- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT05457218
Effet des suppléments de protéines dérivés d'insectes sur la synthèse des protéines et l'activation de mTORC1
La capacité des suppléments protéiques dérivés d'insectes (IPC80 et Whole Buffalo Powder, Ynsect®) à activer mTORC1 et la synthèse des protéines dans le muscle
Le but de cette étude est de déterminer la capacité des suppléments protéiques dérivés d'insectes (IPC80 et Whole Buffalo Powder Ynsect®) à activer la voie mTORC1 et la synthèse des protéines dans les cellules musculaires.
Pour atteindre cet objectif, les participants consommeront une dose supplémentaire (0,25 g/kg de poids corporel) d'IPC80, de poudre de buffle entière ou de protéine de lactosérum. Des échantillons de sang seront prélevés avant et 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation.
La synthèse des protéines sera évaluée à l'aide de cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (luciférase pcDNA3) et pour déterminer la capacité d'une source de protéines à activer mTORC1, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (luciférase pcDNA3-TOP) où l'ARNm de la luciférase contient un 5'TOP. 5'TOP qui est spécifiquement régulé par l'activité mTORC1 sera utilisé.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Le but de cette étude est de déterminer la capacité des suppléments protéiques dérivés d'insectes (IPC80 et Whole Buffalo Powder, Ynsect®) à activer la voie mTORC1 et la synthèse des protéines dans les cellules musculaires.
Pour atteindre cet objectif, les participants consommeront une dose supplémentaire (0,25 g/kg de poids corporel) d'IPC80, de poudre de buffle entière ou de protéine de lactosérum. Des échantillons de sang seront prélevés avant et 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation.
On s'attend à ce que ce projet détermine si les suppléments protéiques dérivés d'insectes (IPC80 et Whole Buffalo Powder, Ynsect®) ont la capacité d'induire l'activation de la voie mTORC1 et la synthèse des protéines dans les cellules musculaires. Les résultats de cette étude permettront de mieux comprendre l'utilisation de cette nouvelle source de protéines durable pour soutenir la synthèse des protéines musculaires après l'exercice.
Les participants masculins et féminins âgés de 18 à 30 ans seront inscrits à l'étude. L'étude est un plan croisé randomisé en double aveugle, ni les sujets ni les investigateurs ne sachant qui est sous quel traitement (IPC80, Whole Buffalo Powder ou Whey).
I. Prise de sang de base Les sujets arriveront au laboratoire après une nuit de jeûne. La veine antécubitale sera canulée et un échantillon sanguin initial de 5 ml sera prélevé.
II. Supplémentation Après le prélèvement sanguin de base, les sujets recevront un supplément de 0,25 g/kg de poids corporel de protéine de lactosérum, d'IPC80 ou de poudre de buffle entière dissoute dans 250 ml d'eau.
III. Prélèvements sanguins postprandiaux Suite à la consommation du supplément, les participants resteront au laboratoire pendant encore 1,5 heure, ils pourront apporter des livres ou des appareils électroniques pour passer le temps. Quatre autres échantillons de sang de 5 ml chacun seront obtenus 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation, totalisant cinq prises de sang de 5 ml par visite (25 ml par visite) et 75 ml de sang prélevé au total pour chaque sujet remplissant toute l'étude.
Le sang sera prélevé dans des tubes de séparation de sérum de 5 ml. Tous les échantillons de sang seront autorisés à coaguler pendant 1 heure avant centrifugation à 1000 x g pendant 10 minutes et le sérum sera congelé et conservé à -30°C jusqu'au traitement. Les traitements seront randomisés pour éviter un effet d'ordre et une période de sevrage d'au moins 48h entre les essais sera utilisée pour minimiser l'effet du traitement précédent.
Pour déterminer la synthèse des protéines, nous avons transfecté de manière stable des cellules musculaires C2C12 avec un plasmide (pcDNA3 luciférase) que nous utilisons pour mesurer la synthèse globale des protéines. Les cellules C2C12Luc seront étalées dans des plaques de 24 puits et différenciées sur 4 jours. Les cellules C2C12 différenciées seront mises à jeun en les lavant avec du PBS puis en les traitant avec un milieu de test (20 % de DMEM ; 80 % de solution saline tamponnée de Hank (HBSS)) pendant 15 minutes. Les cellules musculaires à jeun seront ensuite traitées avec un milieu de test contenant 0, 2,5, 5 ou 10 % de référence ou alimentées en sérum pendant 60 minutes. Les cellules seront collectées dans un tampon de lyse passive et l'activité de la luciférase de luciole sera déterminée comme décrit précédemment (Philp et al., 2013).
Pour déterminer la capacité d'une source de protéines à activer mTORC1, nous avons transfecté de manière stable des cellules musculaires C2C12 avec un plasmide (luciférase pcDNA3-TOP) où l'ARNm de la luciférase contient un tractus polypyrimidine terminal 5 '(TOP). Les ARNm 5'TOP sont spécifiquement régulés par l'activité de mTORC1 (Jefferies et al., 1994). Comme ci-dessus, les cellules musculaires C2C12TOPLuc différenciées dans des plaques à 24 puits seront stimulées à l'aide de la ligne de base ou du sérum alimenté comme décrit ci-dessus. Le degré d'activation de mTORC1 sera déterminé comme la différence de pentes entre la ligne de base et les sérums nourris. L'induction de mTORC1 et la synthèse des protéines par le lactosérum et l'IPC80 et la poudre de buffle entière seront comparées directement au sein des individus, puis entre les groupes.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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California
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Davis, California, États-Unis, 95616
- Hickey Laboratory
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
- Homme ou femme actif en bonne santé
- Poids normal (IMC entre 18 et 25 kg/m2)
Critère d'exclusion:
- Recevoir tout médicament susceptible d'interférer avec l'étude.
- Restrictions sanitaires ou alimentaires qui seraient affectées par le protocole de supplémentation.
- Allergie aux crustacés (les chitines de l'exosquelette des vers de farine peuvent activer les allergies aux crustacés)
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Autre
- Répartition: Randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation croisée
- Masquage: Tripler
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Expérimental: Protéine de lactosérum
Ce bras recevra une dose supplémentaire de protéines de lactosérum (0,25 g/kg de poids corporel)
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Le participant consommera une dose supplémentaire de protéines de lactosérum (0,25 g/kg de poids corporel)
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Expérimental: IPC80
Ce bras recevra une dose supplémentaire d'IPC80, une source de protéines dérivées d'insectes (0,25 g/kg de poids corporel)
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Le participant consommera une dose supplémentaire d'IPC80 (0,25 g/kg de poids corporel)
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Expérimental: Poudre de buffle entière
Ce bras recevra une dose supplémentaire de Whole Buffalo Powder, une source de protéines dérivée d'insectes (0,25 g/kg de poids corporel)
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Le participant consommera une dose supplémentaire de Whole Buffalo Powder (0,25 g/kg de poids corporel)
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Synthèse des protéines musculaires
Délai: Ligne de base (0 heure) à 15 minutes après la supplémentation
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Pour mesurer la synthèse des protéines musculaires, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (pcDNA3 luciférase) seront utilisées.
Les cellules C2C12Luc seront étalées dans des plaques de 24 puits et différenciées sur 4 jours.
Les cellules C2C12 différenciées seront mises à jeun en les lavant avec du PBS puis en les traitant avec un milieu de test (20 % de DMEM) pendant 15 minutes.
Les cellules musculaires à jeun seront ensuite traitées avec un milieu de test contenant 0, 2,5, 5 ou 10 % de base ou du sérum nourri (à partir d'échantillons de sang à 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation) pendant 60 minutes.
Les cellules seront collectées dans un tampon de lyse passive et l'activité de la luciférase de luciole sera déterminée.
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Ligne de base (0 heure) à 15 minutes après la supplémentation
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Synthèse des protéines musculaires
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30 minutes après la supplémentation
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Pour mesurer la synthèse des protéines musculaires, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (pcDNA3 luciférase) seront utilisées.
Les cellules C2C12Luc seront étalées dans des plaques de 24 puits et différenciées sur 4 jours.
Les cellules C2C12 différenciées seront mises à jeun en les lavant avec du PBS puis en les traitant avec un milieu de test (20 % de DMEM) pendant 15 minutes.
Les cellules musculaires à jeun seront ensuite traitées avec un milieu de test contenant 0, 2,5, 5 ou 10 % de base ou du sérum nourri (à partir d'échantillons de sang à 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation) pendant 60 minutes.
Les cellules seront collectées dans un tampon de lyse passive et l'activité de la luciférase de luciole sera déterminée.
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Ligne de base (0 heure) à 30 minutes après la supplémentation
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Synthèse des protéines musculaires
Délai: Ligne de base (0 heure) à 60 minutes après la supplémentation
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Pour mesurer la synthèse des protéines musculaires, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (pcDNA3 luciférase) seront utilisées.
Les cellules C2C12Luc seront étalées dans des plaques de 24 puits et différenciées sur 4 jours.
Les cellules C2C12 différenciées seront mises à jeun en les lavant avec du PBS puis en les traitant avec un milieu de test (20 % de DMEM) pendant 15 minutes.
Les cellules musculaires à jeun seront ensuite traitées avec un milieu de test contenant 0, 2,5, 5 ou 10 % de base ou du sérum nourri (à partir d'échantillons de sang à 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation) pendant 60 minutes.
Les cellules seront collectées dans un tampon de lyse passive et l'activité de la luciférase de luciole sera déterminée.
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Ligne de base (0 heure) à 60 minutes après la supplémentation
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Synthèse des protéines musculaires
Délai: Ligne de base (0 heure) à 90 minutes après la supplémentation
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Pour mesurer la synthèse des protéines musculaires, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (pcDNA3 luciférase) seront utilisées.
Les cellules C2C12Luc seront étalées dans des plaques de 24 puits et différenciées sur 4 jours.
Les cellules C2C12 différenciées seront mises à jeun en les lavant avec du PBS puis en les traitant avec un milieu de test (20 % de DMEM) pendant 15 minutes.
Les cellules musculaires à jeun seront ensuite traitées avec un milieu de test contenant 0, 2,5, 5 ou 10 % de base ou du sérum nourri (à partir d'échantillons de sang à 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation) pendant 60 minutes.
Les cellules seront collectées dans un tampon de lyse passive et l'activité de la luciférase de luciole sera déterminée.
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Ligne de base (0 heure) à 90 minutes après la supplémentation
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Activité mTORC1
Délai: Ligne de base (0 heure) à 15 minutes après la supplémentation
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Pour mesurer la capacité d'une source de protéines (protéine de lactosérum, IPC80 ou Whole Buffalo Powder) à activer mTORC1, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (pcDNA3-TOP luciférase) où l'ARNm de la luciférase contient un 5'TOP.
L'ARNm 5'TOP, spécifiquement régulé par l'activité mTORC1, sera utilisé.
Les cellules musculaires C2C12TOPLuc différenciées dans des plaques à 24 puits seront stimulées à l'aide de la ligne de base ou du sérum nourri (échantillons de sang à 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation).
Le degré d'activation de mTORC1 sera déterminé comme la différence de pentes entre la ligne de base et les sérums nourris.
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Ligne de base (0 heure) à 15 minutes après la supplémentation
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Activité mTORC1
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30 minutes après la supplémentation
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Pour mesurer la capacité d'une source de protéines (protéine de lactosérum, IPC80 ou Whole Buffalo Powderl) à activer mTORC1, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (pcDNA3-TOP luciférase) où l'ARNm de la luciférase contient un 5'TOP.
L'ARNm 5'TOP, spécifiquement régulé par l'activité mTORC1, sera utilisé.
Les cellules musculaires C2C12TOPLuc différenciées dans des plaques à 24 puits seront stimulées à l'aide de la ligne de base ou du sérum nourri (échantillons de sang à 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation).
Le degré d'activation de mTORC1 sera déterminé comme la différence de pentes entre la ligne de base et les sérums nourris.
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Ligne de base (0 heure) à 30 minutes après la supplémentation
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Activité mTORC1
Délai: Ligne de base (0 heure) à 60 minutes après la supplémentation
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Pour mesurer la capacité d'une source de protéines (protéine de lactosérum, IPC80 ou Whole Buffalo Powder) à activer mTORC1, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (pcDNA3-TOP luciférase) où l'ARNm de la luciférase contient un 5'TOP.
L'ARNm 5'TOP, spécifiquement régulé par l'activité mTORC1, sera utilisé.
Les cellules musculaires C2C12TOPLuc différenciées dans des plaques à 24 puits seront stimulées à l'aide de la ligne de base ou du sérum nourri (échantillons de sang à 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation).
Le degré d'activation de mTORC1 sera déterminé comme la différence de pentes entre la ligne de base et les sérums nourris.
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Ligne de base (0 heure) à 60 minutes après la supplémentation
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Activité mTORC1
Délai: Ligne de base (0 heure) à 90 minutes après la supplémentation
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Pour mesurer la capacité d'une source de protéines (protéine de lactosérum, IPC80 ou Whole Buffalo Powder) à activer mTORC1, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (pcDNA3-TOP luciférase) où l'ARNm de la luciférase contient un 5'TOP.
L'ARNm 5'TOP, spécifiquement régulé par l'activité mTORC1, sera utilisé.
Les cellules musculaires C2C12TOPLuc différenciées dans des plaques à 24 puits seront stimulées à l'aide de la ligne de base ou du sérum nourri (échantillons de sang à 15, 30, 60 et 90 minutes après la supplémentation).
Le degré d'activation de mTORC1 sera déterminé comme la différence de pentes entre la ligne de base et les sérums nourris.
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Ligne de base (0 heure) à 90 minutes après la supplémentation
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Keith Baar, PhD, UC Davis
Publications et liens utiles
Publications générales
- Philp A, MacKenzie MG, Belew MY, Towler MC, Corstorphine A, Papalamprou A, Hardie DG, Baar K. Glycogen content regulates peroxisome proliferator activated receptor- partial differential (PPAR- partial differential) activity in rat skeletal muscle. PLoS One. 2013 Oct 17;8(10):e77200. doi: 10.1371/journal.pone.0077200. eCollection 2013.
- Jefferies HB, Reinhard C, Kozma SC, Thomas G. Rapamycin selectively represses translation of the "polypyrimidine tract" mRNA family. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 May 10;91(10):4441-5. doi: 10.1073/pnas.91.10.4441.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- 220601
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
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