비용종을 동반한 만성 비부비동염(CRSwNP)이 있거나 없는 중증 천식 환자의 생물학적 치료 반응에서 상피 장벽 무결성의 역할.
2024년 1월 17일 업데이트: Nikolaos Tzanakis, University of Crete
비용종을 동반한 만성 비부비동염(CRSwNP)이 있거나 없는 중증 천식 환자의 생물학적 치료 반응에서 상피 장벽 무결성의 역할. CRSwNP 관리 여부에 관계없이 심한 천식에서 상피 장벽 단백질의 흘림을 바이오마커로 사용할 수 있습니까?
천식 발달 및 중증도의 병리생리학에 대한 이해의 진보는 특히 더 만성적이고 심각한 질병에서 기관지 상피의 두드러진 역할을 지적했습니다.
연구에 따르면 천식의 기도 호산구성 염증은 상피 손상 및 기도의 구조적 변화(공동 기도 벽 리모델링이라고 함)와 관련이 있습니다.
만성 기도 염증 및 재형성은 함께 기관지 과민성, 고정된 기류 폐쇄 또는 폐 기능의 진행성 손실 및 천식의 임상적 중증도와 연관됩니다.
비용종을 동반한 만성 비부비동염(CRSwNP)은 유사한 병태생리학을 공유하는 중증 천식과 종종 공존하는 또 다른 호흡기 염증성 질환입니다.
연구자들은 상피 장벽 완전성이 중증 호산구성 천식 및 비용종증의 병태생리학 및 중증 천식 환자의 항-IL5 요법에 대한 반응에서 역할을 할 수 있으며, 상피 장벽 단백질의 제거가 중증 천식 관리에서 바이오마커로 사용될 수 있다고 가정합니다. 천식.
이를 연구하기 위해 조사관은 그리스 크레타 섬에 거주하고 폐병 전문의가 평가한 항-IL5 치료 시작 기준을 충족하는 CRSwNP 유무에 관계없이 성인 중증 천식 환자에 대한 전향적 코호트 연구를 수행할 예정입니다.
참가자는 실제 조건에서 2년 간 편의 샘플링으로 모집되며 치료 시작 후 1년 동안 추적 관찰됩니다.
중증 천식이 없는 비용종증으로 진단된 피험자의 대조군이 사용됩니다.
적격 피험자는 방사선(CT) 및 내시경 조사를 통해 임상 평가를 받게 됩니다.
혈청, 가래, 비강 분비물, 비강 및 기관지 생검 샘플은 3개 그룹 간의 임상병리학적 차이와 CRSwNP 없이 SEA에서 항-IL5 요법에 대한 반응을 평가하기 위해 얻을 것입니다.
연구 개요
연구 유형
관찰
등록 (추정된)
85
연락처 및 위치
이 섹션에서는 연구를 수행하는 사람들의 연락처 정보와 이 연구가 수행되는 장소에 대한 정보를 제공합니다.
연구 연락처
- 이름: Nikolaos Tzanakis, Professor
- 전화번호: 6984643636
- 이메일: tzanakis@med.uoc.gr
연구 연락처 백업
- 이름: Katerina Antoniou, Professor
- 전화번호: 6972300105
- 이메일: kantoniou@uoc.gr
연구 장소
-
-
Crete
-
Heraklion, Crete, 그리스, 71500
- 모집하지 않고 적극적으로
- "PAGNI" University Hospital, Crete
-
Heraklion, Crete, 그리스, 71500
- 모병
- Aikaterini Antoniou
-
연락하다:
- Aikaterini Antoniou, Professor
- 전화번호: +306972300105
- 이메일: kantoniou@uoc.gr
-
부수사관:
- Aikaterini Antoniou, Professor
-
-
참여기준
연구원은 적격성 기준이라는 특정 설명에 맞는 사람을 찾습니다. 이러한 기준의 몇 가지 예는 개인의 일반적인 건강 상태 또는 이전 치료입니다.
자격 기준
공부할 수 있는 나이
18년 이상 (성인, 고령자)
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
아니
샘플링 방법
비확률 샘플
연구 인구
CRSwNP 유무에 관계없이 항-IL5/항-IL5R 치료에 순진하고 항-IL5(메폴리주맙)를 사용한 생물학적 요법에 대한 요구 사항을 충족하는 중증 호산구성 천식 성인
설명
포함 기준:
- 정보에 입각한 서면 동의를 제공할 수 있습니다(연구 참여 정보에 입각한 동의 양식): 연구에 참여하기 전에 서면 정보에 입각한 동의를 제공할 수 있으며 여기에는 동의 양식에 나열된 요구 사항 및 제한 사항을 준수할 수 있는 능력이 포함됩니다. 피험자는 학습 관련 자료를 완성하기에 충분한 수준에서 읽고, 이해하고, 쓸 수 있어야 합니다.
- 안티 IL5/IL5R 순진
- 확인된 천식 진단 및 중증도 및 치료 요구 사항(중증 천식 그룹의 경우 상자 1-3 참조). 두 번째 대조군의 경우 CRSwNP 환자는 호흡기 전문의에 의해 경미한 천식(GINA 단계 1-2) 또는 천식 없음 진단을 받아야 합니다.
- 용종증은 CRSwNP로 간주하기 위해 양측성이어야 합니다.
- 방아쇠 및 관련 동반이환이 평가되었으며 능동적 또는 수동적 흡연, 베타 차단제, 아스피린/NSAID, 알레르겐 노출과 같은 방아쇠; 비염, 비만, GERD, OSA, VCD, 우울증/불안과 같은 동반이환.
- 연령: 성인 ≥18세
- 모든 흡연 상태
- 모든 민족
- 사회보장 범주 및/또는 건강 보험에 가입되어 있거나 수혜자여야 합니다.
- 성별: 남성 및 적격한 여성. 연구 참여 자격을 갖추기 위해 가임 여성은 후속 조치 기간 동안(마지막 주사 투여 후 4개월 동안) 허용 가능한 피임 방법을 일관되고 올바르게 사용하기로 약속해야 합니다. 혈청 임신 검사는 모든 여성에게 필요합니다. 이 테스트는 초기 스크리닝 방문 시 수행됩니다. 또한 생물학적 제품 주입 전 1년 추적 방문까지 각 예정된 치료 방문 동안 모든 여성에게 소변 임신 검사를 제공할 수 있습니다(선택 사항).
검사실 이상: 조사관이 판단한 방문 1의 혈액학적, 생화학적 또는 소변검사 스크린에서 임상적으로 유의한 이상(SEA에서 관찰된 것 제외)의 증거가 없습니다.
- 천식 악화: 진행 중인 천식 악화가 있는 피험자는 검사자가 피험자가 기본 천식 상태로 돌아갔다고 생각할 때까지 스크리닝 및 치료 시작 방문을 연기해야 합니다. 4주의 스크리닝 기간(방문 1 및 1a)이 경과한 경우 대상자는 스크리닝 실패로 간주되어야 합니다. 악화는 전신 CS 및/또는 응급실 방문 또는 입원을 필요로 하는 천식의 악화로 정의됩니다. 경구 코르티코스테로이드를 유지하는 피험자의 경우, 경구 CS를 필요로 하는 악화는 적어도 3일 동안 기존 용량의 두 배 이상의 경구/전신 코르티코스테로이드를 사용하는 것으로 정의됩니다.
- 유지 천식 요법: 스크리닝 기간 동안 기준 ICS 및/또는 추가 제어 약물의 용량 또는 요법에 변화가 없습니다(악화 치료 제외).
- 유지 CRSwNP: 스크리닝 기간 동안 기준선 비강내 CS 및/또는 추가 제어 약물의 용량 또는 요법에 변화 없음(악화 치료 제외).
- 이전에 비용종 제거 수술을 받은 피험자는 참여가 허용되며 CRSwNP(심각한 천식 여부)가 있는 피험자로 간주됩니다. 그러나 비용종 제거를 위한 수술을 한 번 이상 받은 피험자는 연구 스크리닝에서 비용종이 없더라도 CRSwNP가 없는 피험자로 간주할 수 없습니다.
- 중증 천식 환자는 항-IL5 치료(메폴리주맙)와 함께 생물학적 요법에 대한 요건을 충족해야 합니다.
제외 기준:
- 임신
- 방문 1에서의 현재 악화(안정적일 때 반복 스크리닝). 악화가 방문 1a까지 지속되는 경우 대상을 제외합니다.
- 데이터 수집 양식 작성을 방해하는 인지 장애
- 의료 의존도가 높은 사람들
- 심각한 생명 제한 동반 질환이 있는 사람
- 기타 호산구성 상태(호산구성 육아종 다발혈관염(처그-스트라우스 증후군), 호산구성 식도염 등)
- 편측 용종증
- 천식 이외의 폐질환 일차진단(만성폐쇄성폐질환(COPD), 천식-COPD 중첩(ACO), 간질성폐질환, 사르코이드증, 기관지확장증, 낭성섬유증, 원발성 섬모운동이상증, 활동성 결핵, 알레르기성 기관지폐 아스페르길루스증(ABPA))
- 현재 폐암 또는 기타 혈액, 림프 또는 고형 장기 악성 종양
- 전신 코르티코스테로이드, 면역억제제 또는 생물학적 치료를 필요로 하는 피부, 근육-골격계 또는 위장계의 자가면역 질환 및 다발혈관염을 동반한 육아종증(베게너 육아종증) 환자
- 연구 및 치료 방문에 참석할 수 없음
- 그리스어 또는 영어를 이해하고 말할 수 없음
공부 계획
이 섹션에서는 연구 설계 방법과 연구가 측정하는 내용을 포함하여 연구 계획에 대한 세부 정보를 제공합니다.
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 관찰 모델: 보병대
- 시간 관점: 유망한
코호트 및 개입
그룹/코호트 |
개입 / 치료 |
|---|---|
|
CRSwNP가 없는 중증 천식
대조군; 항-IL5 순진 중증 천식 환자의 n~20
|
SEA에 대한 생물학적 치료제인 항-IL5 치료를 받을 자격이 있는 SEA 환자
|
|
CRSwNP를 동반한 중증 천식
항-IL5 나이브 중증 천식의 n~40
|
SEA에 대한 생물학적 치료제인 항-IL5 치료를 받을 자격이 있는 SEA 환자
|
|
천식이 없거나 천식이 없는 피험자 CRSwNP
~25;제2 대조군
|
연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 CRSwNP와 천식이 없거나 없는 CRSwNP) 간의 객담 원주 상피 세포(CEP)의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 객담 CEP의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
우리는 CEPs 비율과 카운트를 측정하기 위해 참가자로부터 갓 분리된 가래 세포 현탁액에 유동 세포 계측법을 사용할 것입니다.
정상 범위의 객담 CEP 비율(CEP % 높음 = ≥11%) 또는 숫자(CEP 수가 높음 = ≥18.1 × 10^4/mL)에 대해 이전에 제안된 컷오프 값을 고려할 수 있습니다.
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 객담 및 비강 분비물의 E-cadherin 단백질 수준의 차이 및 항-IL5 치료 개시 후 1년의 E-cadherin 단백질 수준의 변화 CRSwNP 없이 SEA에서
기간: 기준선 및 1년
|
ELISA로 측정한 가래 및 비강 분비물 내 용해성 E-cadherin.
데이터는 원래 가래/분비물에서 밀리리터당 나노그램으로 표시됩니다.
원주 상피 세포 상의 E-카드헤린의 세포 표면 발현은 유동 세포측정법에 의해 분석될 수 있다.
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 간의 비강 및 기관지 상피 두께의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 상피 두께의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
상피 두께는 상피 표면적을 기저막(BM) 길이로 나누어 생검에서 결정됩니다.
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 비강 및 기관지 상피 완전성의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후의 상피 완전성 변화
기간: 기준선 및 1년
|
상피 무결성은 생검 섹션에서 평가되고 정상 상피(BM에서 분리되지 않은 기저 및 섬모 원주 상피 세포의 층)로 덮힌 BM의 백분율(%)로 표시됩니다.
|
기준선 및 1년
|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP 없는 SEA 및 천식 없는 CRSwNP) 사이의 비강 및 기관지 상피 E-cadherin 발현의 차이 및 SEA w/o에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 단백질 발현의 변화 CRSwNP
기간: 기준선 및 1년
|
생검에서 상피 E-카드헤린 발현은 면역조직화학으로 측정되고 E-카드헤린 양성 온전한 상피로 덮힌 BM의 백분율 및/또는 강하고 중간이며 약한 상피 E-카드헤린 염색으로 표현됩니다.
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP 없는 SEA 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 비강 및 기관지 기저막 두께(BM)의 차이 및 SEA w에서 항-IL5 치료 개시 후 1년 동안 기저막 두께의 변화 /o CRSwNP
기간: 기준선 및 1년
|
생검에서 BM 두께는 BM 표면적을 BM 길이로 나눈 값으로 표시됩니다.
|
기준선 및 1년
|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP 없는 SEA 및 천식 없는 CRSwNP) 사이의 CT 평가 기도벽 두께(WT)의 차이 및 SEA 없는 SEA에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 WT의 변화 CRSwNP
기간: 기준선 및 1년
|
기도 벽 두께(WT)를 측정하기 위해 흉부의 고해상도 컴퓨터 단층 촬영을 사용할 것입니다.
기도 크기는 기관지의 접선 보기를 얻을 수 있는 우측 말단 분절 기관지 및 우측 후방 기저 분절 기관지의 연속 슬라이스에서 측정됩니다.
2 기관지의 평균값은 분석에 사용됩니다.
|
기준선 및 1년
|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 CRSwNP 병기의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 CRSwNP 병기의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
Lund-Mackay 점수는 만성 비부비동염의 방사선 병기 결정에 널리 사용됩니다.
부비동 컴퓨터 단층촬영(CT) 분석을 위한 많은 채점 시스템이 있지만 Lund-Mackay 시스템은 최고의 서버 간 및 서버 내 합의를 가지고 있습니다.
LMK 스코어링에서, 부비동(상악골, 전방/후방 사골골, 접형골 및 전두엽)은 각각 혼탁도 0-2 등급(0, 정상, 1, 부분 혼탁, 2, 전체 혼탁)으로 점수를 매깁니다.
구골구 복합체는 0과 2의 2점 척도(0, 폐색되지 않음, 2, 폐색됨)로 점수화됩니다.
각 측면의 점수 범위는 0(모든 부비동의 완전한 투명도)에서 12(모든 부비동의 완전한 불투명도)이며, 양쪽의 총 LMK 점수는 24입니다. 0의.
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 악화율 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 악화율 변화
기간: 기준선 및 1년
|
지난 12개월 동안 악화 횟수.
악화는 전신 CS 및/또는 응급실 방문 또는 입원을 필요로 하는 천식의 악화로 정의됩니다.
경구 코르티코스테로이드를 유지하는 피험자의 경우, 경구 CS가 필요한 악화는 적어도 3일 동안 기존 용량의 두 배 이상의 경구/전신 코르티코스테로이드를 사용하는 것으로 정의됩니다.
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 간 폐 기능의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 폐 기능의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
FEV1(리터 및 %예측), FVC(리터 및 %예측, FEV1/FVC(%) 기관지확장제 전후 검사 포함
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 부비동 수술 필요성의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 후 1년에 부비동 수술 필요성의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
1년차에 부비동 수술의 필요성이 감소한 참가자 수(%). 수술은 ENP 점수 >=3 또는 ENP 점수 2 및 TNSS 점수 >7에서 필요한 것으로 간주됩니다. 폴립(ENP) 점수: 0=폴립 없음,1=중비도에 작은 폴립이 중비갑개 하연 아래에 도달하지 않음, 2=폴립이 중비갑개 하연 아래에 도달함, 3=대형 폴립이 하비갑개 하연에 도달함 하비갑개의 경계 또는 중비갑개 내측 폴립, 4=하비강의 완전한 폐색을 유발하는 큰 폴립. 두 개의 콧구멍 점수 중 더 높은 점수가 도출되어 분석에 사용됩니다. VAS(0 내지 10cm)로 4가지 비용종증 증상의 중증도(각 증상에 대해 하나의 VAS): 콧물; 목구멍의 점액; 비강 막힘; 후각 상실, 총 비강 증상 점수(TNSS). 척도의 왼쪽(0)은 "곤란하지 않음"을 나타내고, 척도의 오른쪽(10)은 "가장 곤란한 일"을 나타냅니다. |
기준선 및 1년
|
2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 간 총 IgE의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 총 IgE의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
총 혈청 IgE(UI/ml)
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 혈중 호산구 수의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 혈중 호산구 수의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
혈액 호산구 차등 계수(숫자 및 백분율)
|
기준선 및 1년
|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 객담 호산구 수의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 객담 호산구 수의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
유도된 객담에서 얻은 감별 세포 수의 호산구 수(숫자 x10^4/mL 및 %)
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 간의 FeNO 차이 및 CRSwNP 없는 SEA에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 FeNO 변화
기간: 기준선 및 1년
|
부분 호기 산화질소(FeNO ppb)
|
기준선 및 1년
|
|
베이스라인에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 천식 조절 테스트(ACT)의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 천식 조절의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
ACT는 4주 회상(증상 및 일상 기능)과 함께 5개 항목을 포함합니다.
보다 구체적으로, ACT는 숨가쁨 및 일반적인 천식 증상의 빈도, 구조 약물 사용, 천식이 일상 기능에 미치는 영향, 천식 조절에 대한 전반적인 자가 평가를 평가합니다.
5점 척도가 있습니다(증상 및 활동에 대해: 1=항상 ~ 5=전혀 그렇지 않음, 천식 조절 등급: 1=전혀 조절되지 않음 ~ 5=완전히 조절됨).점수 범위는 5(조절 불량)입니다. 천식의 완전 통제)에서 25(천식의 완전한 통제)까지, 점수가 높을수록 천식이 더 잘 통제되었음을 의미합니다.
ACT 점수 >19는 잘 조절된 천식을 나타냅니다.
|
기준선 및 1년
|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP w/o CRSwNP 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 삶의 질 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 삶의 질 변화
기간: 기준선 및 1년
|
천식 삶의 질 설문지(AQLQ)를 통해 우리는 삶의 질과 심리적 이환율을 평가할 것입니다. 천식 삶의 질 설문지(AQLQ)는 천식이 있는 17~70세 성인의 신체적, 직업적, 정서적, 사회적 특성을 평가하는 데 사용되는 32개 항목으로 구성된 설문지입니다(Juniper et al, 2005). AQLQ에는 증상(12개 항목), 활동 제한(6개 일반 항목 및 5개 환자별 항목), 정서적 기능(5개 항목) 및 환경 자극(4개 항목)의 4개 도메인이 있습니다. AQLQ는 경증에서 중등도의 천식을 보이는 환자를 위해 개발되었습니다(Aburuz et al, 2007). AQLQ 항목은 각각 7점 리커트 척도로 점수가 매겨지며 1은 최대 손상을 나타내고 7은 손상이 없음을 나타냅니다. 원래 AQLQ에는 활동 제한 영역에 5개의 환자별 질문이 포함되어 있습니다. 초기 면담에서 환자는 천식으로 인한 5가지 활동 제한을 지적했습니다. 이 5가지 활동 제한은 나머지 후속 방문에 사용됩니다. |
기준선 및 1년
|
기타 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
|---|---|---|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP가 없는 SEA 및 천식이 없거나 없는 CRSwNP) 사이의 천식 조절 설문지(ACQ)의 차이 및 SEA w/o CRSwNP에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 천식 조절의 변화
기간: 기준선 및 1년
|
ACQ는 증상 평가(5개 항목-자체 투여) 및 구조 기관지확장제 사용(1개 항목-자체 투여)을 평가하는 다차원적 구조를 가지고 있으며 1주일 회상(증상 및 구조 흡입기 사용에 대한 항목) 및 FEV1%(1개 항목) 클리닉 직원이 완료했습니다.
7점 척도(0=손상 없음, 6=증상 및 구조 사용에 대한 최대 손상, FEV1%에 대한 7개 범주)가 있으며 점수 범위는 0(완전히 통제됨)에서 6(심각하게 통제되지 않음) 사이입니다.
ACQ >1.5는 부적절하게 조절된 천식으로 간주됩니다.
|
기준선 및 1년
|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP 없는 SEA 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 CT 평가 기도벽 두께 백분율(WT%)의 차이 및 SEA에서 항-IL5 치료 개시 후 1년 동안 WT%의 변화 CRSwNP 없이
기간: 기준선 및 1년
|
우리는 가슴의 고해상도 컴퓨터 단층 촬영을 사용하여 [WT/outer dimaeter] × 100 공식을 사용하여 계산된 WT%를 측정할 것입니다. 기관지를 얻을 수 있습니다.
2 기관지의 평균값은 분석에 사용됩니다.
|
기준선 및 1년
|
|
기준선에서 3개 그룹(CRSwNP 없는 SEA 및 천식이 없는 CRSwNP) 사이의 벽 면적의 CT 평가 백분율(WA%)의 차이 및 SEA에서 항-IL5 치료 개시 1년 후 WA%의 변화 CRSwNP 없이
기간: 기준선 및 1년
|
우리는 흉부의 고해상도 컴퓨터 단층 촬영을 사용하여 오른쪽 정점 분절 기관지의 인접한 조각에서 [기도 벽 면적/기관지 외부 면적] × 100) 공식을 사용하여 계산된 벽 면적의 백분율(WA%)을 측정하고 기관지의 접선 보기를 얻을 수 있는 오른쪽 후부 기저 분절 기관지.
2 기관지의 평균값은 분석에 사용됩니다.
|
기준선 및 1년
|
공동 작업자 및 조사자
여기에서 이 연구와 관련된 사람과 조직을 찾을 수 있습니다.
간행물 및 유용한 링크
연구에 대한 정보 입력을 담당하는 사람이 자발적으로 이러한 간행물을 제공합니다. 이것은 연구와 관련된 모든 것에 관한 것일 수 있습니다.
일반 간행물
- Gevaert P, Lang-Loidolt D, Lackner A, Stammberger H, Staudinger H, Van Zele T, Holtappels G, Tavernier J, van Cauwenberge P, Bachert C. Nasal IL-5 levels determine the response to anti-IL-5 treatment in patients with nasal polyps. J Allergy Clin Immunol. 2006 Nov;118(5):1133-41. doi: 10.1016/j.jaci.2006.05.031. Epub 2006 Sep 26.
- Gevaert P, Calus L, Van Zele T, Blomme K, De Ruyck N, Bauters W, Hellings P, Brusselle G, De Bacquer D, van Cauwenberge P, Bachert C. Omalizumab is effective in allergic and nonallergic patients with nasal polyps and asthma. J Allergy Clin Immunol. 2013 Jan;131(1):110-6.e1. doi: 10.1016/j.jaci.2012.07.047. Epub 2012 Sep 27.
- Fokkens WJ, Lund VJ, Mullol J, Bachert C, Alobid I, Baroody F, Cohen N, Cervin A, Douglas R, Gevaert P, Georgalas C, Goossens H, Harvey R, Hellings P, Hopkins C, Jones N, Joos G, Kalogjera L, Kern B, Kowalski M, Price D, Riechelmann H, Schlosser R, Senior B, Thomas M, Toskala E, Voegels R, Wang de Y, Wormald PJ. European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps 2012. Rhinol Suppl. 2012 Mar;23:3 p preceding table of contents, 1-298.
- American Thoracic Society; European Respiratory Society. ATS/ERS recommendations for standardized procedures for the online and offline measurement of exhaled lower respiratory nitric oxide and nasal nitric oxide, 2005. Am J Respir Crit Care Med. 2005 Apr 15;171(8):912-30. doi: 10.1164/rccm.200406-710ST. No abstract available.
- Miller MR, Crapo R, Hankinson J, Brusasco V, Burgos F, Casaburi R, Coates A, Enright P, van der Grinten CP, Gustafsson P, Jensen R, Johnson DC, MacIntyre N, McKay R, Navajas D, Pedersen OF, Pellegrino R, Viegi G, Wanger J; ATS/ERS Task Force. General considerations for lung function testing. Eur Respir J. 2005 Jul;26(1):153-61. doi: 10.1183/09031936.05.00034505. No abstract available.
- Hopkins C, Browne JP, Slack R, Lund V, Brown P. The Lund-Mackay staging system for chronic rhinosinusitis: how is it used and what does it predict? Otolaryngol Head Neck Surg. 2007 Oct;137(4):555-61. doi: 10.1016/j.otohns.2007.02.004.
- Chung KF, Wenzel SE, Brozek JL, Bush A, Castro M, Sterk PJ, Adcock IM, Bateman ED, Bel EH, Bleecker ER, Boulet LP, Brightling C, Chanez P, Dahlen SE, Djukanovic R, Frey U, Gaga M, Gibson P, Hamid Q, Jajour NN, Mauad T, Sorkness RL, Teague WG. International ERS/ATS guidelines on definition, evaluation and treatment of severe asthma. Eur Respir J. 2014 Feb;43(2):343-73. doi: 10.1183/09031936.00202013. Epub 2013 Dec 12. Erratum In: Eur Respir J. 2014 Apr;43(4):1216. Dosage error in article text. Eur Respir J. 2018 Jul 27;52(1): Eur Respir J. 2022 Jun 9;59(6):
- Moore WC, Bleecker ER, Curran-Everett D, Erzurum SC, Ameredes BT, Bacharier L, Calhoun WJ, Castro M, Chung KF, Clark MP, Dweik RA, Fitzpatrick AM, Gaston B, Hew M, Hussain I, Jarjour NN, Israel E, Levy BD, Murphy JR, Peters SP, Teague WG, Meyers DA, Busse WW, Wenzel SE; National Heart, Lung, Blood Institute's Severe Asthma Research Program. Characterization of the severe asthma phenotype by the National Heart, Lung, and Blood Institute's Severe Asthma Research Program. J Allergy Clin Immunol. 2007 Feb;119(2):405-13. doi: 10.1016/j.jaci.2006.11.639.
- Rasmussen F, Taylor DR, Flannery EM, Cowan JO, Greene JM, Herbison GP, Sears MR. Risk factors for airway remodeling in asthma manifested by a low postbronchodilator FEV1/vital capacity ratio: a longitudinal population study from childhood to adulthood. Am J Respir Crit Care Med. 2002 Jun 1;165(11):1480-8. doi: 10.1164/rccm.2108009.
- Fitzpatrick AM, Moore WC. Severe Asthma Phenotypes - How Should They Guide Evaluation and Treatment? J Allergy Clin Immunol Pract. 2017 Jul-Aug;5(4):901-908. doi: 10.1016/j.jaip.2017.05.015.
- Lund VJ, Kennedy DW. Quantification for staging sinusitis. The Staging and Therapy Group. Ann Otol Rhinol Laryngol Suppl. 1995 Oct;167:17-21.
- Moore WC, Meyers DA, Wenzel SE, Teague WG, Li H, Li X, D'Agostino R Jr, Castro M, Curran-Everett D, Fitzpatrick AM, Gaston B, Jarjour NN, Sorkness R, Calhoun WJ, Chung KF, Comhair SA, Dweik RA, Israel E, Peters SP, Busse WW, Erzurum SC, Bleecker ER; National Heart, Lung, and Blood Institute's Severe Asthma Research Program. Identification of asthma phenotypes using cluster analysis in the Severe Asthma Research Program. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Feb 15;181(4):315-23. doi: 10.1164/rccm.200906-0896OC. Epub 2009 Nov 5.
- Knight DA, Stick SM, Hackett TL. Defective function at the epithelial junction: a novel therapeutic frontier in asthma? J Allergy Clin Immunol. 2011 Sep;128(3):557-8. doi: 10.1016/j.jaci.2011.07.031. No abstract available.
- NAYLOR B. The shedding of the mucosa of the bronchial tree in asthma. Thorax. 1962 Mar;17(1):69-72. doi: 10.1136/thx.17.1.69. No abstract available.
- Hoshino M, Ohtawa J. Effects of adding omalizumab, an anti-immunoglobulin E antibody, on airway wall thickening in asthma. Respiration. 2012;83(6):520-8. doi: 10.1159/000334701. Epub 2012 Jan 11.
- Watelet JB, Gevaert P, Holtappels G, Van Cauwenberge P, Bachert C. Collection of nasal secretions for immunological analysis. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2004 May;261(5):242-6. doi: 10.1007/s00405-003-0691-y. Epub 2003 Oct 9.
- Bousquet J, Heinzerling L, Bachert C, Papadopoulos NG, Bousquet PJ, Burney PG, Canonica GW, Carlsen KH, Cox L, Haahtela T, Lodrup Carlsen KC, Price D, Samolinski B, Simons FE, Wickman M, Annesi-Maesano I, Baena-Cagnani CE, Bergmann KC, Bindslev-Jensen C, Casale TB, Chiriac A, Cruz AA, Dubakiene R, Durham SR, Fokkens WJ, Gerth-van-Wijk R, Kalayci O, Kowalski ML, Mari A, Mullol J, Nazamova-Baranova L, O'Hehir RE, Ohta K, Panzner P, Passalacqua G, Ring J, Rogala B, Romano A, Ryan D, Schmid-Grendelmeier P, Todo-Bom A, Valenta R, Woehrl S, Yusuf OM, Zuberbier T, Demoly P; Global Allergy and Asthma European Network; Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma. Practical guide to skin prick tests in allergy to aeroallergens. Allergy. 2012 Jan;67(1):18-24. doi: 10.1111/j.1398-9995.2011.02728.x. Epub 2011 Nov 4.
- Heinzerling LM, Burbach GJ, Edenharter G, Bachert C, Bindslev-Jensen C, Bonini S, Bousquet J, Bousquet-Rouanet L, Bousquet PJ, Bresciani M, Bruno A, Burney P, Canonica GW, Darsow U, Demoly P, Durham S, Fokkens WJ, Giavi S, Gjomarkaj M, Gramiccioni C, Haahtela T, Kowalski ML, Magyar P, Murakozi G, Orosz M, Papadopoulos NG, Rohnelt C, Stingl G, Todo-Bom A, Von Mutius E, Wiesner A, Wohrl S, Zuberbier T. GA(2)LEN skin test study I: GA(2)LEN harmonization of skin prick testing: novel sensitization patterns for inhalant allergens in Europe. Allergy. 2009 Oct;64(10):1498-1506. doi: 10.1111/j.1398-9995.2009.02093.x.
- Horvath I, Barnes PJ, Loukides S, Sterk PJ, Hogman M, Olin AC, Amann A, Antus B, Baraldi E, Bikov A, Boots AW, Bos LD, Brinkman P, Bucca C, Carpagnano GE, Corradi M, Cristescu S, de Jongste JC, Dinh-Xuan AT, Dompeling E, Fens N, Fowler S, Hohlfeld JM, Holz O, Jobsis Q, Van De Kant K, Knobel HH, Kostikas K, Lehtimaki L, Lundberg J, Montuschi P, Van Muylem A, Pennazza G, Reinhold P, Ricciardolo FLM, Rosias P, Santonico M, van der Schee MP, van Schooten FJ, Spanevello A, Tonia T, Vink TJ. A European Respiratory Society technical standard: exhaled biomarkers in lung disease. Eur Respir J. 2017 Apr 26;49(4):1600965. doi: 10.1183/13993003.00965-2016. Print 2017 Apr.
- Bulathsinhala L, Eleangovan N, Heaney LG, Menzies-Gow A, Gibson PG, Peters M, Hew M, van Boven JFM, Lehtimaki L, van Ganse E, Belhassen M, Harvey ES, Perez de Llano L, Maitland-van der Zee AH, Papadopoulos NG, FitzGerald JM, Porsbjerg C, Canonica GW, Backer V, Rhee CK, Verhamme KMC, Buhl R, Cosio BG, Carter V, Price C, Le T, Stagno d'Alcontres M, Gopalan G, Tran TN, Price D. Development of the International Severe Asthma Registry (ISAR): A Modified Delphi Study. J Allergy Clin Immunol Pract. 2019 Feb;7(2):578-588.e2. doi: 10.1016/j.jaip.2018.08.016. Epub 2018 Sep 1. Erratum In: J Allergy Clin Immunol Pract. 2021 Nov;9(11):4182.
- Fokkens WJ, Lund V, Bachert C, Mullol J, Bjermer L, Bousquet J, Canonica GW, Deneyer L, Desrosiers M, Diamant Z, Han J, Heffler E, Hopkins C, Jankowski R, Joos G, Knill A, Lee J, Lee SE, Marien G, Pugin B, Senior B, Seys SF, Hellings PW. EUFOREA consensus on biologics for CRSwNP with or without asthma. Allergy. 2019 Dec;74(12):2312-2319. doi: 10.1111/all.13875. Epub 2019 Jul 15.
- Stevens WW, Schleimer RP, Kern RC. Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. J Allergy Clin Immunol Pract. 2016 Jul-Aug;4(4):565-72. doi: 10.1016/j.jaip.2016.04.012.
- Porsbjerg C, Menzies-Gow A. Co-morbidities in severe asthma: Clinical impact and management. Respirology. 2017 May;22(4):651-661. doi: 10.1111/resp.13026. Epub 2017 Mar 22.
- Radhakrishna N, Tay TR, Hore-Lacy F, Hoy R, Dabscheck E, Hew M. Profile of difficult to treat asthma patients referred for systematic assessment. Respir Med. 2016 Aug;117:166-73. doi: 10.1016/j.rmed.2016.06.012. Epub 2016 Jun 14.
- Shen HH, Du XF, Ying SM. [Comparison of Chinese guideline for asthma managment and prevention (2016 update) and global initiative for asthma (2017 update)]. Zhonghua Jie He He Hu Xi Za Zhi. 2018 Mar 12;41(3):166-168. doi: 10.3760/cma.j.issn.1001-0939.2018.03.003. No abstract available. Chinese.
- Condreay L, Chiano M, Ortega H, Buchan N, Harris E, Bleecker ER, Thompson PJ, Humbert M, Gibson P, Yancey S, Ghosh S. No genetic association detected with mepolizumab efficacy in severe asthma. Respir Med. 2017 Nov;132:178-180. doi: 10.1016/j.rmed.2017.10.019. Epub 2017 Oct 26.
- Flood-Page P, Menzies-Gow A, Phipps S, Ying S, Wangoo A, Ludwig MS, Barnes N, Robinson D, Kay AB. Anti-IL-5 treatment reduces deposition of ECM proteins in the bronchial subepithelial basement membrane of mild atopic asthmatics. J Clin Invest. 2003 Oct;112(7):1029-36. doi: 10.1172/JCI17974.
- Przybyszowski M, Paciorek K, Zastrzezynska W, Gawlewicz-Mroczka A, Trojan-Krolikowska A, Orlowska A, Soja J, Pawlik W, Sladek K. Influence of omalizumab therapy on airway remodeling assessed with high-resolution computed tomography (HRCT) in severe allergic asthma patients. Adv Respir Med. 2018 Dec 30. doi: 10.5603/ARM.a2018.0046. Online ahead of print.
- Samitas K, Delimpoura V, Zervas E, Gaga M. Anti-IgE treatment, airway inflammation and remodelling in severe allergic asthma: current knowledge and future perspectives. Eur Respir Rev. 2015 Dec;24(138):594-601. doi: 10.1183/16000617.00001715.
- Farne HA, Wilson A, Powell C, Bax L, Milan SJ. Anti-IL5 therapies for asthma. Cochrane Database Syst Rev. 2017 Sep 21;9(9):CD010834. doi: 10.1002/14651858.CD010834.pub3.
- MacDonald KM, Kavati A, Ortiz B, Alhossan A, Lee CS, Abraham I. Short- and long-term real-world effectiveness of omalizumab in severe allergic asthma: systematic review of 42 studies published 2008-2018. Expert Rev Clin Immunol. 2019 May;15(5):553-569. doi: 10.1080/1744666X.2019.1574571. Epub 2019 Feb 14.
- Papathanassiou E, Loukides S, Bakakos P. Severe asthma: anti-IgE or anti-IL-5? Eur Clin Respir J. 2016 Nov 7;3:31813. doi: 10.3402/ecrj.v3.31813. eCollection 2016.
- Ward C, Pais M, Bish R, Reid D, Feltis B, Johns D, Walters EH. Airway inflammation, basement membrane thickening and bronchial hyperresponsiveness in asthma. Thorax. 2002 Apr;57(4):309-16. doi: 10.1136/thorax.57.4.309.
- Hsu J, Avila PC, Kern RC, Hayes MG, Schleimer RP, Pinto JM. Genetics of chronic rhinosinusitis: state of the field and directions forward. J Allergy Clin Immunol. 2013 Apr;131(4):977-93, 993.e1-5. doi: 10.1016/j.jaci.2013.01.028.
- Chang EH, Willis AL, McCrary HC, Noutsios GT, Le CH, Chiu AG, Mansfield CJ, Reed DR, Brooks SG, Adappa ND, Palmer JN, Cohen NG, Stern DA, Guerra S, Martinez FD. Association between the CDHR3 rs6967330 risk allele and chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol. 2017 Jun;139(6):1990-1992.e2. doi: 10.1016/j.jaci.2016.10.027. Epub 2016 Dec 3.
- Kim B, Lee HJ, Im NR, Lee DY, Kim HK, Kang CY, Park IH, Lee SH, Lee HM, Lee SH, Baek SK, Kim TH. Decreased expression of CCL17 in the disrupted nasal polyp epithelium and its regulation by IL-4 and IL-5. PLoS One. 2018 May 10;13(5):e0197355. doi: 10.1371/journal.pone.0197355. eCollection 2018.
- Kobayashi N, Terada N, Hamano N, Numata T, Konno A. Transepithelial migration of activated eosinophils induces a decrease of E-cadherin expression in cultured human nasal epithelial cells. Clin Exp Allergy. 2000 Jun;30(6):807-17. doi: 10.1046/j.1365-2222.2000.00827.x.
- Steelant B, Seys SF, Van Gerven L, Van Woensel M, Farre R, Wawrzyniak P, Kortekaas Krohn I, Bullens DM, Talavera K, Raap U, Boon L, Akdis CA, Boeckxstaens G, Ceuppens JL, Hellings PW. Histamine and T helper cytokine-driven epithelial barrier dysfunction in allergic rhinitis. J Allergy Clin Immunol. 2018 Mar;141(3):951-963.e8. doi: 10.1016/j.jaci.2017.08.039. Epub 2017 Oct 23.
- Hirschberg A, Jokuti A, Darvas Z, Almay K, Repassy G, Falus A. The pathogenesis of nasal polyposis by immunoglobulin E and interleukin-5 is completed by transforming growth factor-beta1. Laryngoscope. 2003 Jan;113(1):120-4. doi: 10.1097/00005537-200301000-00022.
- Hakansson K, Bachert C, Konge L, Thomsen SF, Pedersen AE, Poulsen SS, Martin-Bertelsen T, Winther O, Backer V, von Buchwald C. Airway Inflammation in Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps and Asthma: The United Airways Concept Further Supported. PLoS One. 2015 Jul 1;10(7):e0127228. doi: 10.1371/journal.pone.0127228. eCollection 2015.
- Meng J, Zhou P, Liu Y, Liu F, Yi X, Liu S, Holtappels G, Bachert C, Zhang N. The development of nasal polyp disease involves early nasal mucosal inflammation and remodelling. PLoS One. 2013 Dec 10;8(12):e82373. doi: 10.1371/journal.pone.0082373. eCollection 2013.
- Tieu DD, Kern RC, Schleimer RP. Alterations in epithelial barrier function and host defense responses in chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol. 2009 Jul;124(1):37-42. doi: 10.1016/j.jaci.2009.04.045.
- London NR Jr, Lane AP. Innate immunity and chronic rhinosinusitis: What we have learned from animal models. Laryngoscope Investig Otolaryngol. 2016 Jun;1(3):49-56. doi: 10.1002/lio2.21. Epub 2016 Jun 10.
- Van Zele T, Claeys S, Gevaert P, Van Maele G, Holtappels G, Van Cauwenberge P, Bachert C. Differentiation of chronic sinus diseases by measurement of inflammatory mediators. Allergy. 2006 Nov;61(11):1280-9. doi: 10.1111/j.1398-9995.2006.01225.x.
- Van Bruaene N, Perez-Novo CA, Basinski TM, Van Zele T, Holtappels G, De Ruyck N, Schmidt-Weber C, Akdis C, Van Cauwenberge P, Bachert C, Gevaert P. T-cell regulation in chronic paranasal sinus disease. J Allergy Clin Immunol. 2008 Jun;121(6):1435-41, 1441.e1-3. doi: 10.1016/j.jaci.2008.02.018.
- Terzakis D, Georgalas C. Polyps, asthma, and allergy: what's new. Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 2017 Feb;25(1):12-18. doi: 10.1097/MOO.0000000000000323.
- Jones AC, Troy NM, White E, Hollams EM, Gout AM, Ling KM, Kicic A, Stick SM, Sly PD, Holt PG, Hall GL, Bosco A. Persistent activation of interlinked type 2 airway epithelial gene networks in sputum-derived cells from aeroallergen-sensitized symptomatic asthmatics. Sci Rep. 2018 Jan 24;8(1):1511. doi: 10.1038/s41598-018-19837-6.
- Kanazawa J, Masuko H, Yatagai Y, Sakamoto T, Yamada H, Kaneko Y, Kitazawa H, Iijima H, Naito T, Saito T, Noguchi E, Konno S, Nishimura M, Hirota T, Tamari M, Hizawa N. Genetic association of the functional CDHR3 genotype with early-onset adult asthma in Japanese populations. Allergol Int. 2017 Oct;66(4):563-567. doi: 10.1016/j.alit.2017.02.012. Epub 2017 Mar 17.
- Bonnelykke K, Sleiman P, Nielsen K, Kreiner-Moller E, Mercader JM, Belgrave D, den Dekker HT, Husby A, Sevelsted A, Faura-Tellez G, Mortensen LJ, Paternoster L, Flaaten R, Molgaard A, Smart DE, Thomsen PF, Rasmussen MA, Bonas-Guarch S, Holst C, Nohr EA, Yadav R, March ME, Blicher T, Lackie PM, Jaddoe VW, Simpson A, Holloway JW, Duijts L, Custovic A, Davies DE, Torrents D, Gupta R, Hollegaard MV, Hougaard DM, Hakonarson H, Bisgaard H. A genome-wide association study identifies CDHR3 as a susceptibility locus for early childhood asthma with severe exacerbations. Nat Genet. 2014 Jan;46(1):51-5. doi: 10.1038/ng.2830. Epub 2013 Nov 17.
- Koppelman GH, Meyers DA, Howard TD, Zheng SL, Hawkins GA, Ampleford EJ, Xu J, Koning H, Bruinenberg M, Nolte IM, van Diemen CC, Boezen HM, Timens W, Whittaker PA, Stine OC, Barton SJ, Holloway JW, Holgate ST, Graves PE, Martinez FD, van Oosterhout AJ, Bleecker ER, Postma DS. Identification of PCDH1 as a novel susceptibility gene for bronchial hyperresponsiveness. Am J Respir Crit Care Med. 2009 Nov 15;180(10):929-35. doi: 10.1164/rccm.200810-1621OC. Epub 2009 Sep 3.
- Kozu Y, Gon Y, Maruoka S, Kazumichi K, Sekiyama A, Kishi H, Nomura Y, Ikeda M, Hashimoto S. Protocadherin-1 is a glucocorticoid-responsive critical regulator of airway epithelial barrier function. BMC Pulm Med. 2015 Jul 31;15:80. doi: 10.1186/s12890-015-0078-z.
- Post S, Heijink IH, Hesse L, Koo HK, Shaheen F, Fouadi M, Kuchibhotla VNS, Lambrecht BN, Van Oosterhout AJM, Hackett TL, Nawijn MC. Characterization of a lung epithelium specific E-cadherin knock-out model: Implications for obstructive lung pathology. Sci Rep. 2018 Sep 5;8(1):13275. doi: 10.1038/s41598-018-31500-8.
- Masuyama K, Morishima Y, Ishii Y, Nomura A, Sakamoto T, Kimura T, Mochizuki M, Uchida Y, Sekizawa K. Sputum E-cadherin and asthma severity. J Allergy Clin Immunol. 2003 Jul;112(1):208-9. doi: 10.1067/mai.2003.1526. No abstract available.
- Ierodiakonou D, Postma DS, Koppelman GH, Boezen HM, Gerritsen J, Ten Hacken N, Timens W, Vonk JM. E-cadherin gene polymorphisms in asthma patients using inhaled corticosteroids. Eur Respir J. 2011 Nov;38(5):1044-52. doi: 10.1183/09031936.00194710. Epub 2011 May 3.
- Wang MF, Kuo SH, Huang CH, Chen YJ, Lin SH, Lee CJ, Lue KH, Wu SC, Cho CY, Wong RH. Exposure to environmental tobacco smoke, human E-cadherin C-160A polymorphism, and childhood asthma. Ann Allergy Asthma Immunol. 2013 Oct;111(4):262-7. doi: 10.1016/j.anai.2013.07.008. Epub 2013 Aug 2.
- Chae EJ, Kim TB, Cho YS, Park CS, Seo JB, Kim N, Moon HB. Airway Measurement for Airway Remodeling Defined by Post-Bronchodilator FEV1/FVC in Asthma: Investigation Using Inspiration-Expiration Computed Tomography. Allergy Asthma Immunol Res. 2011 Apr;3(2):111-7. doi: 10.4168/aair.2011.3.2.111. Epub 2010 Dec 1.
- Inoue H, Ito I, Niimi A, Matsumoto H, Matsuoka H, Jinnai M, Takeda T, Oguma T, Otsuka K, Nakaji H, Tajiri T, Iwata T, Nagasaki T, Kanemitsu Y, Mishima M. CT-assessed large airway involvement and lung function decline in eosinophilic asthma: The association between induced sputum eosinophil differential counts and airway remodeling. J Asthma. 2016 Nov;53(9):914-21. doi: 10.3109/02770903.2016.1167903. Epub 2016 Apr 26.
- Saglani S, Lloyd CM. Novel concepts in airway inflammation and remodelling in asthma. Eur Respir J. 2015 Dec;46(6):1796-804. doi: 10.1183/13993003.01196-2014. Epub 2015 Nov 5.
- Castro-Rodriguez JA, Saglani S, Rodriguez-Martinez CE, Oyarzun MA, Fleming L, Bush A. The relationship between inflammation and remodeling in childhood asthma: A systematic review. Pediatr Pulmonol. 2018 Jun;53(6):824-835. doi: 10.1002/ppul.23968. Epub 2018 Feb 22.
- Davies DE. Epithelial barrier function and immunity in asthma. Ann Am Thorac Soc. 2014 Dec;11 Suppl 5:S244-51. doi: 10.1513/AnnalsATS.201407-304AW.
- Holgate ST. Epithelium dysfunction in asthma. J Allergy Clin Immunol. 2007 Dec;120(6):1233-44; quiz 1245-6. doi: 10.1016/j.jaci.2007.10.025.
- Laitinen LA, Heino M, Laitinen A, Kava T, Haahtela T. Damage of the airway epithelium and bronchial reactivity in patients with asthma. Am Rev Respir Dis. 1985 Apr;131(4):599-606. doi: 10.1164/arrd.1985.131.4.599.
- Qin L, Gibson PG, Simpson JL, Baines KJ, McDonald VM, Wood LG, Powell H, Fricker M. Dysregulation of sputum columnar epithelial cells and products in distinct asthma phenotypes. Clin Exp Allergy. 2019 Nov;49(11):1418-1428. doi: 10.1111/cea.13452. Epub 2019 Aug 6.
- Coates AL, Wanger J, Cockcroft DW, Culver BH; Bronchoprovocation Testing Task Force: Kai-Hakon Carlsen; Diamant Z, Gauvreau G, Hall GL, Hallstrand TS, Horvath I, de Jongh FHC, Joos G, Kaminsky DA, Laube BL, Leuppi JD, Sterk PJ. ERS technical standard on bronchial challenge testing: general considerations and performance of methacholine challenge tests. Eur Respir J. 2017 May 1;49(5):1601526. doi: 10.1183/13993003.01526-2016. Print 2017 May.
연구 기록 날짜
이 날짜는 ClinicalTrials.gov에 대한 연구 기록 및 요약 결과 제출의 진행 상황을 추적합니다. 연구 기록 및 보고된 결과는 공개 웹사이트에 게시되기 전에 특정 품질 관리 기준을 충족하는지 확인하기 위해 국립 의학 도서관(NLM)에서 검토합니다.
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
2022년 5월 15일
기본 완료 (추정된)
2025년 5월 15일
연구 완료 (추정된)
2025년 11월 16일
연구 등록 날짜
최초 제출
2022년 1월 18일
QC 기준을 충족하는 최초 제출
2022년 5월 3일
처음 게시됨 (실제)
2022년 5월 9일
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
2024년 1월 18일
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
2024년 1월 17일
마지막으로 확인됨
2024년 1월 1일
추가 정보
이 연구와 관련된 용어
추가 관련 MeSH 약관
기타 연구 ID 번호
- 10961[213755]
개별 참가자 데이터(IPD) 계획
개별 참가자 데이터(IPD)를 공유할 계획입니까?
아니요
약물 및 장치 정보, 연구 문서
미국 FDA 규제 의약품 연구
예
미국 FDA 규제 기기 제품 연구
아니
미국에서 제조되어 미국에서 수출되는 제품
아니
이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .