タンパク質合成とmTORC1活性化に対する昆虫由来タンパク質サプリメントの効果
昆虫由来のタンパク質サプリメント (IPC80 および全水牛粉末、Ynsect®) が mTORC1 および筋肉のタンパク質合成を活性化する能力
この研究の目的は、昆虫由来のタンパク質サプリメント (IPC80 および Whole Buffalo Powder Ynsect®) が mTORC1 経路と筋肉細胞のタンパク質合成を活性化する能力を判断することです。
この目的を達成するために、参加者は、IPC80、全バッファロー パウダー、またはホエイ プロテインの補足用量 (0.25 g/kg 体重) を消費します。 血液サンプルは、補充の前と、補充の 15、30、60、および 90 分後に採取されます。
タンパク質合成は、プラスミド (pcDNA3 ルシフェラーゼ) で安定的にトランスフェクトされた C2C12 筋細胞を使用して評価され、mTORC1 を活性化するタンパク質源の能力を決定します。 5'TOP。 mTORC1活性によって特異的に調節される5'TOPが使用される。
調査の概要
詳細な説明
この研究の目的は、昆虫由来のタンパク質サプリメント (IPC80 および Whole Buffalo Powder、Ynsect®) が mTORC1 経路と筋肉細胞のタンパク質合成を活性化する能力を判断することです。
この目的を達成するために、参加者は、IPC80、バッファロー全体の粉末、またはホエイプロテインの補足用量 (0.25 g/kg 体重) を摂取します。 血液サンプルは、補充の前と、補充の 15、30、60、および 90 分後に採取されます。
このプロジェクトは、昆虫由来のタンパク質サプリメント (IPC80 および Whole Buffalo Powder、Ynsect®) が mTORC1 経路の活性化と筋肉細胞のタンパク質合成を誘導する能力を持っているかどうかを判断することが期待されています。 この研究の結果は、運動後の筋肉タンパク質合成をサポートするために、この新しい持続可能なタンパク質源の使用法についてさらに洞察を与えるでしょう.
18〜30歳の男女の参加者が研究に登録されます。 この研究は無作為化された二重盲検クロスオーバーデザインであり、被験者も研究者も誰がどの治療を受けているかを知りません(IPC80、全バッファローパウダーまたはホエー).
I. ベースラインの採血 被験者は、一晩絶食した後、実験室に到着します。 肘前静脈にカニューレを挿入し、最初の 5 mL のベースライン血液サンプルを採取します。
Ⅱ.補足 ベースラインの採血後、被験者には体重 1 kg あたり 0.25 g のホエイプロテイン、IPC80、または 250 ml の水に溶解したバッファロー粉末全体のいずれかの補足が提供されます。
III.食後の採血 サプリメントの摂取後、参加者は実験室にさらに 1.5 時間留まり、時間を過ごすために本や電子機器を持参することができます。 補充後 15、30、60、および 90 分に、それぞれ 5 mL の血液サンプルをさらに 4 回採取し、1 回の訪問で合計 5 mL (1 回の訪問で 25 mL) の採血を 5 回行い、被験者ごとに合計 75 mL の採血を行います。全体の研究。
血液は、5 mL の血清分離チューブに採取されます。 すべての血液サンプルは、1000 x gで10分間遠心分離する前に1時間凝固させ、血清を凍結し、処理するまで-30°Cに保ちます。 治療は順序効果を避けるために無作為化され、前の治療の影響を最小限に抑えるために、試験の間に少なくとも48時間のウォッシュアウト期間が使用されます。
タンパク質合成を測定するために、C2C12 筋細胞にプラスミド (pcDNA3 ルシフェラーゼ) を安定的にトランスフェクトし、これを使用して全体的なタンパク質合成を測定しました。 C2C12Luc 細胞を 24 ウェルプレートに播種し、4 日間かけて分化させます。 分化したC2C12細胞は、PBSで洗浄し、次いでそれらを試験培地(20%DMEM;80%ハンクス緩衝塩溶液(HBSS))で15分間処理することにより絶食する。 次に、絶食した筋肉細胞を、0、2.5、5、または 10% のベースラインを含む試験培地または飼料添加血清で 60 分間処理します。 細胞は受動的溶解緩衝液で収集され、ホタルルシフェラーゼ活性は以前に記載されているように決定されます(Philp et al。、2013)。
タンパク質源が mTORC1 を活性化する能力を決定するために、ルシフェラーゼ mRNA が 5' 末端ポリピリミジン トラクト (TOP) を含むプラスミド (pcDNA3-TOP ルシフェラーゼ) を C2C12 筋細胞に安定的にトランスフェクトしました。 5'TOP mRNA は、mTORC1 活性によって特異的に調節されます (Jefferies et al., 1994)。 上記のように、24 ウェル プレート内の分化した C2C12TOPLuc 筋肉細胞は、上記のベースラインまたは供給血清を使用して刺激されます。 mTORC1 活性化の程度は、ベースラインと摂食血清の間の勾配の差として決定されます。 ホエイ、IPC80、Whole Buffalo Powder による mTORC1 およびタンパク質合成の誘導を、個人内で直接比較し、次にグループ間で比較します。
研究の種類
入学 (実際)
段階
- 適用できない
連絡先と場所
研究場所
-
-
California
-
Davis、California、アメリカ、95616
- Hickey Laboratory
-
-
参加基準
適格基準
就学可能な年齢
健康ボランティアの受け入れ
説明
包含基準:
- 健康で活動的な男性または女性
- 標準体重 (BMI 18 ~ 25 kg/m2)
除外基準:
- 研究を妨げる可能性のある薬を受け取る。
- サプリメントプロトコルによって影響を受ける健康または食事制限。
- 甲殻類アレルギー(ミルワームの外骨格のキチンが甲殻類アレルギーを活性化する可能性があります)
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:他の
- 割り当て:ランダム化
- 介入モデル:クロスオーバー割り当て
- マスキング:トリプル
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
|---|---|
|
実験的:乳漿タンパク
この腕にはホエイプロテイン(体重 1 kg あたり 0.25 g)を追加投与します。
|
参加者はホエイプロテインを追加で摂取します (0.25 g/kg 体重)
|
|
実験的:IPC80
このアームには、昆虫由来のタンパク質源であるIPC80の補足用量が与えられます(0.25 g / kg体重)
|
参加者は、IPC80 (0.25 g/kg 体重) の補足用量を消費します。
|
|
実験的:水牛丸ごとパウダー
この腕には、昆虫由来のタンパク質源であるバッファロー全体の粉末の補足用量が与えられます (0.25 g/kg 体重)
|
参加者は、全バッファロー パウダー (0.25 g/kg 体重) を追加で摂取します。
|
この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
筋タンパク質合成
時間枠:ベースライン (0 時間) から補給後 15 分まで
|
筋タンパク質合成を測定するには、プラスミド (pcDNA3 ルシフェラーゼ) を安定的にトランスフェクトした C2C12 筋細胞を使用します。
C2C12Luc 細胞を 24 ウェルプレートに播種し、4 日間かけて分化させます。
分化した C2C12 細胞を PBS で洗浄して絶食させ、次に試験培地 (20% DMEM) で 15 分間処理します。
次に、絶食した筋肉細胞を、0、2.5、5、または 10% のベースラインを含むテスト メディアまたは給餌血清 (補給後 15、30、60、および 90 分の血液サンプルから) で 60 分間処理します。
細胞を受動的溶解バッファーに回収し、ホタルルシフェラーゼ活性を測定します。
|
ベースライン (0 時間) から補給後 15 分まで
|
|
筋タンパク質合成
時間枠:ベースライン(0時間)から補給後30分まで
|
筋タンパク質合成を測定するには、プラスミド (pcDNA3 ルシフェラーゼ) を安定的にトランスフェクトした C2C12 筋細胞を使用します。
C2C12Luc 細胞を 24 ウェルプレートに播種し、4 日間かけて分化させます。
分化した C2C12 細胞を PBS で洗浄して絶食させ、次に試験培地 (20% DMEM) で 15 分間処理します。
次に、絶食した筋肉細胞を、0、2.5、5、または 10% のベースラインを含むテスト メディアまたは給餌血清 (補給後 15、30、60、および 90 分の血液サンプルから) で 60 分間処理します。
細胞を受動的溶解バッファーに回収し、ホタルルシフェラーゼ活性を測定します。
|
ベースライン(0時間)から補給後30分まで
|
|
筋タンパク質合成
時間枠:ベースライン(0時間)から補給後60分まで
|
筋タンパク質合成を測定するには、プラスミド (pcDNA3 ルシフェラーゼ) を安定的にトランスフェクトした C2C12 筋細胞を使用します。
C2C12Luc 細胞を 24 ウェルプレートに播種し、4 日間かけて分化させます。
分化した C2C12 細胞を PBS で洗浄して絶食させ、次に試験培地 (20% DMEM) で 15 分間処理します。
次に、絶食した筋肉細胞を、0、2.5、5、または 10% のベースラインを含むテスト メディアまたは給餌血清 (補給後 15、30、60、および 90 分の血液サンプルから) で 60 分間処理します。
細胞を受動的溶解バッファーに回収し、ホタルルシフェラーゼ活性を測定します。
|
ベースライン(0時間)から補給後60分まで
|
|
筋タンパク質合成
時間枠:ベースライン(0時間)から補給後90分まで
|
筋タンパク質合成を測定するには、プラスミド (pcDNA3 ルシフェラーゼ) を安定的にトランスフェクトした C2C12 筋細胞を使用します。
C2C12Luc 細胞を 24 ウェルプレートに播種し、4 日間かけて分化させます。
分化した C2C12 細胞を PBS で洗浄して絶食させ、次に試験培地 (20% DMEM) で 15 分間処理します。
次に、絶食した筋肉細胞を、0、2.5、5、または 10% のベースラインを含むテスト メディアまたは給餌血清 (補給後 15、30、60、および 90 分の血液サンプルから) で 60 分間処理します。
細胞を受動的溶解バッファーに回収し、ホタルルシフェラーゼ活性を測定します。
|
ベースライン(0時間)から補給後90分まで
|
二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
mTORC1 活動
時間枠:ベースライン (0 時間) から補給後 15 分まで
|
タンパク質源 (ホエイタンパク質、IPC80、またはバッファロー全体の粉末) が mTORC1 を活性化する能力を測定するために、ルシフェラーゼ mRNA に 5'TOP が含まれるプラスミド (pcDNA3-TOP ルシフェラーゼ) を C2C12 筋細胞に安定的にトランスフェクトしました。
mTORC1活性によって特異的に調節される5'TOP mRNAが使用される。
24 ウェル プレートの分化した C2C12TOPLuc 筋肉細胞は、ベースラインまたは供給血清 (補給後 15、30、60、および 90 分の血液サンプルから) を使用して刺激されます。
mTORC1 活性化の程度は、ベースラインと摂食血清の間の勾配の差として決定されます。
|
ベースライン (0 時間) から補給後 15 分まで
|
|
mTORC1 活動
時間枠:ベースライン(0時間)から補給後30分まで
|
タンパク質源 (ホエイタンパク質、IPC80、または全バッファロー パウダー) が mTORC1 を活性化する能力を測定するために、ルシフェラーゼ mRNA が 5'TOP を含むプラスミド (pcDNA3-TOP ルシフェラーゼ) を C2C12 筋細胞に安定的にトランスフェクトしました。
mTORC1活性によって特異的に調節される5'TOP mRNAが使用される。
24 ウェル プレートの分化した C2C12TOPLuc 筋肉細胞は、ベースラインまたは供給血清 (補給後 15、30、60、および 90 分の血液サンプルから) を使用して刺激されます。
mTORC1 活性化の程度は、ベースラインと摂食血清の間の勾配の差として決定されます。
|
ベースライン(0時間)から補給後30分まで
|
|
mTORC1 活動
時間枠:ベースライン(0時間)から補給後60分まで
|
タンパク質源 (ホエイタンパク質、IPC80、またはバッファロー全体の粉末) が mTORC1 を活性化する能力を測定するために、ルシフェラーゼ mRNA に 5'TOP が含まれるプラスミド (pcDNA3-TOP ルシフェラーゼ) を C2C12 筋細胞に安定的にトランスフェクトしました。
mTORC1活性によって特異的に調節される5'TOP mRNAが使用される。
24 ウェル プレートの分化した C2C12TOPLuc 筋肉細胞は、ベースラインまたは供給血清 (補給後 15、30、60、および 90 分の血液サンプルから) を使用して刺激されます。
mTORC1 活性化の程度は、ベースラインと摂食血清の間の勾配の差として決定されます。
|
ベースライン(0時間)から補給後60分まで
|
|
mTORC1 活動
時間枠:ベースライン(0時間)から補給後90分まで
|
タンパク質源 (ホエイタンパク質、IPC80、またはバッファロー全体の粉末) が mTORC1 を活性化する能力を測定するために、ルシフェラーゼ mRNA に 5'TOP が含まれるプラスミド (pcDNA3-TOP ルシフェラーゼ) を C2C12 筋細胞に安定的にトランスフェクトしました。
mTORC1活性によって特異的に調節される5'TOP mRNAが使用される。
24 ウェル プレートの分化した C2C12TOPLuc 筋肉細胞は、ベースラインまたは供給血清 (補給後 15、30、60、および 90 分の血液サンプルから) を使用して刺激されます。
mTORC1 活性化の程度は、ベースラインと摂食血清の間の勾配の差として決定されます。
|
ベースライン(0時間)から補給後90分まで
|
協力者と研究者
捜査官
- 主任研究者:Keith Baar, PhD、UC Davis
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- Philp A, MacKenzie MG, Belew MY, Towler MC, Corstorphine A, Papalamprou A, Hardie DG, Baar K. Glycogen content regulates peroxisome proliferator activated receptor- partial differential (PPAR- partial differential) activity in rat skeletal muscle. PLoS One. 2013 Oct 17;8(10):e77200. doi: 10.1371/journal.pone.0077200. eCollection 2013.
- Jefferies HB, Reinhard C, Kozma SC, Thomas G. Rapamycin selectively represses translation of the "polypyrimidine tract" mRNA family. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 May 10;91(10):4441-5. doi: 10.1073/pnas.91.10.4441.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (実際)
研究の完了 (実際)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (実際)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。