Sikkerhed og potentiel effektivitet af humane mesenkymale stamceller i ikke-cystisk fibrose bronkiektasi (CELEB)
Et fase I, forsøg til evaluering af sikkerheden, tolerabiliteten og den potentielle effektivitet af allogene humane mesenkymale stamceller (hMSC) infusion hos patienter med bronkiektasi af ikke-cystisk fibrose
Studieoversigt
Status
Status
Betingelser
Betingelser
Intervention / Behandling
Intervention / Behandling
Detaljeret beskrivelse
En fase 1-undersøgelse vil blive udført for at teste sikkerheden af to doser af knoglemarvs-afledte hMSC'er (20.000.000 og 100.000.000) administreret via perifer intravenøs infusion.
Gruppe 1: 3 forsøgspersoner vil modtage en enkelt administration af allogene hMSC'er: 20 x106 (20 millioner) celler leveret via perifer intravenøs infusion. Gruppe 2: 3 forsøgspersoner vil modtage en enkelt administration af allogene hMSC'er: 1 x108 (100 millioner) celler leveret via perifere intravenøs infusion Midlertidig sikkerhedsanalyse vil blive udført fire uger efter, at 1. forsøgsperson er indskrevet i hver kohorte. Fortsat sikkerhed og tolerabilitet med gennemgang af bivirkninger (AE'er) vil blive vurderet ved hvert besøg. Effektparametre (lungefunktionstests, lungediffusionskapacitet, lungevolumener, 6-minutters gangtest (6MWT) og dyspnø/livskvalitetsspørgeskemaer (QOL) vil blive vurderet hver 12. uge indtil undersøgelsens afslutning. Kliniske laboratorietests for at vurdere sikkerheden vil blive udført ved hvert besøg.
High Resolution Computed Tomography (HRCT)-scanning vil blive udført ved baseline-besøget (hvis det ikke er udført inden for tre måneder før tilmelding) og derefter i uge 24.
Undersøgelsestype
Undersøgelsestype
Tilmelding (Faktiske)
Tilmelding
Fase
Fase
- Fase 1
Kontakter og lokationer
Studiesteder
-
-
Florida
-
Miami, Florida, Forenede Stater, 33136
- University of Miami Hospitals & Clinics
-
-
Deltagelseskriterier
Berettigelseskriterier
Berettigelseskriterier
Aldre berettiget til at studere
Tager imod sunde frivillige
Køn, der er berettiget til at studere
Beskrivelse
Inklusionskriterier:
- give skriftligt informeret samtykke,
- være mellem 30 og 87 år på tidspunktet for underskrivelsen af det informerede samtykke,
- vægt over 45 og under 150 kg,
- har en klinisk diagnose af non-CF bronkiektasi før screening,
- Har haft mindst 2 eksacerbationer inden for det seneste år som dokumenteret ved lægebesøg eller hospitalsbesøg (brug af antibiotika mindst én gang inden for det sidste år),
- Vis en baseline FEV1 mellem 25% og 85% forudsagt og over eller lig med 1 L og en baseline diffusionskapacitet af lunge for kulilte (DLCO) over eller lig med 30% (korrigeret for hæmoglobin, men ikke alveolært volumen),
- Har en normal højre ventrikelfunktion, som dokumenteret ved Doppler-ekko eller højre hjertekateterisering,
- hvis en kvinde i den fødedygtige alder, accepterer at overholde præventionsreglerne defineret nedenfor.
- Forsøgspersoner kan modtage ikke-lægemiddelbehandlinger, herunder ilttilskud på højst 4 liter pr. minut og pulmonal rehabilitering.
- Forsøgspersoner kan være på kronisk makrolid eller inhaleret antibiotikabehandling bronkiektasi
Ekskluderingskriterier:
- Har HRCT- og eller kirurgiske lungebiopsiresultater, der ikke stemmer overens med diagnosen non-CF bronkiektasi. (Eksklusion af emfysem og eller diffus parenkymsygdom)
- være ude af stand til at udføre nogen af de vurderinger, der kræves til effektmålsanalyse (rapporter sikkerheds- eller tolerabilitetsproblemer, udføre lungefunktionstests (PFT) eller HRCT, gennemgå blodprøver, læse og svare på spørgeskemaet
- Hvis en kvinde i den fødedygtige alder, har et follikelstimulerende hormon (FSH) under 25,8 IE/L
- blive aktivt behandlet for en akut infektiøs forværring af bronkiektasi
- Har en aktiv infektion, der ikke behandles
- Har haft aktive infektioner inden for minimum 4 uger efter undersøgelsesbehandling
- Vær i øjeblikket i behandling for NTM-infektioner
- Har haft positive sputumkulturer for ikke-tuberkuløse mykobakterier (NTM) inden for de seneste 6 måneder
- Har en historie med stof- eller alkoholmisbrug inden for de seneste 24 måneder.
- I øjeblikket modtager (eller har modtaget inden for fire uger efter screening) eksperimentelle midler til behandling af bronkiektasi eller har været tilmeldt kliniske forsøg inden for de foregående 30 dage
- Vær aktivt opført (eller forvent fremtidig notering) for transplantation af ethvert organ.
- Har klinisk vigtige unormale screeningslaboratorieværdier.
- Har en alvorlig komorbid sygdom, der efter investigatorens mening kan kompromittere patientens sikkerhed eller compliance eller forhindre en vellykket gennemførelse af undersøgelsen.
- Har andre forhold, der efter investigatorens mening kan kompromittere patientens sikkerhed eller compliance eller forhindre en vellykket gennemførelse af undersøgelsen.
- Har kendt allergi over for penicillin eller streptomycin.
- Være organtransplanteret modtager.
- Har en klinisk anamnese med malignitet inden for 5 år (dvs. patienter med tidligere malignitet skal være sygdomsfri i 5 år), undtagen kurativt behandlet basalcellekarcinom i huden, pladecellekarcinom i huden eller cervikal carcinom.
- Har en ikke-pulmonal tilstand, der begrænser levetiden til mindre end 1 år.
- Vær serumpositiv for HIV, hepatitis BsAg (overflademiddelreaktivt) eller viremisk hepatitis C.
- Har overfølsomhed over for dimethylsulfoxid (DMSO)
- Være ude af stand til at opretholde mættet ilt (SpO2) på mere end 93 % på rumluft ved havoverfladen i hvile) eller en SpO2 på mere end 88 % på rumluft over 5.000 fod (1524 meter) over havets overflade i hvile.
Studieplan
Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?
Design detaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: Ikke-randomiseret
- Interventionel model: Enkelt gruppeopgave
- Maskning: Ingen (Åben etiket)
Antal våben
Våben og indgreb
Deltagergruppe / ArmDeltagergruppe / Arm |
Intervention / BehandlingIntervention / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentel: Gruppe 1
3 patienter vil modtage en enkelt administration af allogene hMSC'er: 20 x 106 (20 millioner) celler leveret via perifer intravenøs infusion
|
intravenøs infusion af knoglemarvs-afledte allogene stamceller
Andre navne:
|
|
Eksperimentel: Gruppe 2
3 patienter vil modtage en enkelt administration af allogene hMSC'er: 1 x108 (100 millioner) celler leveret via perifer intravenøs infusion
|
intravenøs infusion af knoglemarvs-afledte allogene stamceller
Andre navne:
|
Hvad måler undersøgelsen?
Primære resultatmål
Primære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Antal deltagere med behandling, der opstår alvorlige bivirkninger
Tidsramme: Uge 4 efter infusion
|
forekomst af behandlingsudløste alvorlige bivirkninger defineret som sammensætningen af død, ikke-dødelig lungeemboli, slagtilfælde, hospitalsindlæggelse for forværring af dyspnø og klinisk signifikante laboratorietestabnormiteter
|
Uge 4 efter infusion
|
Sekundære resultatmål
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Forskel i kolonidannende enheder (CFU'er) i semikvantitativ kultur af sputum
Tidsramme: Deltagerne vil blive fulgt fra 1 uge til et forventet gennemsnit på 24 uger efter infusion.
|
Forskel i CFU'er i semikvantitativ kultur af sputum
|
Deltagerne vil blive fulgt fra 1 uge til et forventet gennemsnit på 24 uger efter infusion.
|
|
hastigheden af fald i lungefunktionen
Tidsramme: Deltagerne vil blive fulgt fra 12 uger til et forventet gennemsnit på 24 uger efter infusion.
|
forskel i absolut fald i forceret udåndingsvolumen ved et sekund (FEV1) procent forudsagt
|
Deltagerne vil blive fulgt fra 12 uger til et forventet gennemsnit på 24 uger efter infusion.
|
|
hyppigheden af akutte eksacerbationer
Tidsramme: Deltagerne vil blive fulgt fra 12 uger til et forventet gennemsnit på 48 uger efter infusion.
|
øget hoste og opspytproduktion, feber, ny eller forværret dyspnø på mindre end 30 dage, ny eller forværret hypoxæmi i fravær af andre identificerbare årsager
|
Deltagerne vil blive fulgt fra 12 uger til et forventet gennemsnit på 48 uger efter infusion.
|
|
rapporteret dyspnø og livskvalitetsvurdering
Tidsramme: Deltagerne vil blive fulgt fra 4 uger til et forventet gennemsnit på 48 uger efter infusion.
|
ved hjælp af livskvalitetsværktøj spørgeskema QOL-B version 2
|
Deltagerne vil blive fulgt fra 4 uger til et forventet gennemsnit på 48 uger efter infusion.
|
|
død af enhver årsag
Tidsramme: Deltagerne vil blive fulgt under forsøgets varighed, hvilket er et forventet gennemsnit på 48 uger.
|
død af enhver årsag
|
Deltagerne vil blive fulgt under forsøgets varighed, hvilket er et forventet gennemsnit på 48 uger.
|
Samarbejdspartnere og efterforskere
Sponsor
Sponsor
Efterforskere
Efterforskere
- Ledende efterforsker: Glassberg K Marilyn, MD, University of Miami
Publikationer og nyttige links
Generelle publikationer
- Le Blanc K, Frassoni F, Ball L, Locatelli F, Roelofs H, Lewis I, Lanino E, Sundberg B, Bernardo ME, Remberger M, Dini G, Egeler RM, Bacigalupo A, Fibbe W, Ringden O; Developmental Committee of the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Mesenchymal stem cells for treatment of steroid-resistant, severe, acute graft-versus-host disease: a phase II study. Lancet. 2008 May 10;371(9624):1579-86. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60690-X.
- Liang J, Zhang H, Hua B, Wang H, Lu L, Shi S, Hou Y, Zeng X, Gilkeson GS, Sun L. Allogenic mesenchymal stem cells transplantation in refractory systemic lupus erythematosus: a pilot clinical study. Ann Rheum Dis. 2010 Aug;69(8):1423-9. doi: 10.1136/ard.2009.123463. Erratum In: Ann Rheum Dis. 2011 Jan;70(1):237.
- Quittner AL, O'Donnell AE, Salathe MA, Lewis SA, Li X, Montgomery AB, O'Riordan TG, Barker AF. Quality of Life Questionnaire-Bronchiectasis: final psychometric analyses and determination of minimal important difference scores. Thorax. 2015 Jan;70(1):12-20. doi: 10.1136/thoraxjnl-2014-205918. Epub 2014 Oct 16.
- Wilson JG, Liu KD, Zhuo H, Caballero L, McMillan M, Fang X, Cosgrove K, Vojnik R, Calfee CS, Lee JW, Rogers AJ, Levitt J, Wiener-Kronish J, Bajwa EK, Leavitt A, McKenna D, Thompson BT, Matthay MA. Mesenchymal stem (stromal) cells for treatment of ARDS: a phase 1 clinical trial. Lancet Respir Med. 2015 Jan;3(1):24-32. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70291-7. Epub 2014 Dec 17.
- Tzouvelekis A, Paspaliaris V, Koliakos G, Ntolios P, Bouros E, Oikonomou A, Zissimopoulos A, Boussios N, Dardzinski B, Gritzalis D, Antoniadis A, Froudarakis M, Kolios G, Bouros D. A prospective, non-randomized, no placebo-controlled, phase Ib clinical trial to study the safety of the adipose derived stromal cells-stromal vascular fraction in idiopathic pulmonary fibrosis. J Transl Med. 2013 Jul 15;11:171. doi: 10.1186/1479-5876-11-171.
- Chambers DC, Enever D, Ilic N, Sparks L, Whitelaw K, Ayres J, Yerkovich ST, Khalil D, Atkinson KM, Hopkins PM. A phase 1b study of placenta-derived mesenchymal stromal cells in patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Respirology. 2014 Oct;19(7):1013-8. doi: 10.1111/resp.12343. Epub 2014 Jul 9.
- Moodley Y, Atienza D, Manuelpillai U, Samuel CS, Tchongue J, Ilancheran S, Boyd R, Trounson A. Human umbilical cord mesenchymal stem cells reduce fibrosis of bleomycin-induced lung injury. Am J Pathol. 2009 Jul;175(1):303-13. doi: 10.2353/ajpath.2009.080629. Epub 2009 Jun 4.
- Hare JM, Fishman JE, Gerstenblith G, DiFede Velazquez DL, Zambrano JP, Suncion VY, Tracy M, Ghersin E, Johnston PV, Brinker JA, Breton E, Davis-Sproul J, Schulman IH, Byrnes J, Mendizabal AM, Lowery MH, Rouy D, Altman P, Wong Po Foo C, Ruiz P, Amador A, Da Silva J, McNiece IK, Heldman AW, George R, Lardo A. Comparison of allogeneic vs autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells delivered by transendocardial injection in patients with ischemic cardiomyopathy: the POSEIDON randomized trial. JAMA. 2012 Dec 12;308(22):2369-79. doi: 10.1001/jama.2012.25321. Erratum In: JAMA. 2013 Aug 21;310(7):750. George, Richard [added]; Lardo, Albert [added].
- Deans RJ, Moseley AB. Mesenchymal stem cells: biology and potential clinical uses. Exp Hematol. 2000 Aug;28(8):875-84. doi: 10.1016/s0301-472x(00)00482-3.
- Wong C, Jayaram L, Karalus N, Eaton T, Tong C, Hockey H, Milne D, Fergusson W, Tuffery C, Sexton P, Storey L, Ashton T. Azithromycin for prevention of exacerbations in non-cystic fibrosis bronchiectasis (EMBRACE): a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2012 Aug 18;380(9842):660-7. doi: 10.1016/S0140-6736(12)60953-2.
- Jiang Y, Jahagirdar BN, Reinhardt RL, Schwartz RE, Keene CD, Ortiz-Gonzalez XR, Reyes M, Lenvik T, Lund T, Blackstad M, Du J, Aldrich S, Lisberg A, Low WC, Largaespada DA, Verfaillie CM. Pluripotency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow. Nature. 2002 Jul 4;418(6893):41-9. doi: 10.1038/nature00870. Epub 2002 Jun 20. Erratum In: Nature. 2007 Jun 14;447(7146):879-80.
- Gupta N, Su X, Popov B, Lee JW, Serikov V, Matthay MA. Intrapulmonary delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells improves survival and attenuates endotoxin-induced acute lung injury in mice. J Immunol. 2007 Aug 1;179(3):1855-63. doi: 10.4049/jimmunol.179.3.1855.
- Lee JW, Fang X, Gupta N, Serikov V, Matthay MA. Allogeneic human mesenchymal stem cells for treatment of E. coli endotoxin-induced acute lung injury in the ex vivo perfused human lung. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Sep 22;106(38):16357-62. doi: 10.1073/pnas.0907996106. Epub 2009 Aug 31.
- Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, Pandey AC, Torres G, Go K, Phinney DG. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Jun 26;104(26):11002-7. doi: 10.1073/pnas.0704421104. Epub 2007 Jun 14.
- Rojas M, Xu J, Woods CR, Mora AL, Spears W, Roman J, Brigham KL. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Aug;33(2):145-52. doi: 10.1165/rcmb.2004-0330OC. Epub 2005 May 12.
- Fang X, Neyrinck AP, Matthay MA, Lee JW. Allogeneic human mesenchymal stem cells restore epithelial protein permeability in cultured human alveolar type II cells by secretion of angiopoietin-1. J Biol Chem. 2010 Aug 20;285(34):26211-22. doi: 10.1074/jbc.M110.119917. Epub 2010 Jun 16.
- Gupta N, Krasnodembskaya A, Kapetanaki M, Mouded M, Tan X, Serikov V, Matthay MA. Mesenchymal stem cells enhance survival and bacterial clearance in murine Escherichia coli pneumonia. Thorax. 2012 Jun;67(6):533-9. doi: 10.1136/thoraxjnl-2011-201176. Epub 2012 Jan 16.
- Krasnodembskaya A, Samarani G, Song Y, Zhuo H, Su X, Lee JW, Gupta N, Petrini M, Matthay MA. Human mesenchymal stem cells reduce mortality and bacteremia in gram-negative sepsis in mice in part by enhancing the phagocytic activity of blood monocytes. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2012 May 15;302(10):L1003-13. doi: 10.1152/ajplung.00180.2011. Epub 2012 Mar 16.
- Krasnodembskaya A, Song Y, Fang X, Gupta N, Serikov V, Lee JW, Matthay MA. Antibacterial effect of human mesenchymal stem cells is mediated in part from secretion of the antimicrobial peptide LL-37. Stem Cells. 2010 Dec;28(12):2229-38. doi: 10.1002/stem.544.
- Lee JW, Krasnodembskaya A, McKenna DH, Song Y, Abbott J, Matthay MA. Therapeutic effects of human mesenchymal stem cells in ex vivo human lungs injured with live bacteria. Am J Respir Crit Care Med. 2013 Apr 1;187(7):751-60. doi: 10.1164/rccm.201206-0990OC.
- Nemeth K, Leelahavanichkul A, Yuen PS, Mayer B, Parmelee A, Doi K, Robey PG, Leelahavanichkul K, Koller BH, Brown JM, Hu X, Jelinek I, Star RA, Mezey E. Bone marrow stromal cells attenuate sepsis via prostaglandin E(2)-dependent reprogramming of host macrophages to increase their interleukin-10 production. Nat Med. 2009 Jan;15(1):42-9. doi: 10.1038/nm.1905. Epub 2008 Nov 21. Erratum In: Nat Med. 2009 Apr;15(4):462.
- Mei SH, Haitsma JJ, Dos Santos CC, Deng Y, Lai PF, Slutsky AS, Liles WC, Stewart DJ. Mesenchymal stem cells reduce inflammation while enhancing bacterial clearance and improving survival in sepsis. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Oct 15;182(8):1047-57. doi: 10.1164/rccm.201001-0010OC. Epub 2010 Jun 17.
- Lee RH, Seo MJ, Reger RL, Spees JL, Pulin AA, Olson SD, Prockop DJ. Multipotent stromal cells from human marrow home to and promote repair of pancreatic islets and renal glomeruli in diabetic NOD/scid mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006 Nov 14;103(46):17438-43. doi: 10.1073/pnas.0608249103. Epub 2006 Nov 6.
- Parekkadan B, van Poll D, Suganuma K, Carter EA, Berthiaume F, Tilles AW, Yarmush ML. Mesenchymal stem cell-derived molecules reverse fulminant hepatic failure. PLoS One. 2007 Sep 26;2(9):e941. doi: 10.1371/journal.pone.0000941.
- Togel F, Hu Z, Weiss K, Isaac J, Lange C, Westenfelder C. Administered mesenchymal stem cells protect against ischemic acute renal failure through differentiation-independent mechanisms. Am J Physiol Renal Physiol. 2005 Jul;289(1):F31-42. doi: 10.1152/ajprenal.00007.2005. Epub 2005 Feb 15.
- Iso Y, Spees JL, Serrano C, Bakondi B, Pochampally R, Song YH, Sobel BE, Delafontaine P, Prockop DJ. Multipotent human stromal cells improve cardiac function after myocardial infarction in mice without long-term engraftment. Biochem Biophys Res Commun. 2007 Mar 16;354(3):700-6. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.01.045. Epub 2007 Jan 17.
- Schuleri KH, Feigenbaum GS, Centola M, Weiss ES, Zimmet JM, Turney J, Kellner J, Zviman MM, Hatzistergos KE, Detrick B, Conte JV, McNiece I, Steenbergen C, Lardo AC, Hare JM. Autologous mesenchymal stem cells produce reverse remodelling in chronic ischaemic cardiomyopathy. Eur Heart J. 2009 Nov;30(22):2722-32. doi: 10.1093/eurheartj/ehp265. Epub 2009 Jul 8.
- Miyahara Y, Nagaya N, Kataoka M, Yanagawa B, Tanaka K, Hao H, Ishino K, Ishida H, Shimizu T, Kangawa K, Sano S, Okano T, Kitamura S, Mori H. Monolayered mesenchymal stem cells repair scarred myocardium after myocardial infarction. Nat Med. 2006 Apr;12(4):459-65. doi: 10.1038/nm1391. Epub 2006 Apr 2.
- Hare JM, Traverse JH, Henry TD, Dib N, Strumpf RK, Schulman SP, Gerstenblith G, DeMaria AN, Denktas AE, Gammon RS, Hermiller JB Jr, Reisman MA, Schaer GL, Sherman W. A randomized, double-blind, placebo-controlled, dose-escalation study of intravenous adult human mesenchymal stem cells (prochymal) after acute myocardial infarction. J Am Coll Cardiol. 2009 Dec 8;54(24):2277-86. doi: 10.1016/j.jacc.2009.06.055.
- Gong Z, Niklason LE. Use of human mesenchymal stem cells as alternative source of smooth muscle cells in vessel engineering. Methods Mol Biol. 2011;698:279-94. doi: 10.1007/978-1-60761-999-4_21.
- Price AP, England KA, Matson AM, Blazar BR, Panoskaltsis-Mortari A. Development of a decellularized lung bioreactor system for bioengineering the lung: the matrix reloaded. Tissue Eng Part A. 2010 Aug;16(8):2581-91. doi: 10.1089/ten.TEA.2009.0659.
- Ishizawa K, Kubo H, Yamada M, Kobayashi S, Numasaki M, Ueda S, Suzuki T, Sasaki H. Bone marrow-derived cells contribute to lung regeneration after elastase-induced pulmonary emphysema. FEBS Lett. 2004 Jan 2;556(1-3):249-52. doi: 10.1016/s0014-5793(03)01399-1.
- Spees JL, Pociask DA, Sullivan DE, Whitney MJ, Lasky JA, Prockop DJ, Brody AR. Engraftment of bone marrow progenitor cells in a rat model of asbestos-induced pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2007 Aug 15;176(4):385-94. doi: 10.1164/rccm.200607-1004OC. Epub 2007 May 11.
- Spees JL, Whitney MJ, Sullivan DE, Lasky JA, Laboy M, Ylostalo J, Prockop DJ. Bone marrow progenitor cells contribute to repair and remodeling of the lung and heart in a rat model of progressive pulmonary hypertension. FASEB J. 2008 Apr;22(4):1226-36. doi: 10.1096/fj.07-8076com. Epub 2007 Nov 21.
- Bonfield TL, Koloze M, Lennon DP, Zuchowski B, Yang SE, Caplan AI. Human mesenchymal stem cells suppress chronic airway inflammation in the murine ovalbumin asthma model. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2010 Dec;299(6):L760-70. doi: 10.1152/ajplung.00182.2009. Epub 2010 Sep 3.
- Gao J, Dennis JE, Muzic RF, Lundberg M, Caplan AI. The dynamic in vivo distribution of bone marrow-derived mesenchymal stem cells after infusion. Cells Tissues Organs. 2001;169(1):12-20. doi: 10.1159/000047856.
- Cargnoni A, Gibelli L, Tosini A, Signoroni PB, Nassuato C, Arienti D, Lombardi G, Albertini A, Wengler GS, Parolini O. Transplantation of allogeneic and xenogeneic placenta-derived cells reduces bleomycin-induced lung fibrosis. Cell Transplant. 2009;18(4):405-22. doi: 10.3727/096368909788809857.
- Lee SH, Jang AS, Kim YE, Cha JY, Kim TH, Jung S, Park SK, Lee YK, Won JH, Kim YH, Park CS. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010 Feb 8;11(1):16. doi: 10.1186/1465-9921-11-16.
- Ortiz LA, Gambelli F, McBride C, Gaupp D, Baddoo M, Kaminski N, Phinney DG. Mesenchymal stem cell engraftment in lung is enhanced in response to bleomycin exposure and ameliorates its fibrotic effects. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003 Jul 8;100(14):8407-11. doi: 10.1073/pnas.1432929100. Epub 2003 Jun 18.
- Kotton DN, Ma BY, Cardoso WV, Sanderson EA, Summer RS, Williams MC, Fine A. Bone marrow-derived cells as progenitors of lung alveolar epithelium. Development. 2001 Dec;128(24):5181-8. doi: 10.1242/dev.128.24.5181.
- Sueblinvong V, Loi R, Eisenhauer PL, Bernstein IM, Suratt BT, Spees JL, Weiss DJ. Derivation of lung epithelium from human cord blood-derived mesenchymal stem cells. Am J Respir Crit Care Med. 2008 Apr 1;177(7):701-11. doi: 10.1164/rccm.200706-859OC. Epub 2007 Dec 6.
- Ma N, Gai H, Mei J, Ding FB, Bao CR, Nguyen DM, Zhong H. Bone marrow mesenchymal stem cells can differentiate into type II alveolar epithelial cells in vitro. Cell Biol Int. 2011 Dec;35(12):1261-6. doi: 10.1042/CBI20110026.
- Yamada M, Kubo H, Kobayashi S, Ishizawa K, Numasaki M, Ueda S, Suzuki T, Sasaki H. Bone marrow-derived progenitor cells are important for lung repair after lipopolysaccharide-induced lung injury. J Immunol. 2004 Jan 15;172(2):1266-72. doi: 10.4049/jimmunol.172.2.1266. Erratum In: J Immunol. 2004 Oct 1;173(7):4755.
- Chang JC, Summer R, Sun X, Fitzsimmons K, Fine A. Evidence that bone marrow cells do not contribute to the alveolar epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Oct;33(4):335-42. doi: 10.1165/rcmb.2005-0129OC. Epub 2005 Jun 16.
- Kotton DN, Fabian AJ, Mulligan RC. Failure of bone marrow to reconstitute lung epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Oct;33(4):328-34. doi: 10.1165/rcmb.2005-0175RC. Epub 2005 Jun 16.
- Kumamoto M, Nishiwaki T, Matsuo N, Kimura H, Matsushima K. Minimally cultured bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate fibrotic lung injury. Eur Respir J. 2009 Sep;34(3):740-8. doi: 10.1183/09031936.00128508. Epub 2009 Mar 26.
- Bitencourt CS, Pereira PA, Ramos SG, Sampaio SV, Arantes EC, Aronoff DM, Faccioli LH. Hyaluronidase recruits mesenchymal-like cells to the lung and ameliorates fibrosis. Fibrogenesis Tissue Repair. 2011 Jan 13;4(1):3. doi: 10.1186/1755-1536-4-3.
- Lee SH, Lee EJ, Lee SY, Kim JH, Shim JJ, Shin C, In KH, Kang KH, Uhm CS, Kim HK, Yang KS, Park S, Kim HS, Kim YM, Yoo TJ. The effect of adipose stem cell therapy on pulmonary fibrosis induced by repetitive intratracheal bleomycin in mice. Exp Lung Res. 2014 Apr;40(3):117-25. doi: 10.3109/01902148.2014.881930.
- Xu J, Mora A, Shim H, Stecenko A, Brigham KL, Rojas M. Role of the SDF-1/CXCR4 axis in the pathogenesis of lung injury and fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007 Sep;37(3):291-9. doi: 10.1165/rcmb.2006-0187OC. Epub 2007 Apr 26.
- Antoniou KM, Papadaki HA, Soufla G, Kastrinaki MC, Damianaki A, Koutala H, Spandidos DA, Siafakas NM. Investigation of bone marrow mesenchymal stem cells (BM MSCs) involvement in Idiopathic Pulmonary Fibrosis (IPF). Respir Med. 2010 Oct;104(10):1535-42. doi: 10.1016/j.rmed.2010.04.015. Epub 2010 May 18.
- Weiss DJ, Casaburi R, Flannery R, LeRoux-Williams M, Tashkin DP. A placebo-controlled, randomized trial of mesenchymal stem cells in COPD. Chest. 2013 Jun;143(6):1590-1598. doi: 10.1378/chest.12-2094.
- Weiss DJ, Chambers D, Giangreco A, Keating A, Kotton D, Lelkes PI, Wagner DE, Prockop DJ; ATS Subcommittee on Stem Cells and Cell Therapies. An official American Thoracic Society workshop report: stem cells and cell therapies in lung biology and diseases. Ann Am Thorac Soc. 2015 Apr;12(4):S79-97. doi: 10.1513/AnnalsATS.201502-086ST.
- Glassberg MK, Toonkel RL. Moving stem cell therapy to patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Respirology. 2014 Oct;19(7):950-1. doi: 10.1111/resp.12364. Epub 2014 Aug 14. No abstract available.
- Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013 Jul 15;188(2):133-40. doi: 10.1164/rccm.201207-1204PP.
- Sundin M, Orvell C, Rasmusson I, Sundberg B, Ringden O, Le Blanc K. Mesenchymal stem cells are susceptible to human herpesviruses, but viral DNA cannot be detected in the healthy seropositive individual. Bone Marrow Transplant. 2006 Jun;37(11):1051-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1705368.
- Klyushnenkova E, Mosca JD, Zernetkina V, Majumdar MK, Beggs KJ, Simonetti DW, Deans RJ, McIntosh KR. T cell responses to allogeneic human mesenchymal stem cells: immunogenicity, tolerance, and suppression. J Biomed Sci. 2005;12(1):47-57. doi: 10.1007/s11373-004-8183-7.
- Le Blanc K, Tammik C, Rosendahl K, Zetterberg E, Ringden O. HLA expression and immunologic properties of differentiated and undifferentiated mesenchymal stem cells. Exp Hematol. 2003 Oct;31(10):890-6. doi: 10.1016/s0301-472x(03)00110-3.
- King P. Pathogenesis of bronchiectasis. Paediatr Respir Rev. 2011 Jun;12(2):104-10. doi: 10.1016/j.prrv.2010.10.011. Epub 2010 Nov 24.
- Weycker D, Edelsberg J, Oster G, Tino G. Prevalence and economic burden of bronchiectasis. Clin Pulm Med. 2005;12(4):205-9
- Seitz AE, Olivier KN, Adjemian J, Holland SM, Prevots DR. Trends in bronchiectasis among medicare beneficiaries in the United States, 2000 to 2007. Chest. 2012 Aug;142(2):432-439. doi: 10.1378/chest.11-2209.
- Bilton D, Tino G, Barker AF, Chambers DC, De Soyza A, Dupont LJ, O'Dochartaigh C, van Haren EH, Vidal LO, Welte T, Fox HG, Wu J, Charlton B; B-305 Study Investigators. Inhaled mannitol for non-cystic fibrosis bronchiectasis: a randomised, controlled trial. Thorax. 2014 Dec;69(12):1073-9. doi: 10.1136/thoraxjnl-2014-205587. Epub 2014 Sep 21.
- Rogers GB, Bruce KD, Martin ML, Burr LD, Serisier DJ. The effect of long-term macrolide treatment on respiratory microbiota composition in non-cystic fibrosis bronchiectasis: an analysis from the randomised, double-blind, placebo-controlled BLESS trial. Lancet Respir Med. 2014 Dec;2(12):988-96. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70213-9. Epub 2014 Oct 14. Erratum In: Lancet Respir Med. 2015 Apr;3(4):e15.
- Altenburg J, de Graaff CS, Stienstra Y, Sloos JH, van Haren EH, Koppers RJ, van der Werf TS, Boersma WG. Effect of azithromycin maintenance treatment on infectious exacerbations among patients with non-cystic fibrosis bronchiectasis: the BAT randomized controlled trial. JAMA. 2013 Mar 27;309(12):1251-9. doi: 10.1001/jama.2013.1937.
Datoer for undersøgelser
Studer store datoer
Studiestart (Faktiske)
Studiestart
Primær færdiggørelse (Faktiske)
Primær færdiggørelse
Studieafslutning (Faktiske)
Studieafslutning
Datoer for studieregistrering
Først indsendt
Først indsendt
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først opslået (Skøn)
Først opslået
Opdateringer af undersøgelsesjournaler
Sidste opdatering sendt (Faktiske)
Sidste opdatering sendt
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidst verificeret
Sidst verificeret
Mere information
Begreber relateret til denne undersøgelse
Yderligere relevante MeSH-vilkår
Andre undersøgelses-id-numre
Andre undersøgelses-id-numre
- 20150627
Plan for individuelle deltagerdata (IPD)
Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?
Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .