Effektiviteten af et Multiplex BangasureTM RT-PCR-kit til påvisning af COVID-19 (COVID-19)
Udvikling af et Multiplex BangasureTM RT-PCR-kit til påvisning af SARS-Corona Virus-2
Udbruddet af det alvorlige akutte respiratoriske syndrom (SARS) coronavirus (CoV)-2 fortsætter med at stige globalt. For at kontrollere overførslen af coronavirus sygdom 2019 (COVID-19), er diagnose et meget vigtigt skridt, som vil hjælpe i processen med karantæne, isolering af den inficerede person og også i kontaktsporing. Blandt de forskellige teknikker er real-time revers transcription polymerase chain reaction (rRT-PCR) mest brugt og betragtes som guldstandardmetoden til påvisning af viral nukleinsyre ifølge Verdenssundhedsorganisationen (WHO) og Center for Diseases Control (CDC), USA. Men mulige falsk-negative og falsk-positive resultater giver vildledende konsekvenser, hvilket gør det nødvendigt at forbedre eksisterende metoder. Så efterforskere har brug for et robust og pålideligt PCR-kit til at opdage forskellige slags varianter af SARS-CoV-2-virus for at reducere dets overførbarhed og tage en forebyggende håndteringsplan. Udover det for at styre det stigende antal test, er efterforskere for det meste afhængige af importeret testkit, som synes at være meget vanskeligt i denne pandemiske situation og dyrt. Derfor kan virulens af SARS-CoV-2-virus ændre sig hurtigt på grund af mutation, og landet bliver hot spot, så gendetektion RT-PCR-kit er tidskrævende. I dette synspunkt er efterforskerens mål at udvikle en valideret multipleks rRT-PCR kvalitativ diagnostisk metode, som er rettet mod to virale gener E (kappeprotein), N (nukleocapsid-gen, ifølge CDC, USAs retningslinjer for udvikling af RT-PCR kit og ét humant gen RNase P som intern kontrol samtidigt.
Dette er et case-kontrolstudie, hvor der skal analyseres 120 prøver (60 COVID-19 positive og 60 COVID-19 negative både friske og frosne) fra Institute of Epidemiology, Disease Control and Research (IEDCR). Denne prøve vil blive blindet, før den leveres over til NILMRC/Contact ROL/Bangladesh Clinical Trail Limited (BCTL), Dhaka, Bangladesh for Bangladesh Reference Institute for Chemical Measurements (BRiCM) RT-PCR Kit. Påkrævet intern validering vil også blive udført i henhold til International Council for Harmonization (ICH) og FDA-retningslinjer, og også ekstern validering vil blive udført i forskellige generaldirektører for Health Service (DGHS), Bangladesh godkendte COVID-19 diagnostiske laboratorium. Data vil blive analyseret af computer ved hjælp af Statistical Package for the Social Sciences (SPSS) software og vil blive præsenteret i frekvenstabellen, grafen og diagrammet i henhold til kravene.
Studieoversigt
Status
Status
Betingelser
Betingelser
Detaljeret beskrivelse
Introduktion:
Corona-virus COVID-19-pandemien er vor tids afgørende globale sundhedskrise og den største udfordring, der har stået over for siden Anden Verdenskrig. Pandemien er meget mere end en sundhedskrise; det er også en hidtil uset socioøkonomisk krise. Siden dens identifikation i regionen Wuhan, Kina, har virussen ikke kun spredt sig over 213 lande/territorier med 209 millioner tilfælde og 4,39 millioner globalt, men kan også sætte 400 millioner mennesker ud af deres job, som Den Internationale Arbejdsorganisation anslår.
For at begrænse spredningen af sygdomme er der blevet lanceret tværfaglige strategier i forskellige regioner i verden, herunder implementering af social distancering, opretholdelse af personlig hygiejne, kontaktopsporing og implementering af karantæne, rejserestriktioner og nedlukninger. En bredt accepteret metode er testning for SARS-CoV-2, typisk ved brug af nasopharyngeale podningsprøver. Patienter, der er testet positive, kræver passende klinisk behandling ved enten effektiv isolation eller karantæne i hjemmet for milde symptomer eller inden for sundhedsfaciliteter for moderate til svære symptomer. Derudover giver bredskala test mere informative epidemiologiske data til udarbejdelse af politikker for sygdomsovervågning og kontrol. Mange tilgange er blevet foreslået til at detektere SARS-CoV-2-virus i nasopharyngeale væsker såsom multiplex RT-PCR, CRISPR/Cas12 og CRISPR-Cas3, lateral flow immunoassay, papirbaserede bimolekylære sensorer, SHERLOCK-test i én pot, DNA-aptamer , loop-medieret isotermisk amplifikation (LAMP) osv. Blandt disse metoder er nukleinsyreamplifikationsbaserede tests de mest almindelige til diagnosticering af SARS-CoV-2.
Derudover foreslår US CDC en protokol til påvisning af SARS-CoV-2, baseret på amplifikation af to regioner af nukleocapsid-genet, nemlig N1 og N2, og et humant internt kontrolgen RNase P (RP). Ud over disse strategier er bestræbelserne på at udvikle SARS-CoV-2-detektionsmetoder med høj effektivitet og nøjagtighed, med mindre reaktionstid og indsats, stadig i gang.
Men på trods af, at de anses for at være guldstandarden for SARS CoV-2-detektion, er test haltet bagud i mange lande på grund af forskellige faktorer, hvoraf de vigtigste er forsyningskædeproblemer med mangel på reagenser og passende testsæt. Derfor forbliver mange patienter (både symptomatiske og asymptomatiske) utestede og bidrager derfor potentielt til spredning af virussen i samfundet.
Hvis Bangladesh kan producere sine egne RT-PCR-kits, som ikke er ringere i kvalitet med hensyn til sensitivitet, specificitet osv., ville det afbøde manglen på RT-PCR-kit, da efterforskerne er totalt afhængige af importerede testkits og også spare udenlandsk valuta. Desuden er RT-PCR-testsæt meget temperaturfølsomme og skal opretholde kølekæden for dens kvalitet, hvilket kan afbødes ved at udvikle lokale RT PCR-kit. Derudover er mange varianter af SARS-CoV-2 blevet udviklet på grund af mutation, som har vist mere virulens og høj transmissionshastighed. Så udvikling af nyt RT PCR-kit, som kan detektere nyere stamme, kan være yderst nyttigt.
Så her er efterforskerens mål at udvikle de tre gen-detekterbare robuste RT-PCR-kit, der vil være landet først og give pålidelige resultater af forskellige slags varianter af SARS-CoV-2-virus for at reducere dets overførbarhed og tage forebyggende håndteringsplan 2. Formål med Studiet:
- Generelle mål: Primære mål er rettet mod at udvikle multipleks realtids revers transkriptionspolymerasekædereaktion (rRT-PCR) for at påvise SARS-CoV-2.
Sekundære mål: For den bedste RT-PCR-ydelse bør kombinationen af E- og N-genmål optimeres.
3. Metode: 3.1. Undersøgelsestype og formål: Dette er et case-kontrol- og observationsstudie, hvor to eksisterende grupper frosne og friske prøver identificeres og sammenlignes.
3.2. Studiested:
- Institut Epidemiology Disease Control and Research (IEDCR)
- FRK. Clinical Research Organisation Ltd 3.3. Prøveindsamlingssted(er):
- Institut Epidemiology Disease Control and Research (IEDCR) eller
- National Institute of Laboratory Medicine & Referral Center (NILMRC), Dhaka, Bangladesh.
3.4. Studiets varighed: • 3 måneder (november 2021 til januar 2022) efter at have fået etisk godkendelse fra Bangladesh Medical Research Council.
3.5. Studiepopulation/stikprøveudvælgelse 3.5.1 CRO vil modtage testprøver fra IEDCR. IEDCR og BCTL/CROL som CRO har memorandum of understanding (MoU) for forskelligt forskningssamarbejde. Så NILMRC/BCTL/CROL vil modtage i alt 120 prøver fra IEDCR til evaluering af RT-PCR kit-effektiviteten. Af de 120 prøver vil 60 blive opbevaret prøver (30 COVID-19 kendte positive og 30 COVID-19 negative prøver), som er blevet opbevaret i -80°C laboratoriefrysere på IEDCR faciliteter og yderligere 60 friske prøver (30 COVID-19 positive) og 30 COVID-19 negative prøver), som testes hos IEDCR. Prøver med uoverensstemmende resultater vil blive afvist før testning med BRiCM RT PCR kit. Det vil sige, at mere end 120 identificerede prøver fra IEDCR kan være nødvendige for at analysere med importerede RT-PCR-kits og ekstraktionssæt ved BCTL/CROL. Sådan vil 120 prøver blive udvalgt til præstationsevaluering af BRiCM RT-PCR kit.
3.5.2 For at undgå partiskhed og interessekonflikter vil sponsor og PI/co-investigatorer blive blindet over for prøve-id'et og positiv/negativ status for prøverne og patienternes kliniske optegnelser. Den positive/negative status for både lagrede og friske prøver vil blive identificeret ved IEDCR før afsendelse til BCTL/CROL. Det vil sige, at BCTL/CROL-personale også vil blive blindet til prøveidentitetsdokument (ID) og positiv negativ/negativ status før analyse. Endelig sender CRO-lederen præstationsevalueringscertifikatet til PI eller sponsor.
3.5.3. Statistisk grundlag for prøvestørrelse:
Formler:
Undersøgelsen er udført på 120 deltagere (60 lagrede kendte positive & negative og 60 friske kendte positive & negative). For at opnå den ønskede absolutte nøjagtighed (n) ved estimering af effektiviteten af RT-PCR er den mindste prøvestørrelse estimeret efter den diskrete Bernoulli-sandsynlighedsfunktion som følger:
Alfa= 5 % D= absolut nøjagtighed (%) med 95 % sikkerhed. Ønsket absolut nøjagtighed n D Alfa=5% Z=1,96 10 30,99% n D= (1,96)/(2* Kvadratrod (SQRT) (n)) 20 21,91% 100 9,80% 30 17,89% 120 1009 1009 120 8% 8. 6,93% 300 5,66% 400 4,90% 1000 3,10% 10000 0,98% 20000 0,69% 30000 0,57% 100000 0,3% 3,6 Prøveudvælgelseskriterier 1. Prøveudvælgelseskriterier1-P3-3 resultater med C. 3.6 Prøveudvælgelseskriterier 1-3. gener hos IEDCR vil blive udvalgt som COVID-19 positive. Prøver med negative RT-PCR-resultater uden amplifikation for COVID-19-generne ved IEDCR vil blive udvalgt som COVID-19.
- Køn: Alle
- Alder: 5 til 70 år (barn, voksen, ældre voksen) 7.8.2. Eksklusionskriterier
- Prøver med tvetydige/tvetydige RT-PCR-resultater med hensyn til sigmoidal kurve og Ct-værdi vil blive udelukket.
Der kræves ikke samtykke fra patienterne, fordi CRO vil modtage prøverne fra IEDCR i henhold til MOU med IEDCR. Så der er ikke krav om patientens tilmelding og samtykker og CRF fra CRO-siden.
3.7 Dataindsamlingsprocedure: COVID-19 positive prøver vil blive bekræftet af laboratoriefund af positive RT-PCR-resultater for det virale RNA.
3.8 Dataanalyse: Følsomheden, specificiteten, den positive forudsigende værdi og den negative forudsigende værdi af BRiCM COVID-19 real-time RT-PCR kit vil blive bestemt. Chi-kvadrat-testen (tosidet) vil blive udført for at sammenligne kategoriske variable. En p-værdi på ≤0,05 vil blive betragtet som niveauet af signifikant association. Udover sensitivitet, specificitet, positiv prædiktiv værdi og negativ prædiktiv værdi, vil Kappa-koefficient, positivt sandsynlighedsforhold og negativt sandsynlighedsforhold også blive beregnet.
3.9 Databasen er sikret mod uautoriseret adgang af etablerede sikkerhedsprocedurer; passende sikkerhedskopier af databasen og relaterede softwarefiler skal vedligeholdes. Databaser sikkerhedskopieres af databaseadministratoren i forbindelse med eventuelle opdateringer eller ændringer af databasen.
3.10 Investigator skal gøre undersøgelsesdata tilgængelige for monitoren og autoriserede repræsentanter. Investigator skal levere foreløbig undersøgelsesrapport med data hver tredje måned til den primære investigator. I henhold til krav kan undersøgelsesrapport og data leveres til Bangladesh Medical Research Council (BMRC) og Generaldirektoratet for Drug Administration (DGDA). Efterforskeren skal sikre pålideligheden og tilgængeligheden af kildedokumenter.
3.11 Overvågningsbesøg vil blive gennemført af principinvestigator, co-investigator samt repræsentanter i henhold til retningslinjer for god klinisk praksis (GCP).
3.12 For at bevare emnets fortrolighed er det kun et stedsnummer, emnenummer og emneinitialer, der identificerer alle forsøgspersoner på Case Records Forms (CRF) og anden dokumentation, der er indsendt til investigator. Yderligere emnefortrolighedsspørgsmål (hvis relevant) er dækket af aftalen om klinisk undersøgelse.
3.13 Alle optegnelser vil blive holdt hemmelige for PI, co-investigators, sponsor undtagen IEDCR-ansvarlige personer, der er ansvarlige. Prøver vil blive identificeret som kode/ID-nummer og dato hos IEDCR, før de sendes til BCTL/Contact Research Organisation Limited (CROL) 4. Til denne undersøgelse har det nævnte institut IEDCR/Bangladesh Clinical Trail Limited (BTCL)/CRO Ltd. udføre det kliniske forsøg for at finde ud af kittets effektivitet gennem deres eksisterende ressource. Udover det kan CRO administrere kemikaliet, reagenset og teknologien, hvis det er nødvendigt for undersøgelsen i henhold til MoU mellem finansieringsbureauer.
5. Interessekonflikt BRiCM er finansieringsorganet for det foreslåede COVID-19 RT-PCR-kit, er et lovpligtigt organ, der fungerer under administrativ kontrol af Ministeriet for Videnskab og Teknologi. Det er en forskningsorganisation og et referenceinstitut inden for kemiske målinger. Det er hverken en kommerciel virksomhed eller en overskudsgivende organisation. I henhold til forfatningsmæssige sanktioner er BRiCM's hovedansvar at videreføre forskning, der fører til sådan innovation, som vil tilføje værdi til regeringens indsats for at sikre befolkningens velfærd.
Undersøgelsestype
Undersøgelsestype
Tilmelding (Faktiske)
Tilmelding
Kontakter og lokationer
Studiesteder
-
-
-
Dhaka, Bangladesh, 1212
- Institute for Developing Science and Health Initiatives
-
-
Deltagelseskriterier
Berettigelseskriterier
Berettigelseskriterier
Aldre berettiget til at studere
Tager imod sunde frivillige
Køn, der er berettiget til at studere
Prøveudtagningsmetode
Studiebefolkning
Beskrivelse
Inklusionskriterier:
- Prøver med positive RT-PCR-resultater med Ct-værdi ≤35 for COVID-19-generne ved IEDCR vil blive udvalgt som COVID-19-positive.
- Prøver med negative RT-PCR-resultater uden amplifikation for COVID-19-generne ved IEDCR vil blive udvalgt som COVID-19.
Ekskluderingskriterier:
- Prøver med tvetydige/tvetydige RT-PCR-resultater med hensyn til sigmoidal kurve og Ct-værdi vil blive udelukket.
Studieplan
Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?
Design detaljer
Antal grupper/kohorter
Kohorter og interventioner
Gruppe / kohorteGruppe / kohorte |
|---|
|
Sager (aktuelle/friske)
Tilfælde (aktuelle/friske) er defineret som de prøver, der er blevet testet positive ved RT-PCR ved IEDCR som et almindeligt screeningprogram og ikke er blevet opbevaret i fryseren.
|
|
Sager (opbevares)
Tilfælde (opbevares) er defineret som de prøver, der er blevet testet positive ved RT-PCR ved IEDCR som et almindeligt screeningprogram og er blevet opbevaret i -80°C fryseren ved IEDCR.
|
|
Kontrol (aktuel/frisk)
Kontrol (aktuel/frisk) defineres som de prøver, der er blevet testet negative ved RT-PCR ved IEDCR som et almindeligt screeningsprogram og ikke er blevet opbevaret i fryseren.
|
|
Kontrol (gemt)
Kontrol (opbevares) er defineret som de prøver, der er blevet testet negative ved RT-PCR ved IEDCR som et almindeligt screeningsprogram og er blevet opbevaret i -80°C fryseren ved IEDCR
|
Hvad måler undersøgelsen?
Primære resultatmål
Primære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Ydeevneevaluering af BRiCM COVID-19 RT-PCR
Tidsramme: 1 måned
|
Bestem præstationsevaluering af BRiCM COVID-19 RT-PCR med ekstraheret viralt RNA ved at bruge standard viralt RNA-ekstraktionssæt til påvisning af SARS-CoV-2-virus i nasopharyngeale podningsprøver indsamlet i det landsdækkende COVID-19-screeningsprogram.
RNA-ekstraktion fra frisk nasopharyngeal podningsprøve i virustransportmediet (VTM) af COVID-19-patienter fra IEDCR (30 positive og 30 negative) Analyse af COVID-19 RNA-prøver ved hjælp af RT-PCR.
|
1 måned
|
Sekundære resultatmål
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Reducer prisen og øg effektiviteten til at opdage COVID-19 med BRiCM COVID-19 RT-PCR kit
Tidsramme: 1 måned
|
Lever lokalt producent COVID-19 revers transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) kit til regering.
og private hospitaler til diagnosticering af COVID-19 patienter.
RNA-ekstraktion fra frossen nasopharyngeal podningsprøve i viralt transportmedium (VTM) fra COVID-19-patienter fra IEDCR (30 positive og 30 negative) analyse af COVID-19 RNA-prøver ved hjælp af revers transkriptionspolymerasekædereaktion (RT-PCR).
|
1 måned
|
Samarbejdspartnere og efterforskere
Sponsor
Sponsor
Efterforskere
Efterforskere
- Ledende efterforsker: MAMUDUL HASAN RAZU, MSc, Scientific Officer
- Studiestol: MD MONIRUZZAMAN, BSc, Senior Scientific Officer
- Studiestol: PRANAB KARMAKER, Dr, Senior Scientific Officer
- Studiestol: ZABED BIN AHMED, MSc, Senior Scientific Officer
- Studiestol: MD IQBAL HOSSAIN, MSc, Scientific Officer
- Studiestol: MD FAZLE ALAM RABBI, Dr, Lecturer
Publikationer og nyttige links
Generelle publikationer
- Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977 Mar;33(1):159-74.
- Bedford J, Enria D, Giesecke J, Heymann DL, Ihekweazu C, Kobinger G, Lane HC, Memish Z, Oh MD, Sall AA, Schuchat A, Ungchusak K, Wieler LH; WHO Strategic and Technical Advisory Group for Infectious Hazards. COVID-19: towards controlling of a pandemic. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1015-1018. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30673-5. Epub 2020 Mar 17. No abstract available.
- Choi S, Ki M. Estimating the reproductive number and the outbreak size of COVID-19 in Korea. Epidemiol Health. 2020;42:e2020011. doi: 10.4178/epih.e2020011. Epub 2020 Mar 12.
- Ulloa S, Bravo C, Parra B, Ramirez E, Acevedo A, Fasce R, Fernandez J. A simple method for SARS-CoV-2 detection by rRT-PCR without the use of a commercial RNA extraction kit. J Virol Methods. 2020 Nov;285:113960. doi: 10.1016/j.jviromet.2020.113960. Epub 2020 Aug 22.
- Kudo E, Israelow B, Vogels CBF, Lu P, Wyllie AL, Tokuyama M, Venkataraman A, Brackney DE, Ott IM, Petrone ME, Earnest R, Lapidus S, Muenker MC, Moore AJ, Casanovas-Massana A; Yale IMPACT Research Team; Omer SB, Dela Cruz CS, Farhadian SF, Ko AI, Grubaugh ND, Iwasaki A. Detection of SARS-CoV-2 RNA by multiplex RT-qPCR. PLoS Biol. 2020 Oct 7;18(10):e3000867. doi: 10.1371/journal.pbio.3000867. eCollection 2020 Oct.
- Broughton JP, Deng X, Yu G, Fasching CL, Servellita V, Singh J, Miao X, Streithorst JA, Granados A, Sotomayor-Gonzalez A, Zorn K, Gopez A, Hsu E, Gu W, Miller S, Pan CY, Guevara H, Wadford DA, Chen JS, Chiu CY. CRISPR-Cas12-based detection of SARS-CoV-2. Nat Biotechnol. 2020 Jul;38(7):870-874. doi: 10.1038/s41587-020-0513-4. Epub 2020 Apr 16.
- Ali Z, Aman R, Mahas A, Rao GS, Tehseen M, Marsic T, Salunke R, Subudhi AK, Hala SM, Hamdan SM, Pain A, Alofi FS, Alsomali A, Hashem AM, Khogeer A, Almontashiri NAM, Abedalthagafi M, Hassan N, Mahfouz MM. iSCAN: An RT-LAMP-coupled CRISPR-Cas12 module for rapid, sensitive detection of SARS-CoV-2. Virus Res. 2020 Oct 15;288:198129. doi: 10.1016/j.virusres.2020.198129. Epub 2020 Aug 18.
- Chen Z, Zhang Z, Zhai X, Li Y, Lin L, Zhao H, Bian L, Li P, Yu L, Wu Y, Lin G. Rapid and Sensitive Detection of anti-SARS-CoV-2 IgG, Using Lanthanide-Doped Nanoparticles-Based Lateral Flow Immunoassay. Anal Chem. 2020 May 19;92(10):7226-7231. doi: 10.1021/acs.analchem.0c00784. Epub 2020 May 5.
- Joung J, Ladha A, Saito M, Kim NG, Woolley AE, Segel M, Barretto RPJ, Ranu A, Macrae RK, Faure G, Ioannidi EI, Krajeski RN, Bruneau R, Huang MW, Yu XG, Li JZ, Walker BD, Hung DT, Greninger AL, Jerome KR, Gootenberg JS, Abudayyeh OO, Zhang F. Detection of SARS-CoV-2 with SHERLOCK One-Pot Testing. N Engl J Med. 2020 Oct 8;383(15):1492-1494. doi: 10.1056/NEJMc2026172. Epub 2020 Sep 16. No abstract available.
- Chen Z, Wu Q, Chen J, Ni X, Dai J. A DNA Aptamer Based Method for Detection of SARS-CoV-2 Nucleocapsid Protein. Virol Sin. 2020 Jun;35(3):351-354. doi: 10.1007/s12250-020-00236-z. Epub 2020 May 25. No abstract available.
- Zhen W, Berry GJ. Development of a New Multiplex Real-Time RT-PCR Assay for Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) Detection. J Mol Diagn. 2020 Dec;22(12):1367-1372. doi: 10.1016/j.jmoldx.2020.09.004. Epub 2020 Sep 19.
- Khan S, Tombuloglu H, Hassanein SE, Rehman S, Bozkurt A, Cevik E, Abdel-Ghany S, Nabi G, Ali A, Sabit H. Coronavirus diseases 2019: Current biological situation and potential therapeutic perspective. Eur J Pharmacol. 2020 Nov 5;886:173447. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173447. Epub 2020 Aug 5.
- Yan C, Cui J, Huang L, Du B, Chen L, Xue G, Li S, Zhang W, Zhao L, Sun Y, Yao H, Li N, Zhao H, Feng Y, Liu S, Zhang Q, Liu D, Yuan J. Rapid and visual detection of 2019 novel coronavirus (SARS-CoV-2) by a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay. Clin Microbiol Infect. 2020 Jun;26(6):773-779. doi: 10.1016/j.cmi.2020.04.001. Epub 2020 Apr 8.
- Moran A, Beavis KG, Matushek SM, Ciaglia C, Francois N, Tesic V, Love N. Detection of SARS-CoV-2 by Use of the Cepheid Xpert Xpress SARS-CoV-2 and Roche cobas SARS-CoV-2 Assays. J Clin Microbiol. 2020 Jul 23;58(8):e00772-20. doi: 10.1128/JCM.00772-20. Print 2020 Jul 23. No abstract available.
Datoer for undersøgelser
Studer store datoer
Studiestart (Faktiske)
Studiestart
Primær færdiggørelse (Faktiske)
Primær færdiggørelse
Studieafslutning (Faktiske)
Studieafslutning
Datoer for studieregistrering
Først indsendt
Først indsendt
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først opslået (Faktiske)
Først opslået
Opdateringer af undersøgelsesjournaler
Sidste opdatering sendt (Faktiske)
Sidste opdatering sendt
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidst verificeret
Sidst verificeret
Mere information
Begreber relateret til denne undersøgelse
Yderligere relevante MeSH-vilkår
Andre undersøgelses-id-numre
Andre undersøgelses-id-numre
- BANGASURE RT-PCR Kit
Plan for individuelle deltagerdata (IPD)
Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?
IPD-planbeskrivelse
Lægemiddel- og udstyrsoplysninger, undersøgelsesdokumenter
Studerer et amerikansk FDA-reguleret lægemiddelprodukt
Studerer et amerikansk FDA-reguleret enhedsprodukt
Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .