Wirksamkeit eines Multiplex BangasureTM RT-PCR-Kits zum Nachweis von COVID-19 (COVID-19)
Entwicklung eines Multiplex BangasureTM RT-PCR Kits zum Nachweis von SARS-Corona Virus-2
Der Ausbruch des Coronavirus (CoV)-2 des schweren akuten respiratorischen Syndroms (SARS) nimmt weltweit weiter zu. Um die Übertragung der Coronavirus-Krankheit 2019 (COVID-19) zu kontrollieren, ist die Diagnose ein sehr wichtiger Schritt, der bei der Quarantäne, der Isolierung der infizierten Person und auch bei der Kontaktverfolgung helfen würde. Unter den verschiedenen Techniken wird am häufigsten die Reverse-Transkription-Polymerase-Kettenreaktion (rRT-PCR) in Echtzeit verwendet und gilt als Goldstandardmethode zum Nachweis viraler Nukleinsäuren gemäß der Weltgesundheitsorganisation (WHO) und dem Center for Diseases Control (CDC), USA. Mögliche falsch-negative und falsch-positive Ergebnisse führen jedoch zu irreführenden Konsequenzen, was eine Verbesserung bestehender Methoden erforderlich macht. Daher benötigen Ermittler ein robustes und zuverlässiges PCR-Kit, um verschiedene Arten von Varianten des SARS-CoV-2-Virus nachzuweisen, seine Übertragbarkeit zu verringern und einen vorbeugenden Managementplan zu erstellen. Abgesehen davon sind die Ermittler zur Bewältigung der zunehmenden Anzahl von Tests hauptsächlich auf importierte Testkits angewiesen, was in dieser Pandemiesituation sehr schwierig und kostspielig zu sein scheint. Daher kann sich die Virulenz des SARS-CoV-2-Virus aufgrund von Mutationen schnell ändern, und das Land wird zu einem Hotspot. Daher ist ein Gennachweis-RT-PCR-Kit Zeitbedarf. Unter diesem Gesichtspunkt ist das Ziel des Forschers die Entwicklung einer validierten qualitativen Multiplex-rRT-PCR-Diagnosemethode, die auf zwei virale Gene E (Hüllprotein) und N (Nucleocapsid-Gen) abzielt, gemäß den Richtlinien der CDC, USA für die Entwicklung von RT-PCR Kit und gleichzeitig eine humane Gen-RNase P als interne Kontrolle.
Dies ist eine Fall-Kontroll-Studie, in der 120 Proben (60 COVID-19-positiv und 60 COVID-19-negativ, sowohl frisch als auch gefroren) des Institute of Epidemiology, Disease Control and Research (IEDCR) analysiert werden. Diese Probe wird verblindet, bevor sie an NILMRC/Contact ROL/ Bangladesh Clinical Trail Limited (BCTL), Dhaka, Bangladesch, für das RT-PCR-Kit des Bangladesh Reference Institute for Chemical Measurements (BRiCM) geliefert wird. Die erforderliche interne Validierung wird auch gemäß den Richtlinien des International Council for Harmonisation (ICH) und der FDA durchgeführt, und auch die externe Validierung wird in verschiedenen vom Generaldirektor des Gesundheitsdienstes (DGHS) in Bangladesch zugelassenen COVID-19-Diagnoselabors durchgeführt. Die Daten werden per Computer mit der Software Statistical Package for the Social Sciences (SPSS) analysiert und gemäß den Anforderungen in der Häufigkeitstabelle, Grafik und Diagramm dargestellt.
Studienübersicht
Status
Status
Bedingungen
Bedingungen
Detaillierte Beschreibung
Einführung:
Die Corona-Virus-COVID-19-Pandemie ist die bestimmende globale Gesundheitskrise unserer Zeit und die größte Herausforderung seit dem Zweiten Weltkrieg. Die Pandemie ist viel mehr als eine Gesundheitskrise; es ist auch eine beispiellose sozioökonomische Krise. Seit seiner Identifizierung in der Region Wuhan, China, hat sich das Virus nicht nur in 213 Ländern/Territorien mit 209 Millionen Fällen und 4,39 Millionen weltweit verbreitet, sondern könnte nach Schätzungen der Internationalen Arbeitsorganisation auch 400 Millionen Menschen arbeitslos machen.
Um die Ausbreitung von Krankheiten einzudämmen, wurden in verschiedenen Regionen der Welt multidisziplinäre Strategien eingeführt, darunter die Umsetzung sozialer Distanzierung, die Aufrechterhaltung der persönlichen Hygiene, die Kontaktverfolgung und die Umsetzung von Quarantäne, Reisebeschränkungen und Ausgangssperren. Eine weithin akzeptierte Methode ist das Testen auf SARS-CoV-2, wobei typischerweise Nasen-Rachen-Abstrichproben verwendet werden. Positiv getestete Patienten erfordern ein angemessenes klinisches Management, entweder durch wirksame Isolierung oder Quarantäne zu Hause bei leichten Symptomen oder innerhalb von Gesundheitseinrichtungen bei mittelschweren bis schweren Symptomen. Darüber hinaus liefern groß angelegte Tests aussagekräftigere epidemiologische Daten für die Ausarbeitung von Richtlinien zur Überwachung und Bekämpfung von Krankheiten. Viele Ansätze wurden vorgeschlagen, um das SARS-CoV-2-Virus in Nasen-Rachen-Flüssigkeiten nachzuweisen, wie z , schleifenvermittelte isotherme Amplifikation (LAMP) usw. Unter diesen Methoden sind auf Nukleinsäureamplifikation basierende Tests die gängigsten für die Diagnose von SARS-CoV-2.
Darüber hinaus schlägt die US CDC ein Protokoll zum Nachweis von SARS-CoV-2 vor, das auf der Amplifikation von zwei Regionen des Nukleokapsid-Gens, nämlich N1 und N2, und einem menschlichen internen Kontrollgen RNase P (RP) basiert. Zusätzlich zu diesen Strategien sind die Bemühungen zur Entwicklung von SARS-CoV-2-Nachweismethoden mit hoher Effizienz und Genauigkeit, mit weniger Reaktionszeit und Aufwand, noch im Gange.
Obwohl Tests als Goldstandard für den SARS-CoV-2-Nachweis angesehen werden, hinken sie in vielen Ländern aufgrund verschiedener Faktoren hinterher, von denen die wichtigsten Probleme in der Lieferkette mit einem Mangel an Reagenzien und geeigneten Testkits sind. Daher bleiben viele Patienten (sowohl symptomatisch als auch asymptomatisch) ungetestet und tragen daher möglicherweise zur Verbreitung des Virus in der Gemeinschaft bei.
Wenn Bangladesch seine eigenen RT-PCR-Kits herstellen kann, die in Bezug auf Empfindlichkeit, Spezifität usw. von nicht geringerer Qualität sind, würde dies den Mangel an RT-PCR-Kits mildern, da die Ermittler vollständig von importierten Testkits abhängig sind und auch Devisen sparen. Darüber hinaus sind RT-PCR-Testkits sehr temperaturempfindlich und müssen die Kühlkette für ihre Qualität aufrechterhalten, was durch die Entwicklung lokaler RT-PCR-Kits gemildert werden kann. Darüber hinaus wurden viele Varianten von SARS-CoV-2 aufgrund von Mutationen entwickelt, die eine höhere Virulenz und eine hohe Übertragungsrate gezeigt haben. Daher kann die Entwicklung eines neuen RT-PCR-Kits, das neuere Stämme erkennen kann, äußerst hilfreich sein.
Das Ziel der Ermittler ist es also, das robuste RT-PCR-Kit mit drei nachweisbaren Genen zu entwickeln, das das erste Land sein wird und zuverlässige Ergebnisse für verschiedene Arten von Varianten des SARS-CoV-2-Virus liefert, um seine Übertragbarkeit zu verringern und einen vorbeugenden Managementplan zu erstellen 2. Ziele von die Studium:
- Allgemeine Ziele: Primäre Ziele sind die Entwicklung einer Multiplex-Echtzeit-Reverse-Transkription-Polymerase-Kettenreaktion (rRT-PCR) zum Nachweis von SARS-CoV-2.
Sekundäre Ziele: Für die beste RT-PCR-Leistung sollte die Kombination von E- und N-Genzielen optimiert werden.
3. Methodik: 3.1. Art und Zweck der Studie: Dies ist eine Fallkontroll- und Beobachtungsstudie, in der zwei bestehende Gruppen von gefrorenen und frischen Proben identifiziert und verglichen werden.
3.2. Studienort:
- Institut für Epidemiologie, Seuchenkontrolle und -forschung (IEDCR)
- MS. Klinische Forschungsorganisation GmbH 3.3. Probenahmestelle(n):
- Institute Epidemiology Disease Control and Research (IEDCR) oder
- National Institute of Laboratory Medicine & Referral Center (NILMRC), Dhaka, Bangladesch.
3.4. Studiendauer: • 3 Monate (November 2021 bis Januar 2022) nach Erhalt der ethischen Freigabe vom Bangladesh Medical Research Council.
3.5. Studienpopulation/Probenauswahl 3.5.1 CRO erhält Testproben von IEDCR. IEDCR und BCTL/CROL als CRO haben eine Absichtserklärung (MoU) für verschiedene gemeinsame Forschungsarbeiten. Daher erhält NILMRC/BCTL/CROL insgesamt 120 Proben von IEDCR für die Bewertung der RT-PCR-Kit-Effizienz. Von den 120 Proben werden 60 Proben (30 COVID-19-bekannte positive und 30 COVID-19-negative Proben) gelagert, die bei -80 °C in Laborgefrierschränken in IEDCR-Einrichtungen aufbewahrt wurden, und weitere 60 frische Proben (30 COVID-19-positiv und 30 COVID-19-negative Proben), die am IEDCR getestet werden. Proben mit abweichenden Ergebnissen werden vor dem Testen mit dem BRiCM RT PCR-Kit zurückgewiesen. Das heißt, dass möglicherweise mehr als 120 identifizierte Proben von IEDCR benötigt werden, um sie mit importierten RT-PCR-Kits und Extraktionskits bei BCTL/CROL zu analysieren. So werden 120 Proben für die Leistungsbewertung des BRiCM RT-PCR-Kits ausgewählt.
3.5.2 Um Voreingenommenheit und Interessenkonflikte zu vermeiden, werden Sponsor und PI/Ko-Untersucher gegenüber der Proben-ID und dem positiven/negativen Status der Proben und klinischen Aufzeichnungen der Patienten verblindet. Der positive/negative Status sowohl gelagerter als auch frischer Proben wird bei IEDCR identifiziert, bevor sie an BCTL/CROL gesendet werden. Das heißt, das BCTL/CROL-Personal wird vor der Analyse auch hinsichtlich des Musteridentitätsdokuments (ID) und des Positiv-Negativ-/Negativstatus geblendet. Schließlich sendet der CRO-Leiter das Leistungsbewertungszertifikat an den PI oder Sponsor.
3.5.3. Statistische Basis des Stichprobenumfangs:
Formeln:
Die Studie wird an 120 Teilnehmern durchgeführt (60 gespeicherte bekannte positive und negative und 60 frische bekannte positive und negative). Um die gewünschte absolute Genauigkeit (n) bei der Schätzung der Effizienz der RT-PCR zu erreichen, wird die minimale Stichprobengröße nach der diskreten Bernoulli-Wahrscheinlichkeitsfunktion wie folgt geschätzt:
Alfa = 5 % D = absolute Genauigkeit (%) mit 95 % Vertrauen. Gewünschte absolute Genauigkeit n D Alfa=5 % Z=1,96 10 30,99 % n D= (1,96)/(2* Quadratwurzel (SQRT) (n)) 20 21,91 % 100 9,80 % 30 17,89 % 120 8,94 % 100 9,80 % 200 6,93 % 300 5,66 % 400 4,90 % 1000 3,10 % 10000 0,98 % 20000 0,69 % 30000 0,57 % 100000 0,3 % Gene bei IEDCR werden als COVID-19-positiv ausgewählt. Proben mit negativen RT-PCR-Ergebnissen ohne Amplifikation der COVID-19-Gene bei IEDCR werden als COVID-19 ausgewählt.
- Geschlecht: Alle
- Alter: 5 bis 70 Jahre (Kind, Erwachsener, älterer Erwachsener) 7.8.2. Ausschlusskriterien
- Proben mit zweideutigen/mehrdeutigen RT-PCR-Ergebnissen in Bezug auf die Sigmoidalkurve und den Ct-Wert werden ausgeschlossen.
Die Zustimmung der Patienten ist nicht erforderlich, da das CRO die Proben von IEDCR gemäß der Absichtserklärung mit IEDCR erhält. Es besteht also keine Anforderung an die Registrierung und Zustimmung des Patienten und CRF von der CRO-Seite.
3.7 Datenerfassungsverfahren: COVID-19-positive Proben werden durch Laborbefunde positiver RT-PCR-Ergebnisse für die virale RNA bestätigt.
3.8 Datenanalyse: Die Sensitivität, Spezifität, der positive Vorhersagewert und der negative Vorhersagewert des BRiCM-COVID-19-Echtzeit-RT-PCR-Kits werden bestimmt. Der Chi-Quadrat-Test (zweiseitig) wird zum Vergleich kategorialer Variablen durchgeführt. Ein p-Wert von ≤ 0,05 wird als Grad der signifikanten Assoziation betrachtet. Neben Sensitivität, Spezifität, positivem Vorhersagewert und negativem Vorhersagewert werden auch Kappa-Koeffizient, positives Likelihood-Verhältnis und negatives Likelihood-Verhältnis berechnet.
3.9 Die Datenbank ist durch etablierte Sicherheitsverfahren vor unbefugtem Zugriff geschützt; geeignete Sicherungskopien der Datenbank und zugehöriger Softwaredateien sind aufzubewahren. Datenbanken werden vom Datenbankadministrator in Verbindung mit Aktualisierungen oder Änderungen an der Datenbank gesichert.
3.10 Der Prüfarzt muss die Studiendaten dem Monitor und autorisierten Vertretern zugänglich machen. Der Prüfarzt muss dem Hauptprüfarzt alle drei Monate einen Zwischenstudienbericht mit Daten vorlegen. Gemäß den Anforderungen können Studienberichte und Daten dem Bangladesh Medical Research Council (BMRC) und der Generaldirektion der Arzneimittelverwaltung (DGDA) zur Verfügung gestellt werden. Der Ermittler muss die Zuverlässigkeit und Verfügbarkeit von Quelldokumenten sicherstellen.
3.11 Überwachungsbesuche werden vom Hauptprüfarzt, dem Co-Prüfarzt sowie den Vertretern gemäß den Leitlinien für gute klinische Praxis (GCP) durchgeführt.
3.12 Um die Vertraulichkeit der Versuchspersonen zu wahren, werden alle Studienteilnehmer auf Fallaufzeichnungsformularen (CRF) und anderen Unterlagen, die dem Prüfer vorgelegt werden, nur durch eine Standortnummer, eine Versuchspersonennummer und die Initialen der Versuchspersonen identifiziert. Zusätzliche Themen bezüglich der Vertraulichkeit (falls zutreffend) werden in der klinischen Studienvereinbarung behandelt.
3.13 Alle Aufzeichnungen werden gegenüber dem PI, den Co-Ermittlern und dem Sponsor geheim gehalten, mit Ausnahme der verantwortlichen IEDCR-Verantwortlichen. Proben werden bei IEDCR mit Code/ID-Nummer und Datum identifiziert, bevor sie an BCTL/Contact Research Organization Limited (CROL) 4 gesendet werden. Für diese Studie ist das genannte Institut IEDCR/Bangladesh Clinical Trail Limited (BTCL)/CRO Ltd. in der Lage, dies zu tun Führen Sie die klinische Studie durch, um die Wirksamkeit des Kits anhand ihrer vorhandenen Ressourcen herauszufinden. Darüber hinaus kann CRO die Chemikalien, Reagenzien und Technologien verwalten, die für die Studie gemäß dem MoU zwischen den Finanzierungsagenturen benötigt werden.
5. Interessenkonflikt BRiCM ist die Finanzierungsstelle des vorgeschlagenen COVID-19 RT-PCR-Kits und eine Körperschaft des öffentlichen Rechts, die unter der administrativen Kontrolle des Ministeriums für Wissenschaft und Technologie steht. Es ist eine Forschungsorganisation und ein Referenzinstitut im Bereich der chemischen Messtechnik. Sie ist weder ein Handelsunternehmen noch eine gewinnorientierte Organisation. Gemäß der verfassungsrechtlichen Sanktion besteht die Hauptverantwortung von BRiCM darin, Forschung zu betreiben, die zu solchen Innovationen führt, die einen Mehrwert für die Regierungsbemühungen zur Gewährleistung des Wohlergehens der Menschen darstellen.
Studientyp
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Einschreibung
Kontakte und Standorte
Studienorte
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Dhaka, Bangladesch, 1212
- Institute for Developing Science and Health Initiatives
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Probenahmeverfahren
Studienpopulation
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Proben mit positiven RT-PCR-Ergebnissen mit einem Ct-Wert ≤ 35 für die COVID-19-Gene bei IEDCR werden als COVID-19-positiv ausgewählt.
- Proben mit negativen RT-PCR-Ergebnissen ohne Amplifikation der COVID-19-Gene bei IEDCR werden als COVID-19 ausgewählt.
Ausschlusskriterien:
- Proben mit zweideutigen/mehrdeutigen RT-PCR-Ergebnissen in Bezug auf die Sigmoidalkurve und den Ct-Wert werden ausgeschlossen.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
Anzahl der Gruppen / Kohorten
Kohorten und Interventionen
Gruppe / KohorteGruppe / Kohorte |
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Fälle (Aktuell/frisch)
Fälle (aktuell/frisch) sind definiert als solche Proben, die durch RT-PCR am IEDCR im Rahmen eines regulären Screening-Programms positiv getestet und nicht im Gefrierschrank gelagert wurden.
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Fälle (gespeichert)
Fälle (gelagert) sind definiert als solche Proben, die durch RT-PCR am IEDCR als reguläres Screening-Programm positiv getestet und im -80 °C-Gefrierschrank am IEDCR gelagert wurden.
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Kontrolle (aktuell/frisch)
Kontrollen (aktuell/frisch) sind als solche Proben definiert, die durch RT-PCR bei IEDCR im Rahmen eines regulären Screening-Programms negativ getestet und nicht im Gefrierschrank gelagert wurden.
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Kontrolle (gespeichert)
Kontrollen (gelagert) sind als solche Proben definiert, die durch RT-PCR bei IEDCR als reguläres Screening-Programm negativ getestet und im -80 °C-Gefrierschrank bei IEDCR gelagert wurden
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Leistungsbewertung von BRiCM COVID-19 RT-PCR
Zeitfenster: 1 Monat
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Bestimmen Sie die Leistungsbewertung von BRiCM COVID-19 RT-PCR mit extrahierter viraler RNA unter Verwendung eines standardmäßigen viralen RNA-Extraktionskits zum Nachweis des SARS-CoV-2-Virus in Nasen-Rachen-Abstrichproben, die im landesweiten COVID-19-Screening-Programm gesammelt wurden.
RNA-Extraktion aus frischen Nasopharyngeal-Abstrichproben im Virustransportmedium (VTM) von COVID-19-Patienten aus IEDCR (30 positiv und 30 negativ) Analyse von COVID-19-RNA-Proben mittels RT-PCR.
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1 Monat
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Sekundäre Ergebnismessungen
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Reduzieren Sie den Preis und steigern Sie die Effizienz beim Nachweis von COVID-19 mit dem BRiCM COVID-19 RT-PCR-Kit
Zeitfenster: 1 Monat
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Bereitstellung des COVID-19-Reverse-Transkription-Polymerase-Kettenreaktionskits (RT-PCR) des lokalen Herstellers an die Regierung.
und private Krankenhäuser zur Diagnose von COVID-19-Patienten.
RNA-Extraktion aus gefrorener Nasopharynx-Abstrichprobe in Virustransportmedium (VTM) von COVID-19-Patienten aus IEDCR-Analyse (30 positive und 30 negative) von COVID-19-RNA-Proben unter Verwendung von Reverse-Transkriptase-Polymerase-Kettenreaktion (RT-PCR).
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1 Monat
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Sponsor
Ermittler
Ermittler
- Hauptermittler: MAMUDUL HASAN RAZU, MSc, Scientific Officer
- Studienstuhl: MD MONIRUZZAMAN, BSc, Senior Scientific Officer
- Studienstuhl: PRANAB KARMAKER, Dr, Senior Scientific Officer
- Studienstuhl: ZABED BIN AHMED, MSc, Senior Scientific Officer
- Studienstuhl: MD IQBAL HOSSAIN, MSc, Scientific Officer
- Studienstuhl: MD FAZLE ALAM RABBI, Dr, Lecturer
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977 Mar;33(1):159-74.
- Bedford J, Enria D, Giesecke J, Heymann DL, Ihekweazu C, Kobinger G, Lane HC, Memish Z, Oh MD, Sall AA, Schuchat A, Ungchusak K, Wieler LH; WHO Strategic and Technical Advisory Group for Infectious Hazards. COVID-19: towards controlling of a pandemic. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1015-1018. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30673-5. Epub 2020 Mar 17. No abstract available.
- Choi S, Ki M. Estimating the reproductive number and the outbreak size of COVID-19 in Korea. Epidemiol Health. 2020;42:e2020011. doi: 10.4178/epih.e2020011. Epub 2020 Mar 12.
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- Kudo E, Israelow B, Vogels CBF, Lu P, Wyllie AL, Tokuyama M, Venkataraman A, Brackney DE, Ott IM, Petrone ME, Earnest R, Lapidus S, Muenker MC, Moore AJ, Casanovas-Massana A; Yale IMPACT Research Team; Omer SB, Dela Cruz CS, Farhadian SF, Ko AI, Grubaugh ND, Iwasaki A. Detection of SARS-CoV-2 RNA by multiplex RT-qPCR. PLoS Biol. 2020 Oct 7;18(10):e3000867. doi: 10.1371/journal.pbio.3000867. eCollection 2020 Oct.
- Broughton JP, Deng X, Yu G, Fasching CL, Servellita V, Singh J, Miao X, Streithorst JA, Granados A, Sotomayor-Gonzalez A, Zorn K, Gopez A, Hsu E, Gu W, Miller S, Pan CY, Guevara H, Wadford DA, Chen JS, Chiu CY. CRISPR-Cas12-based detection of SARS-CoV-2. Nat Biotechnol. 2020 Jul;38(7):870-874. doi: 10.1038/s41587-020-0513-4. Epub 2020 Apr 16.
- Ali Z, Aman R, Mahas A, Rao GS, Tehseen M, Marsic T, Salunke R, Subudhi AK, Hala SM, Hamdan SM, Pain A, Alofi FS, Alsomali A, Hashem AM, Khogeer A, Almontashiri NAM, Abedalthagafi M, Hassan N, Mahfouz MM. iSCAN: An RT-LAMP-coupled CRISPR-Cas12 module for rapid, sensitive detection of SARS-CoV-2. Virus Res. 2020 Oct 15;288:198129. doi: 10.1016/j.virusres.2020.198129. Epub 2020 Aug 18.
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- Joung J, Ladha A, Saito M, Kim NG, Woolley AE, Segel M, Barretto RPJ, Ranu A, Macrae RK, Faure G, Ioannidi EI, Krajeski RN, Bruneau R, Huang MW, Yu XG, Li JZ, Walker BD, Hung DT, Greninger AL, Jerome KR, Gootenberg JS, Abudayyeh OO, Zhang F. Detection of SARS-CoV-2 with SHERLOCK One-Pot Testing. N Engl J Med. 2020 Oct 8;383(15):1492-1494. doi: 10.1056/NEJMc2026172. Epub 2020 Sep 16. No abstract available.
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- Zhen W, Berry GJ. Development of a New Multiplex Real-Time RT-PCR Assay for Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) Detection. J Mol Diagn. 2020 Dec;22(12):1367-1372. doi: 10.1016/j.jmoldx.2020.09.004. Epub 2020 Sep 19.
- Khan S, Tombuloglu H, Hassanein SE, Rehman S, Bozkurt A, Cevik E, Abdel-Ghany S, Nabi G, Ali A, Sabit H. Coronavirus diseases 2019: Current biological situation and potential therapeutic perspective. Eur J Pharmacol. 2020 Nov 5;886:173447. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173447. Epub 2020 Aug 5.
- Yan C, Cui J, Huang L, Du B, Chen L, Xue G, Li S, Zhang W, Zhao L, Sun Y, Yao H, Li N, Zhao H, Feng Y, Liu S, Zhang Q, Liu D, Yuan J. Rapid and visual detection of 2019 novel coronavirus (SARS-CoV-2) by a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay. Clin Microbiol Infect. 2020 Jun;26(6):773-779. doi: 10.1016/j.cmi.2020.04.001. Epub 2020 Apr 8.
- Moran A, Beavis KG, Matushek SM, Ciaglia C, Francois N, Tesic V, Love N. Detection of SARS-CoV-2 by Use of the Cepheid Xpert Xpress SARS-CoV-2 and Roche cobas SARS-CoV-2 Assays. J Clin Microbiol. 2020 Jul 23;58(8):e00772-20. doi: 10.1128/JCM.00772-20. Print 2020 Jul 23. No abstract available.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Studienbeginn
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Primärer Abschluss
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Zuerst gepostet
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes Update gepostet
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
Andere Studien-ID-Nummern
- BANGASURE RT-PCR Kit
Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)
Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?
Beschreibung des IPD-Plans
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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