- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT05573321
El efecto del ejercicio de restricción del flujo sanguíneo (Bfr) en los niveles agudos de mioquinas sistémicas en hombres sanos entrenados
13 de febrero de 2023 actualizado por: Goksu Gokce, Ege University
Efecto del ejercicio de restricción del flujo sanguíneo sobre los niveles sistémicos agudos de irisina, miostatina y decorina
El objetivo del estudio es medir y comparar los niveles sistémicos agudos de irisina, miostatina y decorina después de una sola sesión de ejercicio de resistencia con restricción del flujo sanguíneo y ejercicio de resistencia sin restricción del flujo sanguíneo en participantes masculinos sanos y entrenados de 18 a 35 años.
Para ello, se incluirán en el estudio un total de 22 personas.
Los participantes serán asignados aleatoriamente a 2 grupos de ejercicios como ejercicio de resistencia con restricción del flujo sanguíneo (BFR-RE) y ejercicio de resistencia sin restricción del flujo sanguíneo (HL-RE) y estarán sujetos a un cruce.
En la intervención HL-RE, el ejercicio se realizará con una carga del 80% de 1 RM, con 4 series x 7 repeticiones, con 60 segundos de descanso entre series.
En la intervención BFR-RE, el ejercicio se realizará como una serie de 30 repeticiones con una carga del 30% de 1 RM y 3 series adicionales x 15 repeticiones, con 30 segundos de descanso entre series.
Se intentó igualar el volumen total de ejercicio y se seleccionó la hipertrofia del músculo esquelético de acuerdo con las pautas de ejercicio.
En ambos grupos, el ejercicio de extensión de piernas bilateral se realizará utilizando la máquina de extensión de piernas para ejercicios de resistencia.
En el grupo de restricción del flujo sanguíneo (BFR-RE), se colocará el manguito en la región proximal del muslo de forma bilateral, se inflará a una presión equivalente al 50% de la presión de oclusión arterial (POA) estimada y se realizará ejercicio de extensión de piernas. realizado bajo esta condición.
En el grupo BFR-RE, el tiempo de restricción del flujo sanguíneo será de 5 a 10 minutos.
Las sesiones de ejercicio se realizarán bajo supervisión.
Se recolectarán muestras de sangre venosa de la región antecubital del brazo de los participantes justo antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio.
Los niveles de irisina, miostatina y decorina en plasma se medirán a partir de las muestras tomadas.
Es bien sabido que el ejercicio de resistencia es importante para mantener y aumentar la masa muscular (hipertrofia).
Los estudios han demostrado la participación de ciertas miocinas en la hipertrofia del músculo esquelético, aunque se han realizado pocos estudios sobre la respuesta sistémica de las miocinas a BFR-RE que pueden desempeñar un papel potencial en la hipertrofia.
Por lo tanto, el estudio planificado tuvo como objetivo revelar las similitudes o diferencias en la respuesta sistémica de mioquinas entre BFR-RE y HL-RE.
Descripción general del estudio
Estado
Aún no reclutando
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
El ejercicio de resistencia es un tipo de ejercicio utilizado clásicamente para aumentar la hipertrofia del músculo esquelético y la fuerza muscular.
El entrenamiento de resistencia es un componente importante del entrenamiento en la mayoría de los deportes y también desempeña un papel en la prevención y rehabilitación de lesiones.
En el ejercicio de resistencia dinámica, la intensidad generalmente se determina midiendo el peso máximo que se puede levantar una sola vez (una repetición máxima, 1RM).
El Colegio Americano de Medicina Deportiva (ACSM) recomienda más del 70 % de 1RM para aumentar la masa muscular (ejercicio de resistencia de alta carga, HL-RE).
Las cargas de alta intensidad recomendadas por el ACSM pueden no ser una opción adecuada para poblaciones con sarcopenia, ancianos con condiciones de salud crónicas o aquellos con lesiones que no pueden tolerar cargas pesadas, ya que crean un estrés mecánico excesivo en los tejidos durante el ejercicio y plantean un riesgo potencial de lesión.
Cada vez hay más pruebas de que el uso de la restricción del flujo sanguíneo (BFR), también conocido como entrenamiento de oclusión o Kaatsu, con ejercicios de fuerza de baja carga (<50% 1RM) proporciona ganancias hipertróficas.
Este método de entrenamiento (BFR RE) es un método de ejercicio realizado mediante la colocación de un manguito inflable en la parte proximal de la extremidad (brazo o pierna) para restringir el flujo sanguíneo y restringir el retorno venoso distal a la obstrucción sin obstruir el flujo arterial.
A medida que aumentan las publicaciones que utilizan este método, ha aumentado el interés en BFR-RE para aumentar la hipertrofia y la fuerza del músculo esquelético en atletas, ancianos o poblaciones clínicas (como enfermedades cerebrovasculares, cardíacas, neuromusculares, obesidad).
Los parámetros estándar del ejercicio de hipertrofia consisten en 1 a 3 series en total, 8 a 12 repeticiones por serie y 1 a 2 minutos de descanso entre series, con una carga del 70 al 85 % de 1RM en los niveles principiante e intermedio.
BFR-RE, por otro lado, consiste en un intervalo de carga de 20-40% de 1RM, una serie de 30 repeticiones, seguida de 3 series adicionales de 15 repeticiones, con 30 segundos de descanso entre series.
A pesar de esta diferencia en los protocolos de ejercicio, ambos enfoques proporcionan hipertrofia del músculo esquelético.
Los estudios muestran que los ejercicios de resistencia de baja carga y altas repeticiones, cuando se realizan hasta la fatiga, causan una hipertrofia del músculo esquelético similar a los ejercicios de resistencia de alta carga y bajas repeticiones.
Además, BFR-RE es superior al ejercicio de fuerza de baja carga sin restricciones en términos de hipertrofia del músculo esquelético cuando se iguala el volumen del ejercicio.
Según un metanálisis, se ha demostrado que BFR-RE induce aumentos en la masa muscular comparables a HL-RE independientemente de la presión de oclusión absoluta, el ancho del manguito y el método para generar la presión de oclusión.
Aunque numerosos estudios han demostrado los potentes efectos hipertróficos de BFR-RE, los mecanismos subyacentes responsables de dichos efectos no están bien definidos.
Aunque numerosos estudios han demostrado los potentes efectos hipertróficos de BFR-RE, los mecanismos subyacentes responsables de dichos efectos no están bien definidos.
Se ha sugerido que el estrés metabólico (acumulación de metabolitos como resultado del ambiente isquémico/hipóxico) es el principal factor responsable, y se cree que activa muchos otros mecanismos que inducen la hipertrofia muscular a través de acciones autocrinas y/o paracrinas.
Los mecanismos secundarios activados por el estrés metabólico incluyen la participación de las fibras musculares de contracción rápida (fibras tipo 2), la liberación de ciertas hormonas (GH, IGF-1), la producción de mioquinas, la producción de productos de oxígeno reactivo y la inflamación celular.
Sin embargo, es importante reconocer que algunos de estos mecanismos no son inducidos en gran medida por el estrés metabólico sino por la tensión mecánica (otro factor principal de la hipertrofia muscular).
Dado que la tensión mecánica suele ser baja (<50% 1RM) en BFR-RE, el alcance de su participación en las adaptaciones hipertróficas es cuestionable.
Sin embargo, la tensión mecánica y el estrés metabólico, que en última instancia son los principales factores responsables de la hipertrofia, actúan sinérgicamente para producir hipertrofia muscular en BFR-RE.
Las citoquinas son una gran familia de polipéptidos y proteínas que funcionan como mensajeros intercelulares.
Si bien su función principal se asocia típicamente con la respuesta inmunitaria, muchas citoquinas parecen exhibir pleiotropía funcional.
Una citoquina puede mediar diferentes efectos dependiendo del estímulo inicial, la célula diana u otras citoquinas co-liberadas.
Las citoquinas también pueden actuar localmente (autocrina o paracrina) o sistémicamente (endocrina) dependiendo del tejido diana.
Se ha descubierto que el músculo esquelético libera citocinas en respuesta a la contracción muscular.
Estas citoquinas, llamadas mioquinas, tienen efectos locales en el músculo así como efectos sistémicos en otros tejidos.
La liberación de miocinas después de la contracción muscular varía según la intensidad, el modo y el volumen del ejercicio realizado por la persona.
Hay teorías de que el estrés metabólico puede mediar en la hipertrofia muscular mediante la regulación positiva de las miocinas anabólicas y/o la regulación negativa de las miocinas catabólicas.
La irisina fue descubierta por Bostrom et al en 2012 como una miocina dependiente de PGC-1α (coactivador del receptor activado por el proliferador de peroxisomas 1-alfa).
Se escinde proteolíticamente de la proteína de membrana FDNC-5 (proteína 5 que contiene el dominio de fibronectina) y se secreta del músculo esquelético a la circulación en respuesta al ejercicio.
La irisina es una mioquina conocida principalmente por su efecto en la conversión del tejido adiposo blanco en tejido adiposo marrón, lo que aumenta la termogénesis y el metabolismo energético.
Sin embargo, hay nueva evidencia que sugiere que el iris puede tener un papel en la regulación de la hipertrofia muscular.
Estudios recientes muestran que el ejercicio de fuerza intenso y agudo aumenta las concentraciones de irisina circulante.
Se ha informado que la irisina induce la hipertrofia del músculo esquelético y reduce la atrofia inducida por denervación al activar la IL-6 en roedores.
También sugiere que la irisina puede desempeñar un papel en la hipertrofia del músculo esquelético mediante la regulación positiva de IGF-1 y la regulación negativa de la miostatina en cultivos de miocitos humanos y el tratamiento in vitro con irisina.
La miostatina es un miembro de la familia TGF-ß (factor de crecimiento transformante-beta) y actúa como un regulador negativo del desarrollo del músculo esquelético.
Los niveles altos de miostatina están significativamente asociados con enfermedades de desgaste muscular, miopatía y sarcopenia.
Se observó un aumento significativo de la masa muscular en individuos con mutaciones en ambas copias del gen de la miostatina en comparación con individuos normales.
Hay estudios que muestran que el nivel de miostatina disminuye con una sola sesión de ejercicio de resistencia.
Se ha demostrado que los niveles de miostatina en el músculo plantar de ratas después del ejercicio con restricción del flujo sanguíneo (BFR) se redujeron significativamente en comparación con el grupo simulado.
La decorina se ha definido como otra miocina que desempeña un papel en la hipertrofia muscular.
Los miotubos secretan decorina y la decorina regula la síntesis de proteínas in vitro.
Además, la evidencia in vivo del músculo esquelético de roedores ha demostrado que la sobreexpresión de decorina puede regular al alza varios factores involucrados en la inhibición de la miostatina, una potente miocina que disminuye el crecimiento y la diferenciación de las células musculares y aumenta la degradación de proteínas.
Se cree que la decorina puede estar implicada en la actividad anabólica del músculo esquelético al inhibir la miostatina.
Se ha demostrado que varios ejercicios de fuerza agudos (LL-RE, HL-RE, BFR-RE) dan como resultado una liberación sistémica de decorina, y esta mioquina puede estar involucrada en la respuesta hipertrófica al ejercicio de fuerza.
Parece haber una falta de investigación que investigue el papel potencial que desempeñan las miocinas en la hipertrofia del músculo esquelético inducida por BFR-RE.
El objetivo de este estudio es evaluar los niveles sistémicos de miocinas de irisina, miostatina y decorina después de BFR-RE y HL-RE agudos, y medir si BFR-RE altera la respuesta de miocinas inducida por el ejercicio.
Predecimos que las respuestas sistémicas de myokine de irisina, miostatina y decorina a BFR-RE y HL-RE serán similares.
Tipo de estudio
Intervencionista
Inscripción (Anticipado)
22
Fase
- No aplica
Criterios de participación
Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
18 años a 35 años (ADULTO)
Acepta Voluntarios Saludables
Sí
Géneros elegibles para el estudio
Masculino
Descripción
Criterios de inclusión:
- Tener entre 18-35 años y sexo masculino
- Haber estado haciendo ejercicios de resistencia durante al menos 1 año y estar acostumbrado a los ejercicios de resistencia de las extremidades inferiores.
- No hacer ningún ejercicio de resistencia con flujo sanguíneo restringido en el último mes
- No hacer ejercicio de resistencia de las extremidades inferiores durante al menos 48 horas.
- Responder no a todas las preguntas del Cuestionario de preparación para el ejercicio (EGZ-A+)
Criterio de exclusión:
- Presencia de lesión musculoesquelética o discapacidad que pueda impedir el ejercicio con flujo sanguíneo restringido
- Uso de medicamentos antiinflamatorios no esteroideos (AINE) o suplementos que pueden tener un efecto antiinflamatorio
- Estar en riesgo de enfermedad cardiovascular
- Uso regular de productos de tabaco.
- Uso de soporte ergogénico
Plan de estudios
Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: OTRO
- Asignación: ALEATORIZADO
- Modelo Intervencionista: TRANSVERSAL
- Enmascaramiento: TRIPLE
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
|
EXPERIMENTAL: BFR-RE
En la intervención BFR-RE, el ejercicio se realizará como una serie de 30 repeticiones con una carga del 30% de 1 RM y 3 series adicionales x 15 repeticiones, con 30 segundos de descanso entre series.
|
En la intervención BFR-RE, el ejercicio se realizará como una serie de 30 repeticiones con una carga del 30% de 1 RM y 3 series adicionales x 15 repeticiones, con 30 segundos de descanso entre series.
En ambos grupos, se realizarán ejercicios de extensión de piernas bilaterales utilizando la máquina de extensión de piernas para ejercicios de resistencia.
En el grupo de restricción del flujo sanguíneo (BFR-RE), se colocará el manguito en la región proximal del muslo de forma bilateral, se inflará a una presión equivalente al 50% de la presión de oclusión arterial (POA) estimada y se realizará ejercicio de extensión de piernas. realizado bajo esta condición.
En el grupo BFR-RE, el tiempo de restricción del flujo sanguíneo será de 5 a 10 minutos.
Se recolectarán muestras de sangre venosa de la región antecubital del brazo de los participantes justo antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio.
Los niveles de irisina, miostatina y decorina en plasma se medirán a partir de las muestras tomadas.
En la intervención HL-RE, el ejercicio se realizará con una carga del 80% de 1 RM, con 4 series x 7 repeticiones, con 60 segundos de descanso entre series.
En ambos grupos, se realizarán ejercicios de extensión de piernas bilaterales utilizando la máquina de extensión de piernas para ejercicios de resistencia.
Se recolectarán muestras de sangre venosa de la región antecubital del brazo de los participantes justo antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio.
Los niveles de irisina, miostatina y decorina en plasma se medirán a partir de las muestras tomadas.
|
|
COMPARADOR_ACTIVO: HL-RE
En la intervención HL-RE, el ejercicio se realizará con una carga del 80% de 1 RM, con 4 series x 7 repeticiones, con 60 segundos de descanso entre series.
|
En la intervención BFR-RE, el ejercicio se realizará como una serie de 30 repeticiones con una carga del 30% de 1 RM y 3 series adicionales x 15 repeticiones, con 30 segundos de descanso entre series.
En ambos grupos, se realizarán ejercicios de extensión de piernas bilaterales utilizando la máquina de extensión de piernas para ejercicios de resistencia.
En el grupo de restricción del flujo sanguíneo (BFR-RE), se colocará el manguito en la región proximal del muslo de forma bilateral, se inflará a una presión equivalente al 50% de la presión de oclusión arterial (POA) estimada y se realizará ejercicio de extensión de piernas. realizado bajo esta condición.
En el grupo BFR-RE, el tiempo de restricción del flujo sanguíneo será de 5 a 10 minutos.
Se recolectarán muestras de sangre venosa de la región antecubital del brazo de los participantes justo antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio.
Los niveles de irisina, miostatina y decorina en plasma se medirán a partir de las muestras tomadas.
En la intervención HL-RE, el ejercicio se realizará con una carga del 80% de 1 RM, con 4 series x 7 repeticiones, con 60 segundos de descanso entre series.
En ambos grupos, se realizarán ejercicios de extensión de piernas bilaterales utilizando la máquina de extensión de piernas para ejercicios de resistencia.
Se recolectarán muestras de sangre venosa de la región antecubital del brazo de los participantes justo antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio.
Los niveles de irisina, miostatina y decorina en plasma se medirán a partir de las muestras tomadas.
|
¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
cambio en las concentraciones de irisina
Periodo de tiempo: inmediatamente antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio
|
Fue descubierto por Bostrom et al en 2012 como una miocina dependiente de PGC-1α (coactivador del receptor activado por el proliferador de peroxisomas 1-alfa).
Se escinde proteolíticamente de la proteína de membrana FDNC-5 (dominio de fibronectina que contiene proteína-5) y se secreta del músculo esquelético a la circulación en respuesta al ejercicio.
La irisina es una miocina conocida principalmente por su efecto sobre la conversión del tejido adiposo blanco en tejido adiposo marrón, lo que aumenta la termogénesis y el metabolismo energético.
Sin embargo, hay nueva evidencia que sugiere que el iris puede tener un papel en la regulación de la hipertrofia muscular.
|
inmediatamente antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio
|
|
cambio en las concentraciones de miostatina
Periodo de tiempo: inmediatamente antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio
|
Es un miembro de la familia TGF-ß (factor de crecimiento transformante-beta) y actúa como un regulador negativo del crecimiento del músculo esquelético.
|
inmediatamente antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio
|
|
cambio en las concentraciones de decorina
Periodo de tiempo: inmediatamente antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio
|
Se ha identificado como otra miocina que desempeña un papel en la hipertrofia muscular.
Se cree que la decorina está implicada en la actividad anabólica del músculo esquelético al inhibir la miostatina.
|
inmediatamente antes de la sesión de ejercicio, inmediatamente después del ejercicio y 1 hora después del ejercicio
|
Colaboradores e Investigadores
Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.
Patrocinador
Publicaciones y enlaces útiles
La persona responsable de ingresar información sobre el estudio proporciona voluntariamente estas publicaciones. Estos pueden ser sobre cualquier cosa relacionada con el estudio.
Publicaciones Generales
- American College of Sports Medicine. American College of Sports Medicine position stand. Progression models in resistance training for healthy adults. Med Sci Sports Exerc. 2009 Mar;41(3):687-708. doi: 10.1249/MSS.0b013e3181915670.
- Lixandrao ME, Ugrinowitsch C, Berton R, Vechin FC, Conceicao MS, Damas F, Libardi CA, Roschel H. Magnitude of Muscle Strength and Mass Adaptations Between High-Load Resistance Training Versus Low-Load Resistance Training Associated with Blood-Flow Restriction: A Systematic Review and Meta-Analysis. Sports Med. 2018 Feb;48(2):361-378. doi: 10.1007/s40279-017-0795-y.
- Loenneke JP, Wilson JM, Marin PJ, Zourdos MC, Bemben MG. Low intensity blood flow restriction training: a meta-analysis. Eur J Appl Physiol. 2012 May;112(5):1849-59. doi: 10.1007/s00421-011-2167-x. Epub 2011 Sep 16.
- Reeves GV, Kraemer RR, Hollander DB, Clavier J, Thomas C, Francois M, Castracane VD. Comparison of hormone responses following light resistance exercise with partial vascular occlusion and moderately difficult resistance exercise without occlusion. J Appl Physiol (1985). 2006 Dec;101(6):1616-22. doi: 10.1152/japplphysiol.00440.2006. Epub 2006 Aug 10.
- Takarada Y, Nakamura Y, Aruga S, Onda T, Miyazaki S, Ishii N. Rapid increase in plasma growth hormone after low-intensity resistance exercise with vascular occlusion. J Appl Physiol (1985). 2000 Jan;88(1):61-5. doi: 10.1152/jappl.2000.88.1.61.
- Takarada Y, Takazawa H, Sato Y, Takebayashi S, Tanaka Y, Ishii N. Effects of resistance exercise combined with moderate vascular occlusion on muscular function in humans. J Appl Physiol (1985). 2000 Jun;88(6):2097-106. doi: 10.1152/jappl.2000.88.6.2097.
- Yasuda T, Ogasawara R, Sakamaki M, Bemben MG, Abe T. Relationship between limb and trunk muscle hypertrophy following high-intensity resistance training and blood flow-restricted low-intensity resistance training. Clin Physiol Funct Imaging. 2011 Sep;31(5):347-51. doi: 10.1111/j.1475-097X.2011.01022.x. Epub 2011 Mar 22.
- Pope ZK, Willardson JM, Schoenfeld BJ. Exercise and blood flow restriction. J Strength Cond Res. 2013 Oct;27(10):2914-26. doi: 10.1519/JSC.0b013e3182874721.
- Wilk M, Krzysztofik M, Gepfert M, Poprzecki S, Golas A, Maszczyk A. Technical and Training Related Aspects of Resistance Training Using Blood Flow Restriction in Competitive Sport - A Review. J Hum Kinet. 2018 Dec 31;65:249-260. doi: 10.2478/hukin-2018-0101. eCollection 2018 Dec.
- Scott BR, Loenneke JP, Slattery KM, Dascombe BJ. Exercise with blood flow restriction: an updated evidence-based approach for enhanced muscular development. Sports Med. 2015 Mar;45(3):313-25. doi: 10.1007/s40279-014-0288-1.
- Martin-Hernandez J, Marin PJ, Menendez H, Ferrero C, Loenneke JP, Herrero AJ. Muscular adaptations after two different volumes of blood flow-restricted training. Scand J Med Sci Sports. 2013 Mar;23(2):e114-20. doi: 10.1111/sms.12036. Epub 2012 Dec 27.
- Slysz J, Stultz J, Burr JF. The efficacy of blood flow restricted exercise: A systematic review & meta-analysis. J Sci Med Sport. 2016 Aug;19(8):669-75. doi: 10.1016/j.jsams.2015.09.005. Epub 2015 Sep 28.
- Mitchell CJ, Churchward-Venne TA, West DW, Burd NA, Breen L, Baker SK, Phillips SM. Resistance exercise load does not determine training-mediated hypertrophic gains in young men. J Appl Physiol (1985). 2012 Jul;113(1):71-7. doi: 10.1152/japplphysiol.00307.2012. Epub 2012 Apr 19.
- Morton RW, Oikawa SY, Wavell CG, Mazara N, McGlory C, Quadrilatero J, Baechler BL, Baker SK, Phillips SM. Neither load nor systemic hormones determine resistance training-mediated hypertrophy or strength gains in resistance-trained young men. J Appl Physiol (1985). 2016 Jul 1;121(1):129-38. doi: 10.1152/japplphysiol.00154.2016. Epub 2016 May 12.
- Takarada Y, Tsuruta T, Ishii N. Cooperative effects of exercise and occlusive stimuli on muscular function in low-intensity resistance exercise with moderate vascular occlusion. Jpn J Physiol. 2004 Dec;54(6):585-92. doi: 10.2170/jjphysiol.54.585.
- Loenneke JP, Fahs CA, Wilson JM, Bemben MG. Blood flow restriction: the metabolite/volume threshold theory. Med Hypotheses. 2011 Nov;77(5):748-52. doi: 10.1016/j.mehy.2011.07.029. Epub 2011 Aug 12.
- Moritani T, Sherman WM, Shibata M, Matsumoto T, Shinohara M. Oxygen availability and motor unit activity in humans. Eur J Appl Physiol Occup Physiol. 1992;64(6):552-6. doi: 10.1007/BF00843767.
- Yasuda T, Brechue WF, Fujita T, Shirakawa J, Sato Y, Abe T. Muscle activation during low-intensity muscle contractions with restricted blood flow. J Sports Sci. 2009 Mar;27(5):479-89. doi: 10.1080/02640410802626567.
- Kaijser L, Sundberg CJ, Eiken O, Nygren A, Esbjornsson M, Sylven C, Jansson E. Muscle oxidative capacity and work performance after training under local leg ischemia. J Appl Physiol (1985). 1990 Aug;69(2):785-7. doi: 10.1152/jappl.1990.69.2.785.
- Loenneke JP, Fahs CA, Rossow LM, Abe T, Bemben MG. The anabolic benefits of venous blood flow restriction training may be induced by muscle cell swelling. Med Hypotheses. 2012 Jan;78(1):151-4. doi: 10.1016/j.mehy.2011.10.014. Epub 2011 Nov 1.
- Peake JM, Della Gatta P, Suzuki K, Nieman DC. Cytokine expression and secretion by skeletal muscle cells: regulatory mechanisms and exercise effects. Exerc Immunol Rev. 2015;21:8-25.
- Bostrom P, Wu J, Jedrychowski MP, Korde A, Ye L, Lo JC, Rasbach KA, Bostrom EA, Choi JH, Long JZ, Kajimura S, Zingaretti MC, Vind BF, Tu H, Cinti S, Hojlund K, Gygi SP, Spiegelman BM. A PGC1-alpha-dependent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis. Nature. 2012 Jan 11;481(7382):463-8. doi: 10.1038/nature10777.
- Huh JY, Dincer F, Mesfum E, Mantzoros CS. Irisin stimulates muscle growth-related genes and regulates adipocyte differentiation and metabolism in humans. Int J Obes (Lond). 2014 Dec;38(12):1538-44. doi: 10.1038/ijo.2014.42. Epub 2014 Mar 11.
- Nygaard H, Slettalokken G, Vegge G, Hollan I, Whist JE, Strand T, Ronnestad BR, Ellefsen S. Irisin in blood increases transiently after single sessions of intense endurance exercise and heavy strength training. PLoS One. 2015 Mar 17;10(3):e0121367. doi: 10.1371/journal.pone.0121367. eCollection 2015.
- Tsuchiya Y, Ando D, Takamatsu K, Goto K. Resistance exercise induces a greater irisin response than endurance exercise. Metabolism. 2015 Sep;64(9):1042-50. doi: 10.1016/j.metabol.2015.05.010. Epub 2015 May 29.
- Reza MM, Subramaniyam N, Sim CM, Ge X, Sathiakumar D, McFarlane C, Sharma M, Kambadur R. Irisin is a pro-myogenic factor that induces skeletal muscle hypertrophy and rescues denervation-induced atrophy. Nat Commun. 2017 Oct 24;8(1):1104. doi: 10.1038/s41467-017-01131-0.
- Roth SM, Walsh S. Myostatin: a therapeutic target for skeletal muscle wasting. Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2004 May;7(3):259-63. doi: 10.1097/00075197-200405000-00004.
- Gonzalez-Cadavid NF, Taylor WE, Yarasheski K, Sinha-Hikim I, Ma K, Ezzat S, Shen R, Lalani R, Asa S, Mamita M, Nair G, Arver S, Bhasin S. Organization of the human myostatin gene and expression in healthy men and HIV-infected men with muscle wasting. Proc Natl Acad Sci U S A. 1998 Dec 8;95(25):14938-43. doi: 10.1073/pnas.95.25.14938.
- Schuelke M, Wagner KR, Stolz LE, Hubner C, Riebel T, Komen W, Braun T, Tobin JF, Lee SJ. Myostatin mutation associated with gross muscle hypertrophy in a child. N Engl J Med. 2004 Jun 24;350(26):2682-8. doi: 10.1056/NEJMoa040933. No abstract available.
- Kazemi F. The correlation of resistance exercise-induced myostatin with insulin resistance and plasma cytokines in healthy young men. J Endocrinol Invest. 2016 Apr;39(4):383-8. doi: 10.1007/s40618-015-0373-9. Epub 2015 Aug 18.
- Raue U, Slivka D, Jemiolo B, Hollon C, Trappe S. Myogenic gene expression at rest and after a bout of resistance exercise in young (18-30 yr) and old (80-89 yr) women. J Appl Physiol (1985). 2006 Jul;101(1):53-9. doi: 10.1152/japplphysiol.01616.2005. Epub 2006 Apr 6.
- Kawada S, Ishii N. Skeletal muscle hypertrophy after chronic restriction of venous blood flow in rats. Med Sci Sports Exerc. 2005 Jul;37(7):1144-50. doi: 10.1249/01.mss.0000170097.59514.bb. Erratum In: Med Sci Sports Exerc. 2005 Oct;37(10):1824.
- Brandan E, Fuentes ME, Andrade W. The proteoglycan decorin is synthesized and secreted by differentiated myotubes. Eur J Cell Biol. 1991 Aug;55(2):209-16.
- Kanzleiter T, Rath M, Gorgens SW, Jensen J, Tangen DS, Kolnes AJ, Kolnes KJ, Lee S, Eckel J, Schurmann A, Eckardt K. The myokine decorin is regulated by contraction and involved in muscle hypertrophy. Biochem Biophys Res Commun. 2014 Jul 25;450(2):1089-94. doi: 10.1016/j.bbrc.2014.06.123. Epub 2014 Jul 1.
- Liu MQ, Chen Z, Chen LX. Endoplasmic reticulum stress: a novel mechanism and therapeutic target for cardiovascular diseases. Acta Pharmacol Sin. 2016 Apr;37(4):425-43. doi: 10.1038/aps.2015.145. Epub 2016 Feb 1.
- Guiraud S, van Wittenberghe L, Georger C, Scherman D, Kichler A. Identification of decorin derived peptides with a zinc dependent anti-myostatin activity. Neuromuscul Disord. 2012 Dec;22(12):1057-68. doi: 10.1016/j.nmd.2012.07.002. Epub 2012 Jul 31.
- Bugera EM, Duhamel TA, Peeler JD, Cornish SM. The systemic myokine response of decorin, interleukin-6 (IL-6) and interleukin-15 (IL-15) to an acute bout of blood flow restricted exercise. Eur J Appl Physiol. 2018 Dec;118(12):2679-2686. doi: 10.1007/s00421-018-3995-8. Epub 2018 Sep 22.
Fechas de registro del estudio
Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (ANTICIPADO)
14 de febrero de 2023
Finalización primaria (ANTICIPADO)
1 de abril de 2023
Finalización del estudio (ANTICIPADO)
1 de junio de 2023
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
4 de octubre de 2022
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
6 de octubre de 2022
Publicado por primera vez (ACTUAL)
10 de octubre de 2022
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (ESTIMAR)
14 de febrero de 2023
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
13 de febrero de 2023
Última verificación
1 de febrero de 2023
Más información
Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- 22-7T/59
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
NO
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
No
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
No
Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .