- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT05573321
Wpływ ćwiczeń ograniczających przepływ krwi (Bfr) na ostre ogólnoustrojowe poziomy miokin u zdrowych wytrenowanych mężczyzn
13 lutego 2023 zaktualizowane przez: Goksu Gokce, Ege University
Wpływ ćwiczeń ograniczających przepływ krwi na ostre ogólnoustrojowe poziomy iryzyny, miostatyny i dekoryny
Celem badania jest pomiar i porównanie ostrego ogólnoustrojowego stężenia iryzyny, miostatyny i dekoryny po pojedynczej sesji ćwiczeń oporowych z ograniczeniem przepływu krwi i ćwiczeniach oporowych bez ograniczenia przepływu krwi u zdrowych, wytrenowanych mężczyzn w wieku 18-35 lat.
W tym celu badaniem zostaną objęte łącznie 22 osoby.
Uczestnicy zostaną losowo przydzieleni do 2 grup ćwiczeń jako ćwiczeń oporowych z ograniczeniem przepływu krwi (BFR-RE) i ćwiczeń oporowych bez ograniczeń przepływu krwi (HL-RE) i zostaną poddani krzyżowaniu.
W interwencji HL-RE ćwiczenie zostanie wykonane z obciążeniem 80% 1 RM, z 4 seriami x 7 powtórzeń, z 60 sekundami odpoczynku między seriami.
W interwencji BFR-RE ćwiczenie zostanie wykonane jako seria 30 powtórzeń z obciążeniem 30% 1 RM i dodatkowo 3 serie x 15 powtórzeń, z 30-sekundową przerwą między seriami.
Próbowano wyrównać całkowite objętości ćwiczeń i dobrać hipertrofię mięśni szkieletowych zgodnie z wytycznymi dotyczącymi ćwiczeń.
W obu grupach zostanie wykonane ćwiczenie obustronnego wyprostu nóg z użyciem maszyny do wyprostu nóg do ćwiczeń oporowych.
W grupie z ograniczeniem przepływu krwi (BFR-RE) mankiet zostanie umieszczony obustronnie w proksymalnej części uda, napompowany do ciśnienia odpowiadającego 50% szacowanego ciśnienia okluzji tętniczej (AOP), a ćwiczenie prostowania nóg będzie wykonane pod tym warunkiem.
W grupie BFR-RE czas restrykcji przepływu krwi wyniesie 5-10 minut.
Ćwiczenia będą prowadzone pod superwizją.
Próbki krwi żylnej zostaną pobrane z okolicy przedłokciowej ramienia uczestników tuż przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach.
Z pobranych próbek zostaną zmierzone poziomy iryzyny, miostatyny i dekoryny w osoczu.
Powszechnie wiadomo, że ćwiczenia oporowe są ważne w utrzymaniu i zwiększaniu masy mięśniowej (hipertrofii).
Badania wykazały udział niektórych miokin w hipertrofii mięśni szkieletowych, chociaż przeprowadzono niewiele badań dotyczących ogólnoustrojowej odpowiedzi miokin na BFR-RE, który może odgrywać potencjalną rolę w hipertrofii.
Dlatego planowane badanie miało na celu ujawnienie podobieństw lub różnic w ogólnoustrojowej odpowiedzi miokinowej między BFR-RE i HL-RE.
Przegląd badań
Status
Jeszcze nie rekrutacja
Warunki
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Ćwiczenia oporowe to rodzaj ćwiczeń klasycznie stosowanych w celu zwiększenia hipertrofii mięśni szkieletowych i siły mięśni.
Trening oporowy jest ważnym elementem treningu w większości dyscyplin sportowych, a także odgrywa rolę w zapobieganiu urazom i rehabilitacji.
W dynamicznych ćwiczeniach oporowych intensywność jest zwykle określana poprzez pomiar maksymalnego ciężaru, który można podnieść tylko raz (maksymalnie jedno powtórzenie, 1RM).
American College of Sports Medicine (ACSM) zaleca ponad 70% 1RM w celu zwiększenia masy mięśniowej (ćwiczenia z dużym obciążeniem, HL-RE).
Obciążenia o wysokiej intensywności zalecane przez ACSM mogą nie być odpowiednią opcją dla populacji z sarkopenią, osób starszych z przewlekłymi schorzeniami lub z urazami, które nie tolerują dużego obciążenia, ponieważ powodują one nadmierne obciążenie mechaniczne tkanek podczas ćwiczeń i stanowią potencjalne ryzyko kontuzji.
Istnieje coraz więcej dowodów na to, że stosowanie ograniczenia przepływu krwi (BFR), znanego również jako trening okluzyjny lub trening Kaatsu, z ćwiczeniami oporowymi o niskim obciążeniu (<50% 1RM) zapewnia przyrosty hipertroficzne.
Ta metoda treningowa (BFR RE) jest metodą ćwiczeń polegającą na umieszczeniu nadmuchiwanego mankietu na bliższej części kończyny (ramieniu lub nodze) w celu ograniczenia przepływu krwi i powrotu żylnego w dystalnej części przeszkody bez blokowania przepływu tętniczego.
Wraz ze wzrostem liczby publikacji wykorzystujących tę metodę wzrosło zainteresowanie BFR-RE w celu zwiększenia przerostu i siły mięśni szkieletowych u sportowców, osób starszych lub populacji klinicznych (takich jak choroby naczyniowo-mózgowe, sercowe, nerwowo-mięśniowe, otyłość).
Standardowe parametry ćwiczeń na hipertrofię składają się z 1-3 serii łącznie, 8-12 powtórzeń w seriach i 1-2 minut przerwy między seriami, z obciążeniem 70-85% 1RM na poziomach początkującym-średnio zaawansowanym.
Z drugiej strony BFR-RE składa się z interwału obciążenia 20-40% 1RM, zestawu 30 powtórzeń, a następnie 3 dodatkowych zestawów po 15 powtórzeń, z 30 sekundami odpoczynku między seriami.
Pomimo tej różnicy w protokołach ćwiczeń, oba podejścia zapewniają hipertrofię mięśni szkieletowych.
Badania pokazują, że ćwiczenia oporowe z niskim obciążeniem i dużą liczbą powtórzeń, wykonywane do zmęczenia, powodują przerost mięśni szkieletowych, podobnie jak ćwiczenia oporowe z dużym obciążeniem i małą liczbą powtórzeń.
Ponadto BFR-RE przewyższa nieograniczone ćwiczenia z niskim obciążeniem pod względem hipertrofii mięśni szkieletowych, gdy objętość ćwiczeń jest wyrównana.
Według metaanalizy wykazano, że BFR-RE wywołuje wzrost masy mięśniowej porównywalny z HL-RE, niezależnie od bezwzględnego ciśnienia okluzji, szerokości mankietu i metody generowania ciśnienia okluzji.
Chociaż liczne badania wykazały silne hipertroficzne działanie BFR-RE, podstawowe mechanizmy odpowiedzialne za takie efekty nie są dobrze zdefiniowane.
Chociaż liczne badania wykazały silne hipertroficzne działanie BFR-RE, podstawowe mechanizmy odpowiedzialne za takie efekty nie są dobrze zdefiniowane.
Sugeruje się, że stres metaboliczny (nagromadzenie metabolitów w wyniku środowiska niedokrwiennego/niedotlenionego) jest głównym odpowiedzialnym czynnikiem i uważa się, że aktywuje wiele innych mechanizmów, o których sądzi się, że indukują przerost mięśni poprzez działania autokrynne i / lub parakrynne.
Wtórne mechanizmy aktywowane przez stres metaboliczny obejmują zaangażowanie szybkokurczliwych włókien mięśniowych (włókna typu 2), uwalnianie niektórych hormonów (GH, IGF-1), wytwarzanie miokin, wytwarzanie reaktywnych produktów tlenowych oraz pęcznienie komórek.
Jednak ważne jest, aby zdać sobie sprawę, że niektóre z tych mechanizmów są w dużej mierze indukowane nie przez stres metaboliczny, ale raczej przez napięcie mechaniczne (kolejny główny czynnik hipertrofii mięśni).
Biorąc pod uwagę, że obciążenie mechaniczne jest zazwyczaj niskie (<50% 1RM) w BFR-RE, zakres jego zaangażowania w adaptacje przerostowe jest wątpliwy.
Jednak napięcie mechaniczne i stres metaboliczny, które ostatecznie są głównymi czynnikami odpowiedzialnymi za hipertrofię, działają synergistycznie, powodując hipertrofię mięśni w BFR-RE.
Cytokiny to duża rodzina polipeptydów i białek, które działają jako przekaźniki międzykomórkowe.
Podczas gdy ich podstawowa funkcja jest zwykle związana z odpowiedzią immunologiczną, wiele cytokin wydaje się wykazywać funkcjonalną plejotropię.
Cytokina może pośredniczyć w różnych efektach w zależności od początkowego bodźca, komórki docelowej lub innych współuwalnianych cytokin.
Cytokiny mogą również działać lokalnie (autokrynnie lub parakrynnie) lub ogólnoustrojowo (endokrynnie) w zależności od tkanki docelowej.
Stwierdzono, że mięśnie szkieletowe uwalniają cytokiny w odpowiedzi na skurcz mięśni.
Te cytokiny, zwane miokinami, mają lokalny wpływ na mięśnie, jak również ogólnoustrojowy wpływ na inne tkanki.
Uwalnianie miokiny po skurczu mięśni zmienia się w zależności od intensywności, trybu i objętości ćwiczeń wykonywanych przez osobę.
Istnieją teorie, że stres metaboliczny może pośredniczyć w hipertrofii mięśni poprzez regulację w górę miokin anabolicznych i/lub regulację w dół miokin katabolicznych.
Iryzyna została odkryta przez Bostroma i wsp. w 2012 roku jako miokina zależna od PGC-1α (koaktywator receptora aktywowanego przez proliferatory peroksysomów 1-alfa).
Jest proteolitycznie odcinany od białka błonowego FDNC-5 (białko zawierające domenę fibronektyny-5) i wydzielany z mięśni szkieletowych do krążenia w odpowiedzi na wysiłek fizyczny.
Irisin to miokina znana przede wszystkim ze swojego wpływu na przemianę białej tkanki tłuszczowej w brunatną tkankę tłuszczową, zwiększając tym samym termogenezę i metabolizm energetyczny.
Istnieją jednak nowe dowody sugerujące, że tęczówka może odgrywać rolę w regulacji przerostu mięśni.
Ostatnie badania pokazują, że ostre intensywne ćwiczenia oporowe zwiększają stężenie krążącej iryzyny.
Donoszono, że iryzyna indukuje przerost mięśni szkieletowych i zmniejsza atrofię wywołaną odnerwieniem poprzez aktywację IL-6 u gryzoni.
Sugeruje to również, że iryzyna może odgrywać rolę w hipertrofii mięśni szkieletowych poprzez zwiększanie poziomu IGF-1 i zmniejszanie poziomu miostatyny w hodowlach ludzkich miocytów i leczeniu in vitro iryzyną.
Miostatyna jest członkiem rodziny TGF-ß (transformujący czynnik wzrostu-beta) i działa jako negatywny regulator rozwoju mięśni szkieletowych.
Wysokie poziomy miostatyny są istotnie związane z chorobami wyniszczającymi mięśnie, miopatią i sarkopenią.
U osób z mutacjami w obu kopiach genu miostatyny zaobserwowano znaczny wzrost masy mięśniowej w porównaniu z osobami zdrowymi.
Istnieją badania wykazujące, że poziom miostatyny zmniejsza się podczas jednej sesji ćwiczeń oporowych.
Wykazano, że poziomy miostatyny w mięśniu podeszwowym szczurów po ćwiczeniach z ograniczonym przepływem krwi (BFR) były znacznie obniżone w porównaniu z grupą pozorowaną.
Dekoryna została zdefiniowana jako kolejna miokina, która odgrywa rolę w hipertrofii mięśni.
Miotuby wydzielają dekorynę, a dekoryna reguluje syntezę białek in vitro.
Ponadto dowody in vivo z mięśni szkieletowych gryzoni wykazały, że nadekspresja dekoryny może zwiększyć regulację kilku czynników zaangażowanych w hamowanie miostatyny, silnej miokiny, która zmniejsza wzrost i różnicowanie komórek mięśniowych oraz zwiększa degradację białek.
Uważa się, że dekoryna może być zaangażowana w aktywność anaboliczną mięśni szkieletowych poprzez hamowanie miostatyny.
Wykazano, że różne ćwiczenia o ostrym oporze (LL-RE, HL-RE, BFR-RE) powodują ogólnoustrojowe uwalnianie dekoryny, a ta miokina może być zaangażowana w hipertroficzną odpowiedź na ćwiczenia oporowe.
Wydaje się, że brakuje badań nad potencjalną rolą miokin w przeroście mięśni szkieletowych indukowanym przez BFR-RE.
Celem tego badania jest ocena ogólnoustrojowych poziomów miokin iryzyny, miostatyny i dekoryny po ostrym BFR-RE i HL-RE oraz zmierzenie, czy BFR-RE zmienia odpowiedź miokinową wywołaną wysiłkiem fizycznym.
Przewidujemy, że ogólnoustrojowe reakcje iryzyny, miostatyny i miokiny dekoryny na BFR-RE i HL-RE będą podobne.
Typ studiów
Interwencyjne
Zapisy (Oczekiwany)
22
Faza
- Nie dotyczy
Kryteria uczestnictwa
Badacze szukają osób, które pasują do określonego opisu, zwanego kryteriami kwalifikacyjnymi. Niektóre przykłady tych kryteriów to ogólny stan zdrowia danej osoby lub wcześniejsze leczenie.
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
18 lat do 35 lat (DOROSŁY)
Akceptuje zdrowych ochotników
Tak
Płeć kwalifikująca się do nauki
Męski
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Wiek od 18 do 35 lat i płeć męska
- Wykonywać ćwiczenia oporowe przez co najmniej 1 rok i być przyzwyczajonym do ćwiczeń oporowych kończyn dolnych
- Niewykonywanie ćwiczeń oporowych z ograniczonym przepływem krwi w ciągu ostatniego miesiąca
- Niewykonywanie ćwiczeń oporowych kończyn dolnych przez co najmniej 48 godzin
- Odpowiedź przecząca na wszystkie pytania Kwestionariusza gotowości do ćwiczeń (EGZ-A+)
Kryteria wyłączenia:
- Obecność urazu lub niesprawności układu mięśniowo-szkieletowego, która może uniemożliwić wykonywanie ćwiczeń z ograniczonym przepływem krwi
- Stosowanie niesteroidowych leków przeciwzapalnych (NLPZ) lub suplementów, które mogą mieć działanie przeciwzapalne
- Bycie narażonym na choroby układu krążenia
- Regularne używanie wyrobów tytoniowych
- Korzystanie ze wsparcia ergogenicznego
Plan studiów
Ta sekcja zawiera szczegółowe informacje na temat planu badania, w tym sposób zaprojektowania badania i jego pomiary.
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: INNY
- Przydział: LOSOWO
- Model interwencyjny: KRZYŻOWANIE
- Maskowanie: POTROIĆ
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
EKSPERYMENTALNY: BFR-RE
W interwencji BFR-RE ćwiczenie zostanie wykonane jako seria 30 powtórzeń z obciążeniem 30% 1 RM i dodatkowo 3 serie x 15 powtórzeń, z 30-sekundową przerwą między seriami.
|
W interwencji BFR-RE ćwiczenie zostanie wykonane jako seria 30 powtórzeń z obciążeniem 30% 1 RM i dodatkowo 3 serie x 15 powtórzeń, z 30-sekundową przerwą między seriami.
W obu grupach będą wykonywane ćwiczenia obustronnego prostowania nóg przy użyciu maszyny do prostowania nóg do ćwiczeń oporowych.
W grupie z ograniczeniem przepływu krwi (BFR-RE) mankiet zostanie umieszczony obustronnie w proksymalnej części uda, napompowany do ciśnienia odpowiadającego 50% szacowanego ciśnienia okluzji tętniczej (AOP), a ćwiczenie prostowania nóg będzie wykonane pod tym warunkiem.
W grupie BFR-RE czas restrykcji przepływu krwi wyniesie 5-10 minut.
Próbki krwi żylnej zostaną pobrane z okolicy przedłokciowej ramienia uczestników tuż przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach.
Z pobranych próbek zostaną zmierzone poziomy iryzyny, miostatyny i dekoryny w osoczu.
W interwencji HL-RE ćwiczenie zostanie wykonane z obciążeniem 80% 1 RM, z 4 seriami x 7 powtórzeń, z 60 sekundami odpoczynku między seriami.
W obu grupach będą wykonywane ćwiczenia obustronnego prostowania nóg przy użyciu maszyny do prostowania nóg do ćwiczeń oporowych.
Próbki krwi żylnej zostaną pobrane z okolicy przedłokciowej ramienia uczestników tuż przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach.
Z pobranych próbek zostaną zmierzone poziomy iryzyny, miostatyny i dekoryny w osoczu.
|
|
ACTIVE_COMPARATOR: HL-RE
W interwencji HL-RE ćwiczenie zostanie wykonane z obciążeniem 80% 1 RM, z 4 seriami x 7 powtórzeń, z 60 sekundami odpoczynku między seriami.
|
W interwencji BFR-RE ćwiczenie zostanie wykonane jako seria 30 powtórzeń z obciążeniem 30% 1 RM i dodatkowo 3 serie x 15 powtórzeń, z 30-sekundową przerwą między seriami.
W obu grupach będą wykonywane ćwiczenia obustronnego prostowania nóg przy użyciu maszyny do prostowania nóg do ćwiczeń oporowych.
W grupie z ograniczeniem przepływu krwi (BFR-RE) mankiet zostanie umieszczony obustronnie w proksymalnej części uda, napompowany do ciśnienia odpowiadającego 50% szacowanego ciśnienia okluzji tętniczej (AOP), a ćwiczenie prostowania nóg będzie wykonane pod tym warunkiem.
W grupie BFR-RE czas restrykcji przepływu krwi wyniesie 5-10 minut.
Próbki krwi żylnej zostaną pobrane z okolicy przedłokciowej ramienia uczestników tuż przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach.
Z pobranych próbek zostaną zmierzone poziomy iryzyny, miostatyny i dekoryny w osoczu.
W interwencji HL-RE ćwiczenie zostanie wykonane z obciążeniem 80% 1 RM, z 4 seriami x 7 powtórzeń, z 60 sekundami odpoczynku między seriami.
W obu grupach będą wykonywane ćwiczenia obustronnego prostowania nóg przy użyciu maszyny do prostowania nóg do ćwiczeń oporowych.
Próbki krwi żylnej zostaną pobrane z okolicy przedłokciowej ramienia uczestników tuż przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach.
Z pobranych próbek zostaną zmierzone poziomy iryzyny, miostatyny i dekoryny w osoczu.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
zmiana stężenia iryzyny
Ramy czasowe: bezpośrednio przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach
|
Został odkryty przez Bostroma i wsp. w 2012 roku jako miokina zależna od PGC-1α (koaktywator receptora aktywowanego przez proliferatory peroksysomów 1-alfa).
Jest proteolitycznie odcinany od białka błonowego FDNC-5 (białko-5 zawierające domenę fibronektyny) i wydzielany z mięśni szkieletowych do krążenia w odpowiedzi na wysiłek fizyczny.
Irisin to miokina znana głównie ze swojego wpływu na przemianę białej tkanki tłuszczowej w brunatną tkankę tłuszczową, zwiększając tym samym termogenezę i metabolizm energetyczny.
Istnieją jednak nowe dowody sugerujące, że tęczówka może odgrywać rolę w regulacji przerostu mięśni.
|
bezpośrednio przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach
|
|
zmiana stężenia miostatyny
Ramy czasowe: bezpośrednio przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach
|
Jest członkiem rodziny TGF-ß (transformujący czynnik wzrostu-beta) i działa jako negatywny regulator wzrostu mięśni szkieletowych.
|
bezpośrednio przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach
|
|
zmiana stężenia dekoryny
Ramy czasowe: bezpośrednio przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach
|
Został zidentyfikowany jako kolejna miokina, która odgrywa rolę w hipertrofii mięśni.
Uważa się, że dekoryna bierze udział w działaniu anabolicznym mięśni szkieletowych poprzez hamowanie miostatyny.
|
bezpośrednio przed sesją ćwiczeń, bezpośrednio po ćwiczeniach i 1 godzinę po ćwiczeniach
|
Współpracownicy i badacze
Tutaj znajdziesz osoby i organizacje zaangażowane w to badanie.
Sponsor
Publikacje i pomocne linki
Osoba odpowiedzialna za wprowadzenie informacji o badaniu dobrowolnie udostępnia te publikacje. Mogą one dotyczyć wszystkiego, co jest związane z badaniem.
Publikacje ogólne
- American College of Sports Medicine. American College of Sports Medicine position stand. Progression models in resistance training for healthy adults. Med Sci Sports Exerc. 2009 Mar;41(3):687-708. doi: 10.1249/MSS.0b013e3181915670.
- Lixandrao ME, Ugrinowitsch C, Berton R, Vechin FC, Conceicao MS, Damas F, Libardi CA, Roschel H. Magnitude of Muscle Strength and Mass Adaptations Between High-Load Resistance Training Versus Low-Load Resistance Training Associated with Blood-Flow Restriction: A Systematic Review and Meta-Analysis. Sports Med. 2018 Feb;48(2):361-378. doi: 10.1007/s40279-017-0795-y.
- Loenneke JP, Wilson JM, Marin PJ, Zourdos MC, Bemben MG. Low intensity blood flow restriction training: a meta-analysis. Eur J Appl Physiol. 2012 May;112(5):1849-59. doi: 10.1007/s00421-011-2167-x. Epub 2011 Sep 16.
- Reeves GV, Kraemer RR, Hollander DB, Clavier J, Thomas C, Francois M, Castracane VD. Comparison of hormone responses following light resistance exercise with partial vascular occlusion and moderately difficult resistance exercise without occlusion. J Appl Physiol (1985). 2006 Dec;101(6):1616-22. doi: 10.1152/japplphysiol.00440.2006. Epub 2006 Aug 10.
- Takarada Y, Nakamura Y, Aruga S, Onda T, Miyazaki S, Ishii N. Rapid increase in plasma growth hormone after low-intensity resistance exercise with vascular occlusion. J Appl Physiol (1985). 2000 Jan;88(1):61-5. doi: 10.1152/jappl.2000.88.1.61.
- Takarada Y, Takazawa H, Sato Y, Takebayashi S, Tanaka Y, Ishii N. Effects of resistance exercise combined with moderate vascular occlusion on muscular function in humans. J Appl Physiol (1985). 2000 Jun;88(6):2097-106. doi: 10.1152/jappl.2000.88.6.2097.
- Yasuda T, Ogasawara R, Sakamaki M, Bemben MG, Abe T. Relationship between limb and trunk muscle hypertrophy following high-intensity resistance training and blood flow-restricted low-intensity resistance training. Clin Physiol Funct Imaging. 2011 Sep;31(5):347-51. doi: 10.1111/j.1475-097X.2011.01022.x. Epub 2011 Mar 22.
- Pope ZK, Willardson JM, Schoenfeld BJ. Exercise and blood flow restriction. J Strength Cond Res. 2013 Oct;27(10):2914-26. doi: 10.1519/JSC.0b013e3182874721.
- Wilk M, Krzysztofik M, Gepfert M, Poprzecki S, Golas A, Maszczyk A. Technical and Training Related Aspects of Resistance Training Using Blood Flow Restriction in Competitive Sport - A Review. J Hum Kinet. 2018 Dec 31;65:249-260. doi: 10.2478/hukin-2018-0101. eCollection 2018 Dec.
- Scott BR, Loenneke JP, Slattery KM, Dascombe BJ. Exercise with blood flow restriction: an updated evidence-based approach for enhanced muscular development. Sports Med. 2015 Mar;45(3):313-25. doi: 10.1007/s40279-014-0288-1.
- Martin-Hernandez J, Marin PJ, Menendez H, Ferrero C, Loenneke JP, Herrero AJ. Muscular adaptations after two different volumes of blood flow-restricted training. Scand J Med Sci Sports. 2013 Mar;23(2):e114-20. doi: 10.1111/sms.12036. Epub 2012 Dec 27.
- Slysz J, Stultz J, Burr JF. The efficacy of blood flow restricted exercise: A systematic review & meta-analysis. J Sci Med Sport. 2016 Aug;19(8):669-75. doi: 10.1016/j.jsams.2015.09.005. Epub 2015 Sep 28.
- Mitchell CJ, Churchward-Venne TA, West DW, Burd NA, Breen L, Baker SK, Phillips SM. Resistance exercise load does not determine training-mediated hypertrophic gains in young men. J Appl Physiol (1985). 2012 Jul;113(1):71-7. doi: 10.1152/japplphysiol.00307.2012. Epub 2012 Apr 19.
- Morton RW, Oikawa SY, Wavell CG, Mazara N, McGlory C, Quadrilatero J, Baechler BL, Baker SK, Phillips SM. Neither load nor systemic hormones determine resistance training-mediated hypertrophy or strength gains in resistance-trained young men. J Appl Physiol (1985). 2016 Jul 1;121(1):129-38. doi: 10.1152/japplphysiol.00154.2016. Epub 2016 May 12.
- Takarada Y, Tsuruta T, Ishii N. Cooperative effects of exercise and occlusive stimuli on muscular function in low-intensity resistance exercise with moderate vascular occlusion. Jpn J Physiol. 2004 Dec;54(6):585-92. doi: 10.2170/jjphysiol.54.585.
- Loenneke JP, Fahs CA, Wilson JM, Bemben MG. Blood flow restriction: the metabolite/volume threshold theory. Med Hypotheses. 2011 Nov;77(5):748-52. doi: 10.1016/j.mehy.2011.07.029. Epub 2011 Aug 12.
- Moritani T, Sherman WM, Shibata M, Matsumoto T, Shinohara M. Oxygen availability and motor unit activity in humans. Eur J Appl Physiol Occup Physiol. 1992;64(6):552-6. doi: 10.1007/BF00843767.
- Yasuda T, Brechue WF, Fujita T, Shirakawa J, Sato Y, Abe T. Muscle activation during low-intensity muscle contractions with restricted blood flow. J Sports Sci. 2009 Mar;27(5):479-89. doi: 10.1080/02640410802626567.
- Kaijser L, Sundberg CJ, Eiken O, Nygren A, Esbjornsson M, Sylven C, Jansson E. Muscle oxidative capacity and work performance after training under local leg ischemia. J Appl Physiol (1985). 1990 Aug;69(2):785-7. doi: 10.1152/jappl.1990.69.2.785.
- Loenneke JP, Fahs CA, Rossow LM, Abe T, Bemben MG. The anabolic benefits of venous blood flow restriction training may be induced by muscle cell swelling. Med Hypotheses. 2012 Jan;78(1):151-4. doi: 10.1016/j.mehy.2011.10.014. Epub 2011 Nov 1.
- Peake JM, Della Gatta P, Suzuki K, Nieman DC. Cytokine expression and secretion by skeletal muscle cells: regulatory mechanisms and exercise effects. Exerc Immunol Rev. 2015;21:8-25.
- Bostrom P, Wu J, Jedrychowski MP, Korde A, Ye L, Lo JC, Rasbach KA, Bostrom EA, Choi JH, Long JZ, Kajimura S, Zingaretti MC, Vind BF, Tu H, Cinti S, Hojlund K, Gygi SP, Spiegelman BM. A PGC1-alpha-dependent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis. Nature. 2012 Jan 11;481(7382):463-8. doi: 10.1038/nature10777.
- Huh JY, Dincer F, Mesfum E, Mantzoros CS. Irisin stimulates muscle growth-related genes and regulates adipocyte differentiation and metabolism in humans. Int J Obes (Lond). 2014 Dec;38(12):1538-44. doi: 10.1038/ijo.2014.42. Epub 2014 Mar 11.
- Nygaard H, Slettalokken G, Vegge G, Hollan I, Whist JE, Strand T, Ronnestad BR, Ellefsen S. Irisin in blood increases transiently after single sessions of intense endurance exercise and heavy strength training. PLoS One. 2015 Mar 17;10(3):e0121367. doi: 10.1371/journal.pone.0121367. eCollection 2015.
- Tsuchiya Y, Ando D, Takamatsu K, Goto K. Resistance exercise induces a greater irisin response than endurance exercise. Metabolism. 2015 Sep;64(9):1042-50. doi: 10.1016/j.metabol.2015.05.010. Epub 2015 May 29.
- Reza MM, Subramaniyam N, Sim CM, Ge X, Sathiakumar D, McFarlane C, Sharma M, Kambadur R. Irisin is a pro-myogenic factor that induces skeletal muscle hypertrophy and rescues denervation-induced atrophy. Nat Commun. 2017 Oct 24;8(1):1104. doi: 10.1038/s41467-017-01131-0.
- Roth SM, Walsh S. Myostatin: a therapeutic target for skeletal muscle wasting. Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2004 May;7(3):259-63. doi: 10.1097/00075197-200405000-00004.
- Gonzalez-Cadavid NF, Taylor WE, Yarasheski K, Sinha-Hikim I, Ma K, Ezzat S, Shen R, Lalani R, Asa S, Mamita M, Nair G, Arver S, Bhasin S. Organization of the human myostatin gene and expression in healthy men and HIV-infected men with muscle wasting. Proc Natl Acad Sci U S A. 1998 Dec 8;95(25):14938-43. doi: 10.1073/pnas.95.25.14938.
- Schuelke M, Wagner KR, Stolz LE, Hubner C, Riebel T, Komen W, Braun T, Tobin JF, Lee SJ. Myostatin mutation associated with gross muscle hypertrophy in a child. N Engl J Med. 2004 Jun 24;350(26):2682-8. doi: 10.1056/NEJMoa040933. No abstract available.
- Kazemi F. The correlation of resistance exercise-induced myostatin with insulin resistance and plasma cytokines in healthy young men. J Endocrinol Invest. 2016 Apr;39(4):383-8. doi: 10.1007/s40618-015-0373-9. Epub 2015 Aug 18.
- Raue U, Slivka D, Jemiolo B, Hollon C, Trappe S. Myogenic gene expression at rest and after a bout of resistance exercise in young (18-30 yr) and old (80-89 yr) women. J Appl Physiol (1985). 2006 Jul;101(1):53-9. doi: 10.1152/japplphysiol.01616.2005. Epub 2006 Apr 6.
- Kawada S, Ishii N. Skeletal muscle hypertrophy after chronic restriction of venous blood flow in rats. Med Sci Sports Exerc. 2005 Jul;37(7):1144-50. doi: 10.1249/01.mss.0000170097.59514.bb. Erratum In: Med Sci Sports Exerc. 2005 Oct;37(10):1824.
- Brandan E, Fuentes ME, Andrade W. The proteoglycan decorin is synthesized and secreted by differentiated myotubes. Eur J Cell Biol. 1991 Aug;55(2):209-16.
- Kanzleiter T, Rath M, Gorgens SW, Jensen J, Tangen DS, Kolnes AJ, Kolnes KJ, Lee S, Eckel J, Schurmann A, Eckardt K. The myokine decorin is regulated by contraction and involved in muscle hypertrophy. Biochem Biophys Res Commun. 2014 Jul 25;450(2):1089-94. doi: 10.1016/j.bbrc.2014.06.123. Epub 2014 Jul 1.
- Liu MQ, Chen Z, Chen LX. Endoplasmic reticulum stress: a novel mechanism and therapeutic target for cardiovascular diseases. Acta Pharmacol Sin. 2016 Apr;37(4):425-43. doi: 10.1038/aps.2015.145. Epub 2016 Feb 1.
- Guiraud S, van Wittenberghe L, Georger C, Scherman D, Kichler A. Identification of decorin derived peptides with a zinc dependent anti-myostatin activity. Neuromuscul Disord. 2012 Dec;22(12):1057-68. doi: 10.1016/j.nmd.2012.07.002. Epub 2012 Jul 31.
- Bugera EM, Duhamel TA, Peeler JD, Cornish SM. The systemic myokine response of decorin, interleukin-6 (IL-6) and interleukin-15 (IL-15) to an acute bout of blood flow restricted exercise. Eur J Appl Physiol. 2018 Dec;118(12):2679-2686. doi: 10.1007/s00421-018-3995-8. Epub 2018 Sep 22.
Daty zapisu na studia
Daty te śledzą postęp w przesyłaniu rekordów badań i podsumowań wyników do ClinicalTrials.gov. Zapisy badań i zgłoszone wyniki są przeglądane przez National Library of Medicine (NLM), aby upewnić się, że spełniają określone standardy kontroli jakości, zanim zostaną opublikowane na publicznej stronie internetowej.
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (OCZEKIWANY)
14 lutego 2023
Zakończenie podstawowe (OCZEKIWANY)
1 kwietnia 2023
Ukończenie studiów (OCZEKIWANY)
1 czerwca 2023
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
4 października 2022
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
6 października 2022
Pierwszy wysłany (RZECZYWISTY)
10 października 2022
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (OSZACOWAĆ)
14 lutego 2023
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
13 lutego 2023
Ostatnia weryfikacja
1 lutego 2023
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 22-7T/59
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
NIE
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Nie
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Nie
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .