- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT05457218
Efeito de suplementos de proteína derivados de insetos na síntese de proteínas e ativação de mTORC1
A capacidade dos suplementos de proteína derivados de insetos (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) de ativar mTORC1 e a síntese de proteínas no músculo
O objetivo deste estudo é determinar a capacidade dos suplementos proteicos derivados de insetos (IPC80 e Whole Buffalo Powder Ynsect®) de ativar a via mTORC1 e a síntese de proteínas nas células musculares.
Para atingir este objetivo, os participantes consumirão uma dose suplementar (0,25 g/kg de peso corporal) de IPC80, Whole Buffalo Powder ou whey protein. Amostras de sangue serão coletadas antes e 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação.
A síntese de proteínas será avaliada usando células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3 luciferase) e para determinar a capacidade de uma fonte de proteína para ativar mTORC1, células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3-TOP luciferase) onde o mRNA da luciferase contém um 5'TOP. 5'TOP que é especificamente regulado pela atividade mTORC1 será usado.
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
O objetivo deste estudo é determinar a capacidade dos suplementos proteicos derivados de insetos (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) de ativar a via mTORC1 e a síntese de proteínas nas células musculares.
Para atingir este objetivo, os participantes consumirão uma dose suplementar (0,25 g/kg de peso corporal) de IPC80, Whole Buffalo Powder ou whey protein. Amostras de sangue serão coletadas antes e 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação.
Espera-se que este projeto determine se os suplementos proteicos derivados de insetos (IPC80 e Whole Buffalo Powder, Ynsect®) têm a capacidade de induzir a ativação da via mTORC1 e a síntese de proteínas nas células musculares. Os resultados deste estudo fornecerão mais informações sobre o uso desta nova fonte de proteína sustentável para apoiar a síntese de proteína muscular após o exercício.
Participantes do sexo masculino e feminino com idades entre 18 e 30 anos de idade serão incluídos no estudo. O estudo é um projeto randomizado, duplo-cego cruzado, sem que nem os sujeitos nem os investigadores saibam quem está em qual tratamento (IPC80, Whole Buffalo Powder ou Whey).
I. Coleta de sangue de linha de base Os indivíduos chegarão ao laboratório após um jejum noturno. A veia antecubital será canulada e uma amostra de sangue inicial de 5 mL será coletada.
II. Suplementação Após a coleta de sangue inicial, os indivíduos receberão um suplemento, 0,25 g/kg de peso corporal de proteína de soro de leite, IPC80 ou Whole Buffalo Powder dissolvido em 250 ml de água.
III. Coleta de sangue pós-prandial Após o consumo do suplemento, os participantes permanecerão no laboratório por mais 1,5 horas, podendo trazer livros ou aparelhos eletrônicos para passar o tempo. Mais quatro amostras de sangue de 5 mL cada serão obtidas aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação, totalizando cinco coletas de sangue de 5 mL por visita (25 mL por visita) e 75 mL de sangue coletado no total para cada sujeito que completa todo o estudo.
O sangue será coletado em tubos de separação de soro de 5 mL. Todas as amostras de sangue coagularão por 1 hora antes da centrifugação a 1000 x g por 10 minutos e o soro será congelado e mantido a -30°C até ser processado. Os tratamentos serão randomizados para evitar um efeito de ordem e um período de washout de pelo menos 48h entre os ensaios será usado para minimizar o efeito do tratamento anterior.
Para determinar a síntese de proteínas, temos células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3 luciferase) que usamos para medir a síntese global de proteínas. As células C2C12Luc serão semeadas em placas de 24 poços e diferenciadas ao longo de 4 dias. Células C2C12 diferenciadas serão submetidas a jejum lavando com PBS e, em seguida, tratando-as com meio de teste (DMEM a 20%; solução salina tamponada de Hank a 80% (HBSS)) por 15 minutos. As células musculares em jejum serão então tratadas com meio de teste contendo 0, 2,5, 5 ou 10% da linha de base ou soro alimentado por 60 minutos. As células serão coletadas em tampão de lise passiva e a atividade da luciferase do vaga-lume será determinada conforme descrito anteriormente (Philp et al., 2013).
Para determinar a capacidade de uma fonte de proteína para ativar mTORC1, transfectamos estavelmente células musculares C2C12 com um plasmídeo (pcDNA3-TOP luciferase) onde o mRNA da luciferase contém um trato de polipirimidina (TOP) terminal 5'. O mRNA 5'TOP é especificamente regulado pela atividade mTORC1 (Jefferies et al., 1994). Como acima, as células musculares C2C12TOPLic diferenciadas em placas de 24 poços serão estimuladas usando a linha de base ou soro alimentado conforme descrito acima. O grau de ativação do mTORC1 será determinado como a diferença nas inclinações entre a linha de base e os soros alimentados. A indução de mTORC1 e síntese protéica por soro de leite e IPC80 e Whole Buffalo Powder serão comparadas diretamente dentro dos indivíduos e depois entre os grupos.
Tipo de estudo
Inscrição (Real)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Locais de estudo
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California
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Davis, California, Estados Unidos, 95616
- Hickey Laboratory
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Descrição
Critério de inclusão:
- Homem ou mulher ativo saudável
- Peso normal (IMC entre 18 e 25 kg/m2)
Critério de exclusão:
- Receber qualquer medicamento que possa interferir no estudo.
- Restrições de saúde ou dietéticas que seriam afetadas pelo protocolo de suplementação.
- Alergia ao marisco (as quitinas no exoesqueleto da larva da farinha podem ativar alergias ao marisco)
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Outro
- Alocação: Randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição cruzada
- Mascaramento: Triplo
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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Experimental: Proteína de soro
Este braço receberá uma dose suplementar de proteína de soro de leite (0,25 g/kg de peso corporal)
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O participante consumirá uma dose suplementar de whey protein (0,25 g/kg de peso corporal)
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Experimental: IPC80
Este braço receberá uma dose suplementar de IPC80, uma fonte de proteína derivada de insetos (0,25 g/kg de peso corporal)
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O participante consumirá uma dose suplementar de IPC80 (0,25 g/kg de peso corporal)
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Experimental: Pó de Búfalo Integral
Este braço receberá uma dose suplementar de Whole Buffalo Powder, uma fonte de proteína derivada de insetos (0,25 g/kg de peso corporal)
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O participante consumirá uma dose suplementar de Whole Buffalo Powder (0,25 g/kg de peso corporal)
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Síntese de proteína muscular
Prazo: Linha de base (0 hora) a 15 minutos após a suplementação
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Para medir a síntese de proteína muscular, serão utilizadas células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3 luciferase).
As células C2C12Luc serão semeadas em placas de 24 poços e diferenciadas ao longo de 4 dias.
Células C2C12 diferenciadas serão submetidas a jejum lavando com PBS e, em seguida, tratando-as com meio de teste (20% DMEM) por 15 minutos.
As células musculares em jejum serão então tratadas com Meio de Teste contendo 0, 2,5, 5 ou 10% da linha de base ou soro alimentado (de amostras de sangue aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação) por 60 minutos.
As células serão coletadas em tampão de lise passiva e a atividade da luciferase do vaga-lume será determinada.
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Linha de base (0 hora) a 15 minutos após a suplementação
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Síntese de proteína muscular
Prazo: Linha de base (0 hora) a 30 minutos após a suplementação
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Para medir a síntese de proteína muscular, serão utilizadas células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3 luciferase).
As células C2C12Luc serão semeadas em placas de 24 poços e diferenciadas ao longo de 4 dias.
Células C2C12 diferenciadas serão submetidas a jejum lavando com PBS e, em seguida, tratando-as com meio de teste (20% DMEM) por 15 minutos.
As células musculares em jejum serão então tratadas com Meio de Teste contendo 0, 2,5, 5 ou 10% da linha de base ou soro alimentado (de amostras de sangue aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação) por 60 minutos.
As células serão coletadas em tampão de lise passiva e a atividade da luciferase do vaga-lume será determinada.
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Linha de base (0 hora) a 30 minutos após a suplementação
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Síntese de proteína muscular
Prazo: Linha de base (0 hora) a 60 minutos após a suplementação
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Para medir a síntese de proteína muscular, serão utilizadas células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3 luciferase).
As células C2C12Luc serão semeadas em placas de 24 poços e diferenciadas ao longo de 4 dias.
Células C2C12 diferenciadas serão submetidas a jejum lavando com PBS e, em seguida, tratando-as com meio de teste (20% DMEM) por 15 minutos.
As células musculares em jejum serão então tratadas com Meio de Teste contendo 0, 2,5, 5 ou 10% da linha de base ou soro alimentado (de amostras de sangue aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação) por 60 minutos.
As células serão coletadas em tampão de lise passiva e a atividade da luciferase do vaga-lume será determinada.
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Linha de base (0 hora) a 60 minutos após a suplementação
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Síntese de proteína muscular
Prazo: Linha de base (0 hora) a 90 minutos após a suplementação
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Para medir a síntese de proteína muscular, serão utilizadas células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3 luciferase).
As células C2C12Luc serão semeadas em placas de 24 poços e diferenciadas ao longo de 4 dias.
Células C2C12 diferenciadas serão submetidas a jejum lavando com PBS e, em seguida, tratando-as com meio de teste (20% DMEM) por 15 minutos.
As células musculares em jejum serão então tratadas com Meio de Teste contendo 0, 2,5, 5 ou 10% da linha de base ou soro alimentado (de amostras de sangue aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação) por 60 minutos.
As células serão coletadas em tampão de lise passiva e a atividade da luciferase do vaga-lume será determinada.
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Linha de base (0 hora) a 90 minutos após a suplementação
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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atividade mTORC1
Prazo: Linha de base (0 hora) a 15 minutos após a suplementação
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Para medir a capacidade de uma fonte de proteína (proteína de soro de leite, IPC80 ou Whole Buffalo Powder) para ativar mTORC1, células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3-TOP luciferase) onde o mRNA da luciferase contém um 5'TOP.
5'TOP mRNA , que especificamente regulado pela atividade mTORC1, será usado.
Células musculares diferenciadas C2C12TOPLuc em placas de 24 poços serão estimuladas usando o soro basal ou alimentado (a partir de amostras de sangue aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação).
O grau de ativação do mTORC1 será determinado como a diferença nas inclinações entre a linha de base e os soros alimentados.
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Linha de base (0 hora) a 15 minutos após a suplementação
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atividade mTORC1
Prazo: Linha de base (0 hora) a 30 minutos após a suplementação
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Para medir a capacidade de uma fonte de proteína (proteína de soro de leite, IPC80 ou Whole Buffalo Powderl) para ativar mTORC1, células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3-TOP luciferase) onde o mRNA da luciferase contém um 5'TOP.
5'TOP mRNA , que especificamente regulado pela atividade mTORC1, será usado.
Células musculares diferenciadas C2C12TOPLuc em placas de 24 poços serão estimuladas usando o soro basal ou alimentado (a partir de amostras de sangue aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação).
O grau de ativação do mTORC1 será determinado como a diferença nas inclinações entre a linha de base e os soros alimentados.
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Linha de base (0 hora) a 30 minutos após a suplementação
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atividade mTORC1
Prazo: Linha de base (0 hora) a 60 minutos após a suplementação
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Para medir a capacidade de uma fonte de proteína (proteína de soro de leite, IPC80 ou Whole Buffalo Powder) para ativar mTORC1, células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3-TOP luciferase) onde o mRNA da luciferase contém um 5'TOP.
5'TOP mRNA , que especificamente regulado pela atividade mTORC1, será usado.
Células musculares diferenciadas C2C12TOPLuc em placas de 24 poços serão estimuladas usando o soro basal ou alimentado (a partir de amostras de sangue aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação).
O grau de ativação do mTORC1 será determinado como a diferença nas inclinações entre a linha de base e os soros alimentados.
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Linha de base (0 hora) a 60 minutos após a suplementação
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atividade mTORC1
Prazo: Linha de base (0 hora) a 90 minutos após a suplementação
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Para medir a capacidade de uma fonte de proteína (proteína de soro de leite, IPC80 ou Whole Buffalo Powder) para ativar mTORC1, células musculares C2C12 transfectadas de forma estável com um plasmídeo (pcDNA3-TOP luciferase) onde o mRNA da luciferase contém um 5'TOP.
5'TOP mRNA , que especificamente regulado pela atividade mTORC1, será usado.
Células musculares diferenciadas C2C12TOPLuc em placas de 24 poços serão estimuladas usando o soro basal ou alimentado (a partir de amostras de sangue aos 15, 30, 60 e 90 minutos após a suplementação).
O grau de ativação do mTORC1 será determinado como a diferença nas inclinações entre a linha de base e os soros alimentados.
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Linha de base (0 hora) a 90 minutos após a suplementação
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Keith Baar, PhD, UC Davis
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Philp A, MacKenzie MG, Belew MY, Towler MC, Corstorphine A, Papalamprou A, Hardie DG, Baar K. Glycogen content regulates peroxisome proliferator activated receptor- partial differential (PPAR- partial differential) activity in rat skeletal muscle. PLoS One. 2013 Oct 17;8(10):e77200. doi: 10.1371/journal.pone.0077200. eCollection 2013.
- Jefferies HB, Reinhard C, Kozma SC, Thomas G. Rapamycin selectively represses translation of the "polypyrimidine tract" mRNA family. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 May 10;91(10):4441-5. doi: 10.1073/pnas.91.10.4441.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Real)
Conclusão do estudo (Real)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
Primeira postagem (Real)
Atualizações de registro de estudo
Última Atualização Postada (Real)
Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade
Última verificação
Mais Informações
Termos relacionados a este estudo
Palavras-chave
Termos MeSH relevantes adicionais
Outros números de identificação do estudo
- 220601
Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo
Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
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