- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT02714985
RT-PCR sur échantillons d'urine : valeur ajoutée pour le diagnostic de l'infection par le virus Chikungunya (CHIK_urine)
Évaluation rétrospective en laboratoire du taux de détection de l'infection par le CHIKV par RT-PCR en temps réel sur l'urine. Des échantillons d'urine et de sérum de patients atteints d'infections CHIKV confirmées provenant d'une zone endémique (Aruba) et de l'IMT seront analysés. Les résultats seront évalués au cas par cas : délai depuis le début, caractéristiques du patient, sévérité des symptômes, résultats sérologiques.
La positivité dans le temps de l'ARN du CHIKV dans l'urine sera évaluée en comparaison avec la virémie. Les patients suspectés d'infection aiguë par le CHIKV seront invités (par consentement éclairé écrit ; annexe 1) à fournir des échantillons d'urine dans les 72 heures suivant le début de la maladie, suivis d'échantillons d'urine le jour 7, le jour 10, le jour 14 et trois échantillons d'urine 3, 4 et 12 semaines après le début. Il leur sera demandé de fournir des échantillons de sérum dans les 72 heures suivant le début de la maladie, suivis d'échantillons de sérum les jours 7, 10 et 14. Au total, vingt patients avec un résultat initial positif de CHIKV RT-PCR sur sérum seront inclus pour le suivi. Le nombre d'échantillons d'urine qui seront testés est de 140.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Objectifs
- Évaluer la valeur ajoutée de la RT-PCR pour le CHIKV sur des échantillons d'urine pour le diagnostic de l'infection par le CHIKV par rapport aux méthodes de référence.
- Décrire la cinétique de la RT-PCR pour le CHIKV sur des échantillons d'urine pour diagnostiquer une infection par le CHIKV au fil du temps.
Conception de l'étude, population, matériaux et méthodes :
Étude de cohorte prospective de patients ayant une infection confirmée au CHIKV (RT-PCR pour le CHIKV positif sur le prélèvement au moment de l'inclusion ou séroconversion définie comme test d'anticorps Immunoglobuline M (IgM) anti-CHIKV positif au jour 14), qui fréquentent la clinique externe de l'Institut de Médecine Tropicale d'Anvers et de l'Horacio Oduber Hospitaal d'Aruba dans les 72 heures suivant l'apparition de la fièvre. Après la signature du consentement éclairé, les données cliniques et épidémiologiques seront enregistrées dans un formulaire d'enregistrement de cas standardisé. Des échantillons de sang et d'urine de base seront prélevés au besoin pour l'évaluation clinique de routine du cas individuel ; l'échantillonnage comprendra des tests sérologiques CHIKV sériques, CHIKV E1 (ou test rapide similaire), ainsi que du sérum et de l'urine pour RT-PCR pour CHIKV. Après l'évaluation initiale, les cas suspects de CHIKV sont programmés pour une collecte bihebdomadaire de sérum et d'urine pour RT-PCR pour CHIKV pendant une durée de 2 semaines, puis après 3, 4 et 12 semaines. Le sérum à 4 semaines sera utilisé pour le deuxième test sérologique. Les cas suspects dont le test CHIKV est négatif par RT-PCR sur le sérum seront exclus.
Population d'étude : patients avec une infection CHIKV confirmée Taille de l'échantillon : panel de 20 cas confirmés CHIKV Les proportions des taux de positivité seront testées par le test χ² pour l'égalité des proportions. Les valeurs Ct entre deux types d'échantillons différents (sérum/urine) seront comparées par le calcul du coefficient de corrélation de rang de Spearman (ρ). Les valeurs Ct mesurées seront soustraites (indiquées par ∆Ct) et la moyenne de toutes les valeurs ∆Ct (intervalle de confiance ± 95 %) sera calculée. Rapports conformément aux directives STARD (Standards for Reporting of Diagnostic Accuracy).
Critères d'évaluation : sensibilité diagnostique de la RT-PCR CHIKV sur des échantillons d'urine chez les patients ayant une infection confirmée par le CHIKV, comparaison de la sensibilité analytique (basée sur les valeurs Ct) avec la RT-PCR sur sérum, taux de positivité des échantillons d'urine RT-PCR au fil du temps : Un consentement éclairé sera obtenu des participants à l'étude. Des données démographiques, géographiques, cliniques et de laboratoire seront obtenues ; les données sont anonymisées et stockées dans une base de données chiffrée (code connu des enquêteurs principaux). Approbation éthique par le comité d'éthique (CE) de l'IMT/Hôpital universitaire d'Anvers (UZA) et le CE d'Aruba.
Résultats attendus et pertinence :
Évaluation de la sensibilité de la RT-PCR sur des échantillons d'urine pour le diagnostic de l'infection par le CHIKV en phase post-virémique en milieu endémique et non endémique. Les avantages possibles de l'utilisation de la PCR sur l'urine par rapport aux tests sérologiques sont :
- un changement de délai pour diagnostiquer avec précision l'infection par le CHIKV qui pourrait profiter aux voyageurs de retour qui consultent après la phase aiguë.
- l'utilisation d'échantillons uniques obtenus par des procédures non invasives
- haute spécificité
- l'opportunité de typage des souches CHIKV.
Type d'étude
Contacts et emplacements
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critère d'intégration:
- 18 ans ou plus
- suspicion clinique d'infection par le CHIKV, c'est-à-dire
- fièvre (≥38°C) ET arthralgie OU rash
- Confirmation de l'infection par le CHIKV par RT-PCR sur le sérum ou la séroconversion (définie comme un test d'anticorps IgM anti-CHIKV positif au jour 14)
- vivant à moins de 50 kilomètres de l'un ou l'autre des sites d'étude (ITM Antwerp, à Aruba)
- Disposé et capable de fournir un consentement éclairé écrit (consentement pour les mineurs).
Critère d'exclusion:
- Diagnostic alternatif au moment de l'évaluation
- Incapable de produire un échantillon d'urine par miction spontanée
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
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cas confirmés de chikungunya
cas confirmés de fièvre chikungunya et inclus pour le suivi conformément au protocole
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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taux de détection du virus chikungunya par RT-PCR dans les échantillons d'urine
Délai: 12 semaines
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chez les patients avec une infection CHIKV confirmée, comparaison de la sensibilité analytique (basée sur les valeurs Ct) avec la RT-PCR sur le sérum, taux de positivité des échantillons d'urine RT-PCR au fil du temps
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12 semaines
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Publications et liens utiles
Publications générales
- Barzon L, Pacenti M, Franchin E, Pagni S, Martello T, Cattai M, Cusinato R, Palu G. Excretion of West Nile virus in urine during acute infection. J Infect Dis. 2013 Oct 1;208(7):1086-92. doi: 10.1093/infdis/jit290. Epub 2013 Jul 2.
- Blacksell SD, Tanganuchitcharnchai A, Jarman RG, Gibbons RV, Paris DH, Bailey MS, Day NP, Premaratna R, Lalloo DG, de Silva HJ. Poor diagnostic accuracy of commercial antibody-based assays for the diagnosis of acute Chikungunya infection. Clin Vaccine Immunol. 2011 Oct;18(10):1773-5. doi: 10.1128/CVI.05288-11. Epub 2011 Aug 24.
- Couturier E, Guillemin F, Mura M, Leon L, Virion JM, Letort MJ, De Valk H, Simon F, Vaillant V. Impaired quality of life after chikungunya virus infection: a 2-year follow-up study. Rheumatology (Oxford). 2012 Jul;51(7):1315-22. doi: 10.1093/rheumatology/kes015. Epub 2012 Mar 16.
- Gourinat AC, O'Connor O, Calvez E, Goarant C, Dupont-Rouzeyrol M. Detection of Zika virus in urine. Emerg Infect Dis. 2015 Jan;21(1):84-6. doi: 10.3201/eid2101.140894.
- Hirayama T, Mizuno Y, Takeshita N, Kotaki A, Tajima S, Omatsu T, Sano K, Kurane I, Takasaki T. Detection of dengue virus genome in urine by real-time reverse transcriptase PCR: a laboratory diagnostic method useful after disappearance of the genome in serum. J Clin Microbiol. 2012 Jun;50(6):2047-52. doi: 10.1128/JCM.06557-11. Epub 2012 Mar 21.
- Korhonen EM, Huhtamo E, Virtala AM, Kantele A, Vapalahti O. Approach to non-invasive sampling in dengue diagnostics: exploring virus and NS1 antigen detection in saliva and urine of travelers with dengue. J Clin Virol. 2014 Nov;61(3):353-8. doi: 10.1016/j.jcv.2014.08.021. Epub 2014 Sep 1.
- Magurano F, Zammarchi L, Baggieri M, Fortuna C, Farese A, Benedetti E, Fiorentini C, Rezza G, Nicoletti L, Bartoloni A. Chikungunya from the Caribbean: the importance of appropriate laboratory tests to confirm the diagnosis. Vector Borne Zoonotic Dis. 2015 Apr;15(4):258-60. doi: 10.1089/vbz.2014.1724.
- Mizuno Y, Kotaki A, Harada F, Tajima S, Kurane I, Takasaki T. Confirmation of dengue virus infection by detection of dengue virus type 1 genome in urine and saliva but not in plasma. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2007 Jul;101(7):738-9. doi: 10.1016/j.trstmh.2007.02.007. Epub 2007 Apr 5.
- Panning M, Grywna K, van Esbroeck M, Emmerich P, Drosten C. Chikungunya fever in travelers returning to Europe from the Indian Ocean region, 2006. Emerg Infect Dis. 2008 Mar;14(3):416-22. doi: 10.3201/eid1403.070906.
- Van den Bossche D, Cnops L, Van Esbroeck M. Recovery of dengue virus from urine samples by real-time RT-PCR. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2015 Jul;34(7):1361-7. doi: 10.1007/s10096-015-2359-0. Epub 2015 Mar 21.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Anticipé)
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Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
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- B300201525794
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