깊은 우식 병변이 있는 영구 대구치의 2회 방문 간접 치수 치료에서 오존 적용의 효과 (ozone)

2회 방문 간접 치수 요법에서 오존 적용의 항균 효과를 평가하기 위해 무작위 통제 임상 시험을 설계했습니다. 이 연구의 표본 크기는 각 그룹에 대해 35개로 결정되었습니다(%82 검정력, 0.50 유의 수준). 이 연구는 6-13세(평균 9.72)의 여성 49명과 남성 56명을 대상으로 진행되었습니다. 전체 환자는 아래쪽 첫 번째 영구 대구치 중 하나에서 치수 천공 위험이 있는 깊은 우식 병변을 가지고 있었습니다.

치아의 활력도를 냉열검사로 검사하고 필요한 임상 및 방사선 검사를 시행한 후 치아를 임의로 3개의 치료군으로 나누었다. chlorhexidine digluconate 적용 요법(양성 대조군), 가스 오존 적용을 통한 2회 방문 간접 치수 요법(실험군). 치료 절차는 국소 마취와 러버댐으로 치아를 격리하는 것으로 시작되었습니다. 주변 탈회 상아질과 표면 괴사 상아질은 완전히 제거되었고 중앙 부분에 약간의 우식을 남겼습니다. 손 민감도에 의해 잠재적으로 재광화 가능한 영향을 받은 상아질을 남겨두기로 결정했습니다. 대조군은 남아있는 우식 상아질을 수산화칼슘 기재로 덮고 일시적으로 글라스 아이오노머 시멘트로 와동을 봉쇄하였다. 양성대조군은 굴착 후 2% chlorhexidine digluconate를 붓을 이용하여 60초 동안 와동에 도포하였다. 제조업체 지침에 따라 웅덩이 용액을 건조하지 않고 새 브러시로 제거하여 부위를 촉촉하게 유지했습니다. 실험 그룹에서는 굴착 후 공동을 오존 전달 시스템을 사용하여 60초 동안 기체 오존에 노출시켰습니다. 제조업체에 따르면 HealOzone은 2,100ppm의 고정 농도로 오존을 생성합니다. 치료 중 치아 위의 기밀 밀봉이 깨지면 오존 생성이 중단되므로 각 치아의 크기에 따라 실리콘 캡을 선택했습니다. 소독제 도포 후, 이 두 그룹에 대한 대조군에서 전술한 바와 같이 절차를 완료하였다. 4개월 후 임시 글래스 아이오노머 시멘트와 수산화칼슘 베이스 재료를 제거하기 전 치아의 병리학적 상태를 평가하기 위해 임상 및 방사선 검사를 반복했습니다. 이 절차 후, 남아있는 탈회 상아질은 모든 그룹에서 완전히 제거되었습니다. 와동의 바닥은 수산화칼슘 기본 재료와 라이너로 글래스 아이오노머 시멘트로 덮였습니다. 최종 수복물은 2단계 셀프 에칭 본드와 복합레진으로 수행되었습니다.

임상 분석을 위해 상아질의 농도, 색상 및 습도를 3회에 걸쳐 기록하였다: 1단계 초기 굴착 후(T0), 4개월 기간 종료, 2단계 수산화칼슘 베이스 제거 직후(T0) T2) 및 2단계(T3)에서 최종 굴착 후. 상아질의 일관성은 프로빙에 의해 결정되었고 다음과 같이 분류되었습니다. 매우 부드럽다, 부드럽다, 중간 정도 단단하다, 단단하다 [8]. 상아질의 색은 밝은 노란색, 노란색, 밝은 갈색, 어두운 갈색/검은색으로 분류하였다. 또한 상아질을 탐침하여 수분 누출이 발생하면 습윤, 그렇지 않으면 건조로 분류하였다.

미생물학적 분석을 위해, 상아질 샘플은 초기 굴착 후(T0), 오존/클로르헥시딘 적용 직후(T1), 수산화칼슘 기반 물질 제거 직후 4개월 기간의 마지막에 4개의 다른 시간에 상아질 샘플을 채취했습니다. (T2) 및 최종 굴착 후(T3). T1 단계는 대조군에 존재하지 않았는데, 이 그룹에서는 소독제가 사용되지 않았기 때문입니다. 모든 다음 단계에서 동일한 부위에서 모든 샘플을 수집했는지 확인하기 위해 임상 사진을 촬영했습니다. 멸균된 No.16 round carbide bur(SS White Burs, Inc., New Jersey, USA)의 슬롯을 채울 수 있을 만큼 상아질 시료를 채취하여 1 ml 티오글루콜산 배지에 넣고 2시간 만에 미생물학 실험실로 이송하였다. 뮤탄스 연쇄상구균, 락토바실러스 및 콜로니 형성 단위(CFU)의 총 수를 분석합니다.

샘플을 실험실 조건에서 15초 동안 와류 혼합기에서 균질화했습니다. Streptoccus mutans에 대한 선택 배지로 Mitis Salivarius agar, Lactobacilli에 대한 Rogossa agar 및 총 CFU 수에 대해 %5 혈액을 보충한 Brain Hearth agar를 사용했습니다. 샘플을 48시간 동안 혐기적으로 배양하고 콜로니 수를 세었습니다.