Esta página se tradujo automáticamente y no se garantiza la precisión de la traducción. por favor refiérase a versión inglesa para un texto fuente.

Perfil nutricional y hormonal y respuesta de la síntesis de proteínas musculares al consumo de pollo

15 de agosto de 2026 actualizado por: University of California, Davis

Perfil nutricional y hormonal y respuesta de la síntesis de proteínas musculares al consumo de pollo cultivado mediante diferentes prácticas agrícolas

Nuestro estudio tiene como objetivo evaluar si existe una diferencia entre comer pollo criado convencionalmente o orgánico. Mediremos y compararemos los niveles de nutrientes y hormonas en la sangre y la tasa de síntesis de proteínas musculares (la tasa a la que su cuerpo desarrolla músculo) después de comer pollo de diferentes prácticas agrícolas. Esto nos ayudará a comprender si estas prácticas agrícolas afectan la síntesis de proteínas musculares y la salud general.

Objetivo específico 1: Describir el perfil hormonal y de nutrientes posprandial en suero en las 3 horas posteriores al consumo de 100 gramos (~ 32 g de proteína) de carne de pechuga de pollo convencional versus regenerativa, deshuesada y sin piel.

Objetivo específico 2: Comparar la capacidad de las pechugas de pollo deshuesadas y sin piel cultivadas con estas dos prácticas agrícolas para activar la síntesis de proteínas musculares completas y específicas de mTORC1 en un modelo in vitro de músculo.

Descripción general del estudio

Estado

Activo, no reclutando

Condiciones

Descripción detallada

Los indicadores de longevidad en humanos incluyen la masa y la fuerza del músculo esquelético (Ruiz et al., 2008; Srikanthan y Karlamangla, 2014). La masa muscular depende del equilibrio entre la síntesis y degradación de proteínas miofibrilares, influenciado por la dieta y la actividad física (Schiaffino et al., 2013; Burd et al., 2010). La fuerza muscular se correlaciona con la masa muscular (Chen et al., 2013; Viitasalo et al., 1985), y el levantamiento de pesas hasta el fallo aumenta la síntesis de proteínas musculares (Moore et al., 2005), mejorando la masa muscular y la fuerza con el tiempo (Terzis et al., 2005). otros, 2007). La ingesta de proteínas es crucial para el equilibrio proteico positivo y el crecimiento muscular (Tipton et al., 1999). Las proteínas animales promueven la síntesis muscular de manera más efectiva que las proteínas vegetales (Tang et al., 2009; Wilkinson et al., 2008). Existe una investigación limitada sobre el impacto de las prácticas agrícolas en la calidad de la carne. Los estudios indican que la carne orgánica puede tener un mayor valor nutricional y mejores perfiles lipídicos (Ribas-Agustí et al., 2019; Davis et al., 2022; Średnicka-Tober et al., 2016). Este proyecto tiene como objetivo comparar los nutrientes séricos, los perfiles hormonales y las tasas de síntesis de proteínas musculares después de consumir cantidades isonitrogénicas de pollo de prácticas convencionales versus regenerativas/orgánicas.

El propósito del estudio es cuantificar y comparar el perfil hormonal y de nutrientes séricos, y las tasas de síntesis de proteínas musculares, en respuesta al consumo de cantidades isonitrogénicas de pollo cultivado utilizando diferentes prácticas agrícolas (convencional versus regenerativa).

Objetivo específico 1: Describir el perfil hormonal y de nutrientes posprandial en suero en las 3 horas posteriores al consumo de 100 gramos (~ 32 g de proteína) de carne de pechuga de pollo convencional versus regenerativa, deshuesada y sin piel.

Objetivo específico 2: Comparar la capacidad de las pechugas de pollo deshuesadas y sin piel cultivadas con estas dos prácticas agrícolas para activar la síntesis de proteínas musculares completas y específicas de mTORC1 en un modelo in vitro de músculo.

Los voluntarios del estudio vendrán al Centro de Investigación Clínica CTSC en dos ocasiones distintas.

Las dos visitas de estudio se programarán durante un período de 2 semanas (es decir, una vez por semana durante 2 semanas), a la misma hora por la mañana después de un ayuno nocturno (> 12 horas). Se les pedirá que se abstengan de hacer ejercicio vigoroso, cafeína, nicotina y alcohol durante 24 horas antes de cada visita. Se pedirá a las voluntarias que programen sus visitas de estudio dentro de las dos primeras semanas de su ciclo menstrual (comenzando el primer día del sangrado menstrual), para controlar las fluctuaciones de las hormonas ováricas que pueden afectar la digestión y el metabolismo.

Al llegar al centro de investigación en la primera visita de prueba, se medirá la altura y el peso de cada voluntario. Cada voluntario también completará un cuestionario sobre actividad física y hábitos alimentarios.

I. Extracción de sangre inicial.

Luego, los sujetos serán ubicados en salas de prueba individuales, equipadas con un sillón de flebotomía reclinable. Una enfermera registrada o una enfermera especializada insertará un catéter de 22 G en una vena del antebrazo y se tomará una muestra de sangre inicial de 5 ml.

II. Comida de prueba.

Después de que se recolecte la muestra de sangre inicial, los sujetos consumirán una de las dos comidas de prueba de pollo. La carne equivaldrá a una cantidad isonitrogenada de 20 g de proteína:

La comida se pesará antes de cocinarla y se agregará un octavo de cucharadita de sal para darle palatabilidad. Las pechugas de pollo deshuesadas y sin piel se asarán en una parrilla eléctrica interior hasta que la temperatura interna alcance 165-170 °F para cumplir con las recomendaciones de seguridad alimentaria del USDA (pollo, mínimo 165 °F). La temperatura interna de las pechugas de pollo se determinará utilizando un termómetro para carnes. El pollo se servirá a los voluntarios tan pronto como haya terminado de cocinarse. Se pedirá a los sujetos que consuman cada pechuga de pollo deshuesada y sin piel sin condimentos en un período de 10 minutos y se les indicará que masticen bien. También se les pedirá que beban un vaso de agua de 250 ml con la comida.

III. Extracciones de sangre posprandiales.

Luego del consumo de la comida de prueba, los participantes permanecerán en el sitio de la investigación, en su sala de prueba individual, durante otras 3 horas, podrán traer libros o dispositivos electrónicos para pasar el tiempo. Se obtendrán cinco muestras de sangre más de 5 ml cada una a los 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida de prueba, para un total de seis extracciones de sangre de 5 ml por visita (30 ml por visita) y 60 ml de sangre extraída en total para cada sujeto completando todo el estudio.

La sangre se recolectará en tubos separadores de suero de 5 ml. Se permitirá que la sangre coagule antes de la centrifugación a 1000 x g durante 10 minutos. El suero se congelará y se mantendrá a -80°C hasta su procesamiento. Se utilizará 1 mililitro de cada muestra de suero para determinar las concentraciones de nutrientes y hormonas. El resto del suero se utilizará para la síntesis de proteínas musculares y el análisis del bioensayo mTORC1.

Tipo de estudio

Intervencionista

Inscripción (Actual)

19

Fase

  • No aplica

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Ubicaciones de estudio

    • California
      • Sacramento, California, Estados Unidos, 95817
        • UC Davis CTSC Clinical Research Center

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

  • Adulto

Acepta Voluntarios Saludables

Sí

Descripción

Criterios de inclusión:

Hombres y mujeres voluntarios sanos y activos entre 18 y 30 años de edad y con peso normal (IMC entre 18 y 25 kg/m2). Para ser considerados activos, los voluntarios deben cumplir con las siguientes pautas del Colegio Americano de Medicina del Deporte sobre actividad física para adultos sanos. : realizar al menos 150 minutos semanales de actividad física de intensidad moderada a vigorosa.

Criterio de exclusión:

Restricciones sanitarias o dietéticas que impedirían el consumo de los alimentos de prueba.

Alergia alimentaria conocida al pollo. Anemia (bajo recuento de glóbulos rojos). Sobrepeso u obesidad (IMC > 25 kg/m2) Recibir algún medicamento que pueda interferir con el estudio. Trastorno metabólico o endocrino que afectaría la digestión, absorción y/o respuesta fisiológica a cualquiera de los nutrientes ingeridos.

Actualmente no cumple con las recomendaciones de actividad física del ACSM (puntuación IPAQ <150 min/semana de actividad física de moderada a vigorosa).

El embarazo

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Propósito principal: Otro
  • Asignación: Aleatorizado
  • Modelo Intervencionista: Asignación cruzada
  • Enmascaramiento: Triple

Armas e Intervenciones

Grupo de participantes/brazo
Intervención / Tratamiento
Experimental: Pollo Convencional
A este brazo se le dará una comida de 100 gramos (~32 g de proteína) de carne de pechuga de pollo convencional, deshuesada y sin piel, junto con 250 ml de agua.
A este brazo se le dará una comida de 100 gramos (~32 g de proteína) de carne de pechuga de pollo convencional deshuesada y sin piel junto con 250 ml de agua.
Experimental: Pollo Regenerativo
Este brazo recibirá una comida de 100 gramos (~32 g de proteína) de carne de pechuga de pollo regenerativa deshuesada y sin piel junto con 250 ml de agua.
Este brazo recibirá una comida de 100 gramos (~32 g de proteína) de carne de pechuga de pollo regenerativa deshuesada y sin piel junto con 250 ml de agua.

¿Qué mide el estudio?

Medidas de resultado primarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
perfil de aminoácidos posprandial
Periodo de tiempo: Valor inicial (0 horas) a 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida consumida
Las muestras de suero se extraen con 1 ml de extracción Folch modificada, seguido de centrifugación al vacío para secar. Las muestras secas se reconstituirán con 100 µl de ACN al 75 %/agua. Luego, el sobrenadante se inyecta en Aligent UPLC-QqQ para el análisis de aminoácidos libres, péptidos cortos y otros metabolitos específicos.
Valor inicial (0 horas) a 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida consumida
perfil peptídico corto posprandial
Periodo de tiempo: Valor inicial (0 horas) a 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida consumida
Las muestras de suero se extraen con 1 ml de extracción Folch modificada, seguido de centrifugación al vacío para secar. Las muestras secas se reconstituirán con 100 µl de ACN al 75 %/agua. Luego, el sobrenadante se inyecta en Aligent UPLC-QqQ para el análisis de aminoácidos libres, péptidos cortos y otros metabolitos específicos.
Valor inicial (0 horas) a 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida consumida
Síntesis de proteínas musculares
Periodo de tiempo: Valor inicial (0 horas) a 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida consumida
Para medir la síntesis de proteínas musculares, se utilizarán células musculares C2C12 transfectadas de forma estable con un plásmido (pcDNA3 luciferasa). Las células C2C12Luc se sembrarán en placas de 24 pocillos y se diferenciarán durante 4 días. Las células C2C12 diferenciadas se mantendrán en ayunas lavándolas con PBS y luego tratándolas con medio de prueba (DMEM al 20%) durante 15 minutos. Luego, las células musculares en ayunas se tratarán con medios de prueba que contengan un 10% de suero basal o suero (de muestras de sangre a los 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida) durante 3 horas. Las células se recolectarán en un tampón de lisis pasivo y se determinará la actividad de la luciferasa de luciérnaga.
Valor inicial (0 horas) a 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida consumida
Síntesis de proteínas específicas de mTORC1
Periodo de tiempo: Valor inicial (0 horas) a 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida consumida

Para medir la capacidad de la harina de pollo (convencional o regenerativa) para activar mTORC1, se transfectaron de manera estable células musculares C2C12 con un plásmido (luciferasa pcDNA3-TOP) donde el ARNm de luciferasa contiene un 5'TOP. Se utilizará el ARNm 5'TOP, que regula específicamente la actividad de mTORC1.

Las células musculares C2C12TOPLuc diferenciadas en placas de 24 pocillos se estimularán utilizando la línea de base o el suero alimentado (de muestras de sangre a los 30, 60, 90,120 y 180 minutos después de la comida). El grado de activación de mTORC1 se determinará como la diferencia de pendientes entre los sueros basales y alimentados.

Valor inicial (0 horas) a 30, 60, 90, 120 y 180 minutos después de la comida consumida

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Investigadores

  • Investigador principal: Keith Baar, PhD, University of California, Davis

Publicaciones y enlaces útiles

La persona responsable de ingresar información sobre el estudio proporciona voluntariamente estas publicaciones. Estos pueden ser sobre cualquier cosa relacionada con el estudio.

Publicaciones Generales

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio (Actual)

11 de octubre de 2024

Finalización primaria (Estimado)

1 de octubre de 2026

Finalización del estudio (Estimado)

1 de octubre de 2026

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

28 de junio de 2024

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

28 de junio de 2024

Publicado por primera vez (Actual)

8 de julio de 2024

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Actual)

18 de agosto de 2026

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

15 de agosto de 2026

Última verificación

1 de agosto de 2026

Más información

Términos relacionados con este estudio

Otros números de identificación del estudio

  • 2190600

Plan de datos de participantes individuales (IPD)

¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?

NO

Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio

Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.

No

Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.

No

Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .

Suscribir