- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT02625246
Sikkerhet og potensiell effekt av humane mesenkymale stamceller ved ikke-cystisk fibrose bronkiektasi (CELEB)
En fase I, studie for å evaluere sikkerhet, tolerabilitet og potensiell effekt av allogene humane mesenkymale stamceller (hMSC) infusjon hos pasienter med bronkiektasi av ikke-cystisk fibrose
Studieoversikt
Detaljert beskrivelse
En fase 1-undersøkelse vil bli utført for å teste sikkerheten til to doser av benmargsavledede hMSCs (20 000 000 og 100 000 000) administrert via perifer intravenøs infusjon.
Gruppe 1: 3 forsøkspersoner vil motta en enkelt administrering av allogene hMSCs: 20 x106 (20 millioner) celler levert via perifer intravenøs infusjon. Gruppe 2: 3 forsøkspersoner vil motta en enkelt administrering av allogene hMSCs: 1 x108 (100 millioner) celler levert via perifere intravenøs infusjon Midlertidig sikkerhetsanalyse vil bli utført fire uker etter at 1. forsøksperson er registrert i hver kohort. Fortsatt sikkerhet og tolerabilitet med gjennomgang av uønskede hendelser (AE) vil bli vurdert ved hvert besøk. Effektparametere (lungefunksjonstester, lungediffusjonskapasitet, lungevolumer, 6-minutters gangtest (6MWT) og spørreskjemaer om dyspné/livskvalitet (QOL) vil bli vurdert hver 12. uke frem til studien er fullført. Kliniske laboratorietester for å vurdere sikkerheten vil bli utført ved hvert besøk.
High Resolution Computed Tomography (HRCT)-skanning vil bli utført ved baseline-besøket (hvis ikke gjort innen tre måneder før påmelding) og deretter i uke 24.
Studietype
Registrering (Faktiske)
Fase
- Fase 1
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
Florida
-
Miami, Florida, Forente stater, 33136
- University of Miami Hospitals & Clinics
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Kjønn som er kvalifisert for studier
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- Gi skriftlig informert samtykke,
- være mellom 30 og 87 år på tidspunktet for signering av det informerte samtykket,
- vekt over 45 og under 150 kg,
- har en klinisk diagnose av ikke-CF bronkiektasi før screening,
- Har hatt minst 2 eksaserbasjoner det siste året som dokumentert av legekontor eller sykehusbesøk (bruk av antibiotika minst én gang i løpet av det siste året),
- Vis en baseline FEV1 mellom 25 % og 85 % spådd og over eller lik 1 L og en baseline diffusjonskapasitet for lunge for karbonmonoksid (DLCO) over eller lik 30 % (korrigert for hemoglobin, men ikke alveolært volum),
- Har en normal høyre ventrikkelfunksjon, som dokumentert ved doppler-ekko eller høyre hjertekateterisering,
- hvis en kvinne i fertil alder, godtar å følge prevensjonsreglene definert nedenfor.
- Pasienter kan motta ikke-medikamentelle behandlinger inkludert oksygentilskudd som ikke overstiger 4 liter per minutt og pulmonal rehabilitering.
- Personer kan være på kronisk makrolid eller inhalert antibiotikabehandling bronkiektasi
Ekskluderingskriterier:
- Har HRCT og eller kirurgiske lungebiopsiresultater som ikke stemmer overens med diagnosen ikke-CF bronkiektasi. (Ekskludering av emfysem og eller diffus parenkymal sykdom)
- være ute av stand til å utføre noen av vurderingene som kreves for endepunktsanalyse (rapporter sikkerhets- eller toleranseproblemer, utføre lungefunksjonstester (PFT) eller HRCT, gjennomgå blodprøver, lese og svare på spørreskjema
- Hvis en kvinne i fertil alder, har et follikkelstimulerende hormon (FSH) under 25,8 IE/L
- bli aktivt behandlet for en akutt smittsom forverring av bronkiektasi
- Har en aktiv infeksjon som ikke blir behandlet
- Har hatt aktive infeksjoner innen minimum 4 uker etter studiebehandling
- Er for tiden på behandling for NTM-infeksjoner
- Har hatt positive sputumkulturer for ikke-tuberkuløs mykobakteriell (NTM) i løpet av de siste 6 månedene
- Har en historie med narkotika- eller alkoholmisbruk i løpet av de siste 24 månedene.
- For øyeblikket mottar (eller har mottatt innen fire uker etter screening) eksperimentelle midler for behandling av bronkiektasi eller har blitt registrert i kliniske studier i løpet av de siste 30 dagene
- Vær aktivt oppført (eller forvent fremtidig notering) for transplantasjon av ethvert organ.
- Har klinisk viktige unormale laboratorieverdier for screening.
- Har en alvorlig komorbid sykdom som etter utforskerens mening kan kompromittere pasientens sikkerhet eller etterlevelse eller forhindre vellykket gjennomføring av studien.
- Har andre forhold som, etter etterforskerens mening, kan kompromittere sikkerheten eller etterlevelsen til pasienten eller hindre vellykket gjennomføring av studien.
- Har kjent allergi mot penicillin eller streptomycin.
- Være en organtransplantert mottaker.
- Har en klinisk historie med malignitet innen 5 år (dvs. pasienter med tidligere malignitet må være sykdomsfrie i 5 år), bortsett fra kurativt behandlet basalcellekarsinom i huden, plateepitelkarsinom i huden eller livmorhalskreft.
- Har en ikke-pulmonal tilstand som begrenser levetiden til mindre enn 1 år.
- Vær serumpositiv for HIV, hepatitt BsAg (overflatemiddelreaktivt) eller viremisk hepatitt C.
- Har overfølsomhet for dimetylsulfoksid (DMSO)
- Ikke være i stand til å opprettholde mettet oksygen (SpO2) på mer enn 93 % på romluft ved havnivå i hvile) eller en SpO2 på mer enn 88 % på romluft over 5000 fot (1524 meter) over havet i hvile.
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: Ikke-randomisert
- Intervensjonsmodell: Enkeltgruppeoppdrag
- Masking: Ingen (Open Label)
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentell: Gruppe 1
3 pasienter vil motta en enkelt administrering av allogene hMSCs: 20 x 106 (20 millioner) celler levert via perifer intravenøs infusjon
|
intravenøs infusjon av benmargsavledede allogene stamceller
Andre navn:
|
|
Eksperimentell: Gruppe 2
3 pasienter vil motta en enkelt administrering av allogene hMSCs: 1 x108 (100 millioner) celler levert via perifer intravenøs infusjon
|
intravenøs infusjon av benmargsavledede allogene stamceller
Andre navn:
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Antall deltakere med behandling som oppstår alvorlige bivirkninger
Tidsramme: Uke 4 etter infusjon
|
forekomst av alvorlige bivirkninger som oppstår ved behandling definert som sammensetningen av død, ikke-dødelig lungeemboli, hjerneslag, sykehusinnleggelse for forverret dyspné og klinisk signifikante laboratorieprøveavvik
|
Uke 4 etter infusjon
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Forskjell i kolonidannende enheter (CFUer) i semikvantitativ kultur av sputum
Tidsramme: Deltakerne vil bli fulgt fra 1 uke til et forventet gjennomsnitt på 24 uker etter infusjon.
|
Forskjell i CFUer i semikvantitativ kultur av sputum
|
Deltakerne vil bli fulgt fra 1 uke til et forventet gjennomsnitt på 24 uker etter infusjon.
|
|
frekvensen av nedgang i lungefunksjonen
Tidsramme: Deltakerne vil bli fulgt fra 12 uker til et forventet gjennomsnitt på 24 uker etter infusjon.
|
forskjell i absolutt reduksjon av tvungen ekspirasjonsvolum ved ett sekund (FEV1) prosent forutsagt
|
Deltakerne vil bli fulgt fra 12 uker til et forventet gjennomsnitt på 24 uker etter infusjon.
|
|
hyppighet av akutte eksaserbasjoner
Tidsramme: Deltakerne vil bli fulgt fra 12 uker til et forventet gjennomsnitt på 48 uker etter infusjon.
|
økt hoste og sputumproduksjon, feber, ny eller forverret dyspné på mindre enn 30 dager, ny eller forverret hypoksemi i fravær av andre identifiserbare årsaker
|
Deltakerne vil bli fulgt fra 12 uker til et forventet gjennomsnitt på 48 uker etter infusjon.
|
|
rapportert dyspné og livskvalitetsvurdering
Tidsramme: Deltakerne vil bli fulgt fra 4 uker til et forventet gjennomsnitt på 48 uker etter infusjon.
|
ved å bruke spørreskjema for livskvalitetsverktøy QOL-B versjon 2
|
Deltakerne vil bli fulgt fra 4 uker til et forventet gjennomsnitt på 48 uker etter infusjon.
|
|
død uansett årsak
Tidsramme: Deltakerne vil bli fulgt under forsøkets varighet, som er et forventet gjennomsnitt på 48 uker.
|
død uansett årsak
|
Deltakerne vil bli fulgt under forsøkets varighet, som er et forventet gjennomsnitt på 48 uker.
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Glassberg K Marilyn, MD, University of Miami
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Le Blanc K, Frassoni F, Ball L, Locatelli F, Roelofs H, Lewis I, Lanino E, Sundberg B, Bernardo ME, Remberger M, Dini G, Egeler RM, Bacigalupo A, Fibbe W, Ringden O; Developmental Committee of the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Mesenchymal stem cells for treatment of steroid-resistant, severe, acute graft-versus-host disease: a phase II study. Lancet. 2008 May 10;371(9624):1579-86. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60690-X.
- Liang J, Zhang H, Hua B, Wang H, Lu L, Shi S, Hou Y, Zeng X, Gilkeson GS, Sun L. Allogenic mesenchymal stem cells transplantation in refractory systemic lupus erythematosus: a pilot clinical study. Ann Rheum Dis. 2010 Aug;69(8):1423-9. doi: 10.1136/ard.2009.123463. Erratum In: Ann Rheum Dis. 2011 Jan;70(1):237.
- Quittner AL, O'Donnell AE, Salathe MA, Lewis SA, Li X, Montgomery AB, O'Riordan TG, Barker AF. Quality of Life Questionnaire-Bronchiectasis: final psychometric analyses and determination of minimal important difference scores. Thorax. 2015 Jan;70(1):12-20. doi: 10.1136/thoraxjnl-2014-205918. Epub 2014 Oct 16.
- Wilson JG, Liu KD, Zhuo H, Caballero L, McMillan M, Fang X, Cosgrove K, Vojnik R, Calfee CS, Lee JW, Rogers AJ, Levitt J, Wiener-Kronish J, Bajwa EK, Leavitt A, McKenna D, Thompson BT, Matthay MA. Mesenchymal stem (stromal) cells for treatment of ARDS: a phase 1 clinical trial. Lancet Respir Med. 2015 Jan;3(1):24-32. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70291-7. Epub 2014 Dec 17.
- Tzouvelekis A, Paspaliaris V, Koliakos G, Ntolios P, Bouros E, Oikonomou A, Zissimopoulos A, Boussios N, Dardzinski B, Gritzalis D, Antoniadis A, Froudarakis M, Kolios G, Bouros D. A prospective, non-randomized, no placebo-controlled, phase Ib clinical trial to study the safety of the adipose derived stromal cells-stromal vascular fraction in idiopathic pulmonary fibrosis. J Transl Med. 2013 Jul 15;11:171. doi: 10.1186/1479-5876-11-171.
- Chambers DC, Enever D, Ilic N, Sparks L, Whitelaw K, Ayres J, Yerkovich ST, Khalil D, Atkinson KM, Hopkins PM. A phase 1b study of placenta-derived mesenchymal stromal cells in patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Respirology. 2014 Oct;19(7):1013-8. doi: 10.1111/resp.12343. Epub 2014 Jul 9.
- Moodley Y, Atienza D, Manuelpillai U, Samuel CS, Tchongue J, Ilancheran S, Boyd R, Trounson A. Human umbilical cord mesenchymal stem cells reduce fibrosis of bleomycin-induced lung injury. Am J Pathol. 2009 Jul;175(1):303-13. doi: 10.2353/ajpath.2009.080629. Epub 2009 Jun 4.
- Hare JM, Fishman JE, Gerstenblith G, DiFede Velazquez DL, Zambrano JP, Suncion VY, Tracy M, Ghersin E, Johnston PV, Brinker JA, Breton E, Davis-Sproul J, Schulman IH, Byrnes J, Mendizabal AM, Lowery MH, Rouy D, Altman P, Wong Po Foo C, Ruiz P, Amador A, Da Silva J, McNiece IK, Heldman AW, George R, Lardo A. Comparison of allogeneic vs autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells delivered by transendocardial injection in patients with ischemic cardiomyopathy: the POSEIDON randomized trial. JAMA. 2012 Dec 12;308(22):2369-79. doi: 10.1001/jama.2012.25321. Erratum In: JAMA. 2013 Aug 21;310(7):750. George, Richard [added]; Lardo, Albert [added].
- Deans RJ, Moseley AB. Mesenchymal stem cells: biology and potential clinical uses. Exp Hematol. 2000 Aug;28(8):875-84. doi: 10.1016/s0301-472x(00)00482-3.
- Wong C, Jayaram L, Karalus N, Eaton T, Tong C, Hockey H, Milne D, Fergusson W, Tuffery C, Sexton P, Storey L, Ashton T. Azithromycin for prevention of exacerbations in non-cystic fibrosis bronchiectasis (EMBRACE): a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2012 Aug 18;380(9842):660-7. doi: 10.1016/S0140-6736(12)60953-2.
- Jiang Y, Jahagirdar BN, Reinhardt RL, Schwartz RE, Keene CD, Ortiz-Gonzalez XR, Reyes M, Lenvik T, Lund T, Blackstad M, Du J, Aldrich S, Lisberg A, Low WC, Largaespada DA, Verfaillie CM. Pluripotency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow. Nature. 2002 Jul 4;418(6893):41-9. doi: 10.1038/nature00870. Epub 2002 Jun 20. Erratum In: Nature. 2007 Jun 14;447(7146):879-80.
- Gupta N, Su X, Popov B, Lee JW, Serikov V, Matthay MA. Intrapulmonary delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells improves survival and attenuates endotoxin-induced acute lung injury in mice. J Immunol. 2007 Aug 1;179(3):1855-63. doi: 10.4049/jimmunol.179.3.1855.
- Lee JW, Fang X, Gupta N, Serikov V, Matthay MA. Allogeneic human mesenchymal stem cells for treatment of E. coli endotoxin-induced acute lung injury in the ex vivo perfused human lung. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Sep 22;106(38):16357-62. doi: 10.1073/pnas.0907996106. Epub 2009 Aug 31.
- Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, Pandey AC, Torres G, Go K, Phinney DG. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Jun 26;104(26):11002-7. doi: 10.1073/pnas.0704421104. Epub 2007 Jun 14.
- Rojas M, Xu J, Woods CR, Mora AL, Spears W, Roman J, Brigham KL. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Aug;33(2):145-52. doi: 10.1165/rcmb.2004-0330OC. Epub 2005 May 12.
- Fang X, Neyrinck AP, Matthay MA, Lee JW. Allogeneic human mesenchymal stem cells restore epithelial protein permeability in cultured human alveolar type II cells by secretion of angiopoietin-1. J Biol Chem. 2010 Aug 20;285(34):26211-22. doi: 10.1074/jbc.M110.119917. Epub 2010 Jun 16.
- Gupta N, Krasnodembskaya A, Kapetanaki M, Mouded M, Tan X, Serikov V, Matthay MA. Mesenchymal stem cells enhance survival and bacterial clearance in murine Escherichia coli pneumonia. Thorax. 2012 Jun;67(6):533-9. doi: 10.1136/thoraxjnl-2011-201176. Epub 2012 Jan 16.
- Krasnodembskaya A, Samarani G, Song Y, Zhuo H, Su X, Lee JW, Gupta N, Petrini M, Matthay MA. Human mesenchymal stem cells reduce mortality and bacteremia in gram-negative sepsis in mice in part by enhancing the phagocytic activity of blood monocytes. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2012 May 15;302(10):L1003-13. doi: 10.1152/ajplung.00180.2011. Epub 2012 Mar 16.
- Krasnodembskaya A, Song Y, Fang X, Gupta N, Serikov V, Lee JW, Matthay MA. Antibacterial effect of human mesenchymal stem cells is mediated in part from secretion of the antimicrobial peptide LL-37. Stem Cells. 2010 Dec;28(12):2229-38. doi: 10.1002/stem.544.
- Lee JW, Krasnodembskaya A, McKenna DH, Song Y, Abbott J, Matthay MA. Therapeutic effects of human mesenchymal stem cells in ex vivo human lungs injured with live bacteria. Am J Respir Crit Care Med. 2013 Apr 1;187(7):751-60. doi: 10.1164/rccm.201206-0990OC.
- Nemeth K, Leelahavanichkul A, Yuen PS, Mayer B, Parmelee A, Doi K, Robey PG, Leelahavanichkul K, Koller BH, Brown JM, Hu X, Jelinek I, Star RA, Mezey E. Bone marrow stromal cells attenuate sepsis via prostaglandin E(2)-dependent reprogramming of host macrophages to increase their interleukin-10 production. Nat Med. 2009 Jan;15(1):42-9. doi: 10.1038/nm.1905. Epub 2008 Nov 21. Erratum In: Nat Med. 2009 Apr;15(4):462.
- Mei SH, Haitsma JJ, Dos Santos CC, Deng Y, Lai PF, Slutsky AS, Liles WC, Stewart DJ. Mesenchymal stem cells reduce inflammation while enhancing bacterial clearance and improving survival in sepsis. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Oct 15;182(8):1047-57. doi: 10.1164/rccm.201001-0010OC. Epub 2010 Jun 17.
- Lee RH, Seo MJ, Reger RL, Spees JL, Pulin AA, Olson SD, Prockop DJ. Multipotent stromal cells from human marrow home to and promote repair of pancreatic islets and renal glomeruli in diabetic NOD/scid mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006 Nov 14;103(46):17438-43. doi: 10.1073/pnas.0608249103. Epub 2006 Nov 6.
- Parekkadan B, van Poll D, Suganuma K, Carter EA, Berthiaume F, Tilles AW, Yarmush ML. Mesenchymal stem cell-derived molecules reverse fulminant hepatic failure. PLoS One. 2007 Sep 26;2(9):e941. doi: 10.1371/journal.pone.0000941.
- Togel F, Hu Z, Weiss K, Isaac J, Lange C, Westenfelder C. Administered mesenchymal stem cells protect against ischemic acute renal failure through differentiation-independent mechanisms. Am J Physiol Renal Physiol. 2005 Jul;289(1):F31-42. doi: 10.1152/ajprenal.00007.2005. Epub 2005 Feb 15.
- Iso Y, Spees JL, Serrano C, Bakondi B, Pochampally R, Song YH, Sobel BE, Delafontaine P, Prockop DJ. Multipotent human stromal cells improve cardiac function after myocardial infarction in mice without long-term engraftment. Biochem Biophys Res Commun. 2007 Mar 16;354(3):700-6. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.01.045. Epub 2007 Jan 17.
- Schuleri KH, Feigenbaum GS, Centola M, Weiss ES, Zimmet JM, Turney J, Kellner J, Zviman MM, Hatzistergos KE, Detrick B, Conte JV, McNiece I, Steenbergen C, Lardo AC, Hare JM. Autologous mesenchymal stem cells produce reverse remodelling in chronic ischaemic cardiomyopathy. Eur Heart J. 2009 Nov;30(22):2722-32. doi: 10.1093/eurheartj/ehp265. Epub 2009 Jul 8.
- Miyahara Y, Nagaya N, Kataoka M, Yanagawa B, Tanaka K, Hao H, Ishino K, Ishida H, Shimizu T, Kangawa K, Sano S, Okano T, Kitamura S, Mori H. Monolayered mesenchymal stem cells repair scarred myocardium after myocardial infarction. Nat Med. 2006 Apr;12(4):459-65. doi: 10.1038/nm1391. Epub 2006 Apr 2.
- Hare JM, Traverse JH, Henry TD, Dib N, Strumpf RK, Schulman SP, Gerstenblith G, DeMaria AN, Denktas AE, Gammon RS, Hermiller JB Jr, Reisman MA, Schaer GL, Sherman W. A randomized, double-blind, placebo-controlled, dose-escalation study of intravenous adult human mesenchymal stem cells (prochymal) after acute myocardial infarction. J Am Coll Cardiol. 2009 Dec 8;54(24):2277-86. doi: 10.1016/j.jacc.2009.06.055.
- Gong Z, Niklason LE. Use of human mesenchymal stem cells as alternative source of smooth muscle cells in vessel engineering. Methods Mol Biol. 2011;698:279-94. doi: 10.1007/978-1-60761-999-4_21.
- Price AP, England KA, Matson AM, Blazar BR, Panoskaltsis-Mortari A. Development of a decellularized lung bioreactor system for bioengineering the lung: the matrix reloaded. Tissue Eng Part A. 2010 Aug;16(8):2581-91. doi: 10.1089/ten.TEA.2009.0659.
- Ishizawa K, Kubo H, Yamada M, Kobayashi S, Numasaki M, Ueda S, Suzuki T, Sasaki H. Bone marrow-derived cells contribute to lung regeneration after elastase-induced pulmonary emphysema. FEBS Lett. 2004 Jan 2;556(1-3):249-52. doi: 10.1016/s0014-5793(03)01399-1.
- Spees JL, Pociask DA, Sullivan DE, Whitney MJ, Lasky JA, Prockop DJ, Brody AR. Engraftment of bone marrow progenitor cells in a rat model of asbestos-induced pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2007 Aug 15;176(4):385-94. doi: 10.1164/rccm.200607-1004OC. Epub 2007 May 11.
- Spees JL, Whitney MJ, Sullivan DE, Lasky JA, Laboy M, Ylostalo J, Prockop DJ. Bone marrow progenitor cells contribute to repair and remodeling of the lung and heart in a rat model of progressive pulmonary hypertension. FASEB J. 2008 Apr;22(4):1226-36. doi: 10.1096/fj.07-8076com. Epub 2007 Nov 21.
- Bonfield TL, Koloze M, Lennon DP, Zuchowski B, Yang SE, Caplan AI. Human mesenchymal stem cells suppress chronic airway inflammation in the murine ovalbumin asthma model. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2010 Dec;299(6):L760-70. doi: 10.1152/ajplung.00182.2009. Epub 2010 Sep 3.
- Gao J, Dennis JE, Muzic RF, Lundberg M, Caplan AI. The dynamic in vivo distribution of bone marrow-derived mesenchymal stem cells after infusion. Cells Tissues Organs. 2001;169(1):12-20. doi: 10.1159/000047856.
- Cargnoni A, Gibelli L, Tosini A, Signoroni PB, Nassuato C, Arienti D, Lombardi G, Albertini A, Wengler GS, Parolini O. Transplantation of allogeneic and xenogeneic placenta-derived cells reduces bleomycin-induced lung fibrosis. Cell Transplant. 2009;18(4):405-22. doi: 10.3727/096368909788809857.
- Lee SH, Jang AS, Kim YE, Cha JY, Kim TH, Jung S, Park SK, Lee YK, Won JH, Kim YH, Park CS. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010 Feb 8;11(1):16. doi: 10.1186/1465-9921-11-16.
- Ortiz LA, Gambelli F, McBride C, Gaupp D, Baddoo M, Kaminski N, Phinney DG. Mesenchymal stem cell engraftment in lung is enhanced in response to bleomycin exposure and ameliorates its fibrotic effects. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003 Jul 8;100(14):8407-11. doi: 10.1073/pnas.1432929100. Epub 2003 Jun 18.
- Kotton DN, Ma BY, Cardoso WV, Sanderson EA, Summer RS, Williams MC, Fine A. Bone marrow-derived cells as progenitors of lung alveolar epithelium. Development. 2001 Dec;128(24):5181-8. doi: 10.1242/dev.128.24.5181.
- Sueblinvong V, Loi R, Eisenhauer PL, Bernstein IM, Suratt BT, Spees JL, Weiss DJ. Derivation of lung epithelium from human cord blood-derived mesenchymal stem cells. Am J Respir Crit Care Med. 2008 Apr 1;177(7):701-11. doi: 10.1164/rccm.200706-859OC. Epub 2007 Dec 6.
- Ma N, Gai H, Mei J, Ding FB, Bao CR, Nguyen DM, Zhong H. Bone marrow mesenchymal stem cells can differentiate into type II alveolar epithelial cells in vitro. Cell Biol Int. 2011 Dec;35(12):1261-6. doi: 10.1042/CBI20110026.
- Yamada M, Kubo H, Kobayashi S, Ishizawa K, Numasaki M, Ueda S, Suzuki T, Sasaki H. Bone marrow-derived progenitor cells are important for lung repair after lipopolysaccharide-induced lung injury. J Immunol. 2004 Jan 15;172(2):1266-72. doi: 10.4049/jimmunol.172.2.1266. Erratum In: J Immunol. 2004 Oct 1;173(7):4755.
- Chang JC, Summer R, Sun X, Fitzsimmons K, Fine A. Evidence that bone marrow cells do not contribute to the alveolar epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Oct;33(4):335-42. doi: 10.1165/rcmb.2005-0129OC. Epub 2005 Jun 16.
- Kotton DN, Fabian AJ, Mulligan RC. Failure of bone marrow to reconstitute lung epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Oct;33(4):328-34. doi: 10.1165/rcmb.2005-0175RC. Epub 2005 Jun 16.
- Kumamoto M, Nishiwaki T, Matsuo N, Kimura H, Matsushima K. Minimally cultured bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate fibrotic lung injury. Eur Respir J. 2009 Sep;34(3):740-8. doi: 10.1183/09031936.00128508. Epub 2009 Mar 26.
- Bitencourt CS, Pereira PA, Ramos SG, Sampaio SV, Arantes EC, Aronoff DM, Faccioli LH. Hyaluronidase recruits mesenchymal-like cells to the lung and ameliorates fibrosis. Fibrogenesis Tissue Repair. 2011 Jan 13;4(1):3. doi: 10.1186/1755-1536-4-3.
- Lee SH, Lee EJ, Lee SY, Kim JH, Shim JJ, Shin C, In KH, Kang KH, Uhm CS, Kim HK, Yang KS, Park S, Kim HS, Kim YM, Yoo TJ. The effect of adipose stem cell therapy on pulmonary fibrosis induced by repetitive intratracheal bleomycin in mice. Exp Lung Res. 2014 Apr;40(3):117-25. doi: 10.3109/01902148.2014.881930.
- Xu J, Mora A, Shim H, Stecenko A, Brigham KL, Rojas M. Role of the SDF-1/CXCR4 axis in the pathogenesis of lung injury and fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007 Sep;37(3):291-9. doi: 10.1165/rcmb.2006-0187OC. Epub 2007 Apr 26.
- Antoniou KM, Papadaki HA, Soufla G, Kastrinaki MC, Damianaki A, Koutala H, Spandidos DA, Siafakas NM. Investigation of bone marrow mesenchymal stem cells (BM MSCs) involvement in Idiopathic Pulmonary Fibrosis (IPF). Respir Med. 2010 Oct;104(10):1535-42. doi: 10.1016/j.rmed.2010.04.015. Epub 2010 May 18.
- Weiss DJ, Casaburi R, Flannery R, LeRoux-Williams M, Tashkin DP. A placebo-controlled, randomized trial of mesenchymal stem cells in COPD. Chest. 2013 Jun;143(6):1590-1598. doi: 10.1378/chest.12-2094.
- Weiss DJ, Chambers D, Giangreco A, Keating A, Kotton D, Lelkes PI, Wagner DE, Prockop DJ; ATS Subcommittee on Stem Cells and Cell Therapies. An official American Thoracic Society workshop report: stem cells and cell therapies in lung biology and diseases. Ann Am Thorac Soc. 2015 Apr;12(4):S79-97. doi: 10.1513/AnnalsATS.201502-086ST.
- Glassberg MK, Toonkel RL. Moving stem cell therapy to patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Respirology. 2014 Oct;19(7):950-1. doi: 10.1111/resp.12364. Epub 2014 Aug 14. No abstract available.
- Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013 Jul 15;188(2):133-40. doi: 10.1164/rccm.201207-1204PP.
- Sundin M, Orvell C, Rasmusson I, Sundberg B, Ringden O, Le Blanc K. Mesenchymal stem cells are susceptible to human herpesviruses, but viral DNA cannot be detected in the healthy seropositive individual. Bone Marrow Transplant. 2006 Jun;37(11):1051-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1705368.
- Klyushnenkova E, Mosca JD, Zernetkina V, Majumdar MK, Beggs KJ, Simonetti DW, Deans RJ, McIntosh KR. T cell responses to allogeneic human mesenchymal stem cells: immunogenicity, tolerance, and suppression. J Biomed Sci. 2005;12(1):47-57. doi: 10.1007/s11373-004-8183-7.
- Le Blanc K, Tammik C, Rosendahl K, Zetterberg E, Ringden O. HLA expression and immunologic properties of differentiated and undifferentiated mesenchymal stem cells. Exp Hematol. 2003 Oct;31(10):890-6. doi: 10.1016/s0301-472x(03)00110-3.
- King P. Pathogenesis of bronchiectasis. Paediatr Respir Rev. 2011 Jun;12(2):104-10. doi: 10.1016/j.prrv.2010.10.011. Epub 2010 Nov 24.
- Weycker D, Edelsberg J, Oster G, Tino G. Prevalence and economic burden of bronchiectasis. Clin Pulm Med. 2005;12(4):205-9
- Seitz AE, Olivier KN, Adjemian J, Holland SM, Prevots DR. Trends in bronchiectasis among medicare beneficiaries in the United States, 2000 to 2007. Chest. 2012 Aug;142(2):432-439. doi: 10.1378/chest.11-2209.
- Bilton D, Tino G, Barker AF, Chambers DC, De Soyza A, Dupont LJ, O'Dochartaigh C, van Haren EH, Vidal LO, Welte T, Fox HG, Wu J, Charlton B; B-305 Study Investigators. Inhaled mannitol for non-cystic fibrosis bronchiectasis: a randomised, controlled trial. Thorax. 2014 Dec;69(12):1073-9. doi: 10.1136/thoraxjnl-2014-205587. Epub 2014 Sep 21.
- Rogers GB, Bruce KD, Martin ML, Burr LD, Serisier DJ. The effect of long-term macrolide treatment on respiratory microbiota composition in non-cystic fibrosis bronchiectasis: an analysis from the randomised, double-blind, placebo-controlled BLESS trial. Lancet Respir Med. 2014 Dec;2(12):988-96. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70213-9. Epub 2014 Oct 14. Erratum In: Lancet Respir Med. 2015 Apr;3(4):e15.
- Altenburg J, de Graaff CS, Stienstra Y, Sloos JH, van Haren EH, Koppers RJ, van der Werf TS, Boersma WG. Effect of azithromycin maintenance treatment on infectious exacerbations among patients with non-cystic fibrosis bronchiectasis: the BAT randomized controlled trial. JAMA. 2013 Mar 27;309(12):1251-9. doi: 10.1001/jama.2013.1937.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Faktiske)
Studiet fullført (Faktiske)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Anslag)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
Andre studie-ID-numre
- 20150627
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .