność endogennych ligandów i mediatorów układu endokannabinoidowego (ECS). Chociaż mechanizmy regulacji poziomu endokannabinoidów i pokrewnych bioaktywnych lipidów przez wybrane bakterie nie są do końca poznane, wykazano, że suplementacja probiotykami może indukować wzrost stężenia endogennych kannabinoidów, tj. ) i 2-PG (palmitoiloglicerol). W eksperymencie na zwierzętach zastosowanie hamowania lipazy monoacyloglicerolowej zmniejszyło degradację 2-AG, co zmniejszyło endotoksemię i ogólnoustrojowe zapalenie. W innym badaniu delecja genu Myd88 kodującego białko receptora TLR (receptor Toll-like) w komórkach nabłonka jelitowego zmieniła skład mikroflory jelitowej, zmniejszyła syntezę anandamidu (AEA) i zwiększyła syntezę przeciwzapalnych endokannabinoidów , takie jak: 2-AG, 2-PG, 2OG. Uwolnione endokannabinoidy o właściwościach przeciwzapalnych mają zdolność aktywacji tzw. sierocych receptorów GPR119, które są związane z wydzielaniem mediatorów przeciwzapalnych. Ponadto wykazano, że wzrost stężenia LPS indukuje syntezę AEA i spadek hydrolazy amidu kwasów tłuszczowych (FAAH) w makrofagach, a także wzrost produkcji AEA w limfocytach obwodowych, co może mieć znaczenie dla regulacji funkcji bariery jelitowej i poziomu stanu zapalnego. Wyniki badań przeprowadzonych na modelu mysim ujawniły znaczenie mikroflory jelitowej w regulacji ekspresji genu NAPE-PLD (fosfolipaza D specyficzna dla n-acylofosfatydyloetanoloaminy), czyli enzymu biorącego udział w syntezie anandamidu oraz w selektywna regulacja ekspresji mRNA CB1. W modelu otyłych myszy zaobserwowano, że podawanie probiotyku obniżyło poziom ekspresji mRNA receptora CB1 przy jednoczesnym zmniejszeniu stężenia ligandu AEA i zwiększeniu ekspresji mRNA FAAH. W innych badaniach podanie probiotyku myszom skutkowało obniżeniem stężenia LPS w osoczu krwi, co korelowało zarówno z poziomem AEA, jak i ekspresją mRNA CB1 w nabłonku okrężnicy. W eksperymentach in vitro i in vivo na modelach zwierzęcych zaobserwowano, że receptory CB2 są aktywowane, gdy występuje brak równowagi we wrodzonym układzie odpornościowym. Inflammasomy NLRP3 są tłumione przez autofagię, mechanizm, który może być zaangażowany w tłumienie stanu zapalnego i regulację bariery jelitowej, m.in. w zespole jelita drażliwego. Kolejnym czynnikiem będącym potencjalnym inhibitorem NLRP3 jest metabolit mikrobioty jelitowej, maślan, który należy do krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych. Jego działanie korzystnie wpływa na funkcje komórek nabłonka jelitowego oraz stabilność bariery jelitowej. W badaniach przeprowadzonych na myszach wolnych od drobnoustrojów, po przeniesieniu mikrobioty jelitowej, zmienił się metabolizm endokannabinoidów w przewodzie pokarmowym. Zastosowanie terapii probiotycznej u myszy z wcześniej wywołaną dysbiozą jelitową zmieniło aktywację receptorów endokannabinoidowych, zachowanie zwierząt oraz zmniejszenie stanu zapalnego jelit. Inne wyniki badań wskazują, że hamowanie receptora CB1 u otyłych myszy stymuluje wydzielanie mucyny, która jest głównym źródłem składników odżywczych dla rozwoju Akkermansia muciniphila. Obserwacja ta potwierdza wyniki badań innych autorów, którzy wykazali możliwość regulacji receptorów CB2 przez niektóre gatunki bakterii jelitowych i związaną z tym odpowiedź immunologiczną.
Mechanizmy przekazywania sygnałów zapalnych z jelita do OUN nie są w pełni wyjaśnione. Wyniki badań wskazują jednak, że ogólnoustrojowy stan zapalny towarzyszący objawom depresyjnym jest związany ze zmianami w ekosystemie mikrobioty jelitowej oraz produkcją SCFA i innych metabolitów o charakterze neurobiologicznym. Co więcej, może również prowadzić do zmian w syntezie i uwalnianiu endokannabinoidów czy szlakach metabolicznych tryptofanu i kinureniny (KYN). Dotychczas zaobserwowano związek między ECS a szlakiem kynureniny w zaburzeniach neurologicznych, takich jak padaczka czy migrenowe bóle głowy, które wiążą się z nadmierną stymulacją komórek i ekscytotoksycznością. Najnowsze wyniki badań wskazują na możliwość modyfikacji przemian tryptofanu i kinureniny za pomocą terapii probiotycznej.
Istnieje ograniczona liczba badań na ludziach dotyczących roli mikroflory jelitowej w modulacji ECS. W dostępnym piśmiennictwie brakuje badań opisujących związek zmian mikrobioty jelitowej i jej metabolomu pod wpływem ukierunkowanej wieloszczepowej terapii probiotycznej na odpowiedź układu endokannabinoidowego i immunologicznego u osób poddanych dużemu stresowi fizycznemu i psychicznemu. Obserwacje, które zostaną poczynione u tancerzy suplementowanych wieloszczepowym probiotykiem zawierającym Lactobacillus helveticus Rosell-52 i Bifidobacterium longum Rosell-175, mogą pomóc w znalezieniu skutecznych narzędzi w leczeniu zaburzeń żołądkowo-jelitowych i stresu z nimi związanego. Potencjalnym mechanizmem tego działania może być przywrócenie prawidłowej mikroflory jelitowej i profilu jej metabolitów, a także poprawa bariery jelitowej i funkcji endokannabinoidów.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
-
Poznan, Polska, 61-871
- Poznan University of Physical Education
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Wiek > 18 lat,
- Profesjonalna aktywność taneczna z ponad 8 godzinami treningu tygodniowo.
Kryteria wyłączenia:
- Wiek 36 lat;
- Doznanie kontuzji w ciągu 3 miesięcy od rozpoczęcia badania;
- Przyjmowanie pre- i/lub probiotyków w ciągu ostatnich 3 miesięcy przed badaniem;
- Hospitalizacja w ciągu ostatnich 4 tygodni przed rozpoczęciem badania;
- Podróżowanie do krajów tropikalnych w ciągu ostatnich 4 tygodni przed rozpoczęciem studiów;
- Przyjmowanie antybiotyków, sterydów i sterydów anabolicznych w ciągu ostatnich 4 tygodni przed badaniem.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Potroić
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Grupa leczenia probiotykami
ok. 30 uczestników
|
3-miesięczna suplementacja probiotykami wieloszczepowymi (jeden dziennie, 3 x 10⁹ CFU)
Inne nazwy:
|
|
Komparator placebo: Grupa placebo
ok. 30 uczestników
|
3-miesięczne placebo
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Jakościowa ocena mikroflory jelitowej w próbkach kału
Ramy czasowe: Początkowa wartość i 3 miesiące
|
• gatunki bakterii jelitowych w kale zostaną ocenione przy użyciu płytkiej metody sekwencjonowania shotgun, NGS (Next-Generation Sequencing);
|
Początkowa wartość i 3 miesiące
|
|
Ilościowa Zmiana Mikrobioty Jelitowej w Próbkach Kału
Ramy czasowe: Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
• określenie ilościowych (jednostki tworzące kolonie - CFU) zmian bakterii w kale – do oceny zmian zostanie zastosowana metoda płytkiego sekwencjonowania shotgun, analiza molekularna NGS (Next Generation Sequencing);
|
Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
|
Mikrobiom jelitowy w próbkach kału
Ramy czasowe: Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
Metabolity ze zmianą krotności >1,5 i p<0,05 uznano za istotnie zmienione.
Podane wartości reprezentują liczbę metabolitów spełniających te kryteria w grupie probiotycznej.
• analiza metabolomiczna (nieukierunkowany metabolom, krótkołańcuchowe kwasy tłuszczowe, trimetyloaminy, katabolity tryptofanu) zostanie przeprowadzona na spektrometrze mas z analizatorem kwadrupolowo-czasu przelotu (QToF) połączonym z wysokosprawnym chromatografem cieczowym (UHPLC).
|
Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
|
Ilościowa zmiana poziomu endokannabinoidów w próbkach krwi
Ramy czasowe: Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
• oznaczenie endokannabinoidów i receptorów kannabinoidowych: anandamidu (AEA) za pomocą zestawu ELISA (nanogramy na mililitr (ng/mL));
|
Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
|
Ilościowa zmiana poziomu receptorów endokannabinoidów w próbkach krwi
Ramy czasowe: Początkowe i po 3 miesiącach
|
• oznaczenie receptorów kannabinoidowych: Endokannabinoidowy Receptor 2 (CNR2) przy użyciu zestawu ELISA (nanogramy na mililitr (ng/mL));
|
Początkowe i po 3 miesiącach
|
|
Ilościowa zmiana enzymów metabolizmu endokannabinoidów we krwi
Ramy czasowe: Linia bazowa i 3 miesiące
|
• oznaczenie enzymów metabolizujących kannabinoidy: hydrolazy amidów kwasów tłuszczowych (FAAH) przy użyciu zestawu ELISA (nanogramy na mililitr (ng/mL));
|
Linia bazowa i 3 miesiące
|
|
Ilościowa Zmiana Białek Bariery Jelitowej w Próbkach Krwi
Ramy czasowe: Linia podstawowa i 3 miesiące
|
• określenie stężeń biomarkerów krwi zaburzonej bariery jelitowej: zonuliny, kalprotektyny (CALPRO) przy użyciu zestawu ELISA (nanogramy na mililitr (ng/mL));
|
Linia podstawowa i 3 miesiące
|
|
Ilościowa zmiana biomarkerów bariery jelitowej w próbkach krwi
Ramy czasowe: Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
• oznaczanie stężeń biomarkerów krwi zaburzonej bariery jelitowej: lipopolisacharydu (LPS) przy użyciu zestawu ELISA (pikogramy na mililitr (pg/mL));
|
Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
|
Ilościowa zmiana czynnika martwicy nowotworów-alfa (TNF-α) w próbkach krwi
Ramy czasowe: Linia bazowa i 3 miesiące
|
• oznaczanie stężenia czynnika martwicy nowotworów-alfa (TNF-α) we krwi przy użyciu zestawu ELISA (nanogramy na mililitr (ng/mL));
|
Linia bazowa i 3 miesiące
|
|
Ilościowa zmiana czynnika hamującego białaczkę (LIF) w próbkach krwi
Ramy czasowe: Linia bazowa i 3 miesiące
|
• oznaczanie stężenia białka hamującego białaczkę (LIF) we krwi za pomocą testu ELISA (nanogramy na mililitr (ng/mL));
|
Linia bazowa i 3 miesiące
|
|
Ilościowa zmiana profilu interleukiny we krwi
Ramy czasowe: Wartości wyjściowe i po 3 miesiącach
|
• określenie stężenia interleukin: IL-1β (interleukina-1beta), przy użyciu zestawu ELISA (pikogramy na mililitr (pg/mL));
|
Wartości wyjściowe i po 3 miesiącach
|
|
Ilościowa zmiana biomarkera przewlekłego stresu w próbkach krwi - kortyzol
Ramy czasowe: Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
• oznaczenie stężenia kortyzolu we krwi za pomocą zestawu ELISA (nanogramy na mililitr (ng/mL)) - Zamiast kortyzolu, analizowano poziomy IL-10 jako marker odpowiedzi przeciwzapalnej [pg/mL].
|
Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
|
Ilościowa zmiana biomarkera zapalenia w próbkach krwi - białko C-reaktywne
Ramy czasowe: Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
• oznaczenie stężenia białka C-reaktywnego (CRP) za pomocą zestawu ELISA (pikogramów na mililitr (pg/mL));
|
Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Kwestionariusz Radzenia Sobie ze Stresem
Ramy czasowe: Linia początkowa i 3 miesiące
|
• określenie metod aktywnego radzenia sobie ze stresem przy użyciu Inwentarza do Pomiaru Radzenia Sobie ze Stresem (Mini-COPE); Ma na celu ustalenie, jak zachowuje się uczestnik badania, gdy doświadcza określonych zdarzeń; Skala: 0 = "Prawie nigdy tego nie robię", 1 = "Rzadko to robię", 2 = "Często to robię", 3 = "Prawie zawsze to robię"; [0-18] - wyższe wyniki oznaczają lepszy rezultat
|
Linia początkowa i 3 miesiące
|
|
Kwestionariusz Zmęczenia
Ramy czasowe: Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
• ocena poziomu zmęczenia za pomocą Skali Oceny Zmęczenia (FAS); stwierdzenia kwestionariusza odnoszą się do poczucia dobrego samopoczucia; Skala: 1. Nigdy (0 punktów), 2. Czasami (raz w miesiącu lub rzadziej) (1 punkt), 3. Regularnie (kilka razy w miesiącu) (2 punkty), 4. Często (tygodniowo) (3 punkty) i 5. Zawsze (codziennie) (4 punkty); [0-32] - wyższy wynik oznacza gorszy wynik
|
Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
|
Kwestionariusz Zaburzeń Przewodu Pokarmowego
Ramy czasowe: Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
• ocena bólu żołądkowo-jelitowego za pomocą Kwestionariusza Rzym IV dla dorosłych (wybrane pytania dotyczące zespołu jelita drażliwego, zaparć i biegunki); stwierdzenia kwestionariusza odnoszą się do częstotliwości i nasilenia zaburzeń; [0-10] – wyższe wyniki oznaczają gorszy wynik;
|
Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
|
Kwestionariusz Jakości Snu
Ramy czasowe: Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
• ocena poziomu jakości snu przy użyciu Pittsburgh Sleep Quality Questionnaire (PSQI); stwierdzenia w kwestionariuszu odnoszą się do częstotliwości zaburzeń snu; [0-3] – wyższe wyniki oznaczają gorszy wynik;
|
Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
|
Analiza Masy Ciała (BMI, kg/m^2)
Ramy czasowe: Linia bazowa i 3 miesiące
|
• określenie masy ciała i składu ciała metodą elektrycznej bioimpedancji;
|
Linia bazowa i 3 miesiące
|
|
Analiza Składu Ciała (Procent Całkowitej Masy Ciała)
Ramy czasowe: Linia podstawowa i 3 miesiące
|
• ocena masy kostnej, tkanki tłuszczowej i beztłuszczowej przy użyciu metody bioimpedancji elektrycznej;
|
Linia podstawowa i 3 miesiące
|
|
Złożona Miara Składu Diety Oceniana za Pomocą Dzienników Żywieniowych
Ramy czasowe: Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
• ocena spożycia białka, tłuszczu, węglowodanów i błonnika za pomocą dzienniczków żywieniowych (gramy);
|
Linia wyjściowa i 3 miesiące
|
|
Test Progu Bólu (Niutony)
Ramy czasowe: Wyjściowo i po 3 miesiącach
|
• ocena progu bólu na bodźce mechaniczne za pomocą algometru.
Próg bólu na ucisk mechaniczny oceniano na mięśniu zginaczu kciuka przy użyciu algometru ciśnieniowego.
Sondę przykładano prostopadle, stopniowo zwiększając nacisk, aż uczestnik wskazał pierwsze bolesne odczucie.
Wykonano trzy kolejne pomiary, a średnią wartość w niutonach zarejestrowano jako wynik.
|
Wyjściowo i po 3 miesiącach
|
|
Zmiany w liczbie czerwonych krwinek
Ramy czasowe: Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
• oznaczanie liczby krwinek czerwonych metodą cytometrii przepływowej (biliony komórek na litr);
|
Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
|
Zmiany w liczbie białych krwinek
Ramy czasowe: Wartości wyjściowe i po 3 miesiącach
|
• oznaczenie liczby krwinek białych z wykorzystaniem cytometrii przepływowej (miliardy komórek na litr);
|
Wartości wyjściowe i po 3 miesiącach
|
|
Zmiany poziomu hemoglobiny
Ramy czasowe: Początkowa i 3 miesiące
|
• oznaczenie poziomu hemoglobiny przy użyciu cytometrii przepływowej (gramy na litr);
|
Początkowa i 3 miesiące
|
|
Zmiany hematokrytu
Ramy czasowe: Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
• oznaczanie hematokrytu za pomocą cytometrii przepływowej (procentowy udział krwinek czerwonych we krwi);
|
Punkt wyjściowy i 3 miesiące
|
|
Zmiany liczby płytek krwi
Ramy czasowe: Wartości wyjściowe i po 3 miesiącach
|
• oznaczenie liczby płytek krwi metodą cytometrii przepływowej (miliardy na litr)
|
Wartości wyjściowe i po 3 miesiącach
|
Współpracownicy i badacze
Śledczy
- Krzesło do nauki: Joanna Karolkiewicz, Professor, Poznan University of Physical Education
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Cani PD, Possemiers S, Van de Wiele T, Guiot Y, Everard A, Rottier O, Geurts L, Naslain D, Neyrinck A, Lambert DM, Muccioli GG, Delzenne NM. Changes in gut microbiota control inflammation in obese mice through a mechanism involving GLP-2-driven improvement of gut permeability. Gut. 2009 Aug;58(8):1091-103. doi: 10.1136/gut.2008.165886. Epub 2009 Feb 24.
- Cani PD, Bibiloni R, Knauf C, Waget A, Neyrinck AM, Delzenne NM, Burcelin R. Changes in gut microbiota control metabolic endotoxemia-induced inflammation in high-fat diet-induced obesity and diabetes in mice. Diabetes. 2008 Jun;57(6):1470-81. doi: 10.2337/db07-1403. Epub 2008 Feb 27.
- Caporaso JG, Kuczynski J, Stombaugh J, Bittinger K, Bushman FD, Costello EK, Fierer N, Pena AG, Goodrich JK, Gordon JI, Huttley GA, Kelley ST, Knights D, Koenig JE, Ley RE, Lozupone CA, McDonald D, Muegge BD, Pirrung M, Reeder J, Sevinsky JR, Turnbaugh PJ, Walters WA, Widmann J, Yatsunenko T, Zaneveld J, Knight R. QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data. Nat Methods. 2010 May;7(5):335-6. doi: 10.1038/nmeth.f.303. Epub 2010 Apr 11. No abstract available.
- Rousseaux C, Thuru X, Gelot A, Barnich N, Neut C, Dubuquoy L, Dubuquoy C, Merour E, Geboes K, Chamaillard M, Ouwehand A, Leyer G, Carcano D, Colombel JF, Ardid D, Desreumaux P. Lactobacillus acidophilus modulates intestinal pain and induces opioid and cannabinoid receptors. Nat Med. 2007 Jan;13(1):35-7. doi: 10.1038/nm1521. Epub 2006 Dec 10.
- Acharya N, Penukonda S, Shcheglova T, Hagymasi AT, Basu S, Srivastava PK. Endocannabinoid system acts as a regulator of immune homeostasis in the gut. Proc Natl Acad Sci U S A. 2017 May 9;114(19):5005-5010. doi: 10.1073/pnas.1612177114. Epub 2017 Apr 24.
- Alhouayek M, Muccioli GG. COX-2-derived endocannabinoid metabolites as novel inflammatory mediators. Trends Pharmacol Sci. 2014 Jun;35(6):284-92. doi: 10.1016/j.tips.2014.03.001. Epub 2014 Mar 29.
- Alhouayek M, Lambert DM, Delzenne NM, Cani PD, Muccioli GG. Increasing endogenous 2-arachidonoylglycerol levels counteracts colitis and related systemic inflammation. FASEB J. 2011 Aug;25(8):2711-21. doi: 10.1096/fj.10-176602. Epub 2011 May 6.
- Biernacki M, Skrzydlewska E. Metabolism of endocannabinoids. Postepy Hig Med Dosw (Online). 2016 Aug 11;70(0):830-43. doi: 10.5604/17322693.1213898.
- Cani PD, Plovier H, Van Hul M, Geurts L, Delzenne NM, Druart C, Everard A. Endocannabinoids--at the crossroads between the gut microbiota and host metabolism. Nat Rev Endocrinol. 2016 Mar;12(3):133-43. doi: 10.1038/nrendo.2015.211. Epub 2015 Dec 18.
- Castillo PE, Younts TJ, Chavez AE, Hashimotodani Y. Endocannabinoid signaling and synaptic function. Neuron. 2012 Oct 4;76(1):70-81. doi: 10.1016/j.neuron.2012.09.020.
- Cheng YH, Ho MS, Huang WT, Chou YT, King K. Modulation of Glucagon-like Peptide-1 (GLP-1) Potency by Endocannabinoid-like Lipids Represents a Novel Mode of Regulating GLP-1 Receptor Signaling. J Biol Chem. 2015 Jun 5;290(23):14302-13. doi: 10.1074/jbc.M115.655662. Epub 2015 Apr 22.
- Colin-Gonzalez AL, Aguilera G, Santamaria A. Cannabinoids: Glutamatergic Transmission and Kynurenines. Adv Neurobiol. 2016;12:173-98. doi: 10.1007/978-3-319-28383-8_10.
- Crowe MS, Nass SR, Gabella KM, Kinsey SG. The endocannabinoid system modulates stress, emotionality, and inflammation. Brain Behav Immun. 2014 Nov;42:1-5. doi: 10.1016/j.bbi.2014.06.007. Epub 2014 Jun 19.
- Derrien M, Vaughan EE, Plugge CM, de Vos WM. Akkermansia muciniphila gen. nov., sp. nov., a human intestinal mucin-degrading bacterium. Int J Syst Evol Microbiol. 2004 Sep;54(Pt 5):1469-1476. doi: 10.1099/ijs.0.02873-0.
- Everard A, Belzer C, Geurts L, Ouwerkerk JP, Druart C, Bindels LB, Guiot Y, Derrien M, Muccioli GG, Delzenne NM, de Vos WM, Cani PD. Cross-talk between Akkermansia muciniphila and intestinal epithelium controls diet-induced obesity. Proc Natl Acad Sci U S A. 2013 May 28;110(22):9066-71. doi: 10.1073/pnas.1219451110. Epub 2013 May 13.
- Everard A, Geurts L, Caesar R, Van Hul M, Matamoros S, Duparc T, Denis RG, Cochez P, Pierard F, Castel J, Bindels LB, Plovier H, Robine S, Muccioli GG, Renauld JC, Dumoutier L, Delzenne NM, Luquet S, Backhed F, Cani PD. Intestinal epithelial MyD88 is a sensor switching host metabolism towards obesity according to nutritional status. Nat Commun. 2014 Dec 5;5:5648. doi: 10.1038/ncomms6648.
- Fitzgibbon M, Finn DP, Roche M. High Times for Painful Blues: The Endocannabinoid System in Pain-Depression Comorbidity. Int J Neuropsychopharmacol. 2015 Sep 5;19(3):pyv095. doi: 10.1093/ijnp/pyv095.
- Forteza F, Giorgini G, Raymond F. Neurobiological Processes Induced by Aerobic Exercise through the Endocannabinoidome. Cells. 2021 Apr 17;10(4):938. doi: 10.3390/cells10040938.
- Guida F, Turco F, Iannotta M, De Gregorio D, Palumbo I, Sarnelli G, Furiano A, Napolitano F, Boccella S, Luongo L, Mazzitelli M, Usiello A, De Filippis F, Iannotti FA, Piscitelli F, Ercolini D, de Novellis V, Di Marzo V, Cuomo R, Maione S. Antibiotic-induced microbiota perturbation causes gut endocannabinoidome changes, hippocampal neuroglial reorganization and depression in mice. Brain Behav Immun. 2018 Jan;67:230-245. doi: 10.1016/j.bbi.2017.09.001. Epub 2017 Sep 7.
- Haroon E, Welle JR, Woolwine BJ, Goldsmith DR, Baer W, Patel T, Felger JC, Miller AH. Associations among peripheral and central kynurenine pathway metabolites and inflammation in depression. Neuropsychopharmacology. 2020 May;45(6):998-1007. doi: 10.1038/s41386-020-0607-1. Epub 2020 Jan 15.
- Hendry D, Campbell A, Smith A, Hopper L, Straker L, O'Sullivan P. Movement quantity and quality: How do they relate to pain and disability in dancers? PLoS One. 2022 May 19;17(5):e0268444. doi: 10.1371/journal.pone.0268444. eCollection 2022.
- Huang WJ, Chen WW, Zhang X. Endocannabinoid system: Role in depression, reward and pain control (Review). Mol Med Rep. 2016 Oct;14(4):2899-903. doi: 10.3892/mmr.2016.5585. Epub 2016 Aug 1.
- Lee Y, Jo J, Chung HY, Pothoulakis C, Im E. Endocannabinoids in the gastrointestinal tract. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2016 Oct 1;311(4):G655-G666. doi: 10.1152/ajpgi.00294.2015. Epub 2016 Aug 18.
- Lin TW, Kuo YM. Exercise benefits brain function: the monoamine connection. Brain Sci. 2013 Jan 11;3(1):39-53. doi: 10.3390/brainsci3010039.
- Mackie K, Stella N. Cannabinoid receptors and endocannabinoids: evidence for new players. AAPS J. 2006 Apr 28;8(2):E298-306. doi: 10.1007/BF02854900.
- Manca C, Boubertakh B, Leblanc N, Deschenes T, Lacroix S, Martin C, Houde A, Veilleux A, Flamand N, Muccioli GG, Raymond F, Cani PD, Di Marzo V, Silvestri C. Germ-free mice exhibit profound gut microbiota-dependent alterations of intestinal endocannabinoidome signaling. J Lipid Res. 2020 Jan;61(1):70-85. doi: 10.1194/jlr.RA119000424. Epub 2019 Nov 5.
- McBride C, Bronner S. Injury characteristics in professional modern dancers: A 15-year analysis of work-related injury rates and patterns. J Sports Sci. 2022 Apr;40(7):821-837. doi: 10.1080/02640414.2021.2021030. Epub 2022 Jan 31.
- Monda V, Villano I, Messina A, Valenzano A, Esposito T, Moscatelli F, Viggiano A, Cibelli G, Chieffi S, Monda M, Messina G. Exercise Modifies the Gut Microbiota with Positive Health Effects. Oxid Med Cell Longev. 2017;2017:3831972. doi: 10.1155/2017/3831972. Epub 2017 Mar 5.
- Muccioli GG, Naslain D, Backhed F, Reigstad CS, Lambert DM, Delzenne NM, Cani PD. The endocannabinoid system links gut microbiota to adipogenesis. Mol Syst Biol. 2010 Jul;6:392. doi: 10.1038/msb.2010.46.
- Nagy-Grocz G, Zador F, Dvoracsko S, Bohar Z, Benyhe S, Tomboly C, Pardutz A, Vecsei L. Interactions between the Kynurenine and the Endocannabinoid System with Special Emphasis on Migraine. Int J Mol Sci. 2017 Jul 30;18(8):1617. doi: 10.3390/ijms18081617.
- Nunes AC, Mendes LA, Mota LA, Lima PO, Almeida GP. Training Load, Pain Intensity, and Functioning Can Explain Injuries in Dancers: A Classification and Regression Tree (CART) Analysis. Med Probl Perform Art. 2022 Jun;37(2):73-77. doi: 10.21091/mppa.2022.2012.
- Purton T, Staskova L, Lane MM, Dawson SL, West M, Firth J, Clarke G, Cryan JF, Berk M, O'Neil A, Dean O, Hadi A, Honan C, Marx W. Prebiotic and probiotic supplementation and the tryptophan-kynurenine pathway: A systematic review and meta analysis. Neurosci Biobehav Rev. 2021 Apr;123:1-13. doi: 10.1016/j.neubiorev.2020.12.026. Epub 2021 Jan 19.
- Rudzki L, Ostrowska L, Pawlak D, Malus A, Pawlak K, Waszkiewicz N, Szulc A. Probiotic Lactobacillus Plantarum 299v decreases kynurenine concentration and improves cognitive functions in patients with major depression: A double-blind, randomized, placebo controlled study. Psychoneuroendocrinology. 2019 Feb;100:213-222. doi: 10.1016/j.psyneuen.2018.10.010. Epub 2018 Oct 16.
- Russo F, Tolomeo F, Vandelli MA, Biagini G, Paris R, Fulvio F, Lagana A, Capriotti AL, Carbone L, Gigli G, Cannazza G, Citti C. Kynurenine and kynurenic acid: Two human neuromodulators found in Cannabis sativa L. J Pharm Biomed Anal. 2022 Mar 20;211:114636. doi: 10.1016/j.jpba.2022.114636. Epub 2022 Jan 31.
- Saary P, Forslund K, Bork P, Hildebrand F. RTK: efficient rarefaction analysis of large datasets. Bioinformatics. 2017 Aug 15;33(16):2594-2595. doi: 10.1093/bioinformatics/btx206.
- Shao BZ, Wei W, Ke P, Xu ZQ, Zhou JX, Liu C. Activating cannabinoid receptor 2 alleviates pathogenesis of experimental autoimmune encephalomyelitis via activation of autophagy and inhibiting NLRP3 inflammasome. CNS Neurosci Ther. 2014 Dec;20(12):1021-8. doi: 10.1111/cns.12349.
- Shao BZ, Wang SL, Pan P, Yao J, Wu K, Li ZS, Bai Y, Linghu EQ. Targeting NLRP3 Inflammasome in Inflammatory Bowel Disease: Putting out the Fire of Inflammation. Inflammation. 2019 Aug;42(4):1147-1159. doi: 10.1007/s10753-019-01008-y.
- Skonieczna-Zydecka K, Jakubczyk K, Maciejewska-Markiewicz D, Janda K, Kazmierczak-Siedlecka K, Kaczmarczyk M, Loniewski I, Marlicz W. Gut Biofactory-Neurocompetent Metabolites within the Gastrointestinal Tract. A Scoping Review. Nutrients. 2020 Nov 1;12(11):3369. doi: 10.3390/nu12113369.
- Smid SD. Gastrointestinal endocannabinoid system: multifaceted roles in the healthy and inflamed intestine. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2008 Nov;35(11):1383-7. doi: 10.1111/j.1440-1681.2008.05016.x. Epub 2008 Jul 29.
- Yu W, Jin G, Zhang J, Wei W. Selective Activation of Cannabinoid Receptor 2 Attenuates Myocardial Infarction via Suppressing NLRP3 Inflammasome. Inflammation. 2019 Jun;42(3):904-914. doi: 10.1007/s10753-018-0945-x.
- Wang X, He G, Peng Y, Zhong W, Wang Y, Zhang B. Sodium butyrate alleviates adipocyte inflammation by inhibiting NLRP3 pathway. Sci Rep. 2015 Aug 3;5:12676. doi: 10.1038/srep12676.
- Wright KL, Duncan M, Sharkey KA. Cannabinoid CB2 receptors in the gastrointestinal tract: a regulatory system in states of inflammation. Br J Pharmacol. 2008 Jan;153(2):263-70. doi: 10.1038/sj.bjp.0707486. Epub 2007 Oct 1.
- van Winden D, van Rijn RM, Savelsbergh GJP, Oudejans RRD, Stubbe JH. The Association Between Stress and Injury: A Prospective Cohort Study Among 186 First-Year Contemporary Dance Students. Front Psychol. 2021 Nov 5;12:770494. doi: 10.3389/fpsyg.2021.770494. eCollection 2021.
- Sharkey KA, Wiley JW. The Role of the Endocannabinoid System in the Brain-Gut Axis. Gastroenterology. 2016 Aug;151(2):252-66. doi: 10.1053/j.gastro.2016.04.015. Epub 2016 Apr 29.
- Round JL, Mazmanian SK. The gut microbiota shapes intestinal immune responses during health and disease. Nat Rev Immunol. 2009 May;9(5):313-23. doi: 10.1038/nri2515.
- Wiacek J, Podgorski T, Kusy K, Loniewski I, Skonieczna-Zydecka K, Karolkiewicz J. Evaluating the Impact of Probiotic Therapy on the Endocannabinoid System, Pain, Sleep and Fatigue: A Randomized, Double-Blind, Placebo-Controlled Trial in Dancers. Int J Mol Sci. 2024 May 21;25(11):5611. doi: 10.3390/ijms25115611.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 11/NSN/4/2022
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .