- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT05457218
Effetto degli integratori proteici derivati dagli insetti sulla sintesi proteica e sull'attivazione di mTORC1
La capacità degli integratori proteici derivati dagli insetti (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) di attivare mTORC1 e la sintesi proteica nei muscoli
Lo scopo di questo studio è determinare la capacità degli integratori proteici derivati dagli insetti (IPC80 e Whole Buffalo Powder Ynsect®) di attivare la via mTORC1 e la sintesi proteica nelle cellule muscolari.
Per raggiungere questo obiettivo, i partecipanti consumeranno una dose supplementare (0,25 g/kg di peso corporeo) di IPC80, Whole Buffalo Powder o proteine del siero di latte. I campioni di sangue verranno prelevati prima e 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione.
La sintesi proteica sarà valutata utilizzando cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3) e per determinare la capacità di una fonte proteica di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3-TOP) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un TOP da 5'. Verrà utilizzato 5'TOP che è specificatamente regolato dall'attività mTORC1.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
Lo scopo di questo studio è determinare la capacità degli integratori proteici derivati dagli insetti (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) di attivare la via mTORC1 e la sintesi proteica nelle cellule muscolari.
Per raggiungere questo obiettivo, i partecipanti consumeranno una dose supplementare (0,25 g/kg di peso corporeo) di IPC80, Whole Buffalo Powder o proteine del siero di latte. I campioni di sangue verranno prelevati prima e 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione.
Si prevede che questo progetto determinerà se gli integratori proteici derivati da insetti (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) hanno la capacità di indurre l'attivazione della via mTORC1 e la sintesi proteica nelle cellule muscolari. I risultati di questo studio forniranno ulteriori informazioni sull'utilizzo di questa nuova fonte proteica sostenibile per supportare la sintesi proteica muscolare dopo l'esercizio.
Saranno iscritti allo studio partecipanti di sesso maschile e femminile di età compresa tra 18 e 30 anni. Lo studio è un disegno crossover randomizzato in doppio cieco con né i soggetti né i ricercatori sanno chi è su quale trattamento (IPC80, Whole Buffalo Powder o Whey).
I. Prelievo di sangue di base I soggetti arriveranno in laboratorio dopo un digiuno notturno. La vena antecubitale verrà cannulata e verrà raccolto un campione di sangue basale iniziale di 5 mL.
II. Integrazione Dopo il prelievo di sangue di base, ai soggetti verrà fornito un supplemento, 0,25 g/kg di peso corporeo di proteine del siero di latte, IPC80 o polvere di bufalo intero sciolte in 250 ml di acqua.
III. Prelievi postprandiali Dopo aver consumato il supplemento, i partecipanti rimarranno in laboratorio per altre 1,5 ore, potranno portare libri o dispositivi elettronici per passare il tempo. Verranno prelevati altri quattro campioni di sangue di 5 ml ciascuno a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione, per un totale di cinque prelievi di sangue di 5 ml per visita (25 ml per visita) e 75 ml di sangue prelevato in totale per ogni soggetto che completa l'intero studio.
Il sangue sarà raccolto in provette di separazione del siero da 5 mL. Tutti i campioni di sangue saranno lasciati coagulare per 1 ora prima della centrifugazione a 1000 x g per 10 minuti e il siero sarà congelato e conservato a -30°C fino al trattamento. I trattamenti saranno randomizzati per evitare un effetto dell'ordine e verrà utilizzato un periodo di sospensione di almeno 48 ore tra le prove per ridurre al minimo l'effetto del trattamento precedente.
Per determinare la sintesi proteica, abbiamo trasfettato stabilmente cellule muscolari C2C12 con un plasmide (pcDNA3 luciferasi) che usiamo per misurare la sintesi proteica globale. Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni. Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM; 80% soluzione salina tamponata di Hank (HBSS)) per 15 minuti. Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con Test Media contenente 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato per 60 minuti. Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e l'attività della luciferasi lucciola sarà determinata come descritto in precedenza (Philp et al., 2013).
Per determinare la capacità di una fonte proteica di attivare mTORC1 abbiamo trasfettato stabilmente cellule muscolari C2C12 con un plasmide (pcDNA3-TOP luciferasi) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un tratto polipirimidinico terminale 5' (TOP). Gli mRNA 5'TOP sono specificamente regolati dall'attività di mTORC1 (Jefferies et al., 1994). Come sopra, le cellule muscolari C2C12TOPLuc differenziate in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate usando il siero basale o alimentato come descritto sopra. Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato. L'induzione di mTORC1 e la sintesi proteica da siero di latte e IPC80 e Whole Buffalo Powder saranno confrontate direttamente all'interno degli individui e poi tra i gruppi.
Tipo di studio
Iscrizione (Effettivo)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
-
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California
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Davis, California, Stati Uniti, 95616
- Hickey Laboratory
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Maschio o femmina attivo sano
- Peso normale (BMI tra 18 e 25 kg/m2)
Criteri di esclusione:
- Ricezione di qualsiasi farmaco che possa interferire con lo studio.
- Restrizioni di salute o dietetiche che sarebbero influenzate dal protocollo di integrazione.
- Allergia ai crostacei (le chitine nell'esoscheletro del verme della farina possono attivare allergie ai crostacei)
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Altro
- Assegnazione: Randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione incrociata
- Mascheramento: Triplicare
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
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Sperimentale: Proteine del siero di latte
A questo braccio verrà somministrata una dose supplementare di proteine del siero di latte (0,25 g/kg di peso corporeo)
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Il partecipante consumerà una dose supplementare di proteine del siero di latte (0,25 g/kg di peso corporeo)
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Sperimentale: IPC80
A questo braccio verrà somministrata una dose supplementare di IPC80, una fonte proteica derivata da insetti (0,25 g/kg di peso corporeo)
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Il partecipante consumerà una dose supplementare di IPC80 (0,25 g/kg di peso corporeo)
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Sperimentale: Polvere di bufalo integrale
A questo braccio verrà somministrata una dose supplementare di Whole Buffalo Powder, una fonte proteica derivata da insetti (0,25 g/kg di peso corporeo)
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Il partecipante consumerà una dose supplementare di Whole Buffalo Powder (0,25 g/kg di peso corporeo)
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Sintesi proteica muscolare
Lasso di tempo: Basale (da 0 ore) a 15 minuti dopo l'integrazione
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Per misurare la sintesi proteica muscolare verranno utilizzate cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3 luciferasi).
Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni.
Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM) per 15 minuti.
Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con terreni di prova contenenti 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione) per 60 minuti.
Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e sarà determinata l'attività della luciferasi di lucciola.
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Basale (da 0 ore) a 15 minuti dopo l'integrazione
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Sintesi proteica muscolare
Lasso di tempo: Basale (da 0 ore) a 30 minuti dopo l'integrazione
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Per misurare la sintesi proteica muscolare verranno utilizzate cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3 luciferasi).
Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni.
Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM) per 15 minuti.
Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con terreni di prova contenenti 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione) per 60 minuti.
Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e sarà determinata l'attività della luciferasi di lucciola.
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Basale (da 0 ore) a 30 minuti dopo l'integrazione
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Sintesi proteica muscolare
Lasso di tempo: Dal basale (0 ore) a 60 minuti dopo l'integrazione
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Per misurare la sintesi proteica muscolare verranno utilizzate cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3 luciferasi).
Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni.
Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM) per 15 minuti.
Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con terreni di prova contenenti 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione) per 60 minuti.
Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e sarà determinata l'attività della luciferasi di lucciola.
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Dal basale (0 ore) a 60 minuti dopo l'integrazione
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Sintesi proteica muscolare
Lasso di tempo: Dal basale (0 ore) a 90 minuti dopo l'integrazione
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Per misurare la sintesi proteica muscolare verranno utilizzate cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3 luciferasi).
Le cellule C2C12Luc saranno piastrate in piastre da 24 pozzetti e differenziate in 4 giorni.
Cellule C2C12 differenziate saranno lasciate a digiuno mediante lavaggio con PBS e quindi trattandole con Test Media (20% DMEM) per 15 minuti.
Le cellule muscolari a digiuno verranno quindi trattate con terreni di prova contenenti 0, 2,5, 5 o 10% di siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione) per 60 minuti.
Le cellule saranno raccolte in tampone di lisi passivo e sarà determinata l'attività della luciferasi di lucciola.
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Dal basale (0 ore) a 90 minuti dopo l'integrazione
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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attività mTORC1
Lasso di tempo: Basale (da 0 ore) a 15 minuti dopo l'integrazione
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Per misurare la capacità di una fonte proteica (proteine del siero di latte, IPC80 o Whole Buffalo Powder) di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3-TOP) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un 5'TOP.
Verrà utilizzato l'mRNA 5'TOP, regolato specificatamente dall'attività di mTORC1.
Cellule muscolari differenziate C2C12TOPLuc in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate utilizzando il siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione).
Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato.
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Basale (da 0 ore) a 15 minuti dopo l'integrazione
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attività mTORC1
Lasso di tempo: Basale (da 0 ore) a 30 minuti dopo l'integrazione
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Per misurare la capacità di una fonte proteica (proteine del siero di latte, IPC80 o Whole Buffalo Powderl) di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (pcDNA3-TOP luciferasi) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un 5'TOP.
Verrà utilizzato l'mRNA 5'TOP, regolato specificatamente dall'attività di mTORC1.
Cellule muscolari differenziate C2C12TOPLuc in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate utilizzando il siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione).
Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato.
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Basale (da 0 ore) a 30 minuti dopo l'integrazione
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attività mTORC1
Lasso di tempo: Dal basale (0 ore) a 60 minuti dopo l'integrazione
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Per misurare la capacità di una fonte proteica (proteine del siero di latte, IPC80 o Whole Buffalo Powder) di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3-TOP) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un 5'TOP.
Verrà utilizzato l'mRNA 5'TOP, regolato specificatamente dall'attività di mTORC1.
Cellule muscolari differenziate C2C12TOPLuc in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate utilizzando il siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione).
Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato.
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Dal basale (0 ore) a 60 minuti dopo l'integrazione
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attività mTORC1
Lasso di tempo: Dal basale (0 ore) a 90 minuti dopo l'integrazione
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Per misurare la capacità di una fonte proteica (proteine del siero di latte, IPC80 o Whole Buffalo Powder) di attivare mTORC1, cellule muscolari C2C12 trasfettate stabilmente con un plasmide (luciferasi pcDNA3-TOP) in cui l'mRNA della luciferasi contiene un 5'TOP.
Verrà utilizzato l'mRNA 5'TOP, regolato specificatamente dall'attività di mTORC1.
Cellule muscolari differenziate C2C12TOPLuc in piastre da 24 pozzetti saranno stimolate utilizzando il siero basale o alimentato (da campioni di sangue a 15, 30, 60 e 90 minuti dopo l'integrazione).
Il grado di attivazione di mTORC1 sarà determinato come differenza di pendenza tra il siero basale e quello alimentato.
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Dal basale (0 ore) a 90 minuti dopo l'integrazione
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Keith Baar, PhD, UC Davis
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Philp A, MacKenzie MG, Belew MY, Towler MC, Corstorphine A, Papalamprou A, Hardie DG, Baar K. Glycogen content regulates peroxisome proliferator activated receptor- partial differential (PPAR- partial differential) activity in rat skeletal muscle. PLoS One. 2013 Oct 17;8(10):e77200. doi: 10.1371/journal.pone.0077200. eCollection 2013.
- Jefferies HB, Reinhard C, Kozma SC, Thomas G. Rapamycin selectively represses translation of the "polypyrimidine tract" mRNA family. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 May 10;91(10):4441-5. doi: 10.1073/pnas.91.10.4441.
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Completamento dello studio (Effettivo)
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Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
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Termini relativi a questo studio
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Altri numeri di identificazione dello studio
- 220601
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Prove cliniche su Proteine del siero di latte
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