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Profil nutritionnel et hormonal et réponse à la synthèse des protéines musculaires à la consommation de poulet

15 août 2026 mis à jour par: University of California, Davis

Profil nutritionnel et hormonal et réponse à la synthèse des protéines musculaires à la consommation de poulet élevé selon différentes pratiques agricoles

Notre étude vise à évaluer s’il existe une différence entre manger du poulet élevé de manière conventionnelle ou biologique. Nous mesurerons et comparerons les niveaux de nutriments et d'hormones dans votre sang ainsi que le taux de synthèse des protéines musculaires (la vitesse à laquelle votre corps développe ses muscles) après avoir mangé du poulet provenant de différentes pratiques agricoles. Cela nous aidera à comprendre si ces pratiques agricoles ont un impact sur la synthèse des protéines musculaires et sur la santé globale.

Objectif spécifique 1 : Décrire le profil nutritionnel et hormonal postprandial dans le sérum dans les 3 heures suivant la consommation de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de viande de poitrine de poulet conventionnelle et régénérative désossée et sans peau.

Objectif spécifique 2 : Comparer la capacité des poitrines de poulet désossées et sans peau cultivées avec ces deux pratiques agricoles à activer la synthèse des protéines musculaires spécifiques à mTORC1 et entières dans un modèle musculaire in vitro.

Aperçu de l'étude

Statut

Actif, ne recrute pas

Les conditions

Description détaillée

Les indicateurs de longévité chez l'homme comprennent la masse et la force des muscles squelettiques (Ruiz et al., 2008 ; Srikanthan et Karlamangla, 2014). La masse musculaire dépend de l'équilibre entre la synthèse et la dégradation des protéines myofibrillaires, influencées par l'alimentation et l'activité physique (Schiaffino et al., 2013 ; Burd et al., 2010). La force musculaire est en corrélation avec la masse musculaire (Chen et al., 2013 ; Viitasalo et al., 1985), et le fait de soulever des poids jusqu'à l'échec augmente la synthèse des protéines musculaires (Moore et al., 2005), améliorant ainsi la masse musculaire et la force au fil du temps (Terzis et al., 2007). L'apport en protéines est crucial pour un équilibre protéique positif et une croissance musculaire (Tipton et al., 1999). Les protéines animales favorisent la synthèse musculaire plus efficacement que les protéines végétales (Tang et al., 2009 ; Wilkinson et al., 2008). Il existe peu de recherches sur l’impact des pratiques agricoles sur la qualité de la viande. Des études indiquent que la viande biologique peut avoir une valeur nutritionnelle plus élevée et de meilleurs profils lipidiques (Ribas-Agustí et al., 2019 ; Davis et al., 2022 ; Średnicka-Tober et al., 2016). Ce projet vise à comparer les nutriments sériques, les profils hormonaux et les taux de synthèse des protéines musculaires après avoir consommé des quantités isonitrogènes de poulet issues de pratiques conventionnelles versus régénératives/biologiques.

Le but de l'étude est de quantifier et de comparer le profil nutritionnel et hormonal sérique, ainsi que les taux de synthèse des protéines musculaires, en réponse à la consommation de quantités isonitrogènes de poulet cultivé selon différentes pratiques agricoles (conventionnelles ou régénératives).

Objectif spécifique 1 : Décrire le profil nutritionnel et hormonal postprandial dans le sérum dans les 3 heures suivant la consommation de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de viande de poitrine de poulet conventionnelle et régénérative désossée et sans peau.

Objectif spécifique 2 : Comparer la capacité des poitrines de poulet désossées et sans peau cultivées avec ces deux pratiques agricoles à activer la synthèse des protéines musculaires spécifiques à mTORC1 et entières dans un modèle musculaire in vitro.

Les volontaires de l'étude viendront au centre de recherche clinique CTSC à deux reprises.

Les deux visites d'étude seront programmées sur une période de 2 semaines (c'est-à-dire une fois par semaine pendant 2 semaines), à la même heure le matin après un jeûne nocturne (> 12 heures). Il leur sera demandé de s'abstenir de tout exercice vigoureux, de caféine, de nicotine et d'alcool pendant 24 heures avant chaque visite. Il sera demandé aux volontaires féminines de planifier leurs visites d'étude au cours des deux premières semaines de leur cycle menstruel (à partir du premier jour des saignements menstruels), pour contrôler les fluctuations hormonales ovariennes qui peuvent avoir un impact sur la digestion et le métabolisme.

À votre arrivée au centre de recherche lors de la première visite test, la taille et le poids de chaque volontaire seront mesurés. Chaque volontaire remplira également un questionnaire concernant l'activité physique et les habitudes alimentaires.

I. Prise de sang de base.

Les sujets seront ensuite placés dans des salles de test individuelles, équipées d'un fauteuil de phlébotomie inclinable. Une infirmière autorisée ou une infirmière praticienne insérera un cathéter 22G dans une veine de l'avant-bras et un premier échantillon de sang de base de 5 ml sera prélevé.

II. Repas test.

Une fois l'échantillon de sang de base collecté, les sujets consommeront l'un des deux repas tests au poulet. La viande équivaudra à une quantité isozotée de 20 g de protéines :

Les aliments seront pesés avant la cuisson et un huitième de cuillère à café de sel sera ajouté pour plus d'appétence. Les poitrines de poulet désossées et sans peau seront grillées sur un gril électrique intérieur jusqu'à ce que la température interne atteigne 165-170°F pour se conformer aux recommandations de l'USDA pour la sécurité alimentaire (poulet, minimum 165°F). La température interne des poitrines de poulet sera déterminée à l'aide d'un thermomètre à viande. Le poulet sera servi aux bénévoles dès la fin de la cuisson. Il sera demandé aux sujets de consommer chaque poitrine de poulet désossée et sans peau sans condiments dans un délai de 10 minutes et il leur sera demandé de bien mâcher. Il leur sera également demandé de boire un verre d'eau de 250 ml avec le repas.

III. Prise de sang postprandiale.

Après la consommation du repas test, les participants resteront sur le site de recherche, dans leur salle de test individuelle, pendant encore 3 heures, ils pourront apporter des livres ou des appareils électroniques pour passer le temps. Cinq échantillons de sang supplémentaires de 5 ml chacun seront obtenus 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas test, totalisant six prises de sang de 5 ml par visite (30 ml par visite) et 60 ml de sang prélevé au total pour chaque sujet complétant l’intégralité de l’étude.

Le sang sera collecté dans des tubes de séparation de sérum de 5 ml. Le sang pourra coaguler avant la centrifugation à 1000 x g pendant 10 minutes. Le sérum sera congelé et conservé à -80°C jusqu'à son traitement. 1 millilitre de chaque échantillon de sérum sera utilisé pour déterminer les concentrations de nutriments et d'hormones. Le reste du sérum sera utilisé pour la synthèse des protéines musculaires et l'analyse du test biologique mTORC1.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Réel)

19

Phase

  • N'est pas applicable

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Lieux d'étude

    • California
      • Sacramento, California, États-Unis, 95817
        • UC Davis CTSC Clinical Research Center

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

  • Adulte

Accepte les volontaires sains

Oui

La description

Critère d'intégration:

Volontaires masculins et féminins actifs et en bonne santé, âgés de 18 à 30 ans et de poids normal (IMC compris entre 18 et 25 kg/m2). Pour être considérés comme actifs, les volontaires doivent respecter les lignes directrices suivantes de l'American College of Sports Medicine concernant l'activité physique pour les adultes en bonne santé. : pratiquer au moins 150 minutes par semaine d'activité physique d'intensité modérée à vigoureuse.

Critère d'exclusion:

Restrictions sanitaires ou alimentaires qui empêcheraient la consommation des aliments testés.

Allergie alimentaire connue au poulet. Anémie (faible nombre de globules rouges). Surpoids ou obésité (IMC > 25 kg/m2) Recevoir tout médicament susceptible d'interférer avec l'étude. Trouble métabolique ou endocrinien pouvant affecter la digestion, l'absorption et/ou la réponse physiologique à l'un des nutriments ingérés.

Ne répond actuellement pas aux recommandations de l'ACSM en matière d'activité physique (score IPAQ < 150 min/semaine d'activité physique modérée à vigoureuse.

Grossesse

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: Autre
  • Répartition: Randomisé
  • Modèle interventionnel: Affectation croisée
  • Masquage: Tripler

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Expérimental: Poulet conventionnel
Ce bras recevra un repas de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de poitrine de poulet conventionnelle désossée et sans peau avec 250 ml d'eau.
Ce bras recevra un repas de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de poitrine de poulet conventionnelle désossée et sans peau avec 250 ml d'eau.
Expérimental: Poulet Régénératif
Ce bras recevra un repas de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de poitrine de poulet régénératrice désossée et sans peau avec 250 ml d'eau.
Ce bras recevra un repas de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de poitrine de poulet régénératrice désossée et sans peau avec 250 ml d'eau.

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
profil d'acides aminés postprandiaux
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
Les échantillons de sérum sont extraits avec 1 ml d'extraction Folch modifiée, suivi d'une centrifugation sous vide pour le séchage. Les échantillons séchés seront reconstitués avec 100 µl d’ACN/eau à 75 %. Le surnageant est ensuite injecté dans Aligent UPLC-QqQ pour l'analyse des acides aminés libres ciblés, des peptides courts et d'autres métabolites.
Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
profil peptidique court post-prandial
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
Les échantillons de sérum sont extraits avec 1 ml d'extraction Folch modifiée, suivi d'une centrifugation sous vide pour le séchage. Les échantillons séchés seront reconstitués avec 100 µl d’ACN/eau à 75 %. Le surnageant est ensuite injecté dans Aligent UPLC-QqQ pour l'analyse des acides aminés libres ciblés, des peptides courts et d'autres métabolites.
Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
Synthèse des protéines musculaires
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
Pour mesurer la synthèse des protéines musculaires, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (luciférase pcDNA3) seront utilisées. Les cellules C2C12Luc seront étalées dans des plaques à 24 puits et différenciées sur 4 jours. Les cellules C2C12 différenciées seront mises à jeun par lavage avec du PBS puis en les traitant avec un milieu de test (20 % de DMEM) pendant 15 minutes. Les cellules musculaires à jeun seront ensuite traitées avec des milieux de test contenant 10 % de sérum de base ou nourris (à partir d'échantillons de sang à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas) pendant 3 heures. Les cellules seront collectées dans un tampon de lyse passive et l'activité de la luciférase de luciole sera déterminée.
Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
Synthèse de protéines spécifiques à mTORC1
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé

Pour mesurer la capacité de la farine de poulet (conventionnelle ou régénérative) à activer mTORC1, cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (luciférase pcDNA3-TOP) où l'ARNm de la luciférase contient un 5'TOP. L'ARNm 5'TOP, spécifiquement régulé par l'activité mTORC1, sera utilisé.

Les cellules musculaires différenciées C2C12TOPLuc dans des plaques à 24 puits seront stimulées à l'aide du sérum de base ou nourri (à partir d'échantillons de sang à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas). Le degré d'activation de mTORC1 sera déterminé comme la différence de pentes entre les sérums de base et nourris.

Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Les enquêteurs

  • Chercheur principal: Keith Baar, PhD, University of California, Davis

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Publications générales

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

11 octobre 2024

Achèvement primaire (Estimé)

1 octobre 2026

Achèvement de l'étude (Estimé)

1 octobre 2026

Dates d'inscription aux études

Première soumission

28 juin 2024

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

28 juin 2024

Première publication (Réel)

8 juillet 2024

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

18 août 2026

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

15 août 2026

Dernière vérification

1 août 2026

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

NON

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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