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Efecto de los suplementos proteicos derivados de insectos sobre la síntesis de proteínas y la activación de mTORC1

5 de mayo de 2026 actualizado por: University of California, Davis

La capacidad de los suplementos proteicos derivados de insectos (IPC80 y Whole Buffalo Powder, Ynsect®) para activar mTORC1 y la síntesis de proteínas en el músculo

El propósito de este estudio es determinar la capacidad de los suplementos proteicos derivados de insectos (IPC80 y Whole Buffalo Powder Ynsect®) para activar la vía mTORC1 y la síntesis de proteínas en las células musculares.

Para lograr este objetivo, los participantes consumirán una dosis suplementaria (0,25 g/kg de peso corporal) de IPC80, Whole Buffalo Powder o proteína de suero. Se tomarán muestras de sangre antes y 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación.

La síntesis de proteínas se evaluará utilizando células musculares C2C12 transfectadas de manera estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa) y para determinar la capacidad de una fuente de proteína para activar mTORC1, células musculares C2C12 transfectadas de manera estable con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP. Se utilizará 5'TOP que está específicamente regulado por la actividad de mTORC1.

Descripción general del estudio

Descripción detallada

El propósito de este estudio es determinar la capacidad de los suplementos proteicos derivados de insectos (IPC80 y Whole Buffalo Powder, Ynsect®) para activar la vía mTORC1 y la síntesis de proteínas en las células musculares.

Para lograr este objetivo, los participantes consumirán una dosis suplementaria (0,25 g/kg de peso corporal) de IPC80, Whole Buffalo Powder o proteína de suero. Se tomarán muestras de sangre antes y 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación.

Se espera que este proyecto determine si los suplementos proteicos derivados de insectos (IPC80 y Whole Buffalo Powder, Ynsect®) tienen la capacidad de inducir la activación de la vía mTORC1 y la síntesis de proteínas en las células musculares. Los resultados de este estudio brindarán más información sobre el uso de esta nueva fuente de proteína sostenible para apoyar la síntesis de proteína muscular después del ejercicio.

Se inscribirán en el estudio participantes masculinos y femeninos de entre 18 y 30 años de edad. El estudio es un diseño cruzado doble ciego aleatorizado en el que ni los sujetos ni los investigadores saben quién está en qué tratamiento (IPC80, Whole Buffalo Powder o Whey).

I. Extracción de sangre inicial Los sujetos llegarán al laboratorio después de una noche en ayunas. Se canulará la vena antecubital y se recolectará una muestra de sangre basal inicial de 5 ml.

II. Suplemento Después de la extracción de sangre inicial, los sujetos recibirán un suplemento, 0,25 g/kg de peso corporal de proteína de suero, IPC80 o Whole Buffalo Powder disueltos en 250 ml de agua.

tercero Extracción de sangre posprandial Luego del consumo del suplemento, los participantes permanecerán en el laboratorio por otra hora y media, pueden traer libros o dispositivos electrónicos para pasar el tiempo. Se obtendrán cuatro muestras de sangre más de 5 ml cada una a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación, con un total de cinco extracciones de sangre de 5 ml por visita (25 ml por visita) y 75 ml de sangre extraída en total para cada sujeto que complete todo el estudio.

La sangre se recogerá en tubos de separación de suero de 5 ml. Se permitirá que todas las muestras de sangre se coagulen durante 1 hora antes de la centrifugación a 1000 x g durante 10 minutos y el suero se congelará y mantendrá a -30 °C hasta que se procese. Los tratamientos se aleatorizarán para evitar un efecto de orden y se utilizará un período de lavado de al menos 48 h entre ensayos para minimizar el efecto del tratamiento anterior.

Para determinar la síntesis de proteínas, hemos transfectado de manera estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3 luciferasa) que usamos para medir la síntesis global de proteínas. Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días. Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %; solución salina tamponada de Hank al 80 % (HBSS)) durante 15 minutos. A continuación, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de la línea de base o suero alimentado durante 60 minutos. Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y la actividad de la luciferasa de luciérnaga se determinará como se ha descrito anteriormente (Philp et al., 2013).

Para determinar la capacidad de una fuente de proteína para activar mTORC1, hemos transfectado de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un tracto de polipirimidina terminal 5' (TOP). El ARNm de 5'TOP está regulado específicamente por la actividad de mTORC1 (Jefferies et al., 1994). Como se indicó anteriormente, las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado como se describe anteriormente. El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados. La inducción de mTORC1 y la síntesis de proteínas por suero e IPC80 y Whole Buffalo Powder se compararán directamente entre individuos y luego entre grupos.

Tipo de estudio

Intervencionista

Inscripción (Actual)

20

Fase

  • No aplica

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Ubicaciones de estudio

    • California
      • Davis, California, Estados Unidos, 95616
        • Hickey Laboratory

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

18 años a 30 años (Adulto)

Acepta Voluntarios Saludables

Sí

Descripción

Criterios de inclusión:

  • Hombre o mujer saludable y activo
  • Peso normal (IMC entre 18 y 25 kg/m2)

Criterio de exclusión:

  • Recibir cualquier medicamento que pueda interferir con el estudio.
  • Restricciones dietéticas o de salud que se verían afectadas por el protocolo de suplementación.
  • Alergia a los mariscos (las quitinas en el exoesqueleto del gusano de la harina pueden activar alergias a los mariscos)

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Propósito principal: Otro
  • Asignación: Aleatorizado
  • Modelo Intervencionista: Asignación cruzada
  • Enmascaramiento: Triple

Armas e Intervenciones

Grupo de participantes/brazo
Intervención / Tratamiento
Experimental: Proteína de suero
Este brazo recibirá una dosis suplementaria de proteína de suero (0,25 g/kg de peso corporal)
El participante consumirá una dosis suplementaria de proteína de suero (0,25 g/kg de peso corporal)
Experimental: IPC80
Este brazo recibirá una dosis suplementaria de IPC80, una fuente de proteína derivada de insectos (0,25 g/kg de peso corporal)
El participante consumirá una dosis suplementaria de IPC80 (0,25 g/kg de peso corporal)
Experimental: Polvo de búfalo entero
Este brazo recibirá una dosis suplementaria de Whole Buffalo Powder, una fuente de proteína derivada de insectos (0,25 g/kg de peso corporal)
El participante consumirá una dosis suplementaria de Whole Buffalo Powder (0,25 g/kg de peso corporal)

¿Qué mide el estudio?

Medidas de resultado primarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 15 minutos después de la suplementación
Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa). Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días. Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %) durante 15 minutos. Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de suero inicial o alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación) durante 60 minutos. Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y se determinará la actividad de luciferasa de luciérnaga.
Línea de base (0 hora) a 15 minutos después de la suplementación
Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 30 minutos después de la suplementación
Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa). Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días. Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %) durante 15 minutos. Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de suero inicial o alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación) durante 60 minutos. Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y se determinará la actividad de luciferasa de luciérnaga.
Línea de base (0 hora) a 30 minutos después de la suplementación
Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 60 minutos después de la suplementación
Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa). Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días. Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %) durante 15 minutos. Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de suero inicial o alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación) durante 60 minutos. Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y se determinará la actividad de luciferasa de luciérnaga.
Línea de base (0 hora) a 60 minutos después de la suplementación
Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 90 minutos después de la suplementación
Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa). Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días. Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %) durante 15 minutos. Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de suero inicial o alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación) durante 60 minutos. Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y se determinará la actividad de luciferasa de luciérnaga.
Línea de base (0 hora) a 90 minutos después de la suplementación

Medidas de resultado secundarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
actividad mTORC1
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 15 minutos después de la suplementación
Para medir la capacidad de una fuente de proteína (proteína de suero, IPC80 o polvo de búfalo entero) para activar mTORC1, se transfectaron de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP. Se utilizará el ARNm de 5'TOP, que está regulado específicamente por la actividad de mTORC1. Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación). El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados.
Línea de base (0 hora) a 15 minutos después de la suplementación
actividad mTORC1
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 30 minutos después de la suplementación
Para medir la capacidad de una fuente de proteína (proteína de suero, IPC80 o Polvo de búfalo entero) para activar mTORC1, se transfectaron de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP. Se utilizará el ARNm de 5'TOP, que está regulado específicamente por la actividad de mTORC1. Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación). El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados.
Línea de base (0 hora) a 30 minutos después de la suplementación
actividad mTORC1
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 60 minutos después de la suplementación
Para medir la capacidad de una fuente de proteína (proteína de suero, IPC80 o polvo de búfalo entero) para activar mTORC1, se transfectaron de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP. Se utilizará el ARNm de 5'TOP, que está regulado específicamente por la actividad de mTORC1. Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación). El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados.
Línea de base (0 hora) a 60 minutos después de la suplementación
actividad mTORC1
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 90 minutos después de la suplementación
Para medir la capacidad de una fuente de proteína (proteína de suero, IPC80 o polvo de búfalo entero) para activar mTORC1, se transfectaron de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP. Se utilizará el ARNm de 5'TOP, que está regulado específicamente por la actividad de mTORC1. Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación). El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados.
Línea de base (0 hora) a 90 minutos después de la suplementación

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Investigadores

  • Investigador principal: Keith Baar, PhD, UC Davis

Publicaciones y enlaces útiles

La persona responsable de ingresar información sobre el estudio proporciona voluntariamente estas publicaciones. Estos pueden ser sobre cualquier cosa relacionada con el estudio.

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio (Actual)

1 de octubre de 2022

Finalización primaria (Actual)

30 de junio de 2023

Finalización del estudio (Actual)

30 de septiembre de 2024

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

6 de julio de 2022

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

11 de julio de 2022

Publicado por primera vez (Actual)

13 de julio de 2022

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Actual)

8 de mayo de 2026

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

5 de mayo de 2026

Última verificación

1 de mayo de 2026

Más información

Términos relacionados con este estudio

Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio

Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.

No

Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.

No

Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .

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