Immuncellers fænotyper under COVID-19 (IMMUNO-COVID)
Ændringer af medfødte og adaptive immunceller i løbet af SARS CoV-2 lungebetændelse
Den igangværende pandemi forårsaget af det alvorlige akutte respiratoriske syndrom Coronavirus 2 (SARS CoV-2) har inficeret mere end hundrede og tyve millioner mennesker verden over et år efter dens begyndelse med en dødsfald på næsten 2 %. Sygdommen på grund af coronavirus 2019 (dvs. COVID-19) er forbundet med en lang række kliniske symptomer. Da det primære sted for viral invasion er de øvre luftveje, er lungeinfektion den mest almindelige komplikation. De fleste inficerede patienter er asymptomatiske eller oplever mild eller moderat form af sygdommen (80 %). En lavere andel (15 %) udvikler alvorlig lungebetændelse med varierende niveau af hypoxi, der kan kræve hospitalsindlæggelse til iltbehandling. I de mest alvorlige tilfælde (5 %) udvikler patienter sig mod kritisk sygdom med organsvigt, såsom akut respiratorisk distress syndrom (ARDS). På dette stadium kræves invasiv mekanisk ventilation hos næsten 70 %, og hospitalsdødeligheden stiger til 37 %.
Immunceller er nøglespillere under SARS CoV-2-infektion, og adskillige ændringer er blevet rapporteret, herunder lymfocytter (T, B og NK) og monocytter, og udmattelse af celler. Sådanne ændringer var meget mere udtalte hos patienter med den mest alvorlige form af sygdommen. Derudover er en dysreguleret proinflammatorisk respons også blevet påpeget som en potentiel mekanisme for lungeskade. Endelig er COVID-19 forbundet med en uventet høj forekomst af trombose, som sandsynligvis skyldes den virale invasion af endotelceller.
Efterforskerne sigter mod at udforske prospektivt ændringerne af medfødte og adaptive immunceller under både den akutte fase og genopretningsfasen af SARS CoV-2 lungebetændelse. Flow- og spektralcytometri vil blive brugt til at udføre dyb undergruppeprofilering med fokus på T, B, NK, NKT, gamma-gelta T, monocytter og dendritiske celler. Hver specifik celletype vil blive yderligere karakteriseret ved brug af markører for aktivering/inhibering, modning/differentiering og senescens samt kemokinreceptorer.
T-cellehukommelsesspecificitet vil blive udforsket ved hjælp af specifik SARS CoV-2 pentamer. Blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikler vil blive udforsket ved hjælp af flowcytometri. Serum SARS CoV-2 antistoffer (IgA, IgM, IgG), serumcytokiner og serumbiomarkører fra alveolære epitel- og endotelceller vil blive analyseret ved hjælp af ELISA og korrelere med sygdommens sværhedsgrad.
Studieoversigt
Status
Status
Betingelser
Betingelser
Intervention / Behandling
Intervention / Behandling
Undersøgelsestype
Undersøgelsestype
Tilmelding (Forventet)
Tilmelding
Kontakter og lokationer
Studiekontakt
Studiekontakt
- Navn: Line MEDDEB
- Telefonnummer: 33 0413732347
- E-mail: line.meddeb@ap-hm.fr
Undersøgelse Kontakt Backup
- Navn: Joana VITTE, MD, PhD
- E-mail: joana.vitte@ap-hm.fr
Studiesteder
-
-
-
Marseille, Frankrig, 13003
- Rekruttering
- Hôpital Européen Marseille
-
Kontakt:
- Jérôme ALLARDET-SERVENT, MD
- Telefonnummer: 33 0413427450
- E-mail: j.allardetservent@hopital-europeen.fr
-
Kontakt:
- Philippe HALFON, MD, PhD
- Telefonnummer: 33 0413428120
- E-mail: philippe.halfon@alphabio.fr
-
Marseille, Frankrig, 13015
- Rekruttering
- Hôpital Nord
-
Kontakt:
- Marc LEONE, MD, PhD
- E-mail: m.leone@aph-hm.fr
-
Underforsker:
- Amélie MENARD, MD
-
-
Deltagelseskriterier
Berettigelseskriterier
Berettigelseskriterier
Aldre berettiget til at studere
Tager imod sunde frivillige
Køn, der er berettiget til at studere
Prøveudtagningsmetode
Studiebefolkning
Patienter, der får en første episode af SARS CoV-2-lungebetændelse og har behov for indlæggelse enten på en afdeling eller en intensivafdeling, vil udgøre COVID-19-gruppen.
Sunde bloddonorer fra Etablissement Français du Sang (EFS) vil udgøre kontrolgruppen
Beskrivelse
Inklusionskriterier:
- Alder > 18 år
- Laboratoriebekræftet SARS CoV-2-infektion (positiv RT-PCR).
- Opacitet af slebet glas på computertomografi på brystet
- Tid fra hospitalsindlæggelse til inklusion < eller lig med 72 timer
Ekskluderingskriterier:
- Gravid
- Under lovmæssig begrænsning
Studieplan
Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?
Design detaljer
Hvad måler undersøgelsen?
Primære resultatmål
Primære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Profilering af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 0
|
Bestemmelse af cellepopulation ved hjælp af spektralcytometri af PBMC'er.
|
Dag 0
|
|
Profilering af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 7
|
Bestemmelse af cellepopulation ved hjælp af spektralcytometri af PBMC'er.
|
Dag 7
|
|
Profilering af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 14
|
Bestemmelse af cellepopulation ved hjælp af spektralcytometri af PBMC'er.
|
Dag 14
|
|
Profilering af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 28
|
Bestemmelse af cellepopulation ved hjælp af spektralcytometri af PBMC'er.
|
Dag 28
|
|
Profilering af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 90
|
Bestemmelse af cellepopulation ved hjælp af spektralcytometri af PBMC'er.
|
Dag 90
|
|
Profilering af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 180
|
Bestemmelse af cellepopulation ved hjælp af spektralcytometri af PBMC'er.
|
Dag 180
|
|
Funktionel tilstand af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 0
|
Bestemmelse af den funktionelle tilstand af immunceller ved hjælp af spektralcytometri
|
Dag 0
|
|
Funktionel tilstand af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 7
|
Bestemmelse af den funktionelle tilstand af immunceller ved hjælp af spektralcytometri
|
Dag 7
|
|
Funktionel tilstand af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 14
|
Bestemmelse af den funktionelle tilstand af immunceller ved hjælp af spektralcytometri
|
Dag 14
|
|
Funktionel tilstand af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 28
|
Bestemmelse af den funktionelle tilstand af immunceller ved hjælp af spektralcytometri
|
Dag 28
|
|
Funktionel tilstand af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 90
|
Bestemmelse af den funktionelle tilstand af immunceller ved hjælp af spektralcytometri
|
Dag 90
|
|
Funktionel tilstand af medfødte og adaptive immunceller under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 180
|
Bestemmelse af den funktionelle tilstand af immunceller ved hjælp af spektralcytometri
|
Dag 180
|
|
Serum IgA, IgM og IgG antistoffer under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 0
|
Måling af serum SARS CoV-2 IgA, IgM og IgG antistoffer ved hjælp af Elisa.
|
Dag 0
|
|
Serum IgA, IgM og IgG antistoffer under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 7
|
Måling af serum SARS CoV-2 IgA, IgM og IgG antistoffer ved hjælp af Elisa.
|
Dag 7
|
|
Serum IgA, IgM og IgG antistoffer under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 14
|
Måling af serum SARS CoV-2 IgA, IgM og IgG antistoffer ved hjælp af Elisa.
|
Dag 14
|
|
Serum IgA, IgM og IgG antistoffer under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 28
|
Måling af serum SARS CoV-2 IgA, IgM og IgG antistoffer ved hjælp af Elisa.
|
Dag 28
|
|
Serum IgA, IgM og IgG antistoffer under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 90
|
Måling af serum SARS CoV-2 IgA, IgM og IgG antistoffer ved hjælp af Elisa.
|
Dag 90
|
|
Serum IgA, IgM og IgG antistoffer under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 180
|
Måling af serum SARS CoV-2 IgA, IgM og IgG antistoffer ved hjælp af Elisa.
|
Dag 180
|
|
Blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikler vurdering under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 0
|
Bestemmelse af blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikelniveauer ved hjælp af flowcytometri.
|
Dag 0
|
|
Blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikler vurdering under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 7
|
Bestemmelse af blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikelniveauer ved hjælp af flowcytometri.
|
Dag 7
|
|
Blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikler vurdering under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 14
|
Bestemmelse af blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikelniveauer ved hjælp af flowcytometri.
|
Dag 14
|
|
Blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikler vurdering under SARS CoV-2 infektion.
Tidsramme: Dag 28
|
Bestemmelse af blodpladeaktivering og cirkulerende mikropartikelniveauer ved hjælp af flowcytometri.
|
Dag 28
|
Sekundære resultatmål
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Serumkoncentration af pro-inflammatoriske og anti-inflammatoriske cytokiner som reaktion på SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 0
|
Måling af IL1β, IL-6, IL-10, IL-17A, IL-18, TNFα, IFNγ, CRTP-6 ved hjælp af Elisa.
|
Dag 0
|
|
Serumkoncentration af pro-inflammatoriske og anti-inflammatoriske cytokiner som reaktion på SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 7
|
Måling af IL1β, IL-6, IL-10, IL-17A, IL-18, TNFα, IFNγ, CRTP-6 ved hjælp af Elisa.
|
Dag 7
|
|
Serumkoncentration af pro-inflammatoriske og anti-inflammatoriske cytokiner som reaktion på SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 14
|
Måling af IL1β, IL-6, IL-10, IL-17A, IL-18, TNFα, IFNγ, CRTP-6 ved hjælp af Elisa.
|
Dag 14
|
|
Serumkoncentration af pro-inflammatoriske og anti-inflammatoriske cytokiner som reaktion på SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 28
|
Måling af IL1β, IL-6, IL-10, IL-17A, IL-18, TNFα, IFNγ, CRTP-6 ved hjælp af Elisa.
|
Dag 28
|
|
Serumkoncentration af pro-inflammatoriske og anti-inflammatoriske cytokiner som reaktion på SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 90
|
Måling af IL1β, IL-6, IL-10, IL-17A, IL-18, TNFα, IFNγ, CRTP-6 ved hjælp af Elisa.
|
Dag 90
|
|
Serumkoncentration af pro-inflammatoriske og anti-inflammatoriske cytokiner som reaktion på SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 180
|
Måling af IL1β, IL-6, IL-10, IL-17A, IL-18, TNFα, IFNγ, CRTP-6 ved hjælp af Elisa.
|
Dag 180
|
|
Serum alveolære epitel- og endotelceller biomarkører under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 0
|
Måling af KL-6, CC-16, S-RAGE, ANG-2 ved hjælp af ELISA.
|
Dag 0
|
|
Serumalveolære epitel- og endotelcellebiomarkører under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 7
|
Måling af KL-6, CC-16, S-RAGE, ANG-2 ved hjælp af ELISA.
|
Dag 7
|
|
Serumalveolære epitel- og endotelcellebiomarkører under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 14
|
Måling af KL-6, CC-16, S-RAGE, ANG-2 ved hjælp af ELISA.
|
Dag 14
|
|
Serumalveolære epitel- og endotelcellebiomarkører under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 28
|
Måling af KL-6, CC-16, S-RAGE, ANG-2 ved hjælp af ELISA.
|
Dag 28
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 0
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 0
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 1
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 1
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 2
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 2
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 3
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 3
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 5
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 5
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 7
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 7
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 9
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 9
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 11
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 11
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 14
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 14
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 17
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 17
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 21
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 21
|
|
Kinetik af overfladebiomarkørers ekspression på neutrofiler (C64) og monocytter (CD169, HLA-DR) under SARS CoV-2-infektion.
Tidsramme: Dag 28
|
Måling af nCD64, mCD169 og mHLA-DR ved hjælp af VersaPOC et-trins hurtig flowcytometri metode.
|
Dag 28
|
Samarbejdspartnere og efterforskere
Sponsor
Sponsor
Samarbejdspartnere
Samarbejdspartnere
Efterforskere
Efterforskere
- Ledende efterforsker: Jean-Louis MEGE, MD, PhD, Institut Hospitalo-Universitaire Méditérranée Infection
Publikationer og nyttige links
Generelle publikationer
- Wu Z, McGoogan JM. Characteristics of and Important Lessons From the Coronavirus Disease 2019 (COVID-19) Outbreak in China: Summary of a Report of 72 314 Cases From the Chinese Center for Disease Control and Prevention. JAMA. 2020 Apr 7;323(13):1239-1242. doi: 10.1001/jama.2020.2648. No abstract available.
- Ackermann M, Verleden SE, Kuehnel M, Haverich A, Welte T, Laenger F, Vanstapel A, Werlein C, Stark H, Tzankov A, Li WW, Li VW, Mentzer SJ, Jonigk D. Pulmonary Vascular Endothelialitis, Thrombosis, and Angiogenesis in Covid-19. N Engl J Med. 2020 Jul 9;383(2):120-128. doi: 10.1056/NEJMoa2015432. Epub 2020 May 21.
- Qin C, Zhou L, Hu Z, Zhang S, Yang S, Tao Y, Xie C, Ma K, Shang K, Wang W, Tian DS. Dysregulation of Immune Response in Patients With Coronavirus 2019 (COVID-19) in Wuhan, China. Clin Infect Dis. 2020 Jul 28;71(15):762-768. doi: 10.1093/cid/ciaa248.
- Zheng M, Gao Y, Wang G, Song G, Liu S, Sun D, Xu Y, Tian Z. Functional exhaustion of antiviral lymphocytes in COVID-19 patients. Cell Mol Immunol. 2020 May;17(5):533-535. doi: 10.1038/s41423-020-0402-2. Epub 2020 Mar 19. No abstract available.
- Giamarellos-Bourboulis EJ, Netea MG, Rovina N, Akinosoglou K, Antoniadou A, Antonakos N, Damoraki G, Gkavogianni T, Adami ME, Katsaounou P, Ntaganou M, Kyriakopoulou M, Dimopoulos G, Koutsodimitropoulos I, Velissaris D, Koufargyris P, Karageorgos A, Katrini K, Lekakis V, Lupse M, Kotsaki A, Renieris G, Theodoulou D, Panou V, Koukaki E, Koulouris N, Gogos C, Koutsoukou A. Complex Immune Dysregulation in COVID-19 Patients with Severe Respiratory Failure. Cell Host Microbe. 2020 Jun 10;27(6):992-1000.e3. doi: 10.1016/j.chom.2020.04.009. Epub 2020 Apr 21.
- Kuri-Cervantes L, Pampena MB, Meng W, Rosenfeld AM, Ittner CAG, Weisman AR, Agyekum RS, Mathew D, Baxter AE, Vella LA, Kuthuru O, Apostolidis SA, Bershaw L, Dougherty J, Greenplate AR, Pattekar A, Kim J, Han N, Gouma S, Weirick ME, Arevalo CP, Bolton MJ, Goodwin EC, Anderson EM, Hensley SE, Jones TK, Mangalmurti NS, Luning Prak ET, Wherry EJ, Meyer NJ, Betts MR. Comprehensive mapping of immune perturbations associated with severe COVID-19. Sci Immunol. 2020 Jul 15;5(49):eabd7114. doi: 10.1126/sciimmunol.abd7114.
- Hue S, Beldi-Ferchiou A, Bendib I, Surenaud M, Fourati S, Frapard T, Rivoal S, Razazi K, Carteaux G, Delfau-Larue MH, Mekontso-Dessap A, Audureau E, de Prost N. Uncontrolled Innate and Impaired Adaptive Immune Responses in Patients with COVID-19 Acute Respiratory Distress Syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 2020 Dec 1;202(11):1509-1519. doi: 10.1164/rccm.202005-1885OC.
Hjælpsomme links
Datoer for undersøgelser
Studer store datoer
Studiestart (Faktiske)
Studiestart
Primær færdiggørelse (Forventet)
Primær færdiggørelse
Studieafslutning (Forventet)
Studieafslutning
Datoer for studieregistrering
Først indsendt
Først indsendt
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først opslået (Faktiske)
Først opslået
Opdateringer af undersøgelsesjournaler
Sidste opdatering sendt (Faktiske)
Sidste opdatering sendt
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidst verificeret
Sidst verificeret
Mere information
Begreber relateret til denne undersøgelse
Yderligere relevante MeSH-vilkår
Andre undersøgelses-id-numre
Andre undersøgelses-id-numre
- 2020-A00756-33
Plan for individuelle deltagerdata (IPD)
Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?
Lægemiddel- og udstyrsoplysninger, undersøgelsesdokumenter
Studerer et amerikansk FDA-reguleret lægemiddelprodukt
Studerer et amerikansk FDA-reguleret enhedsprodukt
Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .