- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT05365841
Rola integralności bariery nabłonkowej w biologicznej odpowiedzi na leczenie ciężkiej astmy z/bez przewlekłego zapalenia błony śluzowej nosa i zatok z polipami nosa (CRSwNP).
Rola integralności bariery nabłonkowej w biologicznej odpowiedzi na leczenie ciężkiej astmy z/bez przewlekłego zapalenia błony śluzowej nosa i zatok z polipami nosa (CRSwNP). Czy złuszczanie nabłonkowych białek barierowych może być stosowane jako biomarker w ciężkiej astmie z/bez zarządzania CRSwNP?
Przegląd badań
Status
Interwencja / Leczenie
Typ studiów
Zapisy (Szacowany)
Kontakty i lokalizacje
Kontakt w sprawie studiów
- Nazwa: Nikolaos Tzanakis, Professor
- Numer telefonu: 6984643636
- E-mail: tzanakis@med.uoc.gr
Kopia zapasowa kontaktu do badania
- Nazwa: Katerina Antoniou, Professor
- Numer telefonu: 6972300105
- E-mail: kantoniou@uoc.gr
Lokalizacje studiów
-
-
Crete
-
Heraklion, Crete, Grecja, 71500
- Aktywny, nie rekrutujący
- "PAGNI" University Hospital, Crete
-
Heraklion, Crete, Grecja, 71500
- Rekrutacyjny
- Aikaterini Antoniou
-
Kontakt:
- Aikaterini Antoniou, Professor
- Numer telefonu: +306972300105
- E-mail: kantoniou@uoc.gr
-
Pod-śledczy:
- Aikaterini Antoniou, Professor
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Metoda próbkowania
Badana populacja
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Zdolność do wyrażenia świadomej pisemnej zgody (formularz świadomej zgody na udział w badaniu): Zdolność do wyrażenia świadomej pisemnej zgody przed udziałem w badaniu, co obejmuje zdolność do przestrzegania wymagań i ograniczeń wymienionych w formularzu zgody. Przedmioty muszą być w stanie czytać, rozumieć i pisać na poziomie wystarczającym do ukończenia materiałów związanych z nauką.
- Naiwny anty-IL5/IL5R
- Potwierdzone rozpoznanie astmy oraz wymagania dotyczące ciężkości i leczenia (dla grupy ciężkiej astmy patrz ramki 1-3). W przypadku drugiej grupy kontrolnej pacjenci z CRSwNP muszą mieć rozpoznaną przez pulmonologa astmę łagodną (stopnie 1-2 wg GINA) lub brak astmy.
- Polipowatość musi być obustronna, aby można ją było uznać za CRSwNP
- Czynniki wyzwalające i istotne choroby współistniejące zostały ocenione i są dobrze kontrolowane. Czynniki wyzwalające, takie jak czynne lub bierne palenie, beta-blokery, aspiryna/NLPZ, ekspozycja na alergeny; Choroby współistniejące, takie jak nieżyt nosa, otyłość, GERD, OBS, VCD, depresja/lęk.
- Wiek: Dorośli ≥18 lat
- Każdy status palenia
- Dowolna pochodzenie etniczne
- Być członkiem lub beneficjentem kategorii zabezpieczenia społecznego i/ubezpieczenia zdrowotnego.
- Płeć: mężczyzna i kwalifikująca się kobieta. Aby kwalifikować się do udziału w badaniu, kobiety w wieku rozrodczym muszą zobowiązać się do konsekwentnego i prawidłowego stosowania akceptowalnej metody antykoncepcji w czasie trwania obserwacji (i przez 4 miesiące po ostatnim podaniu zastrzyku). U wszystkich kobiet wymagany jest test ciążowy z surowicy. Badanie to zostanie przeprowadzone podczas pierwszej wizyty przesiewowej. Dodatkowo można zaproponować wykonanie testu ciążowego z moczu (opcjonalnie) wszystkim kobietom podczas każdej zaplanowanej wizyty leczniczej przed wlewem produktu biologicznego do rocznej wizyty kontrolnej.
Nieprawidłowości laboratoryjne: Brak dowodów na klinicznie istotne nieprawidłowości (inne niż obserwowane w SEA) w badaniu przesiewowym hematologicznym, biochemicznym lub analizie moczu podczas wizyty 1, według oceny badacza.
- Zaostrzenie astmy: Pacjenci z trwającym zaostrzeniem astmy powinni mieć opóźnioną wizytę przesiewową i rozpoczynającą leczenie do czasu, gdy badacz uzna, że pacjent powrócił do wyjściowego stanu astmy. Jeśli upłynął 4-tygodniowy okres skriningu (wizyty 1 i 1a), to należy uznać, że pacjent nie przeszedł skriningu. Za zaostrzenie uważa się pogorszenie astmy wymagające zastosowania ogólnoustrojowych kortykosteroidów i/lub wizyty na oddziale ratunkowym lub hospitalizacji. U pacjentów otrzymujących doustne kortykosteroidy podtrzymujące zaostrzenie wymagające doustnych kortykosteroidów definiuje się jako stosowanie doustnych/ogólnoustrojowych kortykosteroidów w dawce co najmniej dwukrotnie większej niż dotychczas stosowana przez co najmniej 3 dni.
- Leczenie podtrzymujące astmy: Brak zmian w dawce lub schemacie wyjściowych ICS i/lub dodatkowych leków kontrolujących w okresie przesiewowym (z wyjątkiem leczenia zaostrzenia).
- Leczenie podtrzymujące CRSwNP: Brak zmian w dawce lub schemacie wyjściowych donosowych kortykosteroidów i/lub dodatkowych leków kontrolujących w okresie przesiewowym (z wyjątkiem leczenia zaostrzenia).
- Pacjenci, którzy przeszli wcześniej operację usunięcia polipów nosa, mogą wziąć udział i zostaną uznani za pacjentów z CRSwNP (z ciężką astmą lub bez). Jednak każdy pacjent, który miał co najmniej jedną operację usunięcia polipów nosa, nawet jeśli podczas badania przesiewowego nie miał polipów nosa, nie może być uważany za pacjenta bez CRSwNP.
- Pacjenci z ciężką astmą muszą spełniać wymagania dotyczące terapii biologicznej z zastosowaniem leczenia anty-IL5 (Mepolizumab)
Kryteria wyłączenia:
- Ciąża
- Obecne zaostrzenie podczas wizyty 1 (powtórzyć badanie przesiewowe, gdy stan jest stabilny). Jeśli zaostrzenie trwa do Wizyty 1a, należy wykluczyć pacjentkę.
- Zaburzenia funkcji poznawczych uniemożliwiające wypełnienie formularzy zbierania danych
- Osoby wysoce zależne od opieki medycznej
- Osoby ze współzachorowalnością znacząco ograniczającą życie
- Inne stany eozynofilowe (eozynofilowe ziarniniakowate zapalenie naczyń wielonaczyniowych (zespół Churga-Straussa), eozynofilowe zapalenie przełyku itp.)
- Jednostronna polipowatość
- Pierwotna diagnostyka chorób płuc innych niż astma (przewlekła obturacyjna choroba płuc (POChP), nakładanie się astmy na POChP (ACO), śródmiąższowa choroba płuc, sarkoidoza, rozstrzenie oskrzeli, mukowiscydoza, pierwotna dyskineza rzęsek, aktywna gruźlica, alergiczna aspergiloza oskrzelowo-płucna (ABPA))
- Obecny rak płuc lub inny nowotwór krwi, układu limfatycznego lub narządów miąższowych
- Choroby autoimmunologiczne skóry, układu mięśniowo-szkieletowego lub przewodu pokarmowego wymagające ogólnoustrojowych kortykosteroidów, leków immunosupresyjnych lub leczenia biologicznego oraz osoby z ziarniniakowatością z zapaleniem naczyń (ziarniniakowatość Wegenera)
- Niemożność uczestniczenia w wizytach studyjnych i terapeutycznych
- Niemożność zrozumienia i mówienia w języku greckim lub angielskim
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Modele obserwacyjne: Kohorta
- Perspektywy czasowe: Spodziewany
Kohorty i interwencje
Grupa / Kohorta |
Interwencja / Leczenie |
---|---|
Ciężka astma bez CRSwNP
Grupa kontrolna; n ~ 20 pacjentów z ciężką astmą nieleczonych wcześniej z anty-IL5
|
Pacjenci z SEA kwalifikujący się do leczenia anty-IL5, które jest leczeniem biologicznym SEA
|
Ciężka astma z CRSwNP
n ~ 40 pacjentów z ciężką astmą nieleczonych wcześniej z anty-IL5
|
Pacjenci z SEA kwalifikujący się do leczenia anty-IL5, które jest leczeniem biologicznym SEA
|
pacjentów z CRSwNP z astmą łagodną lub bez astmy
~25; druga grupa kontrolna
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Różnice w komórkach nabłonka walcowatego (CEP) w plwocinie między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana CEP w plwocinie w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Zastosujemy cytometrię przepływową na świeżo wyizolowanych zawiesinach komórek plwociny od uczestników, aby zmierzyć proporcję i liczbę CEP.
Można rozważyć zaproponowaną wcześniej wartość odcięcia dla prawidłowej proporcji CEP w plwocinie (wysoki CEP % = ≥11%) lub liczby (wysoki poziom CEP = ≥18,1 × 10^4/ml).
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w poziomie białka E-kadheryny w plwocinie i wydzielinie z nosa między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana poziomu białka E-kadheryny w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Rozpuszczalna E-kadheryna w plwocinie i wydzielinach z nosa mierzona metodą ELISA.
Dane zostaną wyrażone w nanogramach na mililitr w pierwotnej plwocinie/wydzielinie.
Ekspresję E-kadheryny na powierzchni komórek na kolumnowych komórkach nabłonka można analizować za pomocą cytometrii przepływowej.
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w grubości nabłonka nosa i oskrzeli pomiędzy 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana grubości nabłonka w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Grubość nabłonka zostanie określona w biopsjach poprzez podzielenie pola powierzchni nabłonka przez długość błony podstawnej (BM)
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w integralności nabłonka nosa i oskrzeli między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana integralności nabłonka w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Integralność nabłonka zostanie oceniona w skrawkach biopsyjnych i wyrażona jako procent (%) BM pokryty normalnym nabłonkiem (warstwa podstawnych i rzęskowych walcowatych komórek nabłonka bez oderwania od BM)
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w ekspresji E-kadheryny nabłonka nosa i oskrzeli między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana ekspresji białka w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Ekspresja nabłonkowej E-kadheryny w biopsjach będzie mierzona za pomocą immunohistochemii i wyrażana jako procent BM pokryty nienaruszonym nabłonkiem E-kadheryny i/lub jako silne, umiarkowane i słabe barwienie nabłonka E-kadheryny
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w grubości błony podstawnej nosa i oskrzeli (BM) między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana grubości błony podstawnej w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA w /o CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Grubość BM w biopsjach będzie wyrażona jako pole powierzchni BM podzielone przez długość BM
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w grubości ściany dróg oddechowych (WT) ocenianej za pomocą tomografii komputerowej między 3 grupami (SEA bez/o CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana WT w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez/o CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Do pomiaru grubości ścian dróg oddechowych (WT) wykorzystamy tomografię komputerową klatki piersiowej wysokiej rozdzielczości.
Wymiary dróg oddechowych będą mierzone na przylegających przekrojach prawego wierzchołkowego oskrzela segmentowego i prawego tylnego podstawowego oskrzela segmentowego, z których można uzyskać styczne widoki oskrzeli.
Do analizy zostaną użyte uśrednione wartości z 2 oskrzeli
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w stopniu zaawansowania CRSwNP między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z astmą łagodną lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana stopnia zaawansowania CRSwNP w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w grupie SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Skala Lunda-Mackaya jest szeroko stosowana w radiologicznej ocenie zaawansowania przewlekłego zapalenia błony śluzowej nosa i zatok przynosowych.
Chociaż istnieje wiele systemów punktacji do analizy tomografii komputerowej (CT) zatok przynosowych, system Lund-Mackay ma najlepszą zgodność między serwerami i wewnątrzobserwatorami.
W punktacji LMK zatoki (szczękowe, sitowe przednie/tylne, klinowe i czołowe) są oceniane w skali 0-2 zmętnienia (0, normalne; 1, częściowe zmętnienie; 2, całkowite zmętnienie).
Kompleks ujściowo-przewodowy ocenia się w dwupunktowej skali 0 i 2 (0, nieokludowany; 2, niedrożny).
Wyniki po każdej stronie wahały się od 0 (całkowita przezierność wszystkich zatok) do 12 (całkowite zmętnienie wszystkich zatok), co prowadziło do całkowitego wyniku LMK wynoszącego 24 dla obu stron. Warto zauważyć, że aplastyczna (nieobecna) zatoka czołowa otrzymuje punktację od 0.
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w częstości zaostrzeń między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana częstości zaostrzeń w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Liczba zaostrzeń w ciągu ostatnich 12 miesięcy.
Za zaostrzenie uważa się pogorszenie astmy wymagające zastosowania ogólnoustrojowych kortykosteroidów i/lub wizyty na oddziale ratunkowym lub hospitalizacji.
W przypadku pacjentów otrzymujących doustne kortykosteroidy podtrzymujące zaostrzenie wymagające doustnych kortykosteroidów definiuje się jako stosowanie doustnych/ogólnoustrojowych kortykosteroidów w dawce co najmniej dwukrotnie większej niż istniejąca dawka przez co najmniej 3 dni
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w czynności płuc między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana czynności płuc w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w grupie SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
FEV1 (litry i % wartości należnej), FVC (litry i % wartości należnej, FEV1/FVC (%), w tym test przed podaniem leku rozszerzającego oskrzela i po nim
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w potrzebie operacji zatok między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana w potrzebie operacji zatok w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w grupie SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Liczba (%) uczestników ze zmniejszoną potrzebą operacji zatok po 1 roku. Operacja zostanie uznana za wymaganą, jeśli wynik ENP >=3 lub wynik ENP 2 i wynik TNSS >7. Wynik polipów (ENP): 0=brak polipów, 1=małe polipy w środkowym przewodzie nosowym nie sięgające poniżej dolnej granicy małżowiny usznej środkowej, 2=polipy sięgające poniżej dolnej granicy małżowiny usznej środkowej, 3=duże polipy sięgające do dolnej krawędzi małżowiny nosowej brzeg małżowiny nosowej dolnej lub polipy przyśrodkowe do małżowiny nosowej środkowej, 4 = duże polipy powodujące całkowitą niedrożność dolnej części jamy nosowej. Wyliczona zostanie wyższa z dwóch ocen nozdrzy i wykorzystana do analizy. Z VAS (0 do 10 cm) nasilenie 4 objawów polipowatości nosa (jeden VAS dla każdego objawu): wyciek z nosa; śluz w gardle; niedrożność nosa; utratę węchu i całkowitą ocenę objawów nosowych (TNSS). Lewa strona skali (0) reprezentuje „nieuciążliwy”, a prawa strona skali (10) „najgorszy możliwy kłopot”. |
Wartość bazowa i 1 rok
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Różnice w całkowitym IgE między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana całkowitego IgE w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Całkowite stężenie IgE w surowicy (j.m./ml)
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w liczbie eozynofili we krwi między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana liczby eozynofili we krwi w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w grupie SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Rozróżnienie liczby eozynofili we krwi (liczba i procent)
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w liczbie eozynofili w plwocinie między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana liczby eozynofilów w plwocinie po 1 roku od rozpoczęcia leczenia anty-IL5 w grupie SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Liczba eozynofili (liczba x10^4/mL i %) w różnicowym zliczeniu komórek uzyskanym z indukowanej plwociny
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w FeNO między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana FeNO w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Frakcyjny wydychany tlenek azotu (FeNO w częściach na miliard)
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w teście kontroli astmy (ACT) między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana kontroli astmy w ciągu 1 roku po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w grupie SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
ACT obejmuje 5 pozycji, z 4-tygodniowym przypomnieniem (dotyczącym objawów i codziennego funkcjonowania).
Dokładniej, ACT ocenia częstość duszności i ogólnych objawów astmy, stosowanie leków ratunkowych, wpływ astmy na codzienne funkcjonowanie oraz ogólną samoocenę kontroli astmy.
Istnieje 5-stopniowa skala (dla objawów i czynności: 1=cały czas do 5=w ogóle; dla oceny kontroli astmy: 1=w ogóle niekontrolowana do 5=całkowicie kontrolowana). Wyniki wahają się od 5 (słaba kontrola). astmy) do 25 (całkowita kontrola astmy), przy czym wyższe wyniki odzwierciedlają lepszą kontrolę astmy.
Wynik ACT >19 wskazuje na dobrze kontrolowaną astmę.
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w jakości życia pomiędzy 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana jakości życia w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Za pomocą Kwestionariusza Jakości Życia Astmy (AQLQ) ocenimy jakość życia i zachorowalność psychiczną. Kwestionariusz Jakości Życia Astmy (AQLQ) jest kwestionariuszem składającym się z 32 pozycji służącym do oceny fizycznych, zawodowych, emocjonalnych i społecznych cech osób dorosłych w wieku od 17 do 70 lat z astmą (Juniper i in., 2005). AQLQ ma 4 domeny: objawy (12 pozycji), ograniczenie aktywności (6 pozycji ogólnych i 5 pozycji specyficznych dla pacjenta), funkcje emocjonalne (5 pozycji) i bodźce środowiskowe (4 pozycje). AQLQ został opracowany dla pacjentów z astmą łagodną do umiarkowanej (Aburuz i in., 2007). Każda pozycja AQLQ jest oceniana na 7-punktowej skali Likerta, gdzie 1 oznacza maksymalne upośledzenie, a 7 oznacza brak upośledzenia. Oryginalna wersja AQLQ zawiera 5 specyficznych dla pacjenta pytań w dziedzinie ograniczenia aktywności. W ramach wywiadu wstępnego pacjentka wskazuje na 5 ograniczeń aktywności związanych z astmą. Te 5 ograniczeń aktywności stosuje się podczas pozostałych wizyt kontrolnych. |
Wartość bazowa i 1 rok
|
Inne miary wyników
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Różnice w Kwestionariuszu Kontroli Astmy (ACQ) między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana kontroli astmy w ciągu 1 roku po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
ACQ ma wielowymiarowy konstrukt oceniający objawy (5 pozycji – samodzielne podanie) i ratunkowe użycie leku rozszerzającego oskrzela (1 pozycja samodzielne podanie) z przypomnieniem o 1 tygodniu (dla pozycji dotyczących objawów i doraźnego użycia inhalatora) oraz FEV1% (1 pozycja) wypełniają pracownicy kliniki.
Dostępna jest 7-stopniowa skala (0 = brak upośledzenia, 6 = maksymalne upośledzenie w przypadku objawów i zastosowania ratunkowego; oraz 7 kategorii dla FEV1%), a wyniki mieszczą się w zakresie od 0 (całkowicie kontrolowane) do 6 (poważnie niekontrolowane).
ACQ >1,5 będzie uważane za astmę niewłaściwie kontrolowaną
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w procentowej grubości ściany dróg oddechowych ocenianej za pomocą tomografii komputerowej (WT%) między 3 grupami (SEA bez/o CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana w % WT w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Wykorzystamy tomografię komputerową klatki piersiowej o wysokiej rozdzielczości do pomiaru WT% obliczonego za pomocą wzoru [WT/zewnętrzny dimaeter] × 100) na sąsiadujących skrawkach prawego wierzchołkowego oskrzela segmentowego i prawego tylnego podstawnego oskrzela segmentowego, z którego styczne widoki oskrzela można uzyskać.
Do analizy zostaną użyte uśrednione wartości z 2 oskrzeli
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Różnice w ocenianym za pomocą tomografii komputerowej odsetku powierzchni ściany (WA%) między 3 grupami (SEA bez CRSwNP i CRSwNP z łagodną astmą lub bez astmy) na początku badania oraz zmiana wartości WA% w 1 rok po rozpoczęciu leczenia anty-IL5 w SEA bez CRSwNP
Ramy czasowe: Wartość bazowa i 1 rok
|
Za pomocą tomografii komputerowej wysokiej rozdzielczości klatki piersiowej zmierzymy procent powierzchni ściany (WA%) obliczony według wzoru [powierzchnia ściany dróg oddechowych/powierzchnia zewnętrzna oskrzela] × 100), na przylegających przekrojach prawego wierzchołkowego oskrzela segmentowego oraz prawe tylne oskrzele podstawne segmentowe, z którego można uzyskać styczny widok oskrzeli.
Do analizy zostaną użyte uśrednione wartości z 2 oskrzeli
|
Wartość bazowa i 1 rok
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Gevaert P, Lang-Loidolt D, Lackner A, Stammberger H, Staudinger H, Van Zele T, Holtappels G, Tavernier J, van Cauwenberge P, Bachert C. Nasal IL-5 levels determine the response to anti-IL-5 treatment in patients with nasal polyps. J Allergy Clin Immunol. 2006 Nov;118(5):1133-41. doi: 10.1016/j.jaci.2006.05.031. Epub 2006 Sep 26.
- Gevaert P, Calus L, Van Zele T, Blomme K, De Ruyck N, Bauters W, Hellings P, Brusselle G, De Bacquer D, van Cauwenberge P, Bachert C. Omalizumab is effective in allergic and nonallergic patients with nasal polyps and asthma. J Allergy Clin Immunol. 2013 Jan;131(1):110-6.e1. doi: 10.1016/j.jaci.2012.07.047. Epub 2012 Sep 27.
- Fokkens WJ, Lund VJ, Mullol J, Bachert C, Alobid I, Baroody F, Cohen N, Cervin A, Douglas R, Gevaert P, Georgalas C, Goossens H, Harvey R, Hellings P, Hopkins C, Jones N, Joos G, Kalogjera L, Kern B, Kowalski M, Price D, Riechelmann H, Schlosser R, Senior B, Thomas M, Toskala E, Voegels R, Wang de Y, Wormald PJ. European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps 2012. Rhinol Suppl. 2012 Mar;23:3 p preceding table of contents, 1-298.
- American Thoracic Society; European Respiratory Society. ATS/ERS recommendations for standardized procedures for the online and offline measurement of exhaled lower respiratory nitric oxide and nasal nitric oxide, 2005. Am J Respir Crit Care Med. 2005 Apr 15;171(8):912-30. doi: 10.1164/rccm.200406-710ST. No abstract available.
- Miller MR, Crapo R, Hankinson J, Brusasco V, Burgos F, Casaburi R, Coates A, Enright P, van der Grinten CP, Gustafsson P, Jensen R, Johnson DC, MacIntyre N, McKay R, Navajas D, Pedersen OF, Pellegrino R, Viegi G, Wanger J; ATS/ERS Task Force. General considerations for lung function testing. Eur Respir J. 2005 Jul;26(1):153-61. doi: 10.1183/09031936.05.00034505. No abstract available.
- Hopkins C, Browne JP, Slack R, Lund V, Brown P. The Lund-Mackay staging system for chronic rhinosinusitis: how is it used and what does it predict? Otolaryngol Head Neck Surg. 2007 Oct;137(4):555-61. doi: 10.1016/j.otohns.2007.02.004.
- Chung KF, Wenzel SE, Brozek JL, Bush A, Castro M, Sterk PJ, Adcock IM, Bateman ED, Bel EH, Bleecker ER, Boulet LP, Brightling C, Chanez P, Dahlen SE, Djukanovic R, Frey U, Gaga M, Gibson P, Hamid Q, Jajour NN, Mauad T, Sorkness RL, Teague WG. International ERS/ATS guidelines on definition, evaluation and treatment of severe asthma. Eur Respir J. 2014 Feb;43(2):343-73. doi: 10.1183/09031936.00202013. Epub 2013 Dec 12. Erratum In: Eur Respir J. 2014 Apr;43(4):1216. Dosage error in article text. Eur Respir J. 2018 Jul 27;52(1): Eur Respir J. 2022 Jun 9;59(6):
- Moore WC, Bleecker ER, Curran-Everett D, Erzurum SC, Ameredes BT, Bacharier L, Calhoun WJ, Castro M, Chung KF, Clark MP, Dweik RA, Fitzpatrick AM, Gaston B, Hew M, Hussain I, Jarjour NN, Israel E, Levy BD, Murphy JR, Peters SP, Teague WG, Meyers DA, Busse WW, Wenzel SE; National Heart, Lung, Blood Institute's Severe Asthma Research Program. Characterization of the severe asthma phenotype by the National Heart, Lung, and Blood Institute's Severe Asthma Research Program. J Allergy Clin Immunol. 2007 Feb;119(2):405-13. doi: 10.1016/j.jaci.2006.11.639.
- Rasmussen F, Taylor DR, Flannery EM, Cowan JO, Greene JM, Herbison GP, Sears MR. Risk factors for airway remodeling in asthma manifested by a low postbronchodilator FEV1/vital capacity ratio: a longitudinal population study from childhood to adulthood. Am J Respir Crit Care Med. 2002 Jun 1;165(11):1480-8. doi: 10.1164/rccm.2108009.
- Fitzpatrick AM, Moore WC. Severe Asthma Phenotypes - How Should They Guide Evaluation and Treatment? J Allergy Clin Immunol Pract. 2017 Jul-Aug;5(4):901-908. doi: 10.1016/j.jaip.2017.05.015.
- Lund VJ, Kennedy DW. Quantification for staging sinusitis. The Staging and Therapy Group. Ann Otol Rhinol Laryngol Suppl. 1995 Oct;167:17-21.
- Moore WC, Meyers DA, Wenzel SE, Teague WG, Li H, Li X, D'Agostino R Jr, Castro M, Curran-Everett D, Fitzpatrick AM, Gaston B, Jarjour NN, Sorkness R, Calhoun WJ, Chung KF, Comhair SA, Dweik RA, Israel E, Peters SP, Busse WW, Erzurum SC, Bleecker ER; National Heart, Lung, and Blood Institute's Severe Asthma Research Program. Identification of asthma phenotypes using cluster analysis in the Severe Asthma Research Program. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Feb 15;181(4):315-23. doi: 10.1164/rccm.200906-0896OC. Epub 2009 Nov 5.
- Knight DA, Stick SM, Hackett TL. Defective function at the epithelial junction: a novel therapeutic frontier in asthma? J Allergy Clin Immunol. 2011 Sep;128(3):557-8. doi: 10.1016/j.jaci.2011.07.031. No abstract available.
- NAYLOR B. The shedding of the mucosa of the bronchial tree in asthma. Thorax. 1962 Mar;17(1):69-72. doi: 10.1136/thx.17.1.69. No abstract available.
- Hoshino M, Ohtawa J. Effects of adding omalizumab, an anti-immunoglobulin E antibody, on airway wall thickening in asthma. Respiration. 2012;83(6):520-8. doi: 10.1159/000334701. Epub 2012 Jan 11.
- Watelet JB, Gevaert P, Holtappels G, Van Cauwenberge P, Bachert C. Collection of nasal secretions for immunological analysis. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2004 May;261(5):242-6. doi: 10.1007/s00405-003-0691-y. Epub 2003 Oct 9.
- Bousquet J, Heinzerling L, Bachert C, Papadopoulos NG, Bousquet PJ, Burney PG, Canonica GW, Carlsen KH, Cox L, Haahtela T, Lodrup Carlsen KC, Price D, Samolinski B, Simons FE, Wickman M, Annesi-Maesano I, Baena-Cagnani CE, Bergmann KC, Bindslev-Jensen C, Casale TB, Chiriac A, Cruz AA, Dubakiene R, Durham SR, Fokkens WJ, Gerth-van-Wijk R, Kalayci O, Kowalski ML, Mari A, Mullol J, Nazamova-Baranova L, O'Hehir RE, Ohta K, Panzner P, Passalacqua G, Ring J, Rogala B, Romano A, Ryan D, Schmid-Grendelmeier P, Todo-Bom A, Valenta R, Woehrl S, Yusuf OM, Zuberbier T, Demoly P; Global Allergy and Asthma European Network; Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma. Practical guide to skin prick tests in allergy to aeroallergens. Allergy. 2012 Jan;67(1):18-24. doi: 10.1111/j.1398-9995.2011.02728.x. Epub 2011 Nov 4.
- Heinzerling LM, Burbach GJ, Edenharter G, Bachert C, Bindslev-Jensen C, Bonini S, Bousquet J, Bousquet-Rouanet L, Bousquet PJ, Bresciani M, Bruno A, Burney P, Canonica GW, Darsow U, Demoly P, Durham S, Fokkens WJ, Giavi S, Gjomarkaj M, Gramiccioni C, Haahtela T, Kowalski ML, Magyar P, Murakozi G, Orosz M, Papadopoulos NG, Rohnelt C, Stingl G, Todo-Bom A, Von Mutius E, Wiesner A, Wohrl S, Zuberbier T. GA(2)LEN skin test study I: GA(2)LEN harmonization of skin prick testing: novel sensitization patterns for inhalant allergens in Europe. Allergy. 2009 Oct;64(10):1498-1506. doi: 10.1111/j.1398-9995.2009.02093.x.
- Horvath I, Barnes PJ, Loukides S, Sterk PJ, Hogman M, Olin AC, Amann A, Antus B, Baraldi E, Bikov A, Boots AW, Bos LD, Brinkman P, Bucca C, Carpagnano GE, Corradi M, Cristescu S, de Jongste JC, Dinh-Xuan AT, Dompeling E, Fens N, Fowler S, Hohlfeld JM, Holz O, Jobsis Q, Van De Kant K, Knobel HH, Kostikas K, Lehtimaki L, Lundberg J, Montuschi P, Van Muylem A, Pennazza G, Reinhold P, Ricciardolo FLM, Rosias P, Santonico M, van der Schee MP, van Schooten FJ, Spanevello A, Tonia T, Vink TJ. A European Respiratory Society technical standard: exhaled biomarkers in lung disease. Eur Respir J. 2017 Apr 26;49(4):1600965. doi: 10.1183/13993003.00965-2016. Print 2017 Apr.
- Bulathsinhala L, Eleangovan N, Heaney LG, Menzies-Gow A, Gibson PG, Peters M, Hew M, van Boven JFM, Lehtimaki L, van Ganse E, Belhassen M, Harvey ES, Perez de Llano L, Maitland-van der Zee AH, Papadopoulos NG, FitzGerald JM, Porsbjerg C, Canonica GW, Backer V, Rhee CK, Verhamme KMC, Buhl R, Cosio BG, Carter V, Price C, Le T, Stagno d'Alcontres M, Gopalan G, Tran TN, Price D. Development of the International Severe Asthma Registry (ISAR): A Modified Delphi Study. J Allergy Clin Immunol Pract. 2019 Feb;7(2):578-588.e2. doi: 10.1016/j.jaip.2018.08.016. Epub 2018 Sep 1. Erratum In: J Allergy Clin Immunol Pract. 2021 Nov;9(11):4182.
- Fokkens WJ, Lund V, Bachert C, Mullol J, Bjermer L, Bousquet J, Canonica GW, Deneyer L, Desrosiers M, Diamant Z, Han J, Heffler E, Hopkins C, Jankowski R, Joos G, Knill A, Lee J, Lee SE, Marien G, Pugin B, Senior B, Seys SF, Hellings PW. EUFOREA consensus on biologics for CRSwNP with or without asthma. Allergy. 2019 Dec;74(12):2312-2319. doi: 10.1111/all.13875. Epub 2019 Jul 15.
- Stevens WW, Schleimer RP, Kern RC. Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. J Allergy Clin Immunol Pract. 2016 Jul-Aug;4(4):565-72. doi: 10.1016/j.jaip.2016.04.012.
- Porsbjerg C, Menzies-Gow A. Co-morbidities in severe asthma: Clinical impact and management. Respirology. 2017 May;22(4):651-661. doi: 10.1111/resp.13026. Epub 2017 Mar 22.
- Radhakrishna N, Tay TR, Hore-Lacy F, Hoy R, Dabscheck E, Hew M. Profile of difficult to treat asthma patients referred for systematic assessment. Respir Med. 2016 Aug;117:166-73. doi: 10.1016/j.rmed.2016.06.012. Epub 2016 Jun 14.
- Shen HH, Du XF, Ying SM. [Comparison of Chinese guideline for asthma managment and prevention (2016 update) and global initiative for asthma (2017 update)]. Zhonghua Jie He He Hu Xi Za Zhi. 2018 Mar 12;41(3):166-168. doi: 10.3760/cma.j.issn.1001-0939.2018.03.003. No abstract available. Chinese.
- Condreay L, Chiano M, Ortega H, Buchan N, Harris E, Bleecker ER, Thompson PJ, Humbert M, Gibson P, Yancey S, Ghosh S. No genetic association detected with mepolizumab efficacy in severe asthma. Respir Med. 2017 Nov;132:178-180. doi: 10.1016/j.rmed.2017.10.019. Epub 2017 Oct 26.
- Flood-Page P, Menzies-Gow A, Phipps S, Ying S, Wangoo A, Ludwig MS, Barnes N, Robinson D, Kay AB. Anti-IL-5 treatment reduces deposition of ECM proteins in the bronchial subepithelial basement membrane of mild atopic asthmatics. J Clin Invest. 2003 Oct;112(7):1029-36. doi: 10.1172/JCI17974.
- Przybyszowski M, Paciorek K, Zastrzezynska W, Gawlewicz-Mroczka A, Trojan-Krolikowska A, Orlowska A, Soja J, Pawlik W, Sladek K. Influence of omalizumab therapy on airway remodeling assessed with high-resolution computed tomography (HRCT) in severe allergic asthma patients. Adv Respir Med. 2018 Dec 30. doi: 10.5603/ARM.a2018.0046. Online ahead of print.
- Samitas K, Delimpoura V, Zervas E, Gaga M. Anti-IgE treatment, airway inflammation and remodelling in severe allergic asthma: current knowledge and future perspectives. Eur Respir Rev. 2015 Dec;24(138):594-601. doi: 10.1183/16000617.00001715.
- Farne HA, Wilson A, Powell C, Bax L, Milan SJ. Anti-IL5 therapies for asthma. Cochrane Database Syst Rev. 2017 Sep 21;9(9):CD010834. doi: 10.1002/14651858.CD010834.pub3.
- MacDonald KM, Kavati A, Ortiz B, Alhossan A, Lee CS, Abraham I. Short- and long-term real-world effectiveness of omalizumab in severe allergic asthma: systematic review of 42 studies published 2008-2018. Expert Rev Clin Immunol. 2019 May;15(5):553-569. doi: 10.1080/1744666X.2019.1574571. Epub 2019 Feb 14.
- Papathanassiou E, Loukides S, Bakakos P. Severe asthma: anti-IgE or anti-IL-5? Eur Clin Respir J. 2016 Nov 7;3:31813. doi: 10.3402/ecrj.v3.31813. eCollection 2016.
- Ward C, Pais M, Bish R, Reid D, Feltis B, Johns D, Walters EH. Airway inflammation, basement membrane thickening and bronchial hyperresponsiveness in asthma. Thorax. 2002 Apr;57(4):309-16. doi: 10.1136/thorax.57.4.309.
- Hsu J, Avila PC, Kern RC, Hayes MG, Schleimer RP, Pinto JM. Genetics of chronic rhinosinusitis: state of the field and directions forward. J Allergy Clin Immunol. 2013 Apr;131(4):977-93, 993.e1-5. doi: 10.1016/j.jaci.2013.01.028.
- Chang EH, Willis AL, McCrary HC, Noutsios GT, Le CH, Chiu AG, Mansfield CJ, Reed DR, Brooks SG, Adappa ND, Palmer JN, Cohen NG, Stern DA, Guerra S, Martinez FD. Association between the CDHR3 rs6967330 risk allele and chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol. 2017 Jun;139(6):1990-1992.e2. doi: 10.1016/j.jaci.2016.10.027. Epub 2016 Dec 3.
- Kim B, Lee HJ, Im NR, Lee DY, Kim HK, Kang CY, Park IH, Lee SH, Lee HM, Lee SH, Baek SK, Kim TH. Decreased expression of CCL17 in the disrupted nasal polyp epithelium and its regulation by IL-4 and IL-5. PLoS One. 2018 May 10;13(5):e0197355. doi: 10.1371/journal.pone.0197355. eCollection 2018.
- Kobayashi N, Terada N, Hamano N, Numata T, Konno A. Transepithelial migration of activated eosinophils induces a decrease of E-cadherin expression in cultured human nasal epithelial cells. Clin Exp Allergy. 2000 Jun;30(6):807-17. doi: 10.1046/j.1365-2222.2000.00827.x.
- Steelant B, Seys SF, Van Gerven L, Van Woensel M, Farre R, Wawrzyniak P, Kortekaas Krohn I, Bullens DM, Talavera K, Raap U, Boon L, Akdis CA, Boeckxstaens G, Ceuppens JL, Hellings PW. Histamine and T helper cytokine-driven epithelial barrier dysfunction in allergic rhinitis. J Allergy Clin Immunol. 2018 Mar;141(3):951-963.e8. doi: 10.1016/j.jaci.2017.08.039. Epub 2017 Oct 23.
- Hirschberg A, Jokuti A, Darvas Z, Almay K, Repassy G, Falus A. The pathogenesis of nasal polyposis by immunoglobulin E and interleukin-5 is completed by transforming growth factor-beta1. Laryngoscope. 2003 Jan;113(1):120-4. doi: 10.1097/00005537-200301000-00022.
- Hakansson K, Bachert C, Konge L, Thomsen SF, Pedersen AE, Poulsen SS, Martin-Bertelsen T, Winther O, Backer V, von Buchwald C. Airway Inflammation in Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps and Asthma: The United Airways Concept Further Supported. PLoS One. 2015 Jul 1;10(7):e0127228. doi: 10.1371/journal.pone.0127228. eCollection 2015.
- Meng J, Zhou P, Liu Y, Liu F, Yi X, Liu S, Holtappels G, Bachert C, Zhang N. The development of nasal polyp disease involves early nasal mucosal inflammation and remodelling. PLoS One. 2013 Dec 10;8(12):e82373. doi: 10.1371/journal.pone.0082373. eCollection 2013.
- Tieu DD, Kern RC, Schleimer RP. Alterations in epithelial barrier function and host defense responses in chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol. 2009 Jul;124(1):37-42. doi: 10.1016/j.jaci.2009.04.045.
- London NR Jr, Lane AP. Innate immunity and chronic rhinosinusitis: What we have learned from animal models. Laryngoscope Investig Otolaryngol. 2016 Jun;1(3):49-56. doi: 10.1002/lio2.21. Epub 2016 Jun 10.
- Van Zele T, Claeys S, Gevaert P, Van Maele G, Holtappels G, Van Cauwenberge P, Bachert C. Differentiation of chronic sinus diseases by measurement of inflammatory mediators. Allergy. 2006 Nov;61(11):1280-9. doi: 10.1111/j.1398-9995.2006.01225.x.
- Van Bruaene N, Perez-Novo CA, Basinski TM, Van Zele T, Holtappels G, De Ruyck N, Schmidt-Weber C, Akdis C, Van Cauwenberge P, Bachert C, Gevaert P. T-cell regulation in chronic paranasal sinus disease. J Allergy Clin Immunol. 2008 Jun;121(6):1435-41, 1441.e1-3. doi: 10.1016/j.jaci.2008.02.018.
- Terzakis D, Georgalas C. Polyps, asthma, and allergy: what's new. Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 2017 Feb;25(1):12-18. doi: 10.1097/MOO.0000000000000323.
- Jones AC, Troy NM, White E, Hollams EM, Gout AM, Ling KM, Kicic A, Stick SM, Sly PD, Holt PG, Hall GL, Bosco A. Persistent activation of interlinked type 2 airway epithelial gene networks in sputum-derived cells from aeroallergen-sensitized symptomatic asthmatics. Sci Rep. 2018 Jan 24;8(1):1511. doi: 10.1038/s41598-018-19837-6.
- Kanazawa J, Masuko H, Yatagai Y, Sakamoto T, Yamada H, Kaneko Y, Kitazawa H, Iijima H, Naito T, Saito T, Noguchi E, Konno S, Nishimura M, Hirota T, Tamari M, Hizawa N. Genetic association of the functional CDHR3 genotype with early-onset adult asthma in Japanese populations. Allergol Int. 2017 Oct;66(4):563-567. doi: 10.1016/j.alit.2017.02.012. Epub 2017 Mar 17.
- Bonnelykke K, Sleiman P, Nielsen K, Kreiner-Moller E, Mercader JM, Belgrave D, den Dekker HT, Husby A, Sevelsted A, Faura-Tellez G, Mortensen LJ, Paternoster L, Flaaten R, Molgaard A, Smart DE, Thomsen PF, Rasmussen MA, Bonas-Guarch S, Holst C, Nohr EA, Yadav R, March ME, Blicher T, Lackie PM, Jaddoe VW, Simpson A, Holloway JW, Duijts L, Custovic A, Davies DE, Torrents D, Gupta R, Hollegaard MV, Hougaard DM, Hakonarson H, Bisgaard H. A genome-wide association study identifies CDHR3 as a susceptibility locus for early childhood asthma with severe exacerbations. Nat Genet. 2014 Jan;46(1):51-5. doi: 10.1038/ng.2830. Epub 2013 Nov 17.
- Koppelman GH, Meyers DA, Howard TD, Zheng SL, Hawkins GA, Ampleford EJ, Xu J, Koning H, Bruinenberg M, Nolte IM, van Diemen CC, Boezen HM, Timens W, Whittaker PA, Stine OC, Barton SJ, Holloway JW, Holgate ST, Graves PE, Martinez FD, van Oosterhout AJ, Bleecker ER, Postma DS. Identification of PCDH1 as a novel susceptibility gene for bronchial hyperresponsiveness. Am J Respir Crit Care Med. 2009 Nov 15;180(10):929-35. doi: 10.1164/rccm.200810-1621OC. Epub 2009 Sep 3.
- Kozu Y, Gon Y, Maruoka S, Kazumichi K, Sekiyama A, Kishi H, Nomura Y, Ikeda M, Hashimoto S. Protocadherin-1 is a glucocorticoid-responsive critical regulator of airway epithelial barrier function. BMC Pulm Med. 2015 Jul 31;15:80. doi: 10.1186/s12890-015-0078-z.
- Post S, Heijink IH, Hesse L, Koo HK, Shaheen F, Fouadi M, Kuchibhotla VNS, Lambrecht BN, Van Oosterhout AJM, Hackett TL, Nawijn MC. Characterization of a lung epithelium specific E-cadherin knock-out model: Implications for obstructive lung pathology. Sci Rep. 2018 Sep 5;8(1):13275. doi: 10.1038/s41598-018-31500-8.
- Masuyama K, Morishima Y, Ishii Y, Nomura A, Sakamoto T, Kimura T, Mochizuki M, Uchida Y, Sekizawa K. Sputum E-cadherin and asthma severity. J Allergy Clin Immunol. 2003 Jul;112(1):208-9. doi: 10.1067/mai.2003.1526. No abstract available.
- Ierodiakonou D, Postma DS, Koppelman GH, Boezen HM, Gerritsen J, Ten Hacken N, Timens W, Vonk JM. E-cadherin gene polymorphisms in asthma patients using inhaled corticosteroids. Eur Respir J. 2011 Nov;38(5):1044-52. doi: 10.1183/09031936.00194710. Epub 2011 May 3.
- Wang MF, Kuo SH, Huang CH, Chen YJ, Lin SH, Lee CJ, Lue KH, Wu SC, Cho CY, Wong RH. Exposure to environmental tobacco smoke, human E-cadherin C-160A polymorphism, and childhood asthma. Ann Allergy Asthma Immunol. 2013 Oct;111(4):262-7. doi: 10.1016/j.anai.2013.07.008. Epub 2013 Aug 2.
- Chae EJ, Kim TB, Cho YS, Park CS, Seo JB, Kim N, Moon HB. Airway Measurement for Airway Remodeling Defined by Post-Bronchodilator FEV1/FVC in Asthma: Investigation Using Inspiration-Expiration Computed Tomography. Allergy Asthma Immunol Res. 2011 Apr;3(2):111-7. doi: 10.4168/aair.2011.3.2.111. Epub 2010 Dec 1.
- Inoue H, Ito I, Niimi A, Matsumoto H, Matsuoka H, Jinnai M, Takeda T, Oguma T, Otsuka K, Nakaji H, Tajiri T, Iwata T, Nagasaki T, Kanemitsu Y, Mishima M. CT-assessed large airway involvement and lung function decline in eosinophilic asthma: The association between induced sputum eosinophil differential counts and airway remodeling. J Asthma. 2016 Nov;53(9):914-21. doi: 10.3109/02770903.2016.1167903. Epub 2016 Apr 26.
- Saglani S, Lloyd CM. Novel concepts in airway inflammation and remodelling in asthma. Eur Respir J. 2015 Dec;46(6):1796-804. doi: 10.1183/13993003.01196-2014. Epub 2015 Nov 5.
- Castro-Rodriguez JA, Saglani S, Rodriguez-Martinez CE, Oyarzun MA, Fleming L, Bush A. The relationship between inflammation and remodeling in childhood asthma: A systematic review. Pediatr Pulmonol. 2018 Jun;53(6):824-835. doi: 10.1002/ppul.23968. Epub 2018 Feb 22.
- Davies DE. Epithelial barrier function and immunity in asthma. Ann Am Thorac Soc. 2014 Dec;11 Suppl 5:S244-51. doi: 10.1513/AnnalsATS.201407-304AW.
- Holgate ST. Epithelium dysfunction in asthma. J Allergy Clin Immunol. 2007 Dec;120(6):1233-44; quiz 1245-6. doi: 10.1016/j.jaci.2007.10.025.
- Laitinen LA, Heino M, Laitinen A, Kava T, Haahtela T. Damage of the airway epithelium and bronchial reactivity in patients with asthma. Am Rev Respir Dis. 1985 Apr;131(4):599-606. doi: 10.1164/arrd.1985.131.4.599.
- Qin L, Gibson PG, Simpson JL, Baines KJ, McDonald VM, Wood LG, Powell H, Fricker M. Dysregulation of sputum columnar epithelial cells and products in distinct asthma phenotypes. Clin Exp Allergy. 2019 Nov;49(11):1418-1428. doi: 10.1111/cea.13452. Epub 2019 Aug 6.
- Coates AL, Wanger J, Cockcroft DW, Culver BH; Bronchoprovocation Testing Task Force: Kai-Hakon Carlsen; Diamant Z, Gauvreau G, Hall GL, Hallstrand TS, Horvath I, de Jongh FHC, Joos G, Kaminsky DA, Laube BL, Leuppi JD, Sterk PJ. ERS technical standard on bronchial challenge testing: general considerations and performance of methacholine challenge tests. Eur Respir J. 2017 May 1;49(5):1601526. doi: 10.1183/13993003.01526-2016. Print 2017 May.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Szacowany)
Ukończenie studiów (Szacowany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Dodatkowe istotne warunki MeSH
- Choroby Układu Oddechowego
- Choroby układu odpornościowego
- Choroby płuc
- Nadwrażliwość, natychmiastowa
- Choroby hematologiczne
- Choroby oskrzeli
- Choroby otorynolaryngologiczne
- Stany patologiczne, anatomiczne
- Choroby płuc, obturacyjne
- Nadwrażliwość oddechowa
- Nadwrażliwość
- Choroby nosa
- Zaburzenia leukocytów
- Polipy
- Eozynofilia
- Zespół hipereozynofilowy
- Astma
- Polipy nosa
- Eozynofilia płucna
Inne numery identyfikacyjne badania
- 10961[213755]
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .
Badania kliniczne na Mepolizumab 100 mg
-
Hospices Civils de LyonGlaxoSmithKlineRekrutacyjny
-
Sheffield Teaching Hospitals NHS Foundation TrustUniversity of SheffieldRekrutacyjny
-
Medical Centre LeeuwardenGlaxoSmithKlineZakończony
-
Temple UniversityGlaxoSmithKlineJeszcze nie rekrutacja
-
Hospital Clinico Universitario de SantiagoGlaxoSmithKlineRekrutacyjny
-
National and Kapodistrian University of AthensRekrutacyjnyPrzewlekłe zapalenie zatok przynosowych z polipami nosa | Przewlekłe zapalenie zatok przynosowych bez polipów nosa | Ciężka astma eozynofilowaGrecja
-
Sotiria General HospitalNieznanyCiężka astma eozynofilowaGrecja
-
Fondazione Policlinico Universitario Agostino Gemelli...Jeszcze nie rekrutacjaPrzewlekłe zapalenie zatok przynosowych z polipami nosaWłochy
-
Università degli Studi di FerraraGlaxoSmithKlineRekrutacyjny
-
University of Sao Paulo General HospitalNieznany