- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT05457218
Efecto de los suplementos proteicos derivados de insectos sobre la síntesis de proteínas y la activación de mTORC1
La capacidad de los suplementos proteicos derivados de insectos (IPC80 y Whole Buffalo Powder, Ynsect®) para activar mTORC1 y la síntesis de proteínas en el músculo
El propósito de este estudio es determinar la capacidad de los suplementos proteicos derivados de insectos (IPC80 y Whole Buffalo Powder Ynsect®) para activar la vía mTORC1 y la síntesis de proteínas en las células musculares.
Para lograr este objetivo, los participantes consumirán una dosis suplementaria (0,25 g/kg de peso corporal) de IPC80, Whole Buffalo Powder o proteína de suero. Se tomarán muestras de sangre antes y 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación.
La síntesis de proteínas se evaluará utilizando células musculares C2C12 transfectadas de manera estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa) y para determinar la capacidad de una fuente de proteína para activar mTORC1, células musculares C2C12 transfectadas de manera estable con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP. Se utilizará 5'TOP que está específicamente regulado por la actividad de mTORC1.
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
El propósito de este estudio es determinar la capacidad de los suplementos proteicos derivados de insectos (IPC80 y Whole Buffalo Powder, Ynsect®) para activar la vía mTORC1 y la síntesis de proteínas en las células musculares.
Para lograr este objetivo, los participantes consumirán una dosis suplementaria (0,25 g/kg de peso corporal) de IPC80, Whole Buffalo Powder o proteína de suero. Se tomarán muestras de sangre antes y 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación.
Se espera que este proyecto determine si los suplementos proteicos derivados de insectos (IPC80 y Whole Buffalo Powder, Ynsect®) tienen la capacidad de inducir la activación de la vía mTORC1 y la síntesis de proteínas en las células musculares. Los resultados de este estudio brindarán más información sobre el uso de esta nueva fuente de proteína sostenible para apoyar la síntesis de proteína muscular después del ejercicio.
Se inscribirán en el estudio participantes masculinos y femeninos de entre 18 y 30 años de edad. El estudio es un diseño cruzado doble ciego aleatorizado en el que ni los sujetos ni los investigadores saben quién está en qué tratamiento (IPC80, Whole Buffalo Powder o Whey).
I. Extracción de sangre inicial Los sujetos llegarán al laboratorio después de una noche en ayunas. Se canulará la vena antecubital y se recolectará una muestra de sangre basal inicial de 5 ml.
II. Suplemento Después de la extracción de sangre inicial, los sujetos recibirán un suplemento, 0,25 g/kg de peso corporal de proteína de suero, IPC80 o Whole Buffalo Powder disueltos en 250 ml de agua.
tercero Extracción de sangre posprandial Luego del consumo del suplemento, los participantes permanecerán en el laboratorio por otra hora y media, pueden traer libros o dispositivos electrónicos para pasar el tiempo. Se obtendrán cuatro muestras de sangre más de 5 ml cada una a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación, con un total de cinco extracciones de sangre de 5 ml por visita (25 ml por visita) y 75 ml de sangre extraída en total para cada sujeto que complete todo el estudio.
La sangre se recogerá en tubos de separación de suero de 5 ml. Se permitirá que todas las muestras de sangre se coagulen durante 1 hora antes de la centrifugación a 1000 x g durante 10 minutos y el suero se congelará y mantendrá a -30 °C hasta que se procese. Los tratamientos se aleatorizarán para evitar un efecto de orden y se utilizará un período de lavado de al menos 48 h entre ensayos para minimizar el efecto del tratamiento anterior.
Para determinar la síntesis de proteínas, hemos transfectado de manera estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3 luciferasa) que usamos para medir la síntesis global de proteínas. Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días. Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %; solución salina tamponada de Hank al 80 % (HBSS)) durante 15 minutos. A continuación, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de la línea de base o suero alimentado durante 60 minutos. Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y la actividad de la luciferasa de luciérnaga se determinará como se ha descrito anteriormente (Philp et al., 2013).
Para determinar la capacidad de una fuente de proteína para activar mTORC1, hemos transfectado de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un tracto de polipirimidina terminal 5' (TOP). El ARNm de 5'TOP está regulado específicamente por la actividad de mTORC1 (Jefferies et al., 1994). Como se indicó anteriormente, las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado como se describe anteriormente. El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados. La inducción de mTORC1 y la síntesis de proteínas por suero e IPC80 y Whole Buffalo Powder se compararán directamente entre individuos y luego entre grupos.
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
-
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California
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Davis, California, Estados Unidos, 95616
- Hickey Laboratory
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-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
- Hombre o mujer saludable y activo
- Peso normal (IMC entre 18 y 25 kg/m2)
Criterio de exclusión:
- Recibir cualquier medicamento que pueda interferir con el estudio.
- Restricciones dietéticas o de salud que se verían afectadas por el protocolo de suplementación.
- Alergia a los mariscos (las quitinas en el exoesqueleto del gusano de la harina pueden activar alergias a los mariscos)
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Otro
- Asignación: Aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación cruzada
- Enmascaramiento: Triple
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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Experimental: Proteína de suero
Este brazo recibirá una dosis suplementaria de proteína de suero (0,25 g/kg de peso corporal)
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El participante consumirá una dosis suplementaria de proteína de suero (0,25 g/kg de peso corporal)
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Experimental: IPC80
Este brazo recibirá una dosis suplementaria de IPC80, una fuente de proteína derivada de insectos (0,25 g/kg de peso corporal)
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El participante consumirá una dosis suplementaria de IPC80 (0,25 g/kg de peso corporal)
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Experimental: Polvo de búfalo entero
Este brazo recibirá una dosis suplementaria de Whole Buffalo Powder, una fuente de proteína derivada de insectos (0,25 g/kg de peso corporal)
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El participante consumirá una dosis suplementaria de Whole Buffalo Powder (0,25 g/kg de peso corporal)
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 15 minutos después de la suplementación
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Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa).
Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días.
Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %) durante 15 minutos.
Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de suero inicial o alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación) durante 60 minutos.
Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y se determinará la actividad de luciferasa de luciérnaga.
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Línea de base (0 hora) a 15 minutos después de la suplementación
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Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 30 minutos después de la suplementación
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Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa).
Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días.
Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %) durante 15 minutos.
Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de suero inicial o alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación) durante 60 minutos.
Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y se determinará la actividad de luciferasa de luciérnaga.
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Línea de base (0 hora) a 30 minutos después de la suplementación
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Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 60 minutos después de la suplementación
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Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa).
Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días.
Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %) durante 15 minutos.
Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de suero inicial o alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación) durante 60 minutos.
Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y se determinará la actividad de luciferasa de luciérnaga.
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Línea de base (0 hora) a 60 minutos después de la suplementación
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Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 90 minutos después de la suplementación
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Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa).
Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días.
Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medios de prueba (DMEM al 20 %) durante 15 minutos.
Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan 0, 2,5, 5 o 10 % de suero inicial o alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación) durante 60 minutos.
Las células se recogerán en tampón de lisis pasiva y se determinará la actividad de luciferasa de luciérnaga.
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Línea de base (0 hora) a 90 minutos después de la suplementación
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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actividad mTORC1
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 15 minutos después de la suplementación
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Para medir la capacidad de una fuente de proteína (proteína de suero, IPC80 o polvo de búfalo entero) para activar mTORC1, se transfectaron de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP.
Se utilizará el ARNm de 5'TOP, que está regulado específicamente por la actividad de mTORC1.
Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación).
El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados.
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Línea de base (0 hora) a 15 minutos después de la suplementación
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actividad mTORC1
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 30 minutos después de la suplementación
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Para medir la capacidad de una fuente de proteína (proteína de suero, IPC80 o Polvo de búfalo entero) para activar mTORC1, se transfectaron de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP.
Se utilizará el ARNm de 5'TOP, que está regulado específicamente por la actividad de mTORC1.
Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación).
El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados.
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Línea de base (0 hora) a 30 minutos después de la suplementación
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actividad mTORC1
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 60 minutos después de la suplementación
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Para medir la capacidad de una fuente de proteína (proteína de suero, IPC80 o polvo de búfalo entero) para activar mTORC1, se transfectaron de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP.
Se utilizará el ARNm de 5'TOP, que está regulado específicamente por la actividad de mTORC1.
Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación).
El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados.
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Línea de base (0 hora) a 60 minutos después de la suplementación
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actividad mTORC1
Periodo de tiempo: Línea de base (0 hora) a 90 minutos después de la suplementación
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Para medir la capacidad de una fuente de proteína (proteína de suero, IPC80 o polvo de búfalo entero) para activar mTORC1, se transfectaron de forma estable células musculares C2C12 con un plásmido (pcDNA3-TOP luciferasa) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP.
Se utilizará el ARNm de 5'TOP, que está regulado específicamente por la actividad de mTORC1.
Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o suero alimentado (de muestras de sangre a los 15, 30, 60 y 90 minutos después de la suplementación).
El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia en las pendientes entre los sueros de referencia y alimentados.
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Línea de base (0 hora) a 90 minutos después de la suplementación
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Colaboradores e Investigadores
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Investigadores
- Investigador principal: Keith Baar, PhD, UC Davis
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Philp A, MacKenzie MG, Belew MY, Towler MC, Corstorphine A, Papalamprou A, Hardie DG, Baar K. Glycogen content regulates peroxisome proliferator activated receptor- partial differential (PPAR- partial differential) activity in rat skeletal muscle. PLoS One. 2013 Oct 17;8(10):e77200. doi: 10.1371/journal.pone.0077200. eCollection 2013.
- Jefferies HB, Reinhard C, Kozma SC, Thomas G. Rapamycin selectively represses translation of the "polypyrimidine tract" mRNA family. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 May 10;91(10):4441-5. doi: 10.1073/pnas.91.10.4441.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Actual)
Finalización del estudio (Actual)
Fechas de registro del estudio
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Publicado por primera vez (Actual)
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Última actualización publicada (Actual)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
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Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- 220601
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
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