- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT05795257
Interazioni cellule immunitarie polmonari-microbioma nell'ARDS (ILLUMINA-1)
Interazioni cellule immunitarie polmonari-microbioma nella sindrome da distress respiratorio acuto: lo studio ILLUMINA-1
L'obiettivo generale è quello di confrontare la composizione e l'eterogeneità spaziale dei seguenti elementi nei pazienti in terapia intensiva (ICU) in condizioni critiche: i) le popolazioni di cellule immunitarie e i loro modelli di attivazione, ii) l'ambiente citochine-chemochine circostante, compresi i flussi transcompartimentali di questi mediatori tra il polmone e il flusso sanguigno, e iii) il microbioma polmonare.
Ipotesi principali:
- La popolazione di cellule immunitarie nel liquido di lavaggio broncoalveolare (BALF) di pazienti con ARDS è dominata dai neutrociti, mentre le cellule T sono esaurite e mostrano evidenza di iperattivazione ed esaurimento
- L'iperattivazione e l'esaurimento delle cellule T sono specificamente compartimentalizzate ai polmoni e molto più pronunciate nell'ARDS da moderata a grave che da nulla a lieve
- Le cito- e le chemochine derivate dalle cellule immunitarie polmonari sono più elevate nell'ARDS da moderata a grave che da nulla a lieve con un rilascio maggiore dai polmoni al flusso sanguigno, in particolare di IL-6 e IL-8.
- Le differenze nel profilo delle cellule T nel BALF, in particolare il rapporto tra cellule T regolatorie e cellule T helper 17, cambieranno con la gravità della malattia nel tempo e possono essere spiegate dalla presenza di anticorpi tI-IFN e/o da una bassa diversità microbica di le vie respiratorie con scarso arricchimento dalla cavità orale.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
L'iperinfiammazione polmonare con invasione di neutrociti e macrofagi e la deplezione delle cellule T sono caratteristiche comuni della sindrome da distress respiratorio acuto (ARDS), ma resta da chiarire se le cellule T nei polmoni dei pazienti con ARDS siano iperattivate e/o esaurite, e in che misura ciò contribuisce all'invasione dei neutrociti e quindi alla distruzione del tessuto polmonare. Inoltre, il microbioma polmonare ha mostrato una riduzione della diversità e delle interazioni nell'ARDS, che può essere importante per la normale funzione delle cellule T. Al momento, le interazioni cellule immunitarie-microbioma e la loro relazione con la gravità e la progressione della malattia non sono state ancora studiate nell'ARDS.
Disegno generale In 20 pazienti ventilati meccanicamente con ARDS da assente a lieve e 20 con ARDS non COVID-19 da moderata a grave secondo la definizione di Berlino, si otterranno un aspirato endotracheale e un fluido BAL (BALF) da segmenti polmonari separati. Inoltre, verranno raccolti un tampone orale e nasale e campioni di sangue. Ciò avverrà entro 72 ore dall'intubazione e di nuovo dopo 7-10 giorni se il paziente è ancora intubato.
Cartella sanitaria elettronica del paziente Dopo l'inserimento si ottengono: codici diagnostici e farmaci (tipologia e posologia, inclusi vasopressori e sedativi) e storia del fumo (attuale/precedente/non fumatore; pack anni); orario di ingresso; pressione sanguigna, ritmo cardiaco e frequenza cardiaca, temperatura, impostazioni del ventilatore, terapia di supporto (dialisi, ECMO), risultati degli esami del sangue al momento del ricovero e nei giorni dello studio (conta delle cellule del sangue, parametri della coagulazione, pannello renale, epatico ed elettrolitico; emogasanalisi venosa mista); punteggi clinici al ricovero e nei giorni di studio (SAPS3, APACHE II, SOFA), morte entro 30 giorni
Prelievo di sangue I campioni di sangue arterioso vengono prelevati dal catetere arterioso invasivo del paziente (inserito al momento del ricovero in terapia intensiva per scopi clinici: per il monitoraggio continuo della pressione arteriosa invasiva e l'emogasanalisi arteriosa ripetuta) immediatamente prima del prelievo del BALF.
Broncoscopia con raccolta BALF Questa procedura viene eseguita in modo standardizzato secondo le attuali linee guida cliniche. Immediatamente prima della procedura, si ottengono un tampone orale, un tampone nasale e un aspirato endotracheale (ETA). La FIO2 viene quindi aumentata a 1,0 e la procedura di broncoscopia viene eseguita utilizzando un videoscopio monouso con un diametro esterno di 5,0 mm). Tre successive aliquote da 50 ml di soluzione salina isotonica preriscaldata (37°C) vengono instillate nel segmento mediale del lobo medio destro, aspirate immediatamente con bassa pressione di aspirazione negativa (< 100 cm H2O) e riunite in un contenitore di vetro sterile su ghiaccio per ottenere un campione BALF.
Successivamente viene eseguito un mini-BAL nel lobo superiore e inferiore del polmone destro con un'unica installazione di 20 ml di soluzione fisiologica isotonica in ciascun lobo con aspirazione immediata in un contenitore sterile.
Misure La composizione della popolazione di cellule immunitarie, così come la funzione e la differenziazione di varie linee cellulari saranno studiate mediante sequenziamento dell'RNA di singola cellula (scRNA-seq) su cellule immunitarie selezionate da BALF, ETA e sangue, e questo sarà integrato dal sequenziamento di massa dell'RNA con codici a barre e multiplexing del campione, fornendo un modello di espressione dettagliato di tutti i campioni.
La composizione del microbioma in BALF, ETA e tamponi orali sarà valutata mediante sequenziamento mirato dell'amplicone delle regioni ipervariabili da 1 a 3 della subunità 16S del gene dell'RNA ribosomiale per i batteri.
Le analisi statistiche saranno eseguite utilizzando il software statistico R versione 4.1.1 (R Project for Statistical Computing) all'interno del software statistico RStudio versione 1.4.1717 (RStudio) e p<0,05 considerati statisticamente significativi. L'ispezione della normalità e dell'omogeneità della varianza sarà effettuata creando qq-plot e istogrammi. Verranno utilizzati gli strumenti di inferenza statistica SPIEC-EASI e HeatMaps e, sulla base di analisi correlazionali, verranno applicate analisi dei componenti principali, inclusa l'analisi dei cluster non gerarchici, per identificare i tratti nei due gruppi.
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: MD, PhD, Ronni Plovsing
- Numero di telefono: +45386220721
- Email: ronni.thermann.reitz.plovsing.01@regionh.dk
Backup dei contatti dello studio
- Nome: MD Katrine Schneider
- Numero di telefono: +4528118147
- Email: katrine.schneider@regionh.dk
Luoghi di studio
-
-
-
Hvidovre, Danimarca, 2650
- Reclutamento
- Hvidovre Hospital, University of Copenhagen
-
Contatto:
- Katrine Schneider, MD
- Numero di telefono: +4521524590
- Email: katrine.schneider@regionh.dk
-
Contatto:
- Ronni Plovsing, MD, phD
- Email: ronni.thermann.reitz.plovsing.01@regionh.dk
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Criteri di inclusione: ARDS da moderata a grave
- Ricoverato in terapia intensiva presso l'ospedale di Hvidovre
- Intubato nelle ultime 72 ore
- ARDS da moderata a grave secondo la definizione di Berlino19
- Età ≥ 18 anni
Criteri di inclusione: ARDS da assente a lieve
- Ricoverato in terapia intensiva presso l'ospedale di Hvidovre
- Intubato nelle ultime 72 ore
- ARDS da nulla a lieve secondo la definizione di Berlino19
- Età ≥ 18 anni
Criteri di esclusione:
- ARDS causata da COVID-19
- Controindicazioni assolute alla broncoscopia
- Aritmia maligna non trattata
- Ipertensione intracranica documentata o sospetta (pressione intracranica ≥ > 15 mmHg)
- Ventilazione unipolmone
- Coagulopatia grave
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
Coorti e interventi
Gruppo / Coorte |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
|
ARDS non lieve
|
Lavaggio broncoalveolare nel lobo medio del polmone destro e minilavaggio broncoalveolare nel lobo superiore e inferiore del polmone destro
|
|
ARDS moderata-grave
|
Lavaggio broncoalveolare nel lobo medio del polmone destro e minilavaggio broncoalveolare nel lobo superiore e inferiore del polmone destro
|
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Popolazioni di linfociti
Lasso di tempo: Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
Popolazioni cellulari e sottopopolazioni valutate mediante citometria a flusso a 10 colori (cellule B, cellule T, sottogruppi TCR, Treg/Th17, cellule dendritiche, cellule mieloidi e neutrofili) nel liquido di lavaggio broncoalveolare e nel sangue
|
Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
|
Microbioma polmonare
Lasso di tempo: Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
RNA ribosomiale 16S (rRNA) e rRNA 18S PCR per l'identificazione di agenti patogeni batterici o fungini nei fluidi di lavaggio broncoalveolare
|
Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Citochine
Lasso di tempo: Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
Saggio multiplex per la misurazione delle citochine nel fluido di lavaggio broncoalveolare e nel plasma (ad es.
IL-1-beta, IL-1RA, IL-2, IL-6, IL-8, IL-10, IL-17, IL-18, IL-33, IL-35, TGF-beta, TNF-alfa, HMGB1)
|
Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
|
Conta differenziale cellulare e analisi citomorfologiche di BALF
Lasso di tempo: Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
|
|
Flussi transcompartimentali
Lasso di tempo: Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
(calcolato dal BAL aggiustato per plasma e urea)
|
Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
|
Autoanticorpi contro tI-IFN nel sangue
Lasso di tempo: Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
Misurato nel fluido di lavaggio broncoalveolare
|
Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
|
Conta dei globuli bianchi
Lasso di tempo: Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
Globuli bianchi totali, neutrociti, linfociti e monociti nel liquido di lavaggio broncoalveolare e nel sangue
|
Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
|
Numero e caratterizzazione dei patogeni respiratori
Lasso di tempo: Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
Respiratory filmarray PCR per testare il numero di agenti patogeni
|
Giorno 0 (successivo all'inclusione nello studio in terapia intensiva)
|
|
Numero e caratterizzazione dei microrganismi
Lasso di tempo: Fino a 12 settimane
|
Crescita di microrganismi patogeni nei fluidi corporei (ad es.
urina, sangue, liquido di lavaggio broncoalveolare) nei test microbiologici
|
Fino a 12 settimane
|
Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Cattedra di studio: MD PhD Ronan berg, Biomedical Science of Health, University of Copenhagen
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio (Effettivo)
Completamento primario (Stimato)
Completamento dello studio (Stimato)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Effettivo)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- H-22046755
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?
Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio
Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
prodotto fabbricato ed esportato dagli Stati Uniti
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