鶏肉の摂取に対する栄養素とホルモンのプロファイルおよび筋肉タンパク質合成の反応
さまざまな農法で育てられた鶏肉を摂取した場合の栄養素およびホルモンプロファイルと筋肉タンパク質合成の反応
私たちの研究は、従来の方法で飼育された鶏肉と有機鶏肉を食べることの間に違いがあるかどうかを評価することを目的としています。 さまざまな農法で作られた鶏肉を食べた後の血中の栄養素やホルモンの濃度、筋タンパク質の合成速度(体が筋肉を作る速度)を測定し、比較します。 これは、これらの農法が筋肉タンパク質の合成と全体的な健康に影響を与えるかどうかを理解するのに役立ちます。
具体的な目的 1: 骨なし、皮なしの従来の鶏むね肉と再生鶏むね肉を 100 グラム (タンパク質約 32 g) 摂取した後 3 時間の食後の血清中の栄養とホルモンのプロファイルを説明します。
具体的な目的 2: これら 2 つの農法で育てた骨なし皮なし鶏の胸肉が、筋肉の in vitro モデルで mTORC1 特異的および全筋タンパク質合成を活性化する能力を比較します。
調査の概要
詳細な説明
人間の長寿の指標には、骨格筋量と筋力が含まれます (Ruiz et al., 2008; Srikanthan and Karlamangla, 2014)。 筋肉量は、筋原線維タンパク質の合成と分解のバランスに依存し、食事と身体活動の影響を受けます(Schiaffino et al., 2013; Burd et al., 2010)。 筋力は筋肉量と相関しており(Chen et al., 2013; Viitasalo et al., 1985)、失敗するまでウェイトリフティングを行うと筋タンパク質合成が増加し(Moore et al., 2005)、時間の経過とともに筋肉量と筋力が向上します(Terzis et al., 2005)。 al.、2007)。 タンパク質の摂取は、タンパク質のバランスと筋肉の成長にとって非常に重要です (Tipton et al., 1999)。 動物タンパク質は、植物タンパク質よりも効果的に筋肉合成を促進します(Tang et al., 2009; Wilkinson et al., 2008)。 肉の品質に対する農業慣行の影響に関する研究は限られています。 研究では、有機肉は栄養価が高く、脂質プロファイルが優れている可能性があることが示されています(Ribas-Agustí et al., 2019; Davis et al., 2022; Średnicka-Tober et al., 2016)。 このプロジェクトは、従来の方法と再生/オーガニック方法で等窒素含有量の鶏肉を摂取した後の血清栄養素、ホルモンプロファイル、筋タンパク質合成速度を比較することを目的としています。
研究の目的は、異なる農法(従来型と再生型)で育てられた等窒素生成量の鶏肉の摂取に応じた、血清栄養素とホルモンプロファイル、筋タンパク質合成速度を定量化して比較することです。
具体的な目的 1: 骨なし、皮なしの従来の鶏むね肉と再生鶏むね肉を 100 グラム (タンパク質約 32 g) 摂取した後 3 時間の食後の血清中の栄養とホルモンのプロファイルを説明します。
具体的な目的 2: これら 2 つの農法で育てた骨なし皮なし鶏の胸肉が、筋肉の in vitro モデルで mTORC1 特異的および全筋タンパク質合成を活性化する能力を比較します。
研究ボランティアは 2 回に分けて CTSC 臨床研究センターに来ます。
2 回の治験訪問は 2 週間にわたって計画されます(つまり、 週に1回、2週間)、一晩(12時間以上)の絶食後の朝の同じ時間に。 毎回の訪問前に24時間は激しい運動、カフェイン、ニコチン、アルコールの摂取を控えるよう求められる。 女性ボランティアは、消化と代謝に影響を与える可能性のある卵巣ホルモンの変動を制御するために、月経周期の最初の2週間以内(月経出血の初日から開始)に研究訪問をスケジュールするよう求められます。
最初の試験訪問で研究センターに到着すると、各ボランティアの身長と体重が測定されます。 各ボランティアは、身体活動と食生活に関するアンケートにも記入します。
I. ベースライン採血。
その後、被験者は、リクライニング瀉血アームチェアを備えた個別の検査室に移送されます。 登録看護師または看護師は、前腕の静脈に 22G カテーテルを挿入し、最初の 5 mL のベースライン血液サンプルを収集します。
II.テスト食。
ベースライン血液サンプルが収集された後、被験者は 2 種類の鶏肉試験食のうちの 1 つを摂取します。 肉は等窒素量のタンパク質 20 g に相当します。
食品は調理前に計量され、味を良くするために小さじ8分の1の塩が加えられます。 骨と皮のない鶏の胸肉は、米国農務省の食品安全勧告(鶏肉、最低165°F)に準拠するため、内部温度が165〜170°Fに達するまで屋内の電気グリルで焼きます。 鶏胸肉の内部温度は肉用温度計を使用して測定されます。 鶏肉は調理が完了次第、ボランティアに提供されます。 被験者には、骨と皮のない鶏の胸肉を調味料なしで10分以内に食べるように求められ、よく噛むように指示されます。 また、食事と一緒にコップ250mLの水を飲むように求められます。
Ⅲ.食後の採血。
試験食の摂取後、参加者は研究現場の各自の試験室にさらに 3 時間滞在します。時間を潰すために本や電子機器を持参することもできます。 それぞれ 5 mL の血液サンプルをさらに 5 回、試験食後 30、60、90、120、および 180 分に採取します。合計 6 回の来院ごとに 5 mL の採血 (1 回の来院あたり 30 mL)、合計 60 mL の血液が採取されます。各被験者が研究全体を完了します。
血液は 5 mL 血清分離チューブに採取されます。 血液を凝固させた後、1000 x gで 10 分間遠心分離します。 血清は凍結され、処理されるまで -80°C で保管されます。 各血清サンプル 1 ミリリットルは、栄養素とホルモンの濃度を測定するために使用されます。 残りの血清は筋タンパク質合成と mTORC1 バイオアッセイ分析に使用されます。
研究の種類
入学 (実際)
段階
- 適用できない
連絡先と場所
研究場所
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California
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Sacramento、California、アメリカ、95817
- UC Davis CTSC Clinical Research Center
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参加基準
適格基準
就学可能な年齢
- 大人
健康ボランティアの受け入れ
説明
包含基準:
18 ~ 30 歳の健康で活動的な男性および女性のボランティアで、標準体重 (BMI 18 ~ 25 kg/m2) のボランティアです。活動的であるとみなされるには、ボランティアは以下の米国スポーツ医学会の健康な成人の身体活動に関するガイドラインを満たしている必要があります。 : 中程度から激しい強度の身体活動を週に少なくとも 150 分間実行する。
除外基準:
試験食品の摂取を妨げる健康上または食事上の制限。
鶏肉に対する食物アレルギーが知られている。 貧血(赤血球数の低下)。 過体重または肥満(BMI > 25 kg/m2) 研究を妨げる可能性のある薬剤の投与を受けている。 摂取した栄養素の消化、吸収、および/または生理学的反応に影響を与える代謝障害または内分泌障害。
現在、ACSM の身体活動推奨事項を満たしていません (IPAQ スコアが週 150 分未満の中程度から激しい身体活動。
妊娠
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:他の
- 割り当て:ランダム化
- 介入モデル:クロスオーバー割り当て
- マスキング:トリプル
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
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実験的:従来の鶏肉
この腕には、骨と皮のない従来の鶏の胸肉100グラム(タンパク質約32グラム)と水250mlが与えられます。
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この腕には、骨なし皮なしの通常の鶏の胸肉100グラム(タンパク質約32グラム)と水250mlが与えられます。
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実験的:再生鶏
この腕には、骨と皮のない再生鶏の胸肉100グラム(タンパク質約32グラム)と水250mlが与えられます。
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この腕には、骨と皮のない再生鶏の胸肉100グラム(タンパク質約32グラム)と水250mlが与えられます。
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この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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食後のアミノ酸プロファイル
時間枠:ベースライン (0 時間) から食事後 30、60、90、120、180 分まで
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血清サンプルは 1 mL の改良型フォルヒ抽出法で抽出され、その後真空遠心分離により乾燥されます。
乾燥サンプルは、100 μl の 75% ACN/水で再構成されます。
次に、上清を Aligent UPLC-QqQ に注入して、標的の遊離アミノ酸、短鎖ペプチド、その他の代謝産物を分析します。
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ベースライン (0 時間) から食事後 30、60、90、120、180 分まで
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食後の短いペプチドプロファイル
時間枠:ベースライン (0 時間) から食事後 30、60、90、120、180 分まで
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血清サンプルは 1 mL の改良型フォルヒ抽出法で抽出され、その後真空遠心分離により乾燥されます。
乾燥サンプルは、100 μl の 75% ACN/水で再構成されます。
次に、上清を Aligent UPLC-QqQ に注入して、標的の遊離アミノ酸、短鎖ペプチド、その他の代謝産物を分析します。
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ベースライン (0 時間) から食事後 30、60、90、120、180 分まで
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筋肉タンパク質の合成
時間枠:ベースライン (0 時間) から食事後 30、60、90、120、180 分まで
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筋タンパク質合成を測定するには、プラスミド (pcDNA3 ルシフェラーゼ) を安定的にトランスフェクトした C2C12 筋細胞を使用します。
C2C12Luc 細胞を 24 ウェル プレートに播種し、4 日間かけて分化させます。
分化した C2C12 細胞を PBS で洗浄して絶食させ、次に試験培地 (20% DMEM) で 15 分間処理します。
次いで、絶食筋細胞を、10%ベースラインまたは栄養血清(食後30、60、90、120および180分後の血液サンプルから)を含む試験培地で3時間処理する。
細胞は受動的溶解バッファーに収集され、ホタルルシフェラーゼ活性が測定されます。
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ベースライン (0 時間) から食事後 30、60、90、120、180 分まで
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mTORC1特異的タンパク質合成
時間枠:ベースライン (0 時間) から食事後 30、60、90、120、180 分まで
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ニワトリの食事(従来型または再生型)が mTORC1 を活性化する能力を測定するために、ルシフェラーゼ mRNA が 5' TOP を含むプラスミド(pcDNA3-TOP ルシフェラーゼ)を C2C12 筋肉細胞に安定的にトランスフェクトしました。 mTORC1活性によって特異的に調節される5'TOP mRNAが使用されます。 24 ウェル プレート内の分化した C2C12TOPLuc 筋細胞は、ベースラインまたは栄養血清 (食後 30、60、90、120 および 180 分の血液サンプルから) を使用して刺激されます。 mTORC1 活性化の程度は、ベースラインと給餌血清の間の傾きの差として決定されます。 |
ベースライン (0 時間) から食事後 30、60、90、120、180 分まで
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協力者と研究者
捜査官
- 主任研究者:Keith Baar, PhD、University of California, Davis
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- Tipton KD, Ferrando AA, Phillips SM, Doyle D Jr, Wolfe RR. Postexercise net protein synthesis in human muscle from orally administered amino acids. Am J Physiol. 1999 Apr;276(4):E628-34. doi: 10.1152/ajpendo.1999.276.4.E628.
- Burd NA, West DW, Staples AW, Atherton PJ, Baker JM, Moore DR, Holwerda AM, Parise G, Rennie MJ, Baker SK, Phillips SM. Low-load high volume resistance exercise stimulates muscle protein synthesis more than high-load low volume resistance exercise in young men. PLoS One. 2010 Aug 9;5(8):e12033. doi: 10.1371/journal.pone.0012033.
- Chen L, Nelson DR, Zhao Y, Cui Z, Johnston JA. Relationship between muscle mass and muscle strength, and the impact of comorbidities: a population-based, cross-sectional study of older adults in the United States. BMC Geriatr. 2013 Jul 16;13:74. doi: 10.1186/1471-2318-13-74.
- Ruiz JR, Sui X, Lobelo F, Morrow JR Jr, Jackson AW, Sjostrom M, Blair SN. Association between muscular strength and mortality in men: prospective cohort study. BMJ. 2008 Jul 1;337(7661):a439. doi: 10.1136/bmj.a439.
- Srikanthan P, Karlamangla AS. Muscle mass index as a predictor of longevity in older adults. Am J Med. 2014 Jun;127(6):547-53. doi: 10.1016/j.amjmed.2014.02.007. Epub 2014 Feb 18.
- Schiaffino S, Dyar KA, Ciciliot S, Blaauw B, Sandri M. Mechanisms regulating skeletal muscle growth and atrophy. FEBS J. 2013 Sep;280(17):4294-314. doi: 10.1111/febs.12253. Epub 2013 Apr 17.
- Terzis G, Georgiadis G, Stratakos G, Vogiatzis I, Kavouras S, Manta P, Mascher H, Blomstrand E. Resistance exercise-induced increase in muscle mass correlates with p70S6 kinase phosphorylation in human subjects. Eur J Appl Physiol. 2008 Jan;102(2):145-52. doi: 10.1007/s00421-007-0564-y. Epub 2007 Sep 14.
- Srednicka-Tober D, Baranski M, Seal C, Sanderson R, Benbrook C, Steinshamn H, Gromadzka-Ostrowska J, Rembialkowska E, Skwarlo-Sonta K, Eyre M, Cozzi G, Krogh Larsen M, Jordon T, Niggli U, Sakowski T, Calder PC, Burdge GC, Sotiraki S, Stefanakis A, Yolcu H, Stergiadis S, Chatzidimitriou E, Butler G, Stewart G, Leifert C. Composition differences between organic and conventional meat: a systematic literature review and meta-analysis. Br J Nutr. 2016 Mar 28;115(6):994-1011. doi: 10.1017/S0007114515005073. Epub 2016 Feb 16.
- Davis H, Magistrali A, Butler G, Stergiadis S. Nutritional Benefits from Fatty Acids in Organic and Grass-Fed Beef. Foods. 2022 Feb 23;11(5):646. doi: 10.3390/foods11050646.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (推定)
研究の完了 (推定)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (実際)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
本研究に関する用語
キーワード
その他の研究ID番号
- 2190600
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医薬品およびデバイス情報、研究文書
米国FDA規制医薬品の研究
米国FDA規制機器製品の研究
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