- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT03698721
Urothel Tissue Engineering unter Verwendung von Biopsien aus der transurethralen Resektion der Prostata (IMOPU)
Urothel Tissue Engineering unter Verwendung von Blasenschleimhaut aus der transurethralen Resektion der Prostata
Unterschiedliche klinische Zustände können eine Harnblasenvergrößerung oder einen Harnblasenersatz erfordern. Tissue Engineering-Blasen wurden klinisch evaluiert, werden jedoch aufgrund verschiedener Nebenwirkungen nicht empfohlen. Daher besteht ein echtes Interesse an der Entwicklung eines regenerativen Ansatzes mit innovativen Gerüsten und Zelltransplantationen.
Die Forscher schlagen die Verwendung von Urothelzellen vor, die durch transurethrale Resektion der Prostata oder Blase (TURP) gewonnen wurden, um ein durch Gewebezüchtung hergestelltes Urothel in Verbindung mit verschiedenen Gerüsten zu erhalten.
Studienübersicht
Status
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Blasenbiopsien werden während der Zystoskopie gewonnen, in Kulturmedium (DMEM®) konserviert, durch Dispase verdaut und auf kollagenbeschichtetem Kulturträger ausgesät. Keratinocyte Serum Free Medium (KSFM) wird für die Proliferation verwendet. Während der Passagen werden Mikroskopie, Immunhistochemie, RNA-Extraktion, Reverse Transkription und quantitative Polymerase-Kettenreaktion (RT-qPCR) durchgeführt. Die Zellkulturbedingungen werden optimiert, um die Proliferation zu verbessern und Differenzierungsverluste zu vermeiden. Die Forscher werden Gerüste basierend auf Natriumalginat-Hydrogelen entwickeln, gefolgt von Gefriertrocknung, um poröse Schwämme (bei -20 °C und -80 °C) zu erzeugen. Kultivierte Zellen werden mit diesen ursprünglichen Gerüsten und anderen Gerüsten, beispielsweise Alginat-Hydrogelen oder Collagen Cell Carrier (CCC), assoziiert, für 28 Tage kultiviert und analysiert. Das histologische und immunhistologische Erscheinungsbild zellularisierter Gerüste wird verglichen, um die Wirksamkeit jedes Gerüsts für die Gewebezüchtung im Urothel zu beurteilen.
Zelluläre Gerüste werden in vitro (transepithelialer elektrischer Widerstand, Undurchlässigkeit, Vernähbarkeit, Resistenz gegenüber Urin) und in vivo an ektopischer Stelle (subkutane Stelle bei nackten Mäusen) oder an orthotoper Stelle (Blasenaugmentation bei Kleintieren) untersucht.
Studientyp
Einschreibung (Voraussichtlich)
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Nicolas Berte, Dr
- Telefonnummer: 00333673004195
- E-Mail: n.berte@chru-nancy.fr
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Jean-Louis Lemelle, PHD
- Telefonnummer: 0033383154729
- E-Mail: jl.lemelle@chru-nancy.fr
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Probenahmeverfahren
Studienpopulation
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Patient, der eine transurethrale Resektion der Prostata (TURP) benötigt
- Gewicht der Prostata (bewertet durch Ultraschall) größer oder gleich 30 Gramm
- Zugehörigkeit zu einem Sozialversicherungssystem
- Patient über dem Alter der Volljährigkeit
- Der Patient erhält vollständige Informationen über die Forschungsorganisation ohne Einwände gegen die Verwendung biologischer Proben
Ausschlusskriterien:
- Patient, bei dem während des endoskopischen Eingriffs keine TURP durchgeführt wird
- Patient, bei dem keine Resektion am Blasenhals durchgeführt wird
- Patient mit geschätztem Prostatagewicht unter 30 Gramm
- Patient, der sich gegen die Durchführung der Studie ausgesprochen hat
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Beobachtungsmodelle: Sonstiges
- Zeitperspektiven: Interessent
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Histologische Analyse der Biopsie.
Zeitfenster: 6 Monate
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Die histologische Analyse mit Standardfärbung wird die Lebensfähigkeit von Urothel beurteilen.
Anzeichen einer Nekrose (Ulzerationen, Zerstörungen der Urothelstruktur) werden festgestellt.
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6 Monate
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Immunhistologische Analyse der Biopsie.
Zeitfenster: 6 Monate
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Die immunhistologische Analyse mit spezifischen Antikörpern lokalisiert das Urothel (Keratin, Uroplakin), die glatte Muskulatur (Smooth Muscle Actin), die Prostata (Prostata-spezifisches Antigen).
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6 Monate
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RT-qPCR-Analyse der Biopsie.
Zeitfenster: 6 Monate
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Die RT-qPCR-Analyse misst das Expressionsniveau (im Vergleich zum Housekeeping-Gen RPLP0) von RNA, die für Urothel (Keratin, Uroplakin), die glatte Muskulatur (Glattmuskel-Aktin) und die Prostata (Prostata-spezifisches Antigen) spezifisch ist.
Dieses Niveau wird mit kultivierten Urothelzellen verglichen.
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6 Monate
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Aufschluss der Biopsie und Kultur mit angepasstem Medium. Optimierung der Kulturbedingungen.
Zeitfenster: 12 Monate
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Die Biopsie wird mit Dispase verdaut. Die Zellen werden auf kollagenbeschichtete Träger ausgesät und unter Verwendung von Keratinozyten-serumfreiem Medium (KSFM) kultiviert. Die Trypsinierung erfolgt bei Konfluenz. RT-qPCR (Expressionsniveau jedes spezifischen Markers) wird bei jeder Passage durchgeführt, um die Entwicklung während der Kultur zu beurteilen. |
12 Monate
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Histologische Analyse der kultivierten Zellen.
Zeitfenster: 12 Monate
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Kultivierte Zellen (Ergebnis 4) werden in Kontrastphasenmikroskopie und mit Standardmikroskopiefärbung analysiert, um ihre Morphologie, die Anzahl der Zelltypen und ihre Entwicklung während der Passagen zu beurteilen.
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12 Monate
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Immunzytologische Analyse der kultivierten Zellen.
Zeitfenster: 12 Monate
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Kultivierte Zellen (Ergebnis 4) werden in der Immunzytologie analysiert, um den Zelltyp (Urothel / glatte Muskulatur / Prostata), die Expression und die Lokalisierung spezifischer Marker (Ergebnis 2) zu beurteilen.
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12 Monate
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RT-qPCR-Analyse der kultivierten Zellen.
Zeitfenster: 12 Monate
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Kultivierte Zellen (Ergebnis 4) werden in RT-qPCR bei jeder Passage analysiert, um die Entwicklung während der Kultur zu beurteilen.
Das Expressionsniveau (im Vergleich zum Housekeeping-Gen RPLP0) von RNA, die spezifisch für Urothel (Keratin, Uroplakin), die glatte Muskulatur (Smooth Muscle Actin), die Prostata (Prostata-spezifisches Antigen) ist, wird gemessen.
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12 Monate
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Entwicklung des ursprünglichen gefriergetrockneten Alginatgerüsts
Zeitfenster: 12 Monate
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Entwicklung eines Originalgerüsts auf Basis von Natriumalginat-Hydrogelen, gefolgt von Gefriertrocknung zur Erzeugung poröser Schwämme (bei -20 °C und -80 °C). Analyse der Struktur, Dichtheit, Nähfähigkeit.. |
12 Monate
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Assoziation der kultivierten Zellen mit verschiedenen Scaffolds. Kultur zellularisierter Gerüste.
Zeitfenster: 36 Monate
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Zuvor kultivierte und analysierte Zellen werden verschiedenen Gerüsten zugeordnet.
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36 Monate
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Histologische Analyse von zellularisierten Gerüsten
Zeitfenster: 36 Monate
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Nach der Assoziation werden zellularisierte Gerüste (Ergebnis 9) mindestens 28 Tage lang kultiviert. Die Überlebensrate wird mithilfe des MTT-Assays durchgeführt. Es wird eine histologische Analyse unter Verwendung von Standardfärbungen durchgeführt, um das Erscheinungsbild des zellularisierten Gerüsts, die Lage, das Erscheinungsbild und die Organisation der Zellen zu bewerten. |
36 Monate
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Immunhistologische Analyse von zellularisierten Gerüsten
Zeitfenster: 36 Monate
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Nach der Assoziation werden zellularisierte Gerüste (Ergebnis 9) mindestens 28 Tage lang kultiviert. Eine immunhistologische Analyse wird durchgeführt, um die Expression und Lokalisierung spezifischer Marker zu bewerten (Ergebnis 2) |
36 Monate
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RT-qPCR-Analyse von zellularisierten Gerüsten
Zeitfenster: 36 Monate
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Nach der Assoziation werden zellularisierte Gerüste (Ergebnis 9) mindestens 28 Tage lang kultiviert. RT-qPCR wird durchgeführt, um die Evolution während der Kultur unter dreidimensionalen Bedingungen zu beurteilen. Das Expressionsniveau (im Vergleich zum Housekeeping-Gen RPLP0) von RNA, die spezifisch für Urothel (Keratin, Uroplakin), die glatte Muskulatur (Smooth Muscle Actin), die Prostata (Prostata-spezifisches Antigen) ist, wird gemessen. |
36 Monate
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Biophysikalische Analyse zellularisierter Gerüste
Zeitfenster: 36 Monate
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Nach der Assoziation werden zellularisierte Gerüste (Ergebnis 9) mindestens 28 Tage lang kultiviert. Biophysikalische Analysen an zellularisierten Gerüsten werden durchgeführt:
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36 Monate
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Implantation des zellularisierten Gerüsts in Nacktmäusen
Zeitfenster: 12 Monate
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Zelluläre Gerüste werden subkutan in Nacktmäuse implantiert.
Die Inkubation in vivo erfolgt über mindestens 28 Tage.
Eine Analyse (Histologie, Immunhistologie, RT-qPCR) wird nach 28 Tagen Inkubation durchgeführt, um das Überleben der Zellen und das Verhalten des zellularisierten Gerüsts in vivo zu beurteilen.
Anzeichen von Nekrose, Neoangiogenese und Entzündung werden festgestellt.
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12 Monate
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Histologische Analyse von implantierten Scaffolds
Zeitfenster: 12 Monate
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Eine histologische Analyse wird nach 28 Tagen Inkubation auf implantierten Gerüsten (Ergebnis 14) durchgeführt, um das Erscheinungsbild des zellularisierten Gerüsts, die Lage, das Erscheinungsbild und die Organisation der Zellen zu bewerten. Die Überlebensrate wird mithilfe des MTT-Assays durchgeführt. Anzeichen einer Fibrose werden festgestellt. |
12 Monate
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Immunhistologische Analyse von implantierten Scaffolds
Zeitfenster: 12 Monate
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Eine histologische Analyse wird nach 28 Tagen Inkubation auf implantierten Gerüsten (Ergebnis 14) zur Bewertung durchgeführt. Eine immunhistologische Analyse wird durchgeführt, um die Expression und Lokalisierung spezifischer Marker zu bewerten (Ergebnis 2).
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12 Monate
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RT-qPCR-Analyse von implantierten Scaffolds
Zeitfenster: 12 Monate
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Eine RT-qPCR-Analyse wird nach 28 Tagen Inkubation auf implantierten Gerüsten (Ergebnis 14) durchgeführt, um die Evolution unter In-vivo-Bedingungen zu bewerten.
Das Expressionsniveau (im Vergleich zum Housekeeping-Gen RPLP0) von RNA, die spezifisch für Urothel (Keratin, Uroplakin), die glatte Muskulatur (Smooth Muscle Actin), die Prostata (Prostata-spezifisches Antigen) ist, wird gemessen.
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12 Monate
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Adamowicz J, Kowalczyk T, Drewa T. Tissue engineering of urinary bladder - current state of art and future perspectives. Cent European J Urol. 2013;66(2):202-6. doi: 10.5173/ceju.2013.02.art23. Epub 2013 Aug 13.
- Lam Van Ba O, Aharony S, Loutochin O, Corcos J. Bladder tissue engineering: a literature review. Adv Drug Deliv Rev. 2015 Mar;82-83:31-7. doi: 10.1016/j.addr.2014.11.013. Epub 2014 Nov 14.
- Garthwaite M, Hinley J, Cross W, Warwick RM, Ambrose A, Hardaker H, Eardley I, Southgate J. Use of donor bladder tissues for in vitro research. BJU Int. 2014 Jan;113(1):160-6. doi: 10.1111/bju.12285.
- Baker SC, Shabir S, Southgate J. Biomimetic urothelial tissue models for the in vitro evaluation of barrier physiology and bladder drug efficacy. Mol Pharm. 2014 Jul 7;11(7):1964-70. doi: 10.1021/mp500065m. Epub 2014 Apr 17.
Studienaufzeichnungsdaten
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Studienbeginn (Voraussichtlich)
Primärer Abschluss (Voraussichtlich)
Studienabschluss (Voraussichtlich)
Studienanmeldedaten
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Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
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Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
- PSS2017/IMOPU-BERTE/MS
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Beschreibung des IPD-Plans
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird
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