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- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT06489886
Profil nutritionnel et hormonal et réponse à la synthèse des protéines musculaires à la consommation de poulet
Profil nutritionnel et hormonal et réponse à la synthèse des protéines musculaires à la consommation de poulet élevé selon différentes pratiques agricoles
Notre étude vise à évaluer s’il existe une différence entre manger du poulet élevé de manière conventionnelle ou biologique. Nous mesurerons et comparerons les niveaux de nutriments et d'hormones dans votre sang ainsi que le taux de synthèse des protéines musculaires (la vitesse à laquelle votre corps développe ses muscles) après avoir mangé du poulet provenant de différentes pratiques agricoles. Cela nous aidera à comprendre si ces pratiques agricoles ont un impact sur la synthèse des protéines musculaires et sur la santé globale.
Objectif spécifique 1 : Décrire le profil nutritionnel et hormonal postprandial dans le sérum dans les 3 heures suivant la consommation de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de viande de poitrine de poulet conventionnelle et régénérative désossée et sans peau.
Objectif spécifique 2 : Comparer la capacité des poitrines de poulet désossées et sans peau cultivées avec ces deux pratiques agricoles à activer la synthèse des protéines musculaires spécifiques à mTORC1 et entières dans un modèle musculaire in vitro.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Les indicateurs de longévité chez l'homme comprennent la masse et la force des muscles squelettiques (Ruiz et al., 2008 ; Srikanthan et Karlamangla, 2014). La masse musculaire dépend de l'équilibre entre la synthèse et la dégradation des protéines myofibrillaires, influencées par l'alimentation et l'activité physique (Schiaffino et al., 2013 ; Burd et al., 2010). La force musculaire est en corrélation avec la masse musculaire (Chen et al., 2013 ; Viitasalo et al., 1985), et le fait de soulever des poids jusqu'à l'échec augmente la synthèse des protéines musculaires (Moore et al., 2005), améliorant ainsi la masse musculaire et la force au fil du temps (Terzis et al., 2007). L'apport en protéines est crucial pour un équilibre protéique positif et une croissance musculaire (Tipton et al., 1999). Les protéines animales favorisent la synthèse musculaire plus efficacement que les protéines végétales (Tang et al., 2009 ; Wilkinson et al., 2008). Il existe peu de recherches sur l’impact des pratiques agricoles sur la qualité de la viande. Des études indiquent que la viande biologique peut avoir une valeur nutritionnelle plus élevée et de meilleurs profils lipidiques (Ribas-Agustí et al., 2019 ; Davis et al., 2022 ; Średnicka-Tober et al., 2016). Ce projet vise à comparer les nutriments sériques, les profils hormonaux et les taux de synthèse des protéines musculaires après avoir consommé des quantités isonitrogènes de poulet issues de pratiques conventionnelles versus régénératives/biologiques.
Le but de l'étude est de quantifier et de comparer le profil nutritionnel et hormonal sérique, ainsi que les taux de synthèse des protéines musculaires, en réponse à la consommation de quantités isonitrogènes de poulet cultivé selon différentes pratiques agricoles (conventionnelles ou régénératives).
Objectif spécifique 1 : Décrire le profil nutritionnel et hormonal postprandial dans le sérum dans les 3 heures suivant la consommation de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de viande de poitrine de poulet conventionnelle et régénérative désossée et sans peau.
Objectif spécifique 2 : Comparer la capacité des poitrines de poulet désossées et sans peau cultivées avec ces deux pratiques agricoles à activer la synthèse des protéines musculaires spécifiques à mTORC1 et entières dans un modèle musculaire in vitro.
Les volontaires de l'étude viendront au centre de recherche clinique CTSC à deux reprises.
Les deux visites d'étude seront programmées sur une période de 2 semaines (c'est-à-dire une fois par semaine pendant 2 semaines), à la même heure le matin après un jeûne nocturne (> 12 heures). Il leur sera demandé de s'abstenir de tout exercice vigoureux, de caféine, de nicotine et d'alcool pendant 24 heures avant chaque visite. Il sera demandé aux volontaires féminines de planifier leurs visites d'étude au cours des deux premières semaines de leur cycle menstruel (à partir du premier jour des saignements menstruels), pour contrôler les fluctuations hormonales ovariennes qui peuvent avoir un impact sur la digestion et le métabolisme.
À votre arrivée au centre de recherche lors de la première visite test, la taille et le poids de chaque volontaire seront mesurés. Chaque volontaire remplira également un questionnaire concernant l'activité physique et les habitudes alimentaires.
I. Prise de sang de base.
Les sujets seront ensuite placés dans des salles de test individuelles, équipées d'un fauteuil de phlébotomie inclinable. Une infirmière autorisée ou une infirmière praticienne insérera un cathéter 22G dans une veine de l'avant-bras et un premier échantillon de sang de base de 5 ml sera prélevé.
II. Repas test.
Une fois l'échantillon de sang de base collecté, les sujets consommeront l'un des deux repas tests au poulet. La viande équivaudra à une quantité isozotée de 20 g de protéines :
Les aliments seront pesés avant la cuisson et un huitième de cuillère à café de sel sera ajouté pour plus d'appétence. Les poitrines de poulet désossées et sans peau seront grillées sur un gril électrique intérieur jusqu'à ce que la température interne atteigne 165-170°F pour se conformer aux recommandations de l'USDA pour la sécurité alimentaire (poulet, minimum 165°F). La température interne des poitrines de poulet sera déterminée à l'aide d'un thermomètre à viande. Le poulet sera servi aux bénévoles dès la fin de la cuisson. Il sera demandé aux sujets de consommer chaque poitrine de poulet désossée et sans peau sans condiments dans un délai de 10 minutes et il leur sera demandé de bien mâcher. Il leur sera également demandé de boire un verre d'eau de 250 ml avec le repas.
III. Prise de sang postprandiale.
Après la consommation du repas test, les participants resteront sur le site de recherche, dans leur salle de test individuelle, pendant encore 3 heures, ils pourront apporter des livres ou des appareils électroniques pour passer le temps. Cinq échantillons de sang supplémentaires de 5 ml chacun seront obtenus 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas test, totalisant six prises de sang de 5 ml par visite (30 ml par visite) et 60 ml de sang prélevé au total pour chaque sujet complétant l’intégralité de l’étude.
Le sang sera collecté dans des tubes de séparation de sérum de 5 ml. Le sang pourra coaguler avant la centrifugation à 1000 x g pendant 10 minutes. Le sérum sera congelé et conservé à -80°C jusqu'à son traitement. 1 millilitre de chaque échantillon de sérum sera utilisé pour déterminer les concentrations de nutriments et d'hormones. Le reste du sérum sera utilisé pour la synthèse des protéines musculaires et l'analyse du test biologique mTORC1.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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California
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Sacramento, California, États-Unis, 95817
- UC Davis CTSC Clinical Research Center
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Adulte
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
Volontaires masculins et féminins actifs et en bonne santé, âgés de 18 à 30 ans et de poids normal (IMC compris entre 18 et 25 kg/m2). Pour être considérés comme actifs, les volontaires doivent respecter les lignes directrices suivantes de l'American College of Sports Medicine concernant l'activité physique pour les adultes en bonne santé. : pratiquer au moins 150 minutes par semaine d'activité physique d'intensité modérée à vigoureuse.
Critère d'exclusion:
Restrictions sanitaires ou alimentaires qui empêcheraient la consommation des aliments testés.
Allergie alimentaire connue au poulet. Anémie (faible nombre de globules rouges). Surpoids ou obésité (IMC > 25 kg/m2) Recevoir tout médicament susceptible d'interférer avec l'étude. Trouble métabolique ou endocrinien pouvant affecter la digestion, l'absorption et/ou la réponse physiologique à l'un des nutriments ingérés.
Ne répond actuellement pas aux recommandations de l'ACSM en matière d'activité physique (score IPAQ < 150 min/semaine d'activité physique modérée à vigoureuse.
Grossesse
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Autre
- Répartition: Randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation croisée
- Masquage: Tripler
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Expérimental: Poulet conventionnel
Ce bras recevra un repas de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de poitrine de poulet conventionnelle désossée et sans peau avec 250 ml d'eau.
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Ce bras recevra un repas de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de poitrine de poulet conventionnelle désossée et sans peau avec 250 ml d'eau.
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Expérimental: Poulet Régénératif
Ce bras recevra un repas de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de poitrine de poulet régénératrice désossée et sans peau avec 250 ml d'eau.
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Ce bras recevra un repas de 100 grammes (~ 32 g de protéines) de poitrine de poulet régénératrice désossée et sans peau avec 250 ml d'eau.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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profil d'acides aminés postprandiaux
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
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Les échantillons de sérum sont extraits avec 1 ml d'extraction Folch modifiée, suivi d'une centrifugation sous vide pour le séchage.
Les échantillons séchés seront reconstitués avec 100 µl d’ACN/eau à 75 %.
Le surnageant est ensuite injecté dans Aligent UPLC-QqQ pour l'analyse des acides aminés libres ciblés, des peptides courts et d'autres métabolites.
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Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
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profil peptidique court post-prandial
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
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Les échantillons de sérum sont extraits avec 1 ml d'extraction Folch modifiée, suivi d'une centrifugation sous vide pour le séchage.
Les échantillons séchés seront reconstitués avec 100 µl d’ACN/eau à 75 %.
Le surnageant est ensuite injecté dans Aligent UPLC-QqQ pour l'analyse des acides aminés libres ciblés, des peptides courts et d'autres métabolites.
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Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
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Synthèse des protéines musculaires
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
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Pour mesurer la synthèse des protéines musculaires, des cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (luciférase pcDNA3) seront utilisées.
Les cellules C2C12Luc seront étalées dans des plaques à 24 puits et différenciées sur 4 jours.
Les cellules C2C12 différenciées seront mises à jeun par lavage avec du PBS puis en les traitant avec un milieu de test (20 % de DMEM) pendant 15 minutes.
Les cellules musculaires à jeun seront ensuite traitées avec des milieux de test contenant 10 % de sérum de base ou nourris (à partir d'échantillons de sang à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas) pendant 3 heures.
Les cellules seront collectées dans un tampon de lyse passive et l'activité de la luciférase de luciole sera déterminée.
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Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
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Synthèse de protéines spécifiques à mTORC1
Délai: Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
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Pour mesurer la capacité de la farine de poulet (conventionnelle ou régénérative) à activer mTORC1, cellules musculaires C2C12 transfectées de manière stable avec un plasmide (luciférase pcDNA3-TOP) où l'ARNm de la luciférase contient un 5'TOP. L'ARNm 5'TOP, spécifiquement régulé par l'activité mTORC1, sera utilisé. Les cellules musculaires différenciées C2C12TOPLuc dans des plaques à 24 puits seront stimulées à l'aide du sérum de base ou nourri (à partir d'échantillons de sang à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas). Le degré d'activation de mTORC1 sera déterminé comme la différence de pentes entre les sérums de base et nourris. |
Ligne de base (0 heure) à 30, 60, 90, 120 et 180 minutes après le repas consommé
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Keith Baar, PhD, University of California, Davis
Publications et liens utiles
Publications générales
- Tipton KD, Ferrando AA, Phillips SM, Doyle D Jr, Wolfe RR. Postexercise net protein synthesis in human muscle from orally administered amino acids. Am J Physiol. 1999 Apr;276(4):E628-34. doi: 10.1152/ajpendo.1999.276.4.E628.
- Burd NA, West DW, Staples AW, Atherton PJ, Baker JM, Moore DR, Holwerda AM, Parise G, Rennie MJ, Baker SK, Phillips SM. Low-load high volume resistance exercise stimulates muscle protein synthesis more than high-load low volume resistance exercise in young men. PLoS One. 2010 Aug 9;5(8):e12033. doi: 10.1371/journal.pone.0012033.
- Chen L, Nelson DR, Zhao Y, Cui Z, Johnston JA. Relationship between muscle mass and muscle strength, and the impact of comorbidities: a population-based, cross-sectional study of older adults in the United States. BMC Geriatr. 2013 Jul 16;13:74. doi: 10.1186/1471-2318-13-74.
- Ruiz JR, Sui X, Lobelo F, Morrow JR Jr, Jackson AW, Sjostrom M, Blair SN. Association between muscular strength and mortality in men: prospective cohort study. BMJ. 2008 Jul 1;337(7661):a439. doi: 10.1136/bmj.a439.
- Srikanthan P, Karlamangla AS. Muscle mass index as a predictor of longevity in older adults. Am J Med. 2014 Jun;127(6):547-53. doi: 10.1016/j.amjmed.2014.02.007. Epub 2014 Feb 18.
- Schiaffino S, Dyar KA, Ciciliot S, Blaauw B, Sandri M. Mechanisms regulating skeletal muscle growth and atrophy. FEBS J. 2013 Sep;280(17):4294-314. doi: 10.1111/febs.12253. Epub 2013 Apr 17.
- Terzis G, Georgiadis G, Stratakos G, Vogiatzis I, Kavouras S, Manta P, Mascher H, Blomstrand E. Resistance exercise-induced increase in muscle mass correlates with p70S6 kinase phosphorylation in human subjects. Eur J Appl Physiol. 2008 Jan;102(2):145-52. doi: 10.1007/s00421-007-0564-y. Epub 2007 Sep 14.
- Srednicka-Tober D, Baranski M, Seal C, Sanderson R, Benbrook C, Steinshamn H, Gromadzka-Ostrowska J, Rembialkowska E, Skwarlo-Sonta K, Eyre M, Cozzi G, Krogh Larsen M, Jordon T, Niggli U, Sakowski T, Calder PC, Burdge GC, Sotiraki S, Stefanakis A, Yolcu H, Stergiadis S, Chatzidimitriou E, Butler G, Stewart G, Leifert C. Composition differences between organic and conventional meat: a systematic literature review and meta-analysis. Br J Nutr. 2016 Mar 28;115(6):994-1011. doi: 10.1017/S0007114515005073. Epub 2016 Feb 16.
- Davis H, Magistrali A, Butler G, Stergiadis S. Nutritional Benefits from Fatty Acids in Organic and Grass-Fed Beef. Foods. 2022 Feb 23;11(5):646. doi: 10.3390/foods11050646.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
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Termes liés à cette étude
Mots clés
Autres numéros d'identification d'étude
- 2190600
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