Autologní genová terapie pro Artemis-deficientní SCID
Fáze I/II studie proveditelnosti přenosu genu pro artemis-deficientní těžkou kombinovanou imunodeficienci (ART-SCID) s použitím samoinaktivačního lentivirového vektoru (AProArt) k transdukci autologních CD34 hematopoetických buněk
Přehled studie
Postavení
Postavení
Podmínky
Podmínky
Intervence / Léčba
Intervence / Léčba
Detailní popis
Děti s SCID obecně nepřežijí déle než první rok života bez definitivní léčby. Nejúčinnějším současným lékem je transplantace hematopoetických kmenových buněk (HCT) se sourozencem shodným s lidským leukocytárním antigenem (HLA). Zatímco odpovídající sourozenecká HCT může úspěšně léčit ART-SCID, méně než 20 % postižených dětí má takového dárce, a i když je k dispozici odpovídající sourozenecký dárce, často dochází k neúplné rekonstituci imunitních buněk T a B. ART-SCID je nejobtížněji vyléčitelný typ SCID transplantací hematopoetických kmenových buněk s využitím alternativních dárců. Přihojení štěpu typicky vyžaduje intenzivní kondicionování s vysokými dávkami alkylačních činidel, aby se zabránilo rejekci a aby se otevřely výklenky v kostní dřeni. Tito pacienti mají také vysoké riziko rozvoje reakce štěpu proti hostiteli (GVHD), pokud se použijí alternativní dárci. Velká většina pacientů nemá rekonstituci B buněk a vyžaduje celoživotní podávání infuzí imunoglobulinů. Pacienti s ART-SCID, kteří dostávají vysoké dávky alkylátorů, zejména při použití 2 látek, mají horší přežití, abnormální vývoj zubů, endokrinopatie a malý vzrůst ve srovnání s dětmi vystavenými žádným nebo omezeným alkylátorům nebo dětmi s typy SCID, které jsou nesouvisí s defektem opravy DNA. Z těchto důvodů je zapotřebí bezpečnější a efektivnější přístup k vytvrzování ART-SCID. Autologní genově korigovaná transplantace hematopoetických kmenových buněk může eliminovat jak riziko GVHD, tak potřebu alkylátorů k prevenci rejekce.
Design studie je jednokohortový, longitudinální experiment využívající nerandomizované pacienty léčené jednou lentivirovým vektorem pro genovou korekci SCID s deficitem Artemis po kondicionování nízkou dávkou busulfanu. Není plánována žádná formální kontrolní skupina pro měření bezpečnosti; spíše intenzivní sledování prvních 6 přihlášených zabrání dalšímu narůstání za přítomnosti bezpečnostních signálů a dlouhodobá bezpečnost bude sledována po dobu 15 let. Kmenové buňky kostní dřeně budou sklizeny od účastníků, kteří váží ≤ 7,5 kilogramu nebo u kterých dříve selhala mobilizace cytokinů, a kmenové buňky z periferní krve mobilizované cytokiny budou sklizeny od účastníků vážících > 7,5 kilogramu. Buňky CD34 budou izolovány pomocí zařízení CliniMACS® CD34 Reagent System pro třídění buněk. Buňky budou transdukovány lentivirovým vektorem AProArt. Zesilovače transdukce budou použity ke zvýšení účinnosti transdukce v CD34+ buňkách periferní krve od pacientů, kteří podstoupí odběr kmenových buněk z periferní krve. Tyto transdukované buňky budou poté kryokonzervovány a alikvoty buněk budou podrobeny testování bezpečnosti a budou rezervovány pro hodnocení účinnosti. Všichni pacienti dostanou busulfanovou úpravu cílenou po dobu 2 dnů k dosažení kumulativní plochy pod křivkou (AUC) 20 mg*h/l (ablativní kumulativní AUC je 60-90 mg*h/l). Po infuzi buněk transdukovaných AProArt budou pacienti ve 4., 6., 8., 16. a 24. týdnu hodnoceni na průkaz genu transdukovaných mononukleárních buněk periferní krve a pokud je to možné, buněčné linie včetně T, B, NK a granulocytů/myeloidních buněk . Pokud 6 týdnů (42 dní) po infuzi není žádný důkaz o buňkách s transdukcí genu, bude rozhodnuto o další terapii.
Po 42. dni po transplantaci budou příjemci sledováni kvůli toxicitě a trvalé rekonstituci imunity T a B buněk. Imunitní rekonstituce T buněk bude pravidelně monitorována. Pokud je absolutní počet neutrofilů < 200/µl nebo krevních destiček < 20 000/µl při 3 nezávislých stanoveních po 42. dni po infuzi transdukovaných buněk, pacient může dostat infuzi záložních buněk nebo alogenní transplantaci krvetvorných buněk. Pacienti, kteří byli před kondicionováním neutropenií (neutropenie související s SCID), ale reagovali na faktor stimulující kolonie granulocytů (GCSF), nebudou považováni za pacienty se selháním, za předpokladu, že absolutní počet neutrofilů lze pomocí GCSF udržet nad >500/µl.
Po 42. dni budou pacienti hodnoceni týdně až 12 týdnů po transplantaci a v týdnu 16, měsíčně až 6. měsíc po transplantaci a poté 3 měsíce až 24. měsíc. Poté budou hodnoceny v 6 měsíčních intervalech během let 2-5 a každoročně až do roku 15. Následná studie bude zahrnovat vyplnění dotazníků kvality života a zavedení neurovývojového testování.
Pacientům s prokázanou klinicky neadekvátní rekonstitucí, nízkou VCN nebo jakýmikoli jinými rysy naznačujícími klinicky neadekvátní odpověď na počáteční proceduru genové terapie bude nabídnuta opakovaná infuze buněk s transdukovanými geny. Kondicionační režimy podávané před procedurou opakované genové terapie mohou zahrnovat busulfan s nízkou dávkou, jiné kondicionování nebo žádné kondicionování.
Pro sledování bezpečnosti tohoto pokusu bude jmenován nezávislý výbor pro monitorování bezpečnosti dat (DSMB). DSMB bude pravidelně kontrolovat všechna data z hlediska bezpečnosti na základě počtu zapsaných subjektů a bude také provádět zvláštní naléhavou kontrolu jakýchkoli závažných nežádoucích příhod souvisejících s protokolem (SAE). Po zahájení studie DSMB zkontroluje výsledky každého z prvních 3 případů, než bude pokračovat s dalšími pacienty.
Zkoumaný produkt (IND1711) pro studii genového přenosu ART-SCID není k dispozici pro použití s rozšířeným přístupem. Podle 21 CFR Part 312.305(3) tým vedení studie rozhodl, že poskytnutí hodnoceného produktu pro použití s rozšířeným přístupem v tomto okamžiku by narušilo provádění a dokončení klinického hodnocení a potenciální rozvoj budoucího použití s rozšířeným přístupem. Zkoušený produkt je dostupný způsobilým pacientům prostřednictvím účasti v této klinické studii.
Typ studie
Typ studie
Zápis (Odhadovaný)
Zápis
Fáze
Fáze
- Fáze 2
- Fáze 1
Kontakty a umístění
Studijní kontakt
Studijní kontakt
- Jméno: Morton Cowan, MD
- Telefonní číslo: 415-476-2188
- E-mail: Mort.Cowan@ucsf.edu
Studijní záloha kontaktů
- Jméno: Jennifer Puck, MD
- Telefonní číslo: 415 502-2090
- E-mail: Jennifer.Puck@ucsf.edu
Studijní místa
-
-
California
-
San Francisco, California, Spojené státy, 94143
- Nábor
- University of California, San Francisco (UCSF) Children's Hospital
-
-
Kritéria účasti
Kritéria způsobilosti
Kritéria způsobilosti
Věk způsobilý ke studiu
Přijímá zdravé dobrovolníky
Popis
Kritéria pro zařazení:
- ≥2,0 měsíce věku při zahájení kondicionování busulfanem
- Diagnostika typického nebo netěsného ART-SCID:
Nově diagnostikovaní pacienti s ART-SCID musí mít:
- nedostatek artemis; A
- Počet CD3 < 300 autologních buněk/µL (typický ART-SCID) NEBO spontánní mateřský chimérismus, NEBO počet CD3 > 300/µL, ale s omezenou diverzitou Vb receptoru T buněk, definovanou jako 18/24 nebo méně polyklonálních rodin.
AND - buněčná odpověď CD45 na mitogeny (PHA) < 50 % spodní hranice normálního rozmezí pro laboratoř (děravý ART-SCID).
Pacienti s diagnózou ART-SCID podle výše uvedených kritérií, u kterých selhal alogenní transplantát (včetně transplantace HLA shodného sourozence), se mohou zúčastnit, pokud splňují níže uvedená kritéria:
- Jsou alespoň 3 měsíce po alogenní transplantaci krvetvorných buněk bez důkazu přihojení alogenních dárcovských buněk (kromě mateřských buněk)
NEBO jsou roubované, ale mají alespoň 2 z následujících 4 stavů:
- Klesající chimérismus dárce CD3 s alespoň 3 hodnoceními oddělenými alespoň 1 měsíc před časem zařazení NEBO < 5 % celkového chimérismu dárce v krvi a kostní dřeni ≥ 3 měsíce po transplantaci.
Nekompletně rekonstituovaná T buněčná imunita po ≥ 6 měsících (1 z následujících 2):
- CD4 < 200/μL A PHA buněk CD45 < 50 % spodní hranice normy pro laboratoř;
- CD4 CD45RA < 20 % celkových CD4 buněk OR T buněčná diverzita Vb receptoru je omezená, definovaná jako 18/24 nebo méně polyklonálních rodin.
- Žádné dárcovské B buňky NEBO nedostatek funkce B buněk (imunoglobulin M isohemaglutininy < 1:8 (ne krevní skupina AB) A hodnoty imunoglobulinu A (IgA) nebo IgM pod referenčním rozmezím pro věk A pokud nedostáváte intravenózní imunoglobulin (IVIG), žádná ochranná hladina protilátek proti imunizaci proti tetanu x2).
- Klinické projevy konzistentní s přetrvávající imunodeficiencí T a B buněk, např. chronická infekce včetně noroviru, cytomegaloviru, lidského herpes viru 6; NEBO akutní nebo rekurentní infekce (např. PJP), bronchiektázie, chronická sinusitida.
A
- Nevystavujte se dříve vysoké dávce busulfanu (celková dávka ≥10 mg/kg nebo průměrná kumulativní expozice ≥40 mg*h/l). Pokud se předpokládá, že celková kumulativní AUC včetně předchozí expozice busulfanu plus dávka, která má být podána v tomto protokolu, bude ≤ 60 mg*h/l, pak by pacient byl způsobilý, pokud jsou splněna další kritéria.
- Žádný lékařsky způsobilý HLA-identický sourozenec s normálním imunitním systémem, který by mohl sloužit jako alogenní dárce kostní dřeně (platí pouze pro nově diagnostikované pacienty).
Písemný informovaný souhlas podle pokynů Institutional Review Board (IRB).
Kritéria vyloučení:
- Testy jaterních funkcí (aspartátaminotransferáza, alanintransamináza, gama-glutamyltransferáza) > trojnásobek horní hranice normy pro laboratorní a/nebo celkový bilirubin >1,50 mg/dl v době plánovaného zahájení kondicionování busulfanem.
- Předchozí venookluzivní onemocnění (syndrom sinusoidální obstrukce) jater.
- Lékařsky způsobilý sourozenec s odpovídající HLA (platí pouze pro nově diagnostikované pacienty).
- Průkaz infekce HIV polymerázovou řetězovou reakcí nebo testováním antigenu p24.
- Není schopen tolerovat celkovou anestezii a/nebo odběr dřeně nebo odběr kmenových buněk z periferní krve (aferézu) nebo zavedení centrálního žilního katétru.
- Přítomnost zdravotního stavu, který naznačuje, že se předpokládá, že přežití bude kratší než 4 měsíce, jako je požadavek na mechanickou ventilaci, závažné selhání systému hlavních orgánů nebo důkazy o vážné progresivní infekci, která je refrakterní na lékařskou terapii.
- Těhotenství
- Sociální situace naznačující, že rodina nemusí být schopna dodržovat protokolární postupy a doporučenou lékařskou péči a následnou péči.
- Další stavy, které podle názoru hlavního zkoušejícího a/nebo spoluřešitelů kontraindikují infuzi transdukovaných buněk nebo účast ve studii.
Studijní plán
Jak je studie koncipována?
Detaily designu
- Primární účel: Léčba
- Přidělení: N/A
- Intervenční model: Přiřazení jedné skupiny
- Maskování: Žádné (otevřený štítek)
Počet zbraní
Zbraně a zásahy
Skupina účastníků / ArmSkupina účastníků / Arm |
Intervence / LéčbaIntervence / Léčba |
|---|---|
|
Experimentální: Genová terapie (AProArt)
Přenos genu pro artemis-deficientní těžkou kombinovanou imunodeficienci (ART-SCID) s použitím samoinaktivačního lentivirového vektoru (AProArt) k transdukci autologních CD34 hematopoetických buněk.
K výběru buněk CD34 se použije třídicí zařízení CliniMACS® CD34 Reagent System.
Pacienti budou před transplantací léčeni nízkou dávkou busulfanu.
|
Zpracování hematopoetických progenitorových buněk k selekci buněk CD34 pomocí systému CliniMACS® CD34 Reagent System před infuzí.
Busulfan je nespecifické alkylační antineoplastické činidlo buněčného cyklu, ve třídě alkylsulfonátů.
Pacientům bude podávána nízká dávka busulfanu cílená po dobu 2 dnů k dosažení kumulativní plochy pod křivkou (AUC) 20 mg*h/l.
Ostatní jména:
Účastníci podstoupí infuzi s autologními hematopoetickými buňkami transdukovanými lentivirovým vektorem AProArt, který obsahuje správnou formu DCLRE1C komplementární DNA deoxyribonukleové kyseliny, po subablativním busulfanovém kondicionování zaměřeném na expozici.
Ostatní jména:
|
Co je měření studie?
Primární výstupní opatření
Primární výstupní opatření
Měření výsledku |
Popis opatření |
Časové okno |
|---|---|---|
|
Prokázat, že pacienti s ART-SCID, kteří dostávají infuzi AProArt-CD34, mají lepší celkové přežití (OS) 24 měsíců po léčbě AProArt-CD34 ve srovnání se stanoveným výsledkem 0% OS u pacientů, kteří nedostávají žádnou léčbu ART-SCID
Časové okno: 24 měsíců
|
Stav přežití pacienta a (pokud je to možné) příčina úmrtí budou zaznamenány pro posouzení celkového přežití.
|
24 měsíců
|
Sekundární výstupní opatření
Sekundární výstupní opatření
Měření výsledku |
Popis opatření |
Časové okno |
|---|---|---|
|
Rekonstituce imunity B buněk do 24±2 měsíců ve srovnání s historickou kontrolní kohortou příjemců alogenní transplantace
Časové okno: 24 měsíců
|
Buněčná imunitní rekonstituce B lymfocytů bude definována jako ukončení substituční terapie imunoglobuliny
|
24 měsíců
|
|
Počet účastníků s T-buněčnou imunitní rekonstitucí ve srovnání s historickými kontrolami, které podstoupily alogenní transplantaci k léčbě ART-SCID.
Časové okno: 24 měsíců
|
Rekonstituce imunity T-buněk bude definována jako přítomnost obou následujících kritérií: 1) a. CD3>1000/mm³; 2) CD4>500/mm³.
|
24 měsíců
|
|
Přežití bez nežádoucí příhody
Časové okno: 24 měsíců
|
Události jsou definovány jako úmrtí, použití opakované infuze geneticky korigovaných buněk k posílení imunitní rekonstituce T/B buněk nebo potřeba provedení alogenní transplantace hematopoetických kmenových buněk.
|
24 měsíců
|
Další výstupní opatření
Další výstupní opatření
Měření výsledku |
Popis opatření |
Časové okno |
|---|---|---|
|
Obnova krvetvorby u pacientů s ART-SCID, kteří dostávají CD34 buňky transdukované samoinaktivačním (SIN) lentivirovým vektorem (AProArt) prostřednictvím opakované infuze transplantace autologních kmenových buněk.
Časové okno: 5 let
|
Pacienti podstoupí krevní testy, aby se změřil kompletní krevní obraz a diferenciál po opakované infuzi buněk s korigovanými geny.
|
5 let
|
|
Profil nežádoucích příhod (AE) spojený se studijní intervencí od léčby až po 15 let po proceduře genového transferu
Časové okno: 15 let
|
Klinické a laboratorní nežádoucí účinky měřené pomocí CTCAE V4
|
15 let
|
|
Počet účastníků s rekonstitucí B buněk po 24 měsících, včetně počtu a funkce B buněk
Časové okno: 15 let
|
Rekonstituce B buněk bude definována jako přítomnost alespoň dvou z následujících: 1) počet B buněk >40/mm3; 2) Ukončení substituční terapie imunoglobulinem; 3) Ochranné specifické protilátkové odpovědi.
Počet účastníků, kteří splňují definici pro rekonstituci B buněk, bude uveden do tabulky.
|
15 let
|
|
Účinnost cílení busulfanu s nízkou expozicí u kojenců a dětí, vypočtená procentem účastníků, jejichž léčba splňuje parametry studie s použitím validovaného populačního farmakokinetického modelu pro výpočet individualizované clearance busulfanu.
Časové okno: 42 dní
|
Dosažení konečné cílové kumulativní AUC 20±2 mg*h/l u přibližně 90 % subjektů
|
42 dní
|
|
Repertoárová diverzita T a B lymfocytů, jak byla hodnocena analýzou variabilní beta sekvence genu receptoru T lymfocytů (TCR-Vb) a přeskupených receptorů těžkého řetězce imunoglobulinu (IGH) a výpočtem diverzity Shannonova indexu.
Časové okno: 24 měsíců
|
Měřeno hlubokým sekvenováním variabilní beta sekvence genu receptoru T (TCR) (TCR-Vb) a přeskupených receptorů těžkého řetězce imunoglobulinu (IGH).
Očekává se, že Shannonův index bude vyšší než 7,5 do 24±2 měsíců po léčbě u 90 % pacientů.
|
24 měsíců
|
|
Určete, zda diverzita receptoru B lymfocytů po 6 měsících je prediktivní pro rekonstituci B lymfocytů v průběhu 15 let analýzou variabilní beta sekvence genu B lymfocytárního receptoru a přeskupených receptorů těžkého řetězce imunoglobulinu a výpočtem diverzity Shannonova indexu.
Časové okno: 15 let
|
Očekává se, že Shannonův index >5 bude biomarkerem pro rekonstituci B buněk.
Diverzita B buněčných receptorů bude měřena během účasti ve studii.
|
15 let
|
|
Určete, zda po 6 měsících diverzita receptorů T lymfocytů (TCR) a/nebo absolutní počty CD3, CD4, naivních CD4 předpovídají rekonstituci T lymfocytů ve 24. měsíci nebo potřebu 2. léčby během 15letého období sledování.
Časové okno: 15 let
|
Diverzita TCR-Vb a absolutní počty CD3, CD4 a naivních CD4 budou měřeny po 6 měsících.
Rekonstituce T buněk bude měřena během účasti ve studii.
|
15 let
|
|
Stabilita středního počtu kopií vektoru (VCN) a umístění vektorových integračních míst v tříděných T, B a přirozených zabíječských (NK) buňkách, granulocytech a monocytech v periferní krvi v průběhu času po infuzi transdukovaného HSC.
Časové okno: 24 měsíců
|
Průměrný počet kopií vektoru (VCN) a umístění vektorových integračních míst budou měřeny po 6±1, 12±1 a 24±2 měsících a poté každoročně po dobu 15 let po infuzi AProArt-CD34.
Průměrná VCN by měla být >0,5 kopií/buňku u T a B buněk a >0,01 u NK, myeloidních a granulocytů do 24±2 měsíců po léčbě.
|
24 měsíců
|
|
Charakterizace inzerčních míst ve více buněčných liniích jako indikátor diverzity, přihojení více linií a tabelování jakékoli klonální expanze, která by mohla indikovat vývoj malignity.
Časové okno: 24 měsíců
|
Místa zavedení budou měřena po 6±1, 12±1, 24±2 měsících a ročně po dobu 15 let po infuzi AProArt-CD34.
Očekává se, že místa pro buněčnou inzerci budou různorodá a žádný klon nebude představovat >20 % linie po 24 měsících.
|
24 měsíců
|
|
Potenciální přínos profylaktického sirolimu při snižování výskytu přechodné autoimunitní hemolytické anémie (AIHA) po infuzi AProArt-CD34, jak bylo hodnoceno počtem účastníků s klinickou diagnózou AIHA.
Časové okno: 24 měsíců
|
Výskyt autoimunitní hemolytické anémie 24±2 měsíce po infuzi po podání profylaktického sirolimu, jak bylo hodnoceno monitorováním hemoglobinu, přímých a nepřímých Coombsových výsledků, retikulocytů a laktátdehydrogenázy.
Očekává se, že výskyt AIHA vyžadující léčbu bude < 40 % pacientů užívajících profylakticky sirolimus.
|
24 měsíců
|
|
Měření citlivosti na záření v NK buňkách periferní krve pro vývoj a validaci rychlého funkčního testu pro SCID citlivé na záření.
Časové okno: 24 měsíců
|
Vývoj a validace testu na radiačně senzitivní SCID v NK buňkách periferní krve
|
24 měsíců
|
|
Síla AProArt-CD34, jak je indikováno schopností in vitro diferenciace účastnických vzorků na T buňky a hodnocením průměrného VCN jako zástupného markeru účinnosti.
Časové okno: 5 let
|
Demonstrace, že CD34+ buňky pacientů po transdukci mají kapacitu pro in vitro diferenciaci na T buňky a že průměrná VCN je zástupným markerem účinnosti.
Bude vyvinut a ověřen jeden nebo více testů účinnosti pro CD34+ HSC transdukovaný AProArt, které poskytují výsledky do 52 dnů od transdukce, a jejich korelace s VCN získaná 6 a 14 dnů po transdukci s AProArt.
|
5 let
|
|
Účinky cílené nízké expozice kondicionování busulfanem na růst/výšku pacienta
Časové okno: 5 let
|
Výška (cm) a hmotnost (kg) pacienta budou změřeny a porovnány s normami pro daný věk
|
5 let
|
|
Vliv busulfanu na vývoj chrupu pacienta
Časové okno: 5 let
|
Zubní anamnézy a klinické poznámky budou přezkoumány, aby se vývoj stálých zubů mohl porovnat s vývojovými normami pro věk od 5 do 15 let.
|
5 let
|
|
Výsledek hlášený pacientem po podstoupení léčby genově korigovanými buňkami, jak byl hodnocen pomocí dotazníků PedsQL.
Časové okno: 5 let
|
Věkově přiměřené dotazníky Pediatric Quality of Life Inventory (PedsQL) budou administrovány na výchozím bodě a v letech 1, 2, 4, 8, 10, 12 a 15.
Čtyři domény (Fyzické fungování, Emocionální fungování, Sociální fungování a Školní fungování) jsou obráceně skórovány na 5bodové Likertově škále a transformovány na škálu 0–100, přičemž vyšší skóre indikuje lepší výsledky.
|
5 let
|
|
Dopad na rodinu při podstupování léčby geneticky korigovanými buňkami.
Časové okno: 15 let
|
Modul PedsQL Family Impact (Dotazník kvality života dětí) bude administrován na začátku studie a v letech 1, 2, 4, 8, 10, 12 a 15.
Odpovědi jsou zaznamenávány na 5bodové Likertově škále a převedeny na škálu 0–100, přičemž vyšší skóre znamenají lepší výsledky.
|
15 let
|
|
Účinky studijního zásahu na neurovývoj v průběhu času
Časové okno: 5 let
|
Neurovývoj bude hodnocen ve věku 3, 5, 8, 11, 14 a 17 let pomocí vhodných věkově přiměřených nástrojů (Vinelandské škály adaptivního chování, Dotazník exekutivních funkcí, Behaviorální hodnocení dětí, Bayleyho škály vývoje kojenců, Wechslerovy inteligenční škály, Kalifornský test verbálního učení, Connersův test kontinuálního výkonu, Delis-Kaplanův systém exekutivních funkcí a Škála širokého dosažení).
Výsledky budou porovnány s normami pro věk 18 měsíců a věk 3, 5, 8, 11, 14 a 17 let.
|
5 let
|
Spolupracovníci a vyšetřovatelé
Sponzor
Sponzor
Vyšetřovatelé
Vyšetřovatelé
- Vrchní vyšetřovatel: Morton Cowan, MD, University of California, San Francisco
Publikace a užitečné odkazy
Obecné publikace
- Candotti F, Shaw KL, Muul L, Carbonaro D, Sokolic R, Choi C, Schurman SH, Garabedian E, Kesserwan C, Jagadeesh GJ, Fu PY, Gschweng E, Cooper A, Tisdale JF, Weinberg KI, Crooks GM, Kapoor N, Shah A, Abdel-Azim H, Yu XJ, Smogorzewska M, Wayne AS, Rosenblatt HM, Davis CM, Hanson C, Rishi RG, Wang X, Gjertson D, Yang OO, Balamurugan A, Bauer G, Ireland JA, Engel BC, Podsakoff GM, Hershfield MS, Blaese RM, Parkman R, Kohn DB. Gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immune deficiency: clinical comparison of retroviral vectors and treatment plans. Blood. 2012 Nov 1;120(18):3635-46. doi: 10.1182/blood-2012-02-400937. Epub 2012 Sep 11.
- Varni JW, Seid M, Kurtin PS. PedsQL 4.0: reliability and validity of the Pediatric Quality of Life Inventory version 4.0 generic core scales in healthy and patient populations. Med Care. 2001 Aug;39(8):800-12. doi: 10.1097/00005650-200108000-00006.
- Howe SJ, Mansour MR, Schwarzwaelder K, Bartholomae C, Hubank M, Kempski H, Brugman MH, Pike-Overzet K, Chatters SJ, de Ridder D, Gilmour KC, Adams S, Thornhill SI, Parsley KL, Staal FJ, Gale RE, Linch DC, Bayford J, Brown L, Quaye M, Kinnon C, Ancliff P, Webb DK, Schmidt M, von Kalle C, Gaspar HB, Thrasher AJ. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. J Clin Invest. 2008 Sep;118(9):3143-50. doi: 10.1172/JCI35798.
- Buckley RH. The multiple causes of human SCID. J Clin Invest. 2004 Nov;114(10):1409-11. doi: 10.1172/JCI23571.
- Gatti RA, Meuwissen HJ, Allen HD, Hong R, Good RA. Immunological reconstitution of sex-linked lymphopenic immunological deficiency. Lancet. 1968 Dec 28;2(7583):1366-9. doi: 10.1016/s0140-6736(68)92673-1. No abstract available.
- Chan A, Scalchunes C, Boyle M, Puck JM. Early vs. delayed diagnosis of severe combined immunodeficiency: a family perspective survey. Clin Immunol. 2011 Jan;138(1):3-8. doi: 10.1016/j.clim.2010.09.010. Epub 2010 Oct 28.
- Chan K, Puck JM. Development of population-based newborn screening for severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2005 Feb;115(2):391-8. doi: 10.1016/j.jaci.2004.10.012.
- Kwan A, Puck JM. History and current status of newborn screening for severe combined immunodeficiency. Semin Perinatol. 2015 Apr;39(3):194-205. doi: 10.1053/j.semperi.2015.03.004. Epub 2015 Apr 30.
- Pai SY, Logan BR, Griffith LM, Buckley RH, Parrott RE, Dvorak CC, Kapoor N, Hanson IC, Filipovich AH, Jyonouchi S, Sullivan KE, Small TN, Burroughs L, Skoda-Smith S, Haight AE, Grizzle A, Pulsipher MA, Chan KW, Fuleihan RL, Haddad E, Loechelt B, Aquino VM, Gillio A, Davis J, Knutsen A, Smith AR, Moore TB, Schroeder ML, Goldman FD, Connelly JA, Porteus MH, Xiang Q, Shearer WT, Fleisher TA, Kohn DB, Puck JM, Notarangelo LD, Cowan MJ, O'Reilly RJ. Transplantation outcomes for severe combined immunodeficiency, 2000-2009. N Engl J Med. 2014 Jul 31;371(5):434-46. doi: 10.1056/NEJMoa1401177.
- Dorsey MJ, Dvorak CC, Cowan MJ, Puck JM. Treatment of infants identified as having severe combined immunodeficiency by means of newborn screening. J Allergy Clin Immunol. 2017 Mar;139(3):733-742. doi: 10.1016/j.jaci.2017.01.005.
- Dvorak CC, Hassan A, Slatter MA, Honig M, Lankester AC, Buckley RH, Pulsipher MA, Davis JH, Gungor T, Gabriel M, Bleesing JH, Bunin N, Sedlacek P, Connelly JA, Crawford DF, Notarangelo LD, Pai SY, Hassid J, Veys P, Gennery AR, Cowan MJ. Comparison of outcomes of hematopoietic stem cell transplantation without chemotherapy conditioning by using matched sibling and unrelated donors for treatment of severe combined immunodeficiency. J Allergy Clin Immunol. 2014 Oct;134(4):935-943.e15. doi: 10.1016/j.jaci.2014.06.021. Epub 2014 Aug 7.
- Neven B, Leroy S, Decaluwe H, Le Deist F, Picard C, Moshous D, Mahlaoui N, Debre M, Casanova JL, Dal Cortivo L, Madec Y, Hacein-Bey-Abina S, de Saint Basile G, de Villartay JP, Blanche S, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Long-term outcome after hematopoietic stem cell transplantation of a single-center cohort of 90 patients with severe combined immunodeficiency. Blood. 2009 Apr 23;113(17):4114-24. doi: 10.1182/blood-2008-09-177923. Epub 2009 Jan 23.
- Wahlstrom JT, Dvorak CC, Cowan MJ. Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Severe Combined Immunodeficiency. Curr Pediatr Rep. 2015 Mar 1;3(1):1-10. doi: 10.1007/s40124-014-0071-7.
- Horn B, Cowan MJ. Unresolved issues in hematopoietic stem cell transplantation for severe combined immunodeficiency: need for safer conditioning and reduced late effects. J Allergy Clin Immunol. 2013 May;131(5):1306-11. doi: 10.1016/j.jaci.2013.03.014.
- Cowan MJ, Gennery AR. Radiation-sensitive severe combined immunodeficiency: The arguments for and against conditioning before hematopoietic cell transplantation--what to do? J Allergy Clin Immunol. 2015 Nov;136(5):1178-85. doi: 10.1016/j.jaci.2015.04.027. Epub 2015 Jun 6.
- Cicalese MP, Aiuti A. Clinical applications of gene therapy for primary immunodeficiencies. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):210-9. doi: 10.1089/hum.2015.047.
- Cavazzana-Calvo M, Fischer A. Gene therapy for severe combined immunodeficiency: are we there yet? J Clin Invest. 2007 Jun;117(6):1456-65. doi: 10.1172/JCI30953.
- Hacein-Bey-Abina S, Pai SY, Gaspar HB, Armant M, Berry CC, Blanche S, Bleesing J, Blondeau J, de Boer H, Buckland KF, Caccavelli L, Cros G, De Oliveira S, Fernandez KS, Guo D, Harris CE, Hopkins G, Lehmann LE, Lim A, London WB, van der Loo JC, Malani N, Male F, Malik P, Marinovic MA, McNicol AM, Moshous D, Neven B, Oleastro M, Picard C, Ritz J, Rivat C, Schambach A, Shaw KL, Sherman EA, Silberstein LE, Six E, Touzot F, Tsytsykova A, Xu-Bayford J, Baum C, Bushman FD, Fischer A, Kohn DB, Filipovich AH, Notarangelo LD, Cavazzana M, Williams DA, Thrasher AJ. A modified gamma-retrovirus vector for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2014 Oct 9;371(15):1407-17. doi: 10.1056/NEJMoa1404588.
- Greene MR, Lockey T, Mehta PK, Kim YS, Eldridge PW, Gray JT, Sorrentino BP. Transduction of human CD34+ repopulating cells with a self-inactivating lentiviral vector for SCID-X1 produced at clinical scale by a stable cell line. Hum Gene Ther Methods. 2012 Oct;23(5):297-308. doi: 10.1089/hgtb.2012.150. Epub 2012 Nov 7.
- Kwan A, Hu D, Song M, Gomes H, Brown DR, Bourque T, Gonzalez-Espinosa D, Lin Z, Cowan MJ, Puck JM. Successful newborn screening for SCID in the Navajo Nation. Clin Immunol. 2015 May;158(1):29-34. doi: 10.1016/j.clim.2015.02.015. Epub 2015 Mar 8.
- Li L, Drayna D, Hu D, Hayward A, Gahagan S, Pabst H, Cowan MJ. The gene for severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking Native Americans is located on chromosome 10p. Am J Hum Genet. 1998 Jan;62(1):136-44. doi: 10.1086/301688.
- Li L, Moshous D, Zhou Y, Wang J, Xie G, Salido E, Hu D, de Villartay JP, Cowan MJ. A founder mutation in Artemis, an SNM1-like protein, causes SCID in Athabascan-speaking Native Americans. J Immunol. 2002 Jun 15;168(12):6323-9. doi: 10.4049/jimmunol.168.12.6323.
- Li L, Salido E, Zhou Y, Bhattacharyya S, Yannone SM, Dunn E, Meneses J, Feeney AJ, Cowan MJ. Targeted disruption of the Artemis murine counterpart results in SCID and defective V(D)J recombination that is partially corrected with bone marrow transplantation. J Immunol. 2005 Feb 15;174(4):2420-8. doi: 10.4049/jimmunol.174.4.2420.
- Xiao Z, Dunn E, Singh K, Khan IS, Yannone SM, Cowan MJ. A non-leaky Artemis-deficient mouse that accurately models the human severe combined immune deficiency phenotype, including resistance to hematopoietic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2009 Jan;15(1):1-11. doi: 10.1016/j.bbmt.2008.10.026.
- Multhaup M, Karlen AD, Swanson DL, Wilber A, Somia NV, Cowan MJ, McIvor RS. Cytotoxicity associated with artemis overexpression after lentiviral vector-mediated gene transfer. Hum Gene Ther. 2010 Jul;21(7):865-75. doi: 10.1089/hum.2009.162.
- Multhaup MM, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Olson ER, Gunther R, Somia NV, Blazar BR, Cowan MJ, McIvor RS. Role of transgene regulation in ex vivo lentiviral correction of artemis deficiency. Hum Gene Ther. 2015 Apr;26(4):232-43. doi: 10.1089/hum.2014.062. Epub 2015 Apr 13.
- Punwani D, Kawahara M, Yu J, Sanford U, Roy S, Patel K, Carbonaro DA, Karlen AD, Khan S, Cornetta K, Rothe M, Schambach A, Kohn DB, Malech HL, McIvor RS, Puck JM, Cowan MJ. Lentivirus Mediated Correction of Artemis-Deficient Severe Combined Immunodeficiency. Hum Gene Ther. 2017 Jan;28(1):112-124. doi: 10.1089/hum.2016.064. Epub 2016 Sep 7.
- Yeager AM, Shinn C, Shinohara M, Pardoll DM. Hematopoietic cell transplantation in the twitcher mouse. The effects of pretransplant conditioning with graded doses of busulfan. Transplantation. 1993 Jul;56(1):185-90. doi: 10.1097/00007890-199307000-00034.
- Modlich U, Navarro S, Zychlinski D, Maetzig T, Knoess S, Brugman MH, Schambach A, Charrier S, Galy A, Thrasher AJ, Bueren J, Baum C. Insertional transformation of hematopoietic cells by self-inactivating lentiviral and gammaretroviral vectors. Mol Ther. 2009 Nov;17(11):1919-28. doi: 10.1038/mt.2009.179. Epub 2009 Aug 11.
- O'Marcaigh AS, DeSantes K, Hu D, Pabst H, Horn B, Li L, Cowan MJ. Bone marrow transplantation for T-B- severe combined immunodeficiency disease in Athabascan-speaking native Americans. Bone Marrow Transplant. 2001 Apr;27(7):703-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1702831.
- Grunebaum E, Roifman CM. Bone marrow transplantation using HLA-matched unrelated donors for patients suffering from severe combined immunodeficiency. Immunol Allergy Clin North Am. 2010 Feb;30(1):63-73. doi: 10.1016/j.iac.2009.11.001.
- Griffith LM, Cowan MJ, Notarangelo LD, Kohn DB, Puck JM, Pai SY, Ballard B, Bauer SC, Bleesing JJ, Boyle M, Brower A, Buckley RH, van der Burg M, Burroughs LM, Candotti F, Cant AJ, Chatila T, Cunningham-Rundles C, Dinauer MC, Dvorak CC, Filipovich AH, Fleisher TA, Bobby Gaspar H, Gungor T, Haddad E, Hovermale E, Huang F, Hurley A, Hurley M, Iyengar S, Kang EM, Logan BR, Long-Boyle JR, Malech HL, McGhee SA, Modell F, Modell V, Ochs HD, O'Reilly RJ, Parkman R, Rawlings DJ, Routes JM, Shearer WT, Small TN, Smith H, Sullivan KE, Szabolcs P, Thrasher A, Torgerson TR, Veys P, Weinberg K, Zuniga-Pflucker JC; workshop participants. Primary Immune Deficiency Treatment Consortium (PIDTC) report. J Allergy Clin Immunol. 2014 Feb;133(2):335-47. doi: 10.1016/j.jaci.2013.07.052. Epub 2013 Oct 15.
- Ferrua F, Brigida I, Aiuti A. Update on gene therapy for adenosine deaminase-deficient severe combined immunodeficiency. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010 Dec;10(6):551-6. doi: 10.1097/ACI.0b013e32833fea85.
- Multhaup MM, Gurram S, Podetz-Pedersen KM, Karlen AD, Swanson DL, Somia NV, Hackett PB, Cowan MJ, McIvor RS. Characterization of the human artemis promoter by heterologous gene expression in vitro and in vivo. DNA Cell Biol. 2011 Oct;30(10):751-61. doi: 10.1089/dna.2011.1244. Epub 2011 Jun 10.
- Heimall J, Puck J, Buckley R, Fleisher TA, Gennery AR, Neven B, Slatter M, Haddad E, Notarangelo LD, Baker KS, Dietz AC, Duncan C, Pulsipher MA, Cowan MJ. Current Knowledge and Priorities for Future Research in Late Effects after Hematopoietic Stem Cell Transplantation (HCT) for Severe Combined Immunodeficiency Patients: A Consensus Statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric HCT. Biol Blood Marrow Transplant. 2017 Mar;23(3):379-387. doi: 10.1016/j.bbmt.2016.12.619. Epub 2017 Jan 6.
- Pai SY, Cowan MJ. Stem cell transplantation for primary immunodeficiency diseases: the North American experience. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2014 Dec;14(6):521-6. doi: 10.1097/ACI.0000000000000115.
- Hacein-Bey-Abina S, Hauer J, Lim A, Picard C, Wang GP, Berry CC, Martinache C, Rieux-Laucat F, Latour S, Belohradsky BH, Leiva L, Sorensen R, Debre M, Casanova JL, Blanche S, Durandy A, Bushman FD, Fischer A, Cavazzana-Calvo M. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2010 Jul 22;363(4):355-64. doi: 10.1056/NEJMoa1000164.
- Hacein-Bey Abina S, Gaspar HB, Blondeau J, Caccavelli L, Charrier S, Buckland K, Picard C, Six E, Himoudi N, Gilmour K, McNicol AM, Hara H, Xu-Bayford J, Rivat C, Touzot F, Mavilio F, Lim A, Treluyer JM, Heritier S, Lefrere F, Magalon J, Pengue-Koyi I, Honnet G, Blanche S, Sherman EA, Male F, Berry C, Malani N, Bushman FD, Fischer A, Thrasher AJ, Galy A, Cavazzana M. Outcomes following gene therapy in patients with severe Wiskott-Aldrich syndrome. JAMA. 2015 Apr 21;313(15):1550-63. doi: 10.1001/jama.2015.3253.
- Braun CJ, Boztug K, Paruzynski A, Witzel M, Schwarzer A, Rothe M, Modlich U, Beier R, Gohring G, Steinemann D, Fronza R, Ball CR, Haemmerle R, Naundorf S, Kuhlcke K, Rose M, Fraser C, Mathias L, Ferrari R, Abboud MR, Al-Herz W, Kondratenko I, Marodi L, Glimm H, Schlegelberger B, Schambach A, Albert MH, Schmidt M, von Kalle C, Klein C. Gene therapy for Wiskott-Aldrich syndrome--long-term efficacy and genotoxicity. Sci Transl Med. 2014 Mar 12;6(227):227ra33. doi: 10.1126/scitranslmed.3007280.
- Burroughs LM, Nemecek ER, Torgerson TR, Storer BE, Talano JA, Domm J, Giller RH, Shimamura A, Delaney C, Skoda-Smith S, Thakar MS, Baker KS, Rawlings DJ, Englund JA, Flowers ME, Deeg HJ, Storb R, Woolfrey AE. Treosulfan-based conditioning and hematopoietic cell transplantation for nonmalignant diseases: a prospective multicenter trial. Biol Blood Marrow Transplant. 2014 Dec;20(12):1996-2003. doi: 10.1016/j.bbmt.2014.08.020. Epub 2014 Sep 6.
- Danylesko I, Shimoni A, Nagler A. Treosulfan-based conditioning before hematopoietic SCT: more than a BU look-alike. Bone Marrow Transplant. 2012 Jan;47(1):5-14. doi: 10.1038/bmt.2011.88. Epub 2011 Apr 11.
- Moshous D, Callebaut I, de Chasseval R, Corneo B, Cavazzana-Calvo M, Le Deist F, Tezcan I, Sanal O, Bertrand Y, Philippe N, Fischer A, de Villartay JP. Artemis, a novel DNA double-strand break repair/V(D)J recombination protein, is mutated in human severe combined immune deficiency. Cell. 2001 Apr 20;105(2):177-86. doi: 10.1016/s0092-8674(01)00309-9.
- Rivera-Munoz P, Abramowski V, Jacquot S, Andre P, Charrier S, Lipson-Ruffert K, Fischer A, Galy A, Cavazzana M, de Villartay JP. Lymphopoiesis in transgenic mice over-expressing Artemis. Gene Ther. 2016 Feb;23(2):176-86. doi: 10.1038/gt.2015.95. Epub 2015 Oct 1.
- Cavazzana M, Six E, Lagresle-Peyrou C, Andre-Schmutz I, Hacein-Bey-Abina S. Gene Therapy for X-Linked Severe Combined Immunodeficiency: Where Do We Stand? Hum Gene Ther. 2016 Feb;27(2):108-16. doi: 10.1089/hum.2015.137.
- Long-Boyle JR, Savic R, Yan S, Bartelink I, Musick L, French D, Law J, Horn B, Cowan MJ, Dvorak CC. Population pharmacokinetics of busulfan in pediatric and young adult patients undergoing hematopoietic cell transplant: a model-based dosing algorithm for personalized therapy and implementation into routine clinical use. Ther Drug Monit. 2015 Apr;37(2):236-45. doi: 10.1097/FTD.0000000000000131.
- Romero Z, Campo-Fernandez B, Wherley J, Kaufman ML, Urbinati F, Cooper AR, Hoban MD, Baldwin KM, Lumaquin D, Wang X, Senadheera S, Hollis RP, Kohn DB. The human ankyrin 1 promoter insulator sustains gene expression in a beta-globin lentiviral vector in hematopoietic stem cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 2015 Apr 22;2:15012. doi: 10.1038/mtm.2015.12. eCollection 2015.
- French D, Sujishi KK, Long-Boyle JR, Ritchie JC. Development and validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry assay to quantify plasma busulfan. Ther Drug Monit. 2014 Apr;36(2):169-74. doi: 10.1097/01.ftd.0000443060.22620.cd.
- Varni JW, Sherman SA, Burwinkle TM, Dickinson PE, Dixon P. The PedsQL Family Impact Module: preliminary reliability and validity. Health Qual Life Outcomes. 2004 Sep 27;2:55. doi: 10.1186/1477-7525-2-55.
- Casella G. Refining binomial confidence intervals. Canadian Journal of Statistics 14(2): 113-129, 1986.
- Mamcarz E, Zhou S, Lockey T, Abdelsamed H, Cross SJ, Kang G, Ma Z, Condori J, Dowdy J, Triplett B, Li C, Maron G, Aldave Becerra JC, Church JA, Dokmeci E, Love JT, da Matta Ain AC, van der Watt H, Tang X, Janssen W, Ryu BY, De Ravin SS, Weiss MJ, Youngblood B, Long-Boyle JR, Gottschalk S, Meagher MM, Malech HL, Puck JM, Cowan MJ, Sorrentino BP. Lentiviral Gene Therapy Combined with Low-Dose Busulfan in Infants with SCID-X1. N Engl J Med. 2019 Apr 18;380(16):1525-1534. doi: 10.1056/NEJMoa1815408.
- Stoto MA. The accuracy of population projections. J Am Stat Assoc. 1983 Mar;78(381):13-20. doi: 10.1080/01621459.1983.10477916.
- Schuetz C, Neven B, Dvorak CC, Leroy S, Ege MJ, Pannicke U, Schwarz K, Schulz AS, Hoenig M, Sparber-Sauer M, Gatz SA, Denzer C, Blanche S, Moshous D, Picard C, Horn BN, de Villartay JP, Cavazzana M, Debatin KM, Friedrich W, Fischer A, Cowan MJ. SCID patients with ARTEMIS vs RAG deficiencies following HCT: increased risk of late toxicity in ARTEMIS-deficient SCID. Blood. 2014 Jan 9;123(2):281-9. doi: 10.1182/blood-2013-01-476432. Epub 2013 Oct 21.
- De Ravin SS, Wu X, Moir S, Anaya-O'Brien S, Kwatemaa N, Littel P, Theobald N, Choi U, Su L, Marquesen M, Hilligoss D, Lee J, Buckner CM, Zarember KA, O'Connor G, McVicar D, Kuhns D, Throm RE, Zhou S, Notarangelo LD, Hanson IC, Cowan MJ, Kang E, Hadigan C, Meagher M, Gray JT, Sorrentino BP, Malech HL, Kardava L. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. Sci Transl Med. 2016 Apr 20;8(335):335ra57. doi: 10.1126/scitranslmed.aad8856.
- Cowan MJ, Yu J, Facchino J, Fraser-Browne C, Sanford U, Kawahara M, Dara J, Long-Boyle J, Oh J, Chan W, Chag S, Broderick L, Chellapandian D, Decaluwe H, Golski C, Hu D, Kuo CY, Miller HK, Petrovic A, Currier R, Hilton JF, Punwani D, Dvorak CC, Malech HL, McIvor RS, Puck JM. Lentiviral Gene Therapy for Artemis-Deficient SCID. N Engl J Med. 2022 Dec 22;387(25):2344-2355. doi: 10.1056/NEJMoa2206575.
Termíny studijních záznamů
Hlavní termíny studia
Začátek studia (Aktuální)
Začátek studia
Primární dokončení (Odhadovaný)
Primární dokončení
Dokončení studie (Odhadovaný)
Dokončení studie
Termíny zápisu do studia
První předloženo
První předloženo
První předloženo, které splnilo kritéria kontroly kvality
První předloženo, které splnilo kritéria kontroly kvality
První zveřejněno (Aktuální)
První zveřejněno
Aktualizace studijních záznamů
Poslední zveřejněná aktualizace (Aktuální)
Poslední zveřejněná aktualizace
Odeslaná poslední aktualizace, která splnila kritéria kontroly kvality
Odeslaná poslední aktualizace, která splnila kritéria kontroly kvality
Naposledy ověřeno
Naposledy ověřeno
Více informací
Termíny související s touto studií
Klíčová slova
Další relevantní podmínky MeSH
- Primární imunodeficitní onemocnění
- Genetické choroby, vrozené
- Metabolické choroby
- Onemocnění imunitního systému
- Kojenec, novorozenec, nemoci
- Syndromy imunologické nedostatečnosti
- Poruchy opravy DNA-nedostatek
- Vrozené, dědičné a neonatální nemoci a abnormality
- Nutriční a metabolické nemoci
- Těžká kombinovaná imunodeficience
- Sloučeniny síry
- Organické chemikálie
- Uhlovodíky, acyklické
- Uhlovodíky
- Alkany
- Alkoholy
- Butylenglykoly
- Glykoly
- Mesyláty
- Alkanesulfonáty
- Alkanesulfonové kyseliny
- Kyseliny sulfonové
- Kyseliny síry
- Busulfan
Další identifikační čísla studie
Další identifikační čísla studie
- 17-22799
- CLIN2-10830 (Jiné číslo grantu/financování: California Institute of Regenerative Medicine)
- CLIN2-17127 (Jiné číslo grantu/financování: California Institute of Regenerative Medicine)
Plán pro data jednotlivých účastníků (IPD)
Plánujete sdílet data jednotlivých účastníků (IPD)?
Popis plánu IPD
Časový rámec sdílení IPD
Kritéria přístupu pro sdílení IPD
Typ podpůrných informací pro sdílení IPD
- PROTOKOL STUDY
- MÍZA
Informace o lécích a zařízeních, studijní dokumenty
Studuje lékový produkt regulovaný americkým FDA
Studuje produkt zařízení regulovaný americkým úřadem FDA
Tyto informace byly beze změn načteny přímo z webu clinicaltrials.gov. Máte-li jakékoli požadavky na změnu, odstranění nebo aktualizaci podrobností studie, kontaktujte prosím register@clinicaltrials.gov. Jakmile bude změna implementována na clinicaltrials.gov, bude automaticky aktualizována i na našem webu .