- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT05457218
Wirkung von aus Insekten gewonnenen Proteinergänzungen auf die Proteinsynthese und mTORC1-Aktivierung
Die Fähigkeit von aus Insekten gewonnenen Proteinzusätzen (IPC80 und Whole Buffalo Powder, Ynsect®) zur Aktivierung von mTORC1 und der Proteinsynthese im Muskel
Der Zweck dieser Studie ist es, die Fähigkeit von Proteinergänzungen aus Insekten (IPC80 und Whole Buffalo Powder Ynsect®) zu bestimmen, den mTORC1-Signalweg und die Proteinsynthese in Muskelzellen zu aktivieren.
Um dieses Ziel zu erreichen, nehmen die Teilnehmer eine zusätzliche Dosis (0,25 g/kg Körpergewicht) IPC80, Whole Buffalo Powder oder Whey Protein zu sich. Blutproben werden vor und 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung entnommen.
Die Proteinsynthese wird unter Verwendung stabil transfizierter C2C12-Muskelzellen mit einem Plasmid (pcDNA3-Luciferase) und zur Bestimmung der Fähigkeit einer Proteinquelle zur Aktivierung von mTORC1, stabil transfizierter C2C12-Muskelzellen mit einem Plasmid (pcDNA3-TOP-Luciferase), in dem die Luciferase-mRNA enthalten ist, bewertet ein 5'TOP. 5'TOP, das spezifisch durch mTORC1-Aktivität reguliert wird, wird verwendet.
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Detaillierte Beschreibung
Der Zweck dieser Studie ist es, die Fähigkeit von Proteinergänzungen aus Insekten (IPC80 und Whole Buffalo Powder, Ynsect®) zu bestimmen, den mTORC1-Signalweg und die Proteinsynthese in Muskelzellen zu aktivieren.
Um dieses Ziel zu erreichen, nehmen die Teilnehmer eine zusätzliche Dosis (0,25 g/kg Körpergewicht) IPC80, Whole Buffalo Powder oder Whey Protein zu sich. Blutproben werden vor und 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung entnommen.
Es wird erwartet, dass dieses Projekt bestimmen wird, ob von Insekten stammende Proteinzusätze (IPC80 und Whole Buffalo Powder, Ynsect®) die Fähigkeit haben, die Aktivierung des mTORC1-Signalwegs und die Proteinsynthese in Muskelzellen zu induzieren. Die Ergebnisse dieser Studie werden weitere Einblicke in die Verwendung dieser neuartigen nachhaltigen Proteinquelle zur Unterstützung der Muskelproteinsynthese nach dem Training geben.
In die Studie werden männliche und weibliche Teilnehmer im Alter zwischen 18 und 30 Jahren aufgenommen. Die Studie ist ein randomisiertes, doppelblindes Crossover-Design, bei dem weder die Probanden noch die Forscher wissen, wer welche Behandlung erhält (IPC80, Whole Buffalo Powder oder Whey).
I. Grundlinien-Blutentnahme Die Probanden kommen im Labor an, nachdem sie über Nacht gefastet haben. Die antekubitale Vene wird kanüliert und eine anfängliche 5-ml-Basisblutprobe wird entnommen.
II. Nahrungsergänzung Nach der Blutentnahme zu Studienbeginn erhalten die Probanden eine Nahrungsergänzung, 0,25 g/kg Körpergewicht von entweder Molkenprotein, IPC80 oder Büffelvollkornpulver, aufgelöst in 250 ml Wasser.
III. Postprandiale Blutentnahmen Nach Einnahme des Nahrungsergänzungsmittels bleiben die Teilnehmer noch 1,5 Stunden im Labor, sie können Bücher oder elektronische Geräte zum Zeitvertreib mitbringen. Vier weitere Blutproben von jeweils 5 ml werden 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung entnommen, was insgesamt fünf Blutentnahmen von 5 ml pro Besuch (25 ml pro Besuch) und insgesamt 75 ml Blutentnahmen für jeden abgeschlossenen Probanden entspricht das gesamte Studium.
Blut wird in 5-ml-Serumtrennröhrchen gesammelt. Alle Blutproben werden 1 Stunde lang gerinnen gelassen, bevor sie 10 Minuten lang bei 1000 x g zentrifugiert werden, und das Serum wird eingefroren und bis zur Verarbeitung bei -30 °C aufbewahrt. Die Behandlungen werden randomisiert, um einen Ordnungseffekt zu vermeiden, und eine Auswaschphase von mindestens 48 Stunden zwischen den Studien wird verwendet, um die Wirkung der vorherigen Behandlung zu minimieren.
Um die Proteinsynthese zu bestimmen, haben wir C2C12-Muskelzellen stabil mit einem Plasmid (pcDNA3-Luciferase) transfiziert, das wir verwenden, um die globale Proteinsynthese zu messen. C2C12Luc-Zellen werden in Platten mit 24 Vertiefungen ausplattiert und über 4 Tage differenziert. Differenzierte C2C12-Zellen werden fasten gelassen, indem sie mit PBS gewaschen und dann 15 Minuten lang mit Testmedien (20 % DMEM; 80 % gepufferte Hank-Salzlösung (HBSS)) behandelt werden. Nüchterne Muskelzellen werden dann 60 Minuten lang mit Testmedien behandelt, die 0, 2,5, 5 oder 10 % der Grundlinie oder Serum enthalten. Die Zellen werden in passivem Lysepuffer gesammelt und die Glühwürmchen-Luciferase-Aktivität wird wie zuvor beschrieben bestimmt (Philp et al., 2013).
Um die Fähigkeit einer Proteinquelle zur Aktivierung von mTORC1 zu bestimmen, haben wir C2C12-Muskelzellen stabil mit einem Plasmid (pcDNA3-TOP-Luciferase) transfiziert, wobei die Luciferase-mRNA einen 5'-terminalen Polypyrimidintrakt (TOP) enthält. 5'TOP-mRNA wird spezifisch durch mTORC1-Aktivität reguliert (Jefferies et al., 1994). Wie oben werden differenzierte C2C12TOPLuc-Muskelzellen in Platten mit 24 Vertiefungen unter Verwendung der Grundlinie oder des zugeführten Serums wie oben beschrieben stimuliert. Der Grad der mTORC1-Aktivierung wird als Steigungsdifferenz zwischen den Basislinien- und gefütterten Seren bestimmt. Die Induktion von mTORC1 und Proteinsynthese durch Molke und IPC80 und ganzes Büffelpulver wird direkt bei Einzelpersonen und dann zwischen Gruppen verglichen.
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienorte
-
-
California
-
Davis, California, Vereinigte Staaten, 95616
- Hickey Laboratory
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Gesunder aktiver Mann oder Frau
- Normalgewicht (BMI zwischen 18 und 25 kg/m2)
Ausschlusskriterien:
- Erhalt von Medikamenten, die die Studie beeinträchtigen könnten.
- Gesundheitliche oder diätetische Einschränkungen, die vom Ergänzungsprotokoll betroffen wären.
- Allergie gegen Schalentiere (die Chitine im Mehlwurm-Exoskelett können Schalentierallergien auslösen)
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Sonstiges
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Crossover-Aufgabe
- Maskierung: Verdreifachen
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
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Experimental: Molkenprotein
Dieser Arm erhält eine zusätzliche Dosis Molkenprotein (0,25 g/kg Körpergewicht)
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Der Teilnehmer nimmt eine zusätzliche Dosis Molkenprotein zu sich (0,25 g/kg Körpergewicht)
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Experimental: IPC80
Dieser Arm erhält eine zusätzliche Dosis von IPC80, einer aus Insekten gewonnenen Proteinquelle (0,25 g/kg Körpergewicht).
|
Der Teilnehmer nimmt eine zusätzliche Dosis IPC80 (0,25 g/kg Körpergewicht) zu sich.
|
|
Experimental: Ganzes Büffelpulver
Dieser Arm erhält eine zusätzliche Dosis Vollkorn-Büffelpulver, eine aus Insekten gewonnene Proteinquelle (0,25 g/kg Körpergewicht)
|
Der Teilnehmer nimmt eine zusätzliche Dosis Vollkorn-Büffelpulver (0,25 g/kg Körpergewicht) zu sich.
|
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Muskelproteinsynthese
Zeitfenster: Baseline (0 Stunde) bis 15 Minuten nach der Supplementierung
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Zur Messung der Muskelproteinsynthese werden stabil transfizierte C2C12-Muskelzellen mit einem Plasmid (pcDNA3-Luciferase) verwendet.
C2C12Luc-Zellen werden in Platten mit 24 Vertiefungen ausplattiert und über 4 Tage differenziert.
Differenzierte C2C12-Zellen werden fasten gelassen, indem sie mit PBS gewaschen und dann 15 Minuten lang mit Testmedien (20 % DMEM) behandelt werden.
Die nüchternen Muskelzellen werden dann 60 Minuten lang mit Testmedien behandelt, die 0, 2,5, 5 oder 10 % der Grundlinie oder gefüttertes Serum (aus Blutproben 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung) enthalten.
Die Zellen werden in passivem Lysepuffer gesammelt und die Glühwürmchen-Luciferase-Aktivität wird bestimmt.
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Baseline (0 Stunde) bis 15 Minuten nach der Supplementierung
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Muskelproteinsynthese
Zeitfenster: Baseline (0 Stunde) bis 30 Minuten nach der Supplementierung
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Zur Messung der Muskelproteinsynthese werden stabil transfizierte C2C12-Muskelzellen mit einem Plasmid (pcDNA3-Luciferase) verwendet.
C2C12Luc-Zellen werden in Platten mit 24 Vertiefungen ausplattiert und über 4 Tage differenziert.
Differenzierte C2C12-Zellen werden fasten gelassen, indem sie mit PBS gewaschen und dann 15 Minuten lang mit Testmedien (20 % DMEM) behandelt werden.
Die nüchternen Muskelzellen werden dann 60 Minuten lang mit Testmedien behandelt, die 0, 2,5, 5 oder 10 % der Grundlinie oder gefüttertes Serum (aus Blutproben 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung) enthalten.
Die Zellen werden in passivem Lysepuffer gesammelt und die Glühwürmchen-Luciferase-Aktivität wird bestimmt.
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Baseline (0 Stunde) bis 30 Minuten nach der Supplementierung
|
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Muskelproteinsynthese
Zeitfenster: Baseline (0 Stunde) bis 60 Minuten nach der Supplementierung
|
Zur Messung der Muskelproteinsynthese werden stabil transfizierte C2C12-Muskelzellen mit einem Plasmid (pcDNA3-Luciferase) verwendet.
C2C12Luc-Zellen werden in Platten mit 24 Vertiefungen ausplattiert und über 4 Tage differenziert.
Differenzierte C2C12-Zellen werden fasten gelassen, indem sie mit PBS gewaschen und dann 15 Minuten lang mit Testmedien (20 % DMEM) behandelt werden.
Die nüchternen Muskelzellen werden dann 60 Minuten lang mit Testmedien behandelt, die 0, 2,5, 5 oder 10 % der Grundlinie oder gefüttertes Serum (aus Blutproben 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung) enthalten.
Die Zellen werden in passivem Lysepuffer gesammelt und die Glühwürmchen-Luciferase-Aktivität wird bestimmt.
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Baseline (0 Stunde) bis 60 Minuten nach der Supplementierung
|
|
Muskelproteinsynthese
Zeitfenster: Baseline (0 Stunde) bis 90 Minuten nach der Supplementierung
|
Zur Messung der Muskelproteinsynthese werden stabil transfizierte C2C12-Muskelzellen mit einem Plasmid (pcDNA3-Luciferase) verwendet.
C2C12Luc-Zellen werden in Platten mit 24 Vertiefungen ausplattiert und über 4 Tage differenziert.
Differenzierte C2C12-Zellen werden fasten gelassen, indem sie mit PBS gewaschen und dann 15 Minuten lang mit Testmedien (20 % DMEM) behandelt werden.
Die nüchternen Muskelzellen werden dann 60 Minuten lang mit Testmedien behandelt, die 0, 2,5, 5 oder 10 % der Grundlinie oder gefüttertes Serum (aus Blutproben 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung) enthalten.
Die Zellen werden in passivem Lysepuffer gesammelt und die Glühwürmchen-Luciferase-Aktivität wird bestimmt.
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Baseline (0 Stunde) bis 90 Minuten nach der Supplementierung
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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mTORC1-Aktivität
Zeitfenster: Baseline (0 Stunde) bis 15 Minuten nach der Supplementierung
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Um die Fähigkeit einer Proteinquelle (Molkeprotein, IPC80 oder Whole Buffalo Powder) zur Aktivierung von mTORC1 zu messen, wurden C2C12-Muskelzellen stabil mit einem Plasmid (pcDNA3-TOP-Luciferase) transfiziert, wobei die Luciferase-mRNA ein 5'TOP enthält.
5'TOP-mRNA, die spezifisch durch mTORC1-Aktivität reguliert wird, wird verwendet.
Differenzierte C2C12TOPLuc-Muskelzellen in Platten mit 24 Vertiefungen werden unter Verwendung der Grundlinie oder des gefütterten Serums (aus Blutproben 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung) stimuliert.
Der Grad der mTORC1-Aktivierung wird als Steigungsdifferenz zwischen den Basislinien- und gefütterten Seren bestimmt.
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Baseline (0 Stunde) bis 15 Minuten nach der Supplementierung
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mTORC1-Aktivität
Zeitfenster: Baseline (0 Stunde) bis 30 Minuten nach der Supplementierung
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Um die Fähigkeit einer Proteinquelle (Molkeprotein, IPC80 oder ganzes Büffelpulver) zur Aktivierung von mTORC1 zu messen, wurden C2C12-Muskelzellen stabil mit einem Plasmid (pcDNA3-TOP-Luciferase) transfiziert, wobei die Luciferase-mRNA ein 5'TOP enthält.
5'TOP-mRNA, die spezifisch durch mTORC1-Aktivität reguliert wird, wird verwendet.
Differenzierte C2C12TOPLuc-Muskelzellen in Platten mit 24 Vertiefungen werden unter Verwendung der Grundlinie oder des gefütterten Serums (aus Blutproben 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung) stimuliert.
Der Grad der mTORC1-Aktivierung wird als Steigungsdifferenz zwischen den Basislinien- und gefütterten Seren bestimmt.
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Baseline (0 Stunde) bis 30 Minuten nach der Supplementierung
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mTORC1-Aktivität
Zeitfenster: Baseline (0 Stunde) bis 60 Minuten nach der Supplementierung
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Um die Fähigkeit einer Proteinquelle (Molkeprotein, IPC80 oder Whole Buffalo Powder) zur Aktivierung von mTORC1 zu messen, wurden C2C12-Muskelzellen stabil mit einem Plasmid (pcDNA3-TOP-Luciferase) transfiziert, wobei die Luciferase-mRNA ein 5'TOP enthält.
5'TOP-mRNA, die spezifisch durch mTORC1-Aktivität reguliert wird, wird verwendet.
Differenzierte C2C12TOPLuc-Muskelzellen in Platten mit 24 Vertiefungen werden unter Verwendung der Grundlinie oder des gefütterten Serums (aus Blutproben 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung) stimuliert.
Der Grad der mTORC1-Aktivierung wird als Steigungsdifferenz zwischen den Basislinien- und gefütterten Seren bestimmt.
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Baseline (0 Stunde) bis 60 Minuten nach der Supplementierung
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mTORC1-Aktivität
Zeitfenster: Baseline (0 Stunde) bis 90 Minuten nach der Supplementierung
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Um die Fähigkeit einer Proteinquelle (Molkeprotein, IPC80 oder Whole Buffalo Powder) zur Aktivierung von mTORC1 zu messen, wurden C2C12-Muskelzellen stabil mit einem Plasmid (pcDNA3-TOP-Luciferase) transfiziert, wobei die Luciferase-mRNA ein 5'TOP enthält.
5'TOP-mRNA, die spezifisch durch mTORC1-Aktivität reguliert wird, wird verwendet.
Differenzierte C2C12TOPLuc-Muskelzellen in Platten mit 24 Vertiefungen werden unter Verwendung der Grundlinie oder des gefütterten Serums (aus Blutproben 15, 30, 60 und 90 Minuten nach der Supplementierung) stimuliert.
Der Grad der mTORC1-Aktivierung wird als Steigungsdifferenz zwischen den Basislinien- und gefütterten Seren bestimmt.
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Baseline (0 Stunde) bis 90 Minuten nach der Supplementierung
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Hauptermittler: Keith Baar, PhD, UC Davis
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Philp A, MacKenzie MG, Belew MY, Towler MC, Corstorphine A, Papalamprou A, Hardie DG, Baar K. Glycogen content regulates peroxisome proliferator activated receptor- partial differential (PPAR- partial differential) activity in rat skeletal muscle. PLoS One. 2013 Oct 17;8(10):e77200. doi: 10.1371/journal.pone.0077200. eCollection 2013.
- Jefferies HB, Reinhard C, Kozma SC, Thomas G. Rapamycin selectively represses translation of the "polypyrimidine tract" mRNA family. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 May 10;91(10):4441-5. doi: 10.1073/pnas.91.10.4441.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Schlüsselwörter
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
- 220601
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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