- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT05795257
Interações do microbioma da célula imune pulmonar na SDRA (ILLUMINA-1)
Interações do microbioma da célula imune pulmonar na síndrome do desconforto respiratório agudo: o estudo ILLUMINA-1
O objetivo geral é comparar a composição e a heterogeneidade espacial do seguinte em pacientes críticos da unidade de terapia intensiva (UTI): i) populações de células imunes e seus padrões de ativação, ii) o ambiente citocina-quimiocina circundante, incluindo fluxos transcompartimentais de esses mediadores entre o pulmão e a corrente sanguínea, e iii) o microbioma pulmonar.
Principais hipóteses:
- A população de células imunes no fluido de lavagem broncoalveolar (BALF) de pacientes com SDRA é dominada por neutrócitos, enquanto as células T estão esgotadas e mostram evidências de hiperativação e exaustão
- A hiperativação e a exaustão das células T são especificamente compartimentalizadas para os pulmões e muito mais pronunciadas na SDRA moderada a grave do que na SDRA moderada a leve
- As citocinas e quimiocinas derivadas das células imunes pulmonares são mais elevadas na SDRA moderada a grave do que na SDRA nenhuma a leve, com maior liberação dos pulmões para a corrente sanguínea, principalmente de IL-6 e IL-8.
- As diferenças no perfil de células T no BALF, principalmente a proporção entre células T reguladoras e células T auxiliares 17, mudarão com a gravidade da doença ao longo do tempo e podem ser explicadas pela presença de anticorpos tI-IFN e/ou uma baixa diversidade microbiana de o trato respiratório com baixo enriquecimento da cavidade oral.
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
Antecedentes A hiperinflamação pulmonar com invasão de neutrócitos e macrófagos e depleção de células T são características comuns da síndrome do desconforto respiratório agudo (SDRA), mas ainda não foi elucidado se as células T nos pulmões de pacientes com SDRA estão hiperativadas e/ou esgotadas, e até que ponto isso contribui para a invasão de neutrócitos e, portanto, a destruição do tecido pulmonar. Além disso, o microbioma pulmonar mostrou uma redução na diversidade e nas interações na SDRA, o que pode ser importante para a função normal das células T. Atualmente, as interações células imunes-microbioma e sua relação com a gravidade e progressão da doença ainda não foram estudadas na SDRA.
Desenho geral Em 20 pacientes ventilados mecanicamente com SDRA não a leve e 20 com SDRA não COVID-19 moderada a grave, de acordo com a definição de Berlim, será obtido um aspirado endotraqueal e líquido BAL (BALF) de segmentos pulmonares separados. Além disso, um swab oral e nasal e amostras de sangue serão coletados. Isso será feito dentro de 72 horas após a intubação e novamente após 7 a 10 dias se o paciente ainda estiver intubado.
Prontuário eletrônico do paciente Obtém-se após a inclusão: códigos de diagnóstico e medicamentos (tipo e dosagem, incluindo vasopressores e sedativos) e histórico de tabagismo (fumante atual/anterior/nunca; anos maço); tempo de admissão; pressão arterial, ritmo cardíaco e freqüência cardíaca, temperatura, configurações do ventilador, cuidados de suporte (diálise, ECMO), resultados de exames de sangue na admissão e nos dias do estudo (contagem de células sanguíneas, parâmetros de coagulação, painel renal, hepático e eletrolítico; arterial e gasometria venosa mista); escores clínicos na admissão e nos dias do estudo (SAPS3, APACHE II, SOFA), óbito em 30 dias
Amostragem de sangue Amostras de sangue arterial são coletadas do cateter arterial invasivo do paciente (inserido na admissão na UTI para fins clínicos: para monitoramento contínuo da pressão arterial invasiva e coleta repetida de gases sanguíneos arteriais) imediatamente antes da coleta do LBA.
Broncoscopia com coleta de BALF Este procedimento é realizado de forma padronizada de acordo com as diretrizes clínicas atuais. Imediatamente antes do procedimento, são obtidos um swab oral, um swab nasal e um aspirado endotraqueal (ETA). A FIO2 é então aumentada para 1,0 e o procedimento de broncoscopia é realizado usando um videoscópio descartável com diâmetro externo de 5,0 mm). Três alíquotas sucessivas de 50 ml de solução salina isotônica pré-aquecida (37°C) são instiladas no segmento medial do lobo médio direito, aspiradas imediatamente com baixa pressão de sucção negativa (< 100 cm H2O) e reunidas em um recipiente de vidro estéril no gelo para obter uma amostra BALF.
Em seguida é realizado um mini-BAL no lobo superior e inferior do pulmão direito com instalação única de 20 ml de soro fisiológico isotônico em cada lobo com aspiração imediata para recipiente estéril.
Medições A composição da população de células imunes, bem como a função e diferenciação de várias linhagens celulares serão investigadas por sequenciamento de RNA de célula única (scRNA-seq) em células imunes selecionadas de BALF, ETA e sangue, e isso será complementado por sequenciamento de RNA em massa com código de barras de amostra e multiplexação, fornecendo um padrão de expressão detalhado de todas as amostras.
A composição do microbioma em BALF, ETA e swabs orais será avaliada por sequenciamento de amplicon direcionado das regiões hipervariáveis 1 a 3 da subunidade 16S do gene de RNA ribossômico para bactérias.
As análises estatísticas serão realizadas usando o software estatístico R versão 4.1.1 (R Project for Statistical Computing) dentro do software estatístico RStudio versão 1.4.1717 (RStudio), e p<0,05 considerado estatisticamente significativo. A inspeção da normalidade e da homogeneidade da variância será feita por meio da criação de qq-plots e histogramas. Serão utilizadas as ferramentas de inferência estatística SPIEC-EASI e HeatMaps e, a partir de análises correlacionais, análises de componentes principais, incluindo análise não hierárquica de agrupamentos, serão aplicadas para identificar características nos dois grupos.
Tipo de estudo
Inscrição (Estimado)
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: MD, PhD, Ronni Plovsing
- Número de telefone: +45386220721
- E-mail: ronni.thermann.reitz.plovsing.01@regionh.dk
Estude backup de contato
- Nome: MD Katrine Schneider
- Número de telefone: +4528118147
- E-mail: katrine.schneider@regionh.dk
Locais de estudo
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Hvidovre, Dinamarca, 2650
- Recrutamento
- Hvidovre Hospital, University of Copenhagen
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Contato:
- Katrine Schneider, MD
- Número de telefone: +4521524590
- E-mail: katrine.schneider@regionh.dk
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Contato:
- Ronni Plovsing, MD, phD
- E-mail: ronni.thermann.reitz.plovsing.01@regionh.dk
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Método de amostragem
População do estudo
Descrição
Critério de inclusão:
- Critérios de inclusão - SDRA moderada a grave
- Admitido na UTI do Hospital Hvidovre
- Entubado nas últimas 72 horas
- SDRA moderada a grave de acordo com a definição de Berlim19
- Idade ≥ 18 anos
Critérios de inclusão - SDRA nenhuma a leve
- Admitido na UTI do Hospital Hvidovre
- Entubado nas últimas 72 horas
- SDRA nenhuma a leve de acordo com a definição de Berlim19
- Idade ≥ 18 anos
Critério de exclusão:
- SDRA causada por COVID-19
- Contra-indicações absolutas para broncoscopia
- Arritmia maligna não tratada
- Hipertensão intracraniana documentada ou suspeita (pressão intracraniana ≥ > 15 mmHg)
- Ventilação monopulmonar
- Coagulopatia grave
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
Coortes e Intervenções
Grupo / Coorte |
Intervenção / Tratamento |
|---|---|
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SDRA não leve
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Lavado broncoalveolar no lobo médio do pulmão direito e um minilavado broncoalveolar no lobo superior e inferior do pulmão direito
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SDRA moderada-grave
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Lavado broncoalveolar no lobo médio do pulmão direito e um minilavado broncoalveolar no lobo superior e inferior do pulmão direito
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Populações de linfócitos
Prazo: Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Populações e subpopulações celulares avaliadas por citometria de fluxo de 10 cores (células B, células T, subconjuntos de TCR, Tregs/Th17, células dendríticas, células mielóides e neutrófilos) em líquido de lavagem broncoalveolar e sangue
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Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Microbioma pulmonar
Prazo: Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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16S RNA ribossômico (rRNA) e 18S rRNA PCR para identificação de patógenos bacterianos ou fúngicos em fluido de lavado broncoalveolar
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Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Citocinas
Prazo: Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Ensaio multiplex para medir citocinas em fluido de lavagem broncoalveolar e plasma (por exemplo,
IL-1-beta, IL-1RA, IL-2, IL-6, IL-8, IL-10, IL-17, IL-18, IL-33, IL-35, TGF-beta, TNF-alfa, HMGB1)
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Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Contagens diferenciais de células e análises citomorfológicas de BALF
Prazo: Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Fluxos transcompartimentais
Prazo: Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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(calculado a partir de BAL ajustado por plasma e ureia)
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Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Auto-anticorpos contra tI-IFNs no sangue
Prazo: Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Medido no líquido de lavagem broncoalveolar
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Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Contagens de glóbulos brancos
Prazo: Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Total de leucócitos, neutrócitos, linfócitos e monócitos no lavado broncoalveolar e no sangue
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Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Número e caracterizações de patógenos respiratórios
Prazo: Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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PCR de filmarray respiratório para testar o número de patógenos
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Dia 0 (posterior à inclusão do estudo na UTI)
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Número e caracterizações de microrganismos
Prazo: Até 12 semanas
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Crescimento de microorganismos patogênicos em fluidos corporais (por exemplo,
urina, sangue, líquido de lavagem broncoalveolar) em ensaios microbiológicos
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Até 12 semanas
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Cadeira de estudo: MD PhD Ronan berg, Biomedical Science of Health, University of Copenhagen
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Estimado)
Conclusão do estudo (Estimado)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
Primeira postagem (Real)
Atualizações de registro de estudo
Última Atualização Postada (Real)
Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade
Última verificação
Mais Informações
Termos relacionados a este estudo
Termos MeSH relevantes adicionais
Outros números de identificação do estudo
- H-22046755
Plano para dados de participantes individuais (IPD)
Planeja compartilhar dados de participantes individuais (IPD)?
Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo
Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
produto fabricado e exportado dos EUA
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