Skuteczność aplikacji ozonu w dwuwizytowej pośredniej terapii miazgi stałych zębów trzonowych z głęboką próchnicą (ozone)

Randomizowane, kontrolowane badanie kliniczne miało na celu ocenę przeciwbakteryjnego działania ozonu w dwuwizytowej terapii pośredniej miazgi. Wielkość próby dla tego badania określono na 35 dla każdej grupy (% mocy 82, poziom istotności 0,50). Badanie to przeprowadzono z udziałem 49 kobiet i 56 mężczyzn w wieku od 6 do 13 lat (średnia 9,72). Cały pacjent miał głębokie ubytki próchnicowe z ryzykiem perforacji miazgi przy jednym z dolnych pierwszych stałych zębów trzonowych.

Żywotność zębów zbadano testem termicznym na zimno, wykonano niezbędne badania kliniczne i radiograficzne, a następnie zęby podzielono losowo na trzy grupy zabiegowe: dwuwizytowe pośrednie leczenie miazgi bez środka dezynfekującego (grupa kontrolna), dwuwizytowe pośrednie leczenie miazgi terapia z zastosowaniem diglukonianu chlorheksydyny (grupa kontrolna pozytywna) oraz dwuwizytowa pośrednia terapia miazgi z zastosowaniem ozonu gazowego (grupa eksperymentalna). Postępowanie lecznicze rozpoczęto od znieczulenia miejscowego i izolacji zęba koferdamem. Następnie całkowicie usunięto obwodową zdemineralizowaną zębinę i powierzchowną zębinę martwiczą, pozostawiając część próchnicy w części centralnej. Zdecydowano się pozostawić potencjalnie remineralizującą zębinę zajętą ​​nadwrażliwością dłoni. W grupie kontrolnej pozostałą zębinę próchnicową pokryto materiałem na bazie wodorotlenku wapnia, a ubytek czasowo uszczelniono cementem glasjonomerowym. W grupie kontroli pozytywnej, po ubytku, za pomocą pędzla nanoszono na ubytek 2% diglukonian chlorheksydyny na 60 sekund. Zgodnie z zaleceniami producenta kałuże roztworu usuwano nową szczotką bez wysychania, aby pozostawić wilgotne miejsce. W grupie eksperymentalnej, po wykopie, ubytek poddano działaniu ozonu gazowego przez 60 sekund za pomocą systemu dostarczania ozonu. Według producentów HealOzone wytwarza ozon o stałym stężeniu 2100 ppm. Produkcja ozonu zostaje zatrzymana, jeśli hermetyczne uszczelnienie nad zębem zostanie zerwane podczas leczenia, dlatego silikonowe nasadki zostały dobrane zgodnie z rozmiarem każdego zęba. Po zastosowaniu środków dezynfekujących procedurę zakończono jak opisano powyżej w grupie kontrolnej dla tych dwóch grup. Po czterech miesiącach powtórzono badania kliniczne i radiologiczne w celu oceny stanu patologicznego zębów przed usunięciem tymczasowego cementu glasjonomerowego i materiału na bazie wodorotlenku wapnia. Po tej procedurze pozostała zdemineralizowana zębina została całkowicie usunięta we wszystkich grupach. Następnie dno ubytku pokryto materiałem na bazie wodorotlenku wapnia i cementem glasjonomerowym jako wykładziną. Ostateczne uzupełnienia wykonano z 2-etapowego samotrawiącego systemu wiążącego i kompozytu.

Do analiz klinicznych trzykrotnie rejestrowano konsystencję, barwę i wilgotność zębiny: po wstępnym opracowaniu w pierwszym etapie (T0), pod koniec czteromiesięcznego okresu, bezpośrednio po usunięciu zasady wodorotlenku wapnia w drugim etapie ( T2) i po ostatecznym wykopie w drugim etapie (T3). Konsystencję zębiny określono sondą i sklasyfikowano jako; bardzo miękkie, miękkie, średnio twarde i twarde [8]. Kolor zębiny sklasyfikowano jako jasnożółty, żółty, jasnobrązowy, ciemnobrązowy/czarny. Dodatkowo sondowano zębinę iw przypadku wystąpienia wycieku wilgoci klasyfikowano ją jako mokrą, aw przypadku jej braku klasyfikowano jako suchą.

Do analiz mikrobiologicznych pobierano próbki zębiny w czterech różnych terminach: z pozostałej zębiny po wstępnym wykopie (T0), bezpośrednio po aplikacji ozonu/chloroheksydyny (T1), pod koniec 4-miesięcznego okresu bezpośrednio po usunięciu materiału bazowego z wodorotlenku wapnia (T2) i po ostatecznym wykopie (T3). Stadium T1 nie występowało w grupie kontrolnej, ponieważ w tej grupie nie stosowano żadnych środków dezynfekujących. Wykonano zdjęcia kliniczne, aby upewnić się, że wszystkie próbki zostały pobrane z tego samego miejsca na wszystkich kolejnych etapach. Próbki zębiny pobrano w ilości wystarczającej do wypełnienia otworów sterylnego okrągłego wiertła z węglików spiekanych nr 16 (SS White Burs, Inc., New Jersey, USA), a próbki umieszczono w 1 ml podłoża tioglukolanowego i przetransportowano do laboratorium mikrobiologicznego w ciągu 2 godzin do analizy pod kątem paciorkowców mutans, pałeczek kwasu mlekowego i całkowitej liczby jednostek tworzących kolonie (CFU).

Próbki homogenizowano na mieszalniku wirowym przez 15 sekund w warunkach laboratoryjnych. Zastosowano agar Mitis Salivarius jako podłoże selekcyjne dla Streptoccus mutans, agar Rogossa dla Lactobacilli i agar Brain Hearth z dodatkiem 5% krwi dla całkowitej liczby CFU. Próbki inkubowano w warunkach beztlenowych przez 48 godzin i liczono kolonie.