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Effetto degli integratori proteici derivati ​​​​dagli insetti sulla sintesi proteica e sull'attivazione di mTORC1

5 maggio 2026 aggiornato da: University of California, Davis

La capacità degli integratori proteici derivati ​​​​dagli insetti (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) di attivare mTORC1 e la sintesi proteica nei muscoli

Lo scopo di questo studio è determinare la capacità degli integratori proteici derivati ​​dagli insetti (IPC80 e Whole Buffalo Powder Ynsect®) di attivare la via mTORC1 e la sintesi proteica nelle cellule muscolari.

Per raggiungere questo obiettivo, i partecipanti consumeranno una dose supplementare (0,25 g/kg di peso corporeo) di IPC80, Whole Buffalo Powder o proteine ​​del siero di latte. I campioni di sangue verranno prelevati prima e 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione.

La sintesi proteica sarà valutata utilizzando cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3) e per determinare la capacità di una fonte proteica di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3-TOP) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un TOP da 5'. Verrà utilizzato 5'TOP che è specificatamente regolato dall'attività mTORC1.

Panoramica dello studio

Descrizione dettagliata

Lo scopo di questo studio è determinare la capacità degli integratori proteici derivati ​​dagli insetti (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) di attivare la via mTORC1 e la sintesi proteica nelle cellule muscolari.

Per raggiungere questo obiettivo, i partecipanti consumeranno una dose supplementare (0,25 g/kg di peso corporeo) di IPC80, Whole Buffalo Powder o proteine ​​del siero di latte. I campioni di sangue verranno prelevati prima e 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione.

Si prevede che questo progetto determinerà se gli integratori proteici derivati ​​da insetti (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) hanno la capacità di indurre l'attivazione della via mTORC1 e la sintesi proteica nelle cellule muscolari. I risultati di questo studio forniranno ulteriori informazioni sull'utilizzo di questa nuova fonte proteica sostenibile per supportare la sintesi proteica muscolare dopo l'esercizio.

Saranno iscritti allo studio partecipanti di sesso maschile e femminile di età compresa tra 18 e 30 anni. Lo studio è un disegno crossover randomizzato in doppio cieco con né i soggetti né i ricercatori sanno chi è su quale trattamento (IPC80, Whole Buffalo Powder o Whey).

I. Prelievo di sangue di base I soggetti arriveranno in laboratorio dopo un digiuno notturno. La vena antecubitale verrà cannulata e verrà raccolto un campione di sangue basale iniziale di 5 mL.

II. Integrazione Dopo il prelievo di sangue di base, ai soggetti verrà fornito un supplemento, 0,25 g/kg di peso corporeo di proteine ​​del siero di latte, IPC80 o polvere di bufalo intero sciolte in 250 ml di acqua.

III. Prelievi postprandiali Dopo aver consumato il supplemento, i partecipanti rimarranno in laboratorio per altre 1,5 ore, potranno portare libri o dispositivi elettronici per passare il tempo. Verranno prelevati altri quattro campioni di sangue di 5 ml ciascuno a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione, per un totale di cinque prelievi di sangue di 5 ml per visita (25 ml per visita) e 75 ml di sangue prelevato in totale per ogni soggetto che completa l'intero studio.

Il sangue sarà raccolto in provette di separazione del siero da 5 mL. Tutti i campioni di sangue saranno lasciati coagulare per 1 ora prima della centrifugazione a 1000 x g per 10 minuti e il siero sarà congelato e conservato a -30°C fino al trattamento. I trattamenti saranno randomizzati per evitare un effetto dell'ordine e verrà utilizzato un periodo di sospensione di almeno 48 ore tra le prove per ridurre al minimo l'effetto del trattamento precedente.

Per determinare la sintesi proteica, abbiamo trasfettato stabilmente cellule muscolari C2C12 con un plasmide (pcDNA3 luciferasi) che usiamo per misurare la sintesi proteica globale. Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni. Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM; 80% soluzione salina tamponata di Hank (HBSS)) per 15 minuti. Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con Test Media contenente 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato per 60 minuti. Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e l'attività della luciferasi lucciola sarà determinata come descritto in precedenza (Philp et al., 2013).

Per determinare la capacità di una fonte proteica di attivare mTORC1 abbiamo trasfettato stabilmente cellule muscolari C2C12 con un plasmide (pcDNA3-TOP luciferasi) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un tratto polipirimidinico terminale 5' (TOP). Gli mRNA 5'TOP sono specificamente regolati dall'attività di mTORC1 (Jefferies et al., 1994). Come sopra, le cellule muscolari C2C12TOPLuc differenziate in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate usando il siero basale o alimentato come descritto sopra. Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato. L'induzione di mTORC1 e la sintesi proteica da siero di latte e IPC80 e Whole Buffalo Powder saranno confrontate direttamente all'interno degli individui e poi tra i gruppi.

Tipo di studio

Interventistico

Iscrizione (Effettivo)

20

Fase

  • Non applicabile

Contatti e Sedi

Questa sezione fornisce i recapiti di coloro che conducono lo studio e informazioni su dove viene condotto lo studio.

Luoghi di studio

    • California
      • Davis, California, Stati Uniti, 95616
        • Hickey Laboratory

Criteri di partecipazione

I ricercatori cercano persone che corrispondano a una certa descrizione, chiamata criteri di ammissibilità. Alcuni esempi di questi criteri sono le condizioni generali di salute di una persona o trattamenti precedenti.

Criteri di ammissibilità

Età idonea allo studio

Da 18 anni a 30 anni (Adulto)

Accetta volontari sani

Descrizione

Criterio di inclusione:

  • Maschio o femmina attivo sano
  • Peso normale (BMI tra 18 e 25 kg/m2)

Criteri di esclusione:

  • Ricezione di qualsiasi farmaco che possa interferire con lo studio.
  • Restrizioni di salute o dietetiche che sarebbero influenzate dal protocollo di integrazione.
  • Allergia ai crostacei (le chitine nell'esoscheletro del verme della farina possono attivare allergie ai crostacei)

Piano di studio

Questa sezione fornisce i dettagli del piano di studio, compreso il modo in cui lo studio è progettato e ciò che lo studio sta misurando.

Come è strutturato lo studio?

Dettagli di progettazione

  • Scopo principale: Altro
  • Assegnazione: Randomizzato
  • Modello interventistico: Assegnazione incrociata
  • Mascheramento: Triplicare

Armi e interventi

Gruppo di partecipanti / Arm
Intervento / Trattamento
Sperimentale: Proteine ​​del siero di latte
A questo braccio verrà somministrata una dose supplementare di proteine ​​del siero di latte (0,25 g/kg di peso corporeo)
Il partecipante consumerà una dose supplementare di proteine ​​del siero di latte (0,25 g/kg di peso corporeo)
Sperimentale: IPC80
A questo braccio verrà somministrata una dose supplementare di IPC80, una fonte proteica derivata da insetti (0,25 g/kg di peso corporeo)
Il partecipante consumerà una dose supplementare di IPC80 (0,25 g/kg di peso corporeo)
Sperimentale: Polvere di bufalo integrale
A questo braccio verrà somministrata una dose supplementare di Whole Buffalo Powder, una fonte proteica derivata da insetti (0,25 g/kg di peso corporeo)
Il partecipante consumerà una dose supplementare di Whole Buffalo Powder (0,25 g/kg di peso corporeo)

Cosa sta misurando lo studio?

Misure di risultato primarie

Misura del risultato
Misura Descrizione
Lasso di tempo
Sintesi proteica muscolare
Lasso di tempo: Basale (da 0 ore) a 15 minuti dopo l'integrazione
Per misurare la sintesi proteica muscolare verranno utilizzate cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3 luciferasi). Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni. Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM) per 15 minuti. Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con terreni di prova contenenti 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione) per 60 minuti. Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e sarà determinata l'attività della luciferasi di lucciola.
Basale (da 0 ore) a 15 minuti dopo l'integrazione
Sintesi proteica muscolare
Lasso di tempo: Basale (da 0 ore) a 30 minuti dopo l'integrazione
Per misurare la sintesi proteica muscolare verranno utilizzate cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3 luciferasi). Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni. Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM) per 15 minuti. Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con terreni di prova contenenti 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione) per 60 minuti. Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e sarà determinata l'attività della luciferasi di lucciola.
Basale (da 0 ore) a 30 minuti dopo l'integrazione
Sintesi proteica muscolare
Lasso di tempo: Dal basale (0 ore) a 60 minuti dopo l'integrazione
Per misurare la sintesi proteica muscolare verranno utilizzate cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3 luciferasi). Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni. Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM) per 15 minuti. Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con terreni di prova contenenti 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione) per 60 minuti. Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e sarà determinata l'attività della luciferasi di lucciola.
Dal basale (0 ore) a 60 minuti dopo l'integrazione
Sintesi proteica muscolare
Lasso di tempo: Dal basale (0 ore) a 90 minuti dopo l'integrazione
Per misurare la sintesi proteica muscolare verranno utilizzate cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3 luciferasi). Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni. Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM) per 15 minuti. Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con terreni di prova contenenti 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione) per 60 minuti. Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e sarà determinata l'attività della luciferasi di lucciola.
Dal basale (0 ore) a 90 minuti dopo l'integrazione

Misure di risultato secondarie

Misura del risultato
Misura Descrizione
Lasso di tempo
attività mTORC1
Lasso di tempo: Basale (da 0 ore) a 15 minuti dopo l'integrazione
Per misurare la capacità di una fonte proteica (proteine ​​del siero di latte, IPC80 o Whole Buffalo Powder) di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3-TOP) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un 5'TOP. Verrà utilizzato l'mRNA 5'TOP, regolato specificatamente dall'attività di mTORC1. Cellule muscolari differenziate C2C12TOPLuc in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate utilizzando il siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione). Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato.
Basale (da 0 ore) a 15 minuti dopo l'integrazione
attività mTORC1
Lasso di tempo: Basale (da 0 ore) a 30 minuti dopo l'integrazione
Per misurare la capacità di una fonte proteica (proteine ​​del siero di latte, IPC80 o Whole Buffalo Powderl) di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3-TOP luciferasi) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un 5'TOP. Verrà utilizzato l'mRNA 5'TOP, regolato specificatamente dall'attività di mTORC1. Cellule muscolari differenziate C2C12TOPLuc in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate utilizzando il siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione). Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato.
Basale (da 0 ore) a 30 minuti dopo l'integrazione
attività mTORC1
Lasso di tempo: Dal basale (0 ore) a 60 minuti dopo l'integrazione
Per misurare la capacità di una fonte proteica (proteine ​​del siero di latte, IPC80 o Whole Buffalo Powder) di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3-TOP) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un 5'TOP. Verrà utilizzato l'mRNA 5'TOP, regolato specificatamente dall'attività di mTORC1. Cellule muscolari differenziate C2C12TOPLuc in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate utilizzando il siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione). Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato.
Dal basale (0 ore) a 60 minuti dopo l'integrazione
attività mTORC1
Lasso di tempo: Dal basale (0 ore) a 90 minuti dopo l'integrazione
Per misurare la capacità di una fonte proteica (proteine ​​del siero di latte, IPC80 o Whole Buffalo Powder) di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3-TOP) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un 5'TOP. Verrà utilizzato l'mRNA 5'TOP, regolato specificatamente dall'attività di mTORC1. Cellule muscolari differenziate C2C12TOPLuc in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate utilizzando il siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione). Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato.
Dal basale (0 ore) a 90 minuti dopo l'integrazione

Collaboratori e investigatori

Qui è dove troverai le persone e le organizzazioni coinvolte in questo studio.

Investigatori

  • Investigatore principale: Keith Baar, PhD, UC Davis

Pubblicazioni e link utili

La persona responsabile dell'inserimento delle informazioni sullo studio fornisce volontariamente queste pubblicazioni. Questi possono riguardare qualsiasi cosa relativa allo studio.

Studiare le date dei record

Queste date tengono traccia dell'avanzamento della registrazione dello studio e dell'invio dei risultati di sintesi a ClinicalTrials.gov. I record degli studi e i risultati riportati vengono esaminati dalla National Library of Medicine (NLM) per assicurarsi che soddisfino specifici standard di controllo della qualità prima di essere pubblicati sul sito Web pubblico.

Studia le date principali

Inizio studio (Effettivo)

1 ottobre 2022

Completamento primario (Effettivo)

30 giugno 2023

Completamento dello studio (Effettivo)

30 settembre 2024

Date di iscrizione allo studio

Primo inviato

6 luglio 2022

Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità

11 luglio 2022

Primo Inserito (Effettivo)

13 luglio 2022

Aggiornamenti dei record di studio

Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)

8 maggio 2026

Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC

5 maggio 2026

Ultimo verificato

1 maggio 2026

Maggiori informazioni

Termini relativi a questo studio

Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio

Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

Queste informazioni sono state recuperate direttamente dal sito web clinicaltrials.gov senza alcuna modifica. In caso di richieste di modifica, rimozione o aggiornamento dei dettagli dello studio, contattare register@clinicaltrials.gov. Non appena verrà implementata una modifica su clinicaltrials.gov, questa verrà aggiornata automaticamente anche sul nostro sito web .

Prove cliniche su Proteine ​​del siero di latte

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