- ICH GCP
- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT03964129
BMAC 신경 동종이식 연구
말초 신경 수복 및 기능적 결과를 개선하기 위한 자가 골수 흡인 농축물(BMAC)을 사용한 탈세포화된 신경 동종이식의 임상 평가
연구 개요
연구 유형
등록 (실제)
단계
- 해당 없음
연락처 및 위치
연구 장소
-
-
Maryland
-
Baltimore, Maryland, 미국, 21218
- Curtis National Hand Center at MedStar Union Memorial Hospital
-
Bethesda, Maryland, 미국, 20889
- Walter Reed National Military Medical Center
-
-
Texas
-
Fort Sam Houston, Texas, 미국, 78234
- San Antonio Military Medical Center
-
-
참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
연구 대상 성별
설명
포함 기준:
- 18~74세의 남성 또는 임신하지 않은 여성.
- 말초 신경 탐색 또는 상지에 동종이식 이식을 진행합니다.
- 피험자는 연구 등록 시점에 입원 환자이거나 수술 일정이 잡혀 있어야 합니다.
- 상지의 척골, 정중, 요골 또는 근피신경에 대한 신경 전도 차단 손상이 손상 후 2년 미만인 경우.
- Avance Nerve Graft로 신경 갭의 근위부와 원위부 모두에 긴장 없는 종단간 신경 이식술을 기꺼이 받으십시오.
- 자신의 몸에서 골수를 채취하여 농축하고 Avance Nerve Graft를 삽입한 후 신경 손상 부위에 적용할 의향이 있습니다.
- 기꺼이 참여하고 18개월 동안 치료 및 평가 일정의 모든 측면을 준수할 수 있어야 합니다.
- 연구 참여에 대해 자체적으로 동의할 수 있고 연구 절차를 시작하기 전에 IRB 승인 서면 동의서에 서명하고 날짜를 기입할 의향이 있는 자.
- 감각 및 운동 기능에 영향을 미치거나 상지의 운동 기능에만 영향을 미치는 신경 전도 손상.
- 절제 후 신경 간격, 최대 7cm 포함.
제외 기준:
- 정기적인 인슐린 요법이 필요한 제1형 진성 당뇨병 또는 제2형 진성 당뇨병이 있는 피험자.
- 화학 요법, 방사선 요법 또는 신경 및/또는 혈관 시스템의 성장에 영향을 미치는 기타 알려진 치료로 치료를 받고 있거나 받을 것으로 예상되는 피험자.
- 신경퇴행성 질환, 신경병증 또는 당뇨병성 신경병증의 병력.
- 상지의 만성 허혈 상태의 병력.
- 정보에 입각한 동의를 방해하는 인지 제한 또는 정신 질환.
- 신경 손상 > 초기 손상 후 2년.
- 연구자의 재량에 따라 연구에 포함하기에 적합하지 않은 참가자.
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 주 목적: 치료
- 할당: 해당 없음
- 중재 모델: 단일 그룹 할당
- 마스킹: 없음(오픈 라벨)
무기와 개입
참가자 그룹 / 팔 |
개입 / 치료 |
|---|---|
|
실험적: 자가 BMAC를 이용한 Avance Nerve Graft
Avance Nerve Graft는 신경 손상 부위에 삽입됩니다.
골반의 전방 또는 후방 장골릉에서 40~60ml의 골수 흡인물을 채취합니다.
SmartPrep 원심분리기와 60ml BMAC 키트를 사용하여 7~10ml의 최종 BMAC를 얻습니다.
|
Avance Nerve Graft는 신경 손상 부위에 삽입됩니다.
골반의 전방 또는 후방 장골릉에서 40~60ml의 골수 흡인물을 채취합니다.
SmartPrep 원심분리기와 60ml BMAC 키트를 사용하여 7~10ml의 최종 BMAC를 얻습니다.
생성된 최종 BMAC 7~10ml 중 최종 농축액의 절반(3.5~5ml)이 접합 후 Avance Nerve Graft 위에 주입됩니다.
최종 농축액의 후반부(3.5~5ml)는 배양 배지가 들어 있는 멸균 튜브에 삽입되고 BMAC가 실제로 자가 골수 줄기 세포를 포함하는지 확인하기 위해 세포 처리 및 콜로니 분석을 위해 Cleveland Clinic Lerner 연구소로 밤새 배송됩니다. .
|
연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
BMAC로 Avance Nerve Graft를 받는 피험자 그룹과 Avance Nerve Graft로 신경 복구의 과거 데이터 사이의 AE의 특성과 발생률을 비교합니다.
기간: 18개월
|
감염, 상처 열개, 신경병증, 수근관 증후군, 출혈, 장액종 및 림프구와 같은 장기 연구 관련 AE를 치료에 의해 촉진될 수 있는 열거된 AE의 발생률의 변화와 함께 포착하고 분석할 것입니다. .
AE는 MedDRA 선호 용어 및 기관계 분류에 매핑됩니다.
AE의 발생은 MedDRA 선호 용어, 기관계 분류 및 중증도를 사용하여 복구 유형별로 요약됩니다.
모든 AE는 약어 및 선호 용어를 모두 보여주는 개별 주제에 대해 나열됩니다.
치료 긴급 SAE 및 수리와 관련된 AE의 개별 요약이 생성됩니다.
|
18개월
|
2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
폐쇄 테스트 절차를 사용하여 Rosen-Lundborg와 관련하여 과거 신경 자가 이식 점수에 대한 Avance Nerve Graft의 비열등성 및 우월성 테스트
기간: 18개월
|
Rosen-Lundborg와 관련하여 과거 신경 자가 이식 점수에 대한 Avance Nerve Graft의 비열등성 및 우월성 테스트는 폐쇄 테스트 절차를 사용하여 수행됩니다. 테스트 중인 가설은 다음과 같습니다. H01: Δ ≤ -Δ0 대 H11: Δ > -Δ0 H02: Δ = 0 대 H12: Δ ≠ 0 여기서 Δ = μC- μA는 Avance Nerve Graft 및 BMAC에 대한 평균 Rosen-Lundborg 점수 간의 차이입니다( μA) 및 과거 자가 이식 대조군(μC)에 대한 평균 Rosen-Lundborg 점수, Δ0은 비열등성 마진 0.51입니다. 비열등성 귀무가설(H01)을 먼저 검정하고, 기각되면 우월성 귀무가설(H02)을 평가합니다. 비공개 테스트 절차가 구현됨에 따라 다중 테스트에 대한 조정이 필요하지 않습니다. |
18개월
|
|
폐쇄 테스트 절차를 사용하여 Rosen-Lundborg 점수와 관련하여 Avance Nerve Graft + BMAC 대 Avance Nerve Graft 복구율의 비열등성 테스트
기간: 18개월
|
Rosen-Lundborg 점수와 관련하여 Avance Nerve Graft + BMAC 대 Avance Nerve Graft 회복률의 비열등성 테스트는 폐쇄 테스트 절차를 사용하여 수행됩니다. 테스트 중인 가설은 다음과 같습니다. H01: πA - πAB > Δ 대 H11: πA - πAB < Δ 여기서 πA는 Avance 신경 이식의 회복이고 πAB는 Avance와 BMAC의 회복입니다. Δ는 비열등성 마진 25% |
18개월
|
기타 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
움직임의 기준선 범위에 대한 운동 퍼센트 회복의 비교
기간: 18개월
|
수동 운동 범위, 능동 운동 범위 및 근력(M0-M5 ) 측정
|
18개월
|
|
기준선 그립 강도에 대한 모터 퍼센트 회복의 비교
기간: 18개월
|
신경감각 및 운동 테스트 시스템 AcroGrip 장치를 사용하여 킬로그램으로 측정한 기준선까지의 악력 회복 백분율(손상되지 않은 이웃 및/또는 반대측과 비교하여 복구된 신경의 측정된 평가의 차이로 정의됨)
|
18개월
|
|
모터 퍼센트 회복과 베이스라인 핀치 강도의 비교
기간: 18개월
|
Neurosensory & Motor Testing System AcroPinch 장치를 사용하여 킬로그램으로 측정한 베이스라인까지 핀치 강도 회복의 백분율(손상되지 않은 이웃 및/또는 반대측과 비교하여 복구된 신경의 측정된 평가의 차이로 정의됨)
|
18개월
|
|
회복 시간
기간: 18개월
|
18개월
|
|
|
팔 어깨 및 손의 빠른 장애 평가를 통한 기능적 결과(QuickDASH) 설문지
기간: 18개월
|
QuickDASH 장애/증상, 작업 모듈 및 스포츠/공연 예술 모듈 원시 점수(5점 만점) 및 최종 점수(100점 만점)가 기록됩니다.
원시 점수는 다음과 같이 계산됩니다. 원시 점수 = n 응답의 합계/n, 여기서 n은 완료된 항목의 수와 같습니다. 최종 점수(100점 만점)는 최소 장애를 나타내는 0에서 최대 장애를 나타내는 100까지 다음과 같이 계산됩니다. : 최종 점수 = (원시 점수 - 1) X 25
|
18개월
|
|
환자 보고 결과 측정 정보 시스템(PROMIS) 평가를 통한 기능적 결과
기간: 18개월
|
신체 기능, 통증 강도, 통증 간섭, 피로, 수면 장애 및 행동 평가에 대한 원시 및 표준화 점수가 기록됩니다.
원시 점수는 다음과 같이 계산됩니다. (원시 합계 X 도메인에 나열된 항목 수)/각 평가에 대해 실제로 응답한 항목 수.
그런 다음 원시 점수는 PROMIS 채점 매뉴얼의 변환표를 사용하여 표준화된 T-점수로 체계적으로 변환됩니다.
T 점수는 원시 점수를 평균 50, 표준 편차 10의 표준화된 점수로 재조정합니다.
T 점수가 높을수록 측정 중인 개념을 더 많이 나타냅니다.
|
18개월
|
|
운동 및 감각 신경 전도 연구(신경 전도 속도(NCV) 및/또는 근전도 검사(EMG))
기간: 12개월 및 18개월
|
NCV 및 EMG 테스트는 12개월 및 18개월에 운동 및 감각 재신경 분포의 속도 및 수준을 평가하기 위해 대상 근육 그룹에서 수행됩니다.
|
12개월 및 18개월
|
|
기준치에 대한 감각 백분율 회복의 비교
기간: 18개월
|
NSMTS(Neurosensory & Motor Testing System) Pressure Specified Sensory Device를 사용하여 기준선까지의 감각 회복 백분율(인접한 비손상 및/또는 반대측과 비교하여 복구된 신경의 측정된 평가의 차이로 정의됨). 1점 정적 변별, 1점 정적 이동 변별, 2점 정적 변별 및 2점 이동 변별은 프롱 압력(g/mm^2)으로 측정됩니다.
|
18개월
|
공동 작업자 및 조사자
협력자
수사관
- 수석 연구원: Julia Nuelle, MD, Brooke Army Medical Center
- 수석 연구원: Leon J Nesti, MD/PhD, Walter Reed National Military Medical Center
- 수석 연구원: Kenneth Means, MD, Curtis Hand Center at MedStar Union Memorial Hospital
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Hegde V, Shonuga O, Ellis S, Fragomen A, Kennedy J, Kudryashov V, Lane JM. A prospective comparison of 3 approved systems for autologous bone marrow concentration demonstrated nonequivalency in progenitor cell number and concentration. J Orthop Trauma. 2014 Oct;28(10):591-8. doi: 10.1097/BOT.0000000000000113.
- Lundborg G, Rosen B. The two-point discrimination test--time for a re-appraisal? J Hand Surg Br. 2004 Oct;29(5):418-22. doi: 10.1016/j.jhsb.2004.02.008.
- Hendrich C, Franz E, Waertel G, Krebs R, Jager M. Safety of autologous bone marrow aspiration concentrate transplantation: initial experiences in 101 patients. Orthop Rev (Pavia). 2009 Oct 10;1(2):e32. doi: 10.4081/or.2009.e32.
- Lundborg G. A 25-year perspective of peripheral nerve surgery: evolving neuroscientific concepts and clinical significance. J Hand Surg Am. 2000 May;25(3):391-414. doi: 10.1053/jhsu.2000.4165.
- Brooks DN, Weber RV, Chao JD, Rinker BD, Zoldos J, Robichaux MR, Ruggeri SB, Anderson KA, Bonatz EE, Wisotsky SM, Cho MS, Wilson C, Cooper EO, Ingari JV, Safa B, Parrett BM, Buncke GM. Processed nerve allografts for peripheral nerve reconstruction: a multicenter study of utilization and outcomes in sensory, mixed, and motor nerve reconstructions. Microsurgery. 2012 Jan;32(1):1-14. doi: 10.1002/micr.20975. Epub 2011 Nov 28.
- Berger A, Millesi H. Nerve grafting. Clin Orthop Relat Res. 1978 Jun;(133):49-55.
- Brushart, T.M. (2011). Nerve Repair (Oxford University Press).
- Centeno CJ, Al-Sayegh H, Freeman MD, Smith J, Murrell WD, Bubnov R. A multi-center analysis of adverse events among two thousand, three hundred and seventy two adult patients undergoing adult autologous stem cell therapy for orthopaedic conditions. Int Orthop. 2016 Aug;40(8):1755-1765. doi: 10.1007/s00264-016-3162-y. Epub 2016 Mar 30. Erratum In: Int Orthop. 2018 Jan;42(1):223.
- Center for Biologics Evaluation and Research, C. for D. and R.H. Cellular & Gene Therapy Guidances - Minimal Manipulation of Human Cells, Tissues, and Cellular and Tissue-Based Products: Draft Guidance.
- Chen CJ, Ou YC, Liao SL, Chen WY, Chen SY, Wu CW, Wang CC, Wang WY, Huang YS, Hsu SH. Transplantation of bone marrow stromal cells for peripheral nerve repair. Exp Neurol. 2007 Mar;204(1):443-53. doi: 10.1016/j.expneurol.2006.12.004. Epub 2007 Jan 12.
- Cho MS, Rinker BD, Weber RV, Chao JD, Ingari JV, Brooks D, Buncke GM. Functional outcome following nerve repair in the upper extremity using processed nerve allograft. J Hand Surg Am. 2012 Nov;37(11):2340-9. doi: 10.1016/j.jhsa.2012.08.028.
- Dezawa M, Takahashi I, Esaki M, Takano M, Sawada H. Sciatic nerve regeneration in rats induced by transplantation of in vitro differentiated bone-marrow stromal cells. Eur J Neurosci. 2001 Dec;14(11):1771-6. doi: 10.1046/j.0953-816x.2001.01814.x.
- Ding F, Wu J, Yang Y, Hu W, Zhu Q, Tang X, Liu J, Gu X. Use of tissue-engineered nerve grafts consisting of a chitosan/poly(lactic-co-glycolic acid)-based scaffold included with bone marrow mesenchymal cells for bridging 50-mm dog sciatic nerve gaps. Tissue Eng Part A. 2010 Dec;16(12):3779-90. doi: 10.1089/ten.TEA.2010.0299. Epub 2010 Sep 6.
- Ducic I, Fu R, Iorio ML. Innovative treatment of peripheral nerve injuries: combined reconstructive concepts. Ann Plast Surg. 2012 Feb;68(2):180-7. doi: 10.1097/SAP.0b013e3182361b23.
- Dvali L, Mackinnon S. Nerve repair, grafting, and nerve transfers. Clin Plast Surg. 2003 Apr;30(2):203-21. doi: 10.1016/s0094-1298(02)00096-2.
- Frykman, G., and Gramyk, K. (1991). Results of Nerve Grafting In: Gelberman R. Operative nerve repair and reconstruction. (JB Lippincott).
- Galanakos SP, Zoubos AB, Ignatiadis I, Papakostas I, Gerostathopoulos NE, Soucacos PN. Repair of complete nerve lacerations at the forearm: an outcome study using Rosen-Lundborg protocol. Microsurgery. 2011 May;31(4):253-62. doi: 10.1002/micr.20845. Epub 2010 Dec 3.
- Graham, James B., Xue, Qing-Shan, Neubauer, Debbie, and Muir, David (2009). A chondroitinase-treated, decellularized nerve allograft compares favorably to the cellular isograft in rat peripheral nerve repair. 2, 19-29
- Guo Y, Chen G, Tian G, Tapia C. Sensory recovery following decellularized nerve allograft transplantation for digital nerve repair. J Plast Surg Hand Surg. 2013 Dec;47(6):451-3. doi: 10.3109/2000656X.2013.778862. Epub 2013 Jul 15.
- Hernigou P, Homma Y, Flouzat-Lachaniette CH, Poignard A, Chevallier N, Rouard H. Cancer risk is not increased in patients treated for orthopaedic diseases with autologous bone marrow cell concentrate. J Bone Joint Surg Am. 2013 Dec 18;95(24):2215-21. doi: 10.2106/JBJS.M.00261.
- Hu N, Wu H, Xue C, Gong Y, Wu J, Xiao Z, Yang Y, Ding F, Gu X. Long-term outcome of the repair of 50 mm long median nerve defects in rhesus monkeys with marrow mesenchymal stem cells-containing, chitosan-based tissue engineered nerve grafts. Biomaterials. 2013 Jan;34(1):100-11. doi: 10.1016/j.biomaterials.2012.09.020. Epub 2012 Oct 11.
- Hu J, Zhu QT, Liu XL, Xu YB, Zhu JK. Repair of extended peripheral nerve lesions in rhesus monkeys using acellular allogenic nerve grafts implanted with autologous mesenchymal stem cells. Exp Neurol. 2007 Apr;204(2):658-66. doi: 10.1016/j.expneurol.2006.11.018. Epub 2007 Jan 10.
- IJpma FF, Nicolai JP, Meek MF. Sural nerve donor-site morbidity: thirty-four years of follow-up. Ann Plast Surg. 2006 Oct;57(4):391-5. doi: 10.1097/01.sap.0000221963.66229.b6.
- Isaacs J. Major peripheral nerve injuries. Hand Clin. 2013 Aug;29(3):371-82. doi: 10.1016/j.hcl.2013.04.006. Epub 2013 Jun 12.
- Jackson WM, Alexander PG, Bulken-Hoover JD, Vogler JA, Ji Y, McKay P, Nesti LJ, Tuan RS. Mesenchymal progenitor cells derived from traumatized muscle enhance neurite growth. J Tissue Eng Regen Med. 2013 Jun;7(6):443-51. doi: 10.1002/term.539. Epub 2012 May 3.
- Jager M, Jelinek EM, Wess KM, Scharfstadt A, Jacobson M, Kevy SV, Krauspe R. Bone marrow concentrate: a novel strategy for bone defect treatment. Curr Stem Cell Res Ther. 2009 Jan;4(1):34-43. doi: 10.2174/157488809787169039.
- Johnson PJ, Newton P, Hunter DA, Mackinnon SE. Nerve endoneurial microstructure facilitates uniform distribution of regenerative fibers: a post hoc comparison of midgraft nerve fiber densities. J Reconstr Microsurg. 2011 Feb;27(2):83-90. doi: 10.1055/s-0030-1267834. Epub 2010 Oct 13.
- Karabekmez FE, Duymaz A, Moran SL. Early clinical outcomes with the use of decellularized nerve allograft for repair of sensory defects within the hand. Hand (N Y). 2009 Sep;4(3):245-9. doi: 10.1007/s11552-009-9195-6. Epub 2009 May 2.
- Kragh, Kirby, J.M., and Ficke, J.R. Combat casualty care : lessons learned from OEF and OIF. Chapter 9: Extremity Injury. (2012) Editor-in-chief, Martha K. Lenhart; medical editor, Eric Savitsky; military editor, Brian Eastridge. Pgs. 393-484
- Lin MY, Manzano G, Gupta R. Nerve allografts and conduits in peripheral nerve repair. Hand Clin. 2013 Aug;29(3):331-48. doi: 10.1016/j.hcl.2013.04.003.
- Lohmeyer JA, Siemers F, Machens HG, Mailander P. The clinical use of artificial nerve conduits for digital nerve repair: a prospective cohort study and literature review. J Reconstr Microsurg. 2009 Jan;25(1):55-61. doi: 10.1055/s-0028-1103505. Epub 2008 Nov 26.
- Mackinnon SE, Doolabh VB, Novak CB, Trulock EP. Clinical outcome following nerve allograft transplantation. Plast Reconstr Surg. 2001 May;107(6):1419-29. doi: 10.1097/00006534-200105000-00016.
- Meek MF, Coert JH, Robinson PH. Poor results after nerve grafting in the upper extremity: Quo vadis? Microsurgery. 2005;25(5):396-402. doi: 10.1002/micr.20137.
- Mimura T, Dezawa M, Kanno H, Sawada H, Yamamoto I. Peripheral nerve regeneration by transplantation of bone marrow stromal cell-derived Schwann cells in adult rats. J Neurosurg. 2004 Nov;101(5):806-12. doi: 10.3171/jns.2004.101.5.0806.
- Neubauer D, Graham JB, Muir D. Nerve grafts with various sensory and motor fiber compositions are equally effective for the repair of a mixed nerve defect. Exp Neurol. 2010 May;223(1):203-6. doi: 10.1016/j.expneurol.2009.08.013. Epub 2009 Aug 22.
- Noble J, Munro CA, Prasad VS, Midha R. Analysis of upper and lower extremity peripheral nerve injuries in a population of patients with multiple injuries. J Trauma. 1998 Jul;45(1):116-22. doi: 10.1097/00005373-199807000-00025.
- PRWeb. (2015). AxoGen Inc.'s Avance Nerve Graft Data Presented During Bese Clinical Papers Session at the 70th Annual Meeting of the American Society for Surgery of the Hand. Vocus, Inc. Sep. 10, 2015
- Reyes M, Verfaillie CM. Characterization of multipotent adult progenitor cells, a subpopulation of mesenchymal stem cells. Ann N Y Acad Sci. 2001 Jun;938:231-3; discussion 233-5. doi: 10.1111/j.1749-6632.2001.tb03593.x.
- Rinker B, Liau JY. A prospective randomized study comparing woven polyglycolic acid and autogenous vein conduits for reconstruction of digital nerve gaps. J Hand Surg Am. 2011 May;36(5):775-81. doi: 10.1016/j.jhsa.2011.01.030. Epub 2011 Apr 12.
- Siemionow M, Duggan W, Brzezicki G, Klimczak A, Grykien C, Gatherwright J, Nair D. Peripheral nerve defect repair with epineural tubes supported with bone marrow stromal cells: a preliminary report. Ann Plast Surg. 2011 Jul;67(1):73-84. doi: 10.1097/SAP.0b013e318223c2db.
- Taras JS, Amin N, Patel N, McCabe LA. Allograft reconstruction for digital nerve loss. J Hand Surg Am. 2013 Oct;38(10):1965-71. doi: 10.1016/j.jhsa.2013.07.008. Epub 2013 Aug 30.
- Wakao S, Hayashi T, Kitada M, Kohama M, Matsue D, Teramoto N, Ose T, Itokazu Y, Koshino K, Watabe H, Iida H, Takamoto T, Tabata Y, Dezawa M. Long-term observation of auto-cell transplantation in non-human primate reveals safety and efficiency of bone marrow stromal cell-derived Schwann cells in peripheral nerve regeneration. Exp Neurol. 2010 Jun;223(2):537-47. doi: 10.1016/j.expneurol.2010.01.022. Epub 2010 Feb 11.
- Wang D, Liu XL, Zhu JK, Jiang L, Hu J, Zhang Y, Yang LM, Wang HG, Yi JH. Bridging small-gap peripheral nerve defects using acellular nerve allograft implanted with autologous bone marrow stromal cells in primates. Brain Res. 2008 Jan 10;1188:44-53. doi: 10.1016/j.brainres.2007.09.098. Epub 2007 Oct 18.
- Wang D, Liu XL, Zhu JK, Hu J, Jiang L, Zhang Y, Yang LM, Wang HG, Zhu QT, Yi JH, Xi TF. Repairing large radial nerve defects by acellular nerve allografts seeded with autologous bone marrow stromal cells in a monkey model. J Neurotrauma. 2010 Oct;27(10):1935-43. doi: 10.1089/neu.2010.1352.
- Wangensteen KJ, Kalliainen LK. Collagen tube conduits in peripheral nerve repair: a retrospective analysis. Hand (N Y). 2010 Sep;5(3):273-7. doi: 10.1007/s11552-009-9245-0. Epub 2009 Nov 24.
- Weber RA, Breidenbach WC, Brown RE, Jabaley ME, Mass DP. A randomized prospective study of polyglycolic acid conduits for digital nerve reconstruction in humans. Plast Reconstr Surg. 2000 Oct;106(5):1036-45; discussion 1046-8. doi: 10.1097/00006534-200010000-00013.
- Whitlock EL, Tuffaha SH, Luciano JP, Yan Y, Hunter DA, Magill CK, Moore AM, Tong AY, Mackinnon SE, Borschel GH. Processed allografts and type I collagen conduits for repair of peripheral nerve gaps. Muscle Nerve. 2009 Jun;39(6):787-99. doi: 10.1002/mus.21220.
- Zuniga JR. Sensory outcomes after reconstruction of lingual and inferior alveolar nerve discontinuities using processed nerve allograft--a case series. J Oral Maxillofac Surg. 2015 Apr;73(4):734-44. doi: 10.1016/j.joms.2014.10.030. Epub 2014 Nov 13.
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
기본 완료 (예상)
연구 완료 (예상)
연구 등록 날짜
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
마지막으로 확인됨
추가 정보
이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .