Pulmonal immuncelle-mikrobiom interaktioner i den sunde lunge (ILLUMINA-2)
Pulmonal immuncelle-mikrobiom-interaktioner i den sunde lunge: ILLUMINA-2-undersøgelsen
Det overordnede mål er at tilvejebringe et normalt materiale til sammensætningen og den rumlige heterogenitet af følgende i den raske lunge: i) immuncellepopulationer og deres aktiveringsmønstre, ii) det omgivende cytokin-kemokinmiljø, herunder trans-kompartmentelle fluxer af disse mediatorer mellem lungen og blodbanen, og iii) lungemikrobiomet.
Hovedhypoteser:
- Absolutte og relative immuncelletal i bronchoalveolær lavagevæske (BALF) svarer til dem, der tidligere er rapporteret ved andre metoder6,7.
- Ingen trans-kompartmental flux af cytokiner mellem lungerne og blodbanen er til stede, men cytokinkoncentrationer (navnlig IL-6 og IL-8) varierer med immuncelle-mikrobiomsammensætningen.
- Immuncelle (hovedsageligt T-celle) aktivering, differentiering og genekspressionsmønstre forventes at være forskellige mellem blod og BALF på en måde, der afhænger af den regionale mangfoldighed af lungemikrobiomet.
Studieoversigt
Status
Status
Betingelser
Betingelser
Intervention / Behandling
Intervention / Behandling
Detaljeret beskrivelse
Corona-sygdommen 2019-pandemien, forårsaget af alvorligt akut respiratorisk syndrom coronavirus 2, har medført flere undersøgelser af det lokale pulmonale immunsystem, som indtil for ganske nylig i vid udstrækning var et terra incognita. Med disse nye metoder er tilsyneladende fundamentale aspekter af lungesygdomme blevet afdækket, herunder pulmonal hyperinflammation. Der er dog i øjeblikket meget lidt kendt om sammensætningen af den normale immuncellepopulation i den menneskelige lunge, herunder dens samspil med det pulmonale mikrobiom, det vil sige den kommensale mikrobiota af interagerende bakterier og svampe, der findes i den raske lunge
Overordnet design: Hos 50 patienter (25 mænd, 25 kvinder), intuberet til elektiv kirurgi i generel anestesi, opnås et endotrakealt aspirat og BAL-væske (BALF) fra separate lungesegmenter. Endvidere vil en mund- og næsepodning og blodprøver blive indsamlet. Dette vil ske umiddelbart efter intubation.
Følgende hentes fra patientens elektroniske journal: diagnosekoder og medicin (type og dosering), rygehistorie (nuværende/tidligere/aldrig ryger; pakkeår), operationstype; endvidere screenes journalen for eventuelle udelukkelseskriterier
Blodprøver udtages fra patientens perifere venekateter (indsat til kliniske formål) umiddelbart før BALF-opsamling.
Bronkoskopi med BALF-indsamling: Denne procedure udføres på en standardiseret måde i henhold til gældende kliniske retningslinjer. Umiddelbart før proceduren opnås en oral podning, næsepodning og en endotracheal aspirat (ETA). FIO2 øges derefter til 1,0, og bronkoskopiproceduren udføres ved hjælp af et engangsvideoskop med en ydre diameter på 5,0 mm). Tre på hinanden følgende 50 ml alikvoter af forvarmet (37°C) isotonisk saltvand inddryppes i det mediale segment af højre midterlap, aspireres straks med lavt negativt sugetryk (< 100 cm H2O) og samles i en steril glasbeholder på is. for at få et BALF-eksemplar.
Derefter udføres en mini-BAL i den øvre og nedre lap af højre lunge med en enkelt installation af 20 ml isotonisk saltvand i hver lap med øjeblikkelig aspiration i en steril beholder.
Målinger: Sammensætningen af immuncellepopulationen samt funktionen og differentieringen af forskellige cellelinjer vil blive undersøgt ved enkeltcellet RNA-sekventering (scRNA-seq) på udvalgte immunceller fra BALF, ETA og blod, og dette vil suppleres med bulk RNA-sekventering med prøvestregkodning og multipleksing, hvilket giver et detaljeret ekspressionsmønster af alle prøver.
Sammensætningen af mikrobiomet i BALF, ETA og orale podninger vil blive vurderet ved målrettet amplikonsekventering af de hypervariable regioner 1 til 3 af 16S-underenheden af ribosomalt RNA-gen for bakterier.
Statistiske analyser: udføres ved hjælp af R statistisk software version 4.1.1 (R Project for Statistical Computing) i RStudio statistisk software version 1.4.1717 (RStudio), og p<0,05 anses for statistisk signifikante. Inspektion af normalitet og varianshomogenitet vil blive udført ved at skabe qq-plot og histogrammer. De statistiske inferensværktøjer SPIEC-EASI og HeatMaps vil blive brugt, og baseret på korrelationsanalyser vil hovedkomponentanalyser, herunder ikke-hierarkisk klyngeanalyse, blive anvendt til at identificere karaktertræk.
Undersøgelsestype
Undersøgelsestype
Tilmelding (Anslået)
Tilmelding
Kontakter og lokationer
Studiekontakt
Studiekontakt
- Navn: Ronni Plovsing, MD, PhD
- Telefonnummer: +45386220721
- E-mail: ronni.thermann.reitz.plovsing.01@regionh.dk
Undersøgelse Kontakt Backup
- Navn: Katrine Schneider, MD
- Telefonnummer: +4528118147
- E-mail: katrine.schneider@regionh.dk
Studiesteder
-
-
-
Hvidovre, Danmark, 2650
- Rekruttering
- Hvidovre Hospital, University of Copenhagen
-
Kontakt:
- Katrine Schneider, MD
- Telefonnummer: +4521524590
- E-mail: katrine.schneider@regionh.dk
-
Kontakt:
- Ronni Plovsing, MD, phD
- E-mail: ronni.thermann.reitz.plovsing.01@regionh.dk
-
-
Deltagelseskriterier
Berettigelseskriterier
Berettigelseskriterier
Aldre berettiget til at studere
- Voksen
- Ældre voksen
Tager imod sunde frivillige
Prøveudtagningsmetode
Studiebefolkning
Beskrivelse
Inklusionskriterier:
- Mænd og kvinder
- Alder 40 til 75
Ekskluderingskriterier:
- Immundefekt
- Lungesygdom
- Aktiv kræft eller infektion
Absolutte kontraindikationer for bronkoskopi
- Ubehandlet malign arytmi
- Dokumenteret eller mistænkt intrakraniel hypertension (intrakranielt tryk ≥ > 15 mmHg)
- En-lunge ventilation
- Alvorlig koagulopati
Studieplan
Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?
Design detaljer
Antal grupper/kohorter
Kohorter og interventioner
Gruppe / kohorteGruppe / kohorte |
Intervention / BehandlingIntervention / Behandling |
|---|---|
|
Kvinder
|
Bronchoalveolær skylning i midterlappen af højre lunge og en minibronchoalveolær skylning i øvre og nedre lap af højre lunge
|
|
Mænd
|
Bronchoalveolær skylning i midterlappen af højre lunge og en minibronchoalveolær skylning i øvre og nedre lap af højre lunge
|
Hvad måler undersøgelsen?
Primære resultatmål
Primære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Lungemikrobiom
Tidsramme: Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
16S ribosomalt RNA (rRNA) og 18S rRNA PCR til identifikation af bakteriel eller svampepatogen i bronkoalveolær skyllevæske
|
Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
|
Lymfocytpopulationer
Tidsramme: Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
Cellepopulationer og subpopulationer evalueret ved 10 farvet flowcytometri (B-celler, T-celler, TCR-undergrupper, Tregs/Th17, dendritiske celler, myeloidceller og neutrofiler) i bronkoalveolær skyllevæske og blod
|
Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
Sekundære resultatmål
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Antal og karakteriseringer af mikroorganismer
Tidsramme: Op til 12 uger
|
Vækst af patogene mikroorganismer i kropsvæsker (f.
urin, blod, bronkoalveolær skyllevæske) i mikrobiologiske analyser
|
Op til 12 uger
|
|
Celledifferentialtællinger og cytomorfologiske analyser af BALF
Tidsramme: Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
|
|
Trans-kompartmentelle fluxer
Tidsramme: Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
(beregnet ud fra plasma- og urea-justeret BAL)
|
Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
|
Hvide blodlegemer tæller
Tidsramme: Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
Totalt antal hvide blodlegemer, neutrocytter, lymfocytter og monocytter i bronkoalveolær skyllevæske og blod
|
Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
|
Cytokiner
Tidsramme: Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
Multiplex assay til måling af cytokiner i bronkoalveolær skyllevæske og plasma (f.eks.
IL-1-beta, IL-1RA, IL-2, IL-6, IL-8, IL-10, IL-17, IL-18, IL-33, IL-35, TGF-beta, TNF-alfa, HMGB1)
|
Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
|
Autoantistoffer mod tI-IFN'er i blod
Tidsramme: Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
Målt i bronkoalveolær skyllevæske
|
Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
|
Antal og karakteriseringer af respiratoriske patogener
Tidsramme: Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
Respiratorisk film array PCR til testning for antallet af patogener
|
Dag 0 (efter undersøgelsens inklusion)
|
Samarbejdspartnere og efterforskere
Sponsor
Sponsor
Efterforskere
Efterforskere
- Studiestol: Ronan Berg, MD PhD, Biomedical Science of Health, University of Copenhagen
Datoer for undersøgelser
Studer store datoer
Studiestart (Faktiske)
Studiestart
Primær færdiggørelse (Anslået)
Primær færdiggørelse
Studieafslutning (Anslået)
Studieafslutning
Datoer for studieregistrering
Først indsendt
Først indsendt
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først opslået (Faktiske)
Først opslået
Opdateringer af undersøgelsesjournaler
Sidste opdatering sendt (Faktiske)
Sidste opdatering sendt
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidst verificeret
Sidst verificeret
Mere information
Begreber relateret til denne undersøgelse
Yderligere relevante MeSH-vilkår
Andre undersøgelses-id-numre
Andre undersøgelses-id-numre
- H-22046545
Plan for individuelle deltagerdata (IPD)
Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?
Lægemiddel- og udstyrsoplysninger, undersøgelsesdokumenter
Studerer et amerikansk FDA-reguleret lægemiddelprodukt
Studerer et amerikansk FDA-reguleret enhedsprodukt
produkt fremstillet i og eksporteret fra U.S.A.
Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .