- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT02625246
Bezpieczeństwo i potencjalna skuteczność ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych w leczeniu rozstrzeni oskrzeli niezwiązanych z mukowiscydozą (CELEB)
Faza I, badanie oceniające bezpieczeństwo, tolerancję i potencjalną skuteczność infuzji allogenicznych ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (hMSC) u pacjentów z rozstrzeniem oskrzeli niezwiązanym z mukowiscydozą
Przegląd badań
Szczegółowy opis
Badanie I fazy zostanie przeprowadzone w celu sprawdzenia bezpieczeństwa dwóch dawek hMSC pochodzących ze szpiku kostnego (20 000 000 i 100 000 000) podawanych w obwodowej infuzji dożylnej.
Grupa 1: 3 osoby otrzymają pojedyncze podanie allogenicznych hMSC: 20 x106 (20 milionów) komórek dostarczonych poprzez obwodową infuzję dożylną Grupa 2: 3 osoby otrzymają pojedyncze podanie allogenicznych hMSC: 1 x108 (100 milionów) komórek dostarczonych przez obwodową infuzję infuzja dożylna Tymczasowa analiza bezpieczeństwa zostanie przeprowadzona cztery tygodnie po włączeniu pierwszego pacjenta do każdej kohorty. Ciągłe bezpieczeństwo i tolerancja wraz z przeglądem zdarzeń niepożądanych (AE) będą oceniane podczas każdej wizyty. Parametry skuteczności (testy czynnościowe płuc, pojemność dyfuzyjna płuc, objętości płuc, 6-minutowy test marszu (6MWT) oraz kwestionariusze dotyczące duszności/jakości życia (QOL)) będą oceniane co 12 tygodni aż do zakończenia badania. Kliniczne testy laboratoryjne w celu oceny bezpieczeństwa będą przeprowadzane podczas każdej wizyty.
Tomografia komputerowa wysokiej rozdzielczości (HRCT) zostanie przeprowadzona podczas wizyty wyjściowej (jeśli nie zostanie wykonana w ciągu trzech miesięcy przed włączeniem), a następnie w 24. tygodniu.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Faza 1
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Florida
-
Miami, Florida, Stany Zjednoczone, 33136
- University of Miami Hospitals & Clinics
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Wyraź pisemną świadomą zgodę,
- w chwili podpisania Świadomej Zgody mieć od 30 do 87 lat,
- waga powyżej 45 i poniżej 150 kg,
- mieć kliniczne rozpoznanie rozstrzeni oskrzeli niezwiązanej z mukowiscydozą przed badaniem przesiewowym,
- przebyły co najmniej 2 zaostrzenia w ciągu ostatniego roku, udokumentowane wizytami lekarskimi lub w szpitalu (stosowanie antybiotyków co najmniej raz w ciągu ostatniego roku),
- Pokaż wyjściową wartość FEV1 między 25% a 85% wartości należnej i większą lub równą 1 l oraz wyjściową zdolność dyfuzyjną płuc dla tlenku węgla (DLCO) większą lub równą 30% (skorygowaną o hemoglobinę, ale bez objętości pęcherzyków płucnych),
- Mieć normalną czynność prawej komory, udokumentowaną przez echo Dopplera lub cewnikowanie prawego serca,
- jeśli jesteś kobietą w wieku rozrodczym, zgódź się przestrzegać zasad antykoncepcji określonych poniżej.
- Pacjenci mogą otrzymywać terapie nielekowe, w tym suplementację tlenem nie większą niż 4 litry na minutę i rehabilitację płuc.
- Pacjenci mogą być na przewlekłym leczeniu makrolidem lub antybiotykiem wziewnym z powodu rozstrzeni oskrzeli
Kryteria wyłączenia:
- Wyniki HRCT i/lub chirurgicznej biopsji płuca są niezgodne z rozpoznaniem rozstrzeni oskrzeli innej niż CF. (Wykluczenie rozedmy płuc i/lub rozlanej choroby miąższu)
- nie być w stanie przeprowadzić żadnej z ocen wymaganych do analizy punktu końcowego (zgłosić obawy dotyczące bezpieczeństwa lub tolerancji, wykonać testy czynnościowe płuc (PFT) lub HRCT, przejść pobieranie krwi, przeczytać kwestionariusz i odpowiedzieć na nie
- Jeśli kobieta jest w wieku rozrodczym, poziom hormonu folikulotropowego (FSH) wynosi poniżej 25,8 j.m./l
- być aktywnie leczony z powodu ostrego zakaźnego zaostrzenia rozstrzeni oskrzeli
- Mieć aktywną infekcję, która nie jest leczona
- Miały aktywne infekcje występujące w ciągu co najmniej 4 tygodni leczenia w ramach badania
- Być obecnie w trakcie leczenia zakażeń NTM
- Mieli dodatnie posiewy plwociny na prątki niegruźlicze (NTM) w ciągu ostatnich 6 miesięcy
- Masz historię nadużywania narkotyków lub alkoholu w ciągu ostatnich 24 miesięcy.
- Otrzymują obecnie (lub otrzymywali w ciągu czterech tygodni od badania przesiewowego) eksperymentalne środki do leczenia rozstrzeni oskrzeli lub zostali włączeni do badań klinicznych w ciągu ostatnich 30 dni
- Bądź aktywny na liście (lub oczekuj przyszłej listy) do przeszczepu dowolnego narządu.
- Mają klinicznie istotne nieprawidłowe wartości badań przesiewowych.
- Cierpią na poważną chorobę współistniejącą, która w opinii badacza może zagrozić bezpieczeństwu lub zdyscyplinowaniu pacjenta lub uniemożliwić pomyślne ukończenie badania.
- Mieć jakiekolwiek inne schorzenie, które w opinii badacza może zagrozić bezpieczeństwu lub zdyscyplinowaniu pacjenta lub uniemożliwić pomyślne ukończenie badania.
- Znane alergie na penicylinę lub streptomycynę.
- Być biorcą przeszczepu narządu.
- mieć historię kliniczną nowotworu złośliwego w ciągu 5 lat (tj. pacjenci z wcześniejszym nowotworem złośliwym muszą być wolni od choroby przez 5 lat), z wyjątkiem leczonego leczonego raka podstawnokomórkowego skóry, raka płaskonabłonkowego skóry lub raka szyjki macicy.
- Mieć chorobę inną niż płucna, która ogranicza długość życia do mniej niż 1 roku.
- Bądź w surowicy dodatni w kierunku HIV, wirusowego zapalenia wątroby typu BsAg (reaktywne na czynnik powierzchniowy) lub wirusowego zapalenia wątroby typu C.
- Mają nadwrażliwość na sulfotlenek dimetylu (DMSO)
- Nie być w stanie utrzymać nasyconego tlenu (SpO2) powyżej 93% w powietrzu pokojowym na poziomie morza w stanie spoczynku) lub SpO2 powyżej 88% w powietrzu pokojowym na wysokości powyżej 5000 stóp (1524 metrów) nad poziomem morza w stanie spoczynku.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Nielosowe
- Model interwencyjny: Zadanie dla jednej grupy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
---|---|
Eksperymentalny: Grupa 1
3 pacjentów otrzyma pojedynczą dawkę allogenicznych hMSC: 20 x106 (20 milionów) komórek dostarczonych w obwodowej infuzji dożylnej
|
dożylny wlew allogenicznych komórek macierzystych pochodzących ze szpiku kostnego
Inne nazwy:
|
Eksperymentalny: Grupa 2
3 pacjentów otrzyma pojedynczą dawkę allogenicznych hMSC: 1 x 108 (100 milionów) komórek dostarczonych w obwodowej infuzji dożylnej
|
dożylny wlew allogenicznych komórek macierzystych pochodzących ze szpiku kostnego
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Liczba Uczestników, u których wystąpiły poważne zdarzenia niepożądane związane z leczeniem
Ramy czasowe: Tydzień 4 po infuzji
|
częstość występowania poważnych zdarzeń niepożądanych związanych z leczeniem, zdefiniowanych jako połączenie zgonu, zatorowości płucnej niezakończonej zgonem, udaru mózgu, hospitalizacji z powodu nasilenia duszności i klinicznie istotnych nieprawidłowości w wynikach badań laboratoryjnych
|
Tydzień 4 po infuzji
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
Różnica w jednostkach tworzących kolonie (CFU) w półilościowej hodowli plwociny
Ramy czasowe: Uczestnicy będą obserwowani od 1 tygodnia do oczekiwanego średnio 24 tygodni po infuzji.
|
Różnica w CFU w półilościowej hodowli plwociny
|
Uczestnicy będą obserwowani od 1 tygodnia do oczekiwanego średnio 24 tygodni po infuzji.
|
tempo pogarszania się czynności płuc
Ramy czasowe: Uczestnicy będą obserwowani od 12 tygodni do oczekiwanego średnio 24 tygodni po infuzji.
|
różnica w bezwzględnym spadku natężonej objętości wydechowej w przewidywanym procencie jednej sekundy (FEV1).
|
Uczestnicy będą obserwowani od 12 tygodni do oczekiwanego średnio 24 tygodni po infuzji.
|
częstość ostrych zaostrzeń
Ramy czasowe: Uczestnicy będą obserwowani od 12 tygodni do oczekiwanej średniej 48 tygodni po infuzji.
|
wzmożony kaszel i odkrztuszanie plwociny, gorączka, nowa lub nasilona duszność w ciągu mniej niż 30 dni, nowa lub nasilona hipoksemia przy braku innych możliwych do zidentyfikowania przyczyn
|
Uczestnicy będą obserwowani od 12 tygodni do oczekiwanej średniej 48 tygodni po infuzji.
|
zgłaszana duszność i ocena jakości życia
Ramy czasowe: Uczestnicy będą obserwowani od 4 tygodni do oczekiwanej średniej 48 tygodni po infuzji.
|
za pomocą kwestionariusza narzędzia jakości życia QOL-B wersja 2
|
Uczestnicy będą obserwowani od 4 tygodni do oczekiwanej średniej 48 tygodni po infuzji.
|
śmierć z jakiejkolwiek przyczyny
Ramy czasowe: Uczestnicy będą obserwowani przez cały czas trwania badania, czyli średnio przez 48 tygodni.
|
śmierć z jakiejkolwiek przyczyny
|
Uczestnicy będą obserwowani przez cały czas trwania badania, czyli średnio przez 48 tygodni.
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Główny śledczy: Glassberg K Marilyn, MD, University of Miami
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Le Blanc K, Frassoni F, Ball L, Locatelli F, Roelofs H, Lewis I, Lanino E, Sundberg B, Bernardo ME, Remberger M, Dini G, Egeler RM, Bacigalupo A, Fibbe W, Ringden O; Developmental Committee of the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Mesenchymal stem cells for treatment of steroid-resistant, severe, acute graft-versus-host disease: a phase II study. Lancet. 2008 May 10;371(9624):1579-86. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60690-X.
- Liang J, Zhang H, Hua B, Wang H, Lu L, Shi S, Hou Y, Zeng X, Gilkeson GS, Sun L. Allogenic mesenchymal stem cells transplantation in refractory systemic lupus erythematosus: a pilot clinical study. Ann Rheum Dis. 2010 Aug;69(8):1423-9. doi: 10.1136/ard.2009.123463. Erratum In: Ann Rheum Dis. 2011 Jan;70(1):237.
- Quittner AL, O'Donnell AE, Salathe MA, Lewis SA, Li X, Montgomery AB, O'Riordan TG, Barker AF. Quality of Life Questionnaire-Bronchiectasis: final psychometric analyses and determination of minimal important difference scores. Thorax. 2015 Jan;70(1):12-20. doi: 10.1136/thoraxjnl-2014-205918. Epub 2014 Oct 16.
- Wilson JG, Liu KD, Zhuo H, Caballero L, McMillan M, Fang X, Cosgrove K, Vojnik R, Calfee CS, Lee JW, Rogers AJ, Levitt J, Wiener-Kronish J, Bajwa EK, Leavitt A, McKenna D, Thompson BT, Matthay MA. Mesenchymal stem (stromal) cells for treatment of ARDS: a phase 1 clinical trial. Lancet Respir Med. 2015 Jan;3(1):24-32. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70291-7. Epub 2014 Dec 17.
- Tzouvelekis A, Paspaliaris V, Koliakos G, Ntolios P, Bouros E, Oikonomou A, Zissimopoulos A, Boussios N, Dardzinski B, Gritzalis D, Antoniadis A, Froudarakis M, Kolios G, Bouros D. A prospective, non-randomized, no placebo-controlled, phase Ib clinical trial to study the safety of the adipose derived stromal cells-stromal vascular fraction in idiopathic pulmonary fibrosis. J Transl Med. 2013 Jul 15;11:171. doi: 10.1186/1479-5876-11-171.
- Chambers DC, Enever D, Ilic N, Sparks L, Whitelaw K, Ayres J, Yerkovich ST, Khalil D, Atkinson KM, Hopkins PM. A phase 1b study of placenta-derived mesenchymal stromal cells in patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Respirology. 2014 Oct;19(7):1013-8. doi: 10.1111/resp.12343. Epub 2014 Jul 9.
- Moodley Y, Atienza D, Manuelpillai U, Samuel CS, Tchongue J, Ilancheran S, Boyd R, Trounson A. Human umbilical cord mesenchymal stem cells reduce fibrosis of bleomycin-induced lung injury. Am J Pathol. 2009 Jul;175(1):303-13. doi: 10.2353/ajpath.2009.080629. Epub 2009 Jun 4.
- Hare JM, Fishman JE, Gerstenblith G, DiFede Velazquez DL, Zambrano JP, Suncion VY, Tracy M, Ghersin E, Johnston PV, Brinker JA, Breton E, Davis-Sproul J, Schulman IH, Byrnes J, Mendizabal AM, Lowery MH, Rouy D, Altman P, Wong Po Foo C, Ruiz P, Amador A, Da Silva J, McNiece IK, Heldman AW, George R, Lardo A. Comparison of allogeneic vs autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells delivered by transendocardial injection in patients with ischemic cardiomyopathy: the POSEIDON randomized trial. JAMA. 2012 Dec 12;308(22):2369-79. doi: 10.1001/jama.2012.25321. Erratum In: JAMA. 2013 Aug 21;310(7):750. George, Richard [added]; Lardo, Albert [added].
- Deans RJ, Moseley AB. Mesenchymal stem cells: biology and potential clinical uses. Exp Hematol. 2000 Aug;28(8):875-84. doi: 10.1016/s0301-472x(00)00482-3.
- Wong C, Jayaram L, Karalus N, Eaton T, Tong C, Hockey H, Milne D, Fergusson W, Tuffery C, Sexton P, Storey L, Ashton T. Azithromycin for prevention of exacerbations in non-cystic fibrosis bronchiectasis (EMBRACE): a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2012 Aug 18;380(9842):660-7. doi: 10.1016/S0140-6736(12)60953-2.
- Jiang Y, Jahagirdar BN, Reinhardt RL, Schwartz RE, Keene CD, Ortiz-Gonzalez XR, Reyes M, Lenvik T, Lund T, Blackstad M, Du J, Aldrich S, Lisberg A, Low WC, Largaespada DA, Verfaillie CM. Pluripotency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow. Nature. 2002 Jul 4;418(6893):41-9. doi: 10.1038/nature00870. Epub 2002 Jun 20. Erratum In: Nature. 2007 Jun 14;447(7146):879-80.
- Gupta N, Su X, Popov B, Lee JW, Serikov V, Matthay MA. Intrapulmonary delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells improves survival and attenuates endotoxin-induced acute lung injury in mice. J Immunol. 2007 Aug 1;179(3):1855-63. doi: 10.4049/jimmunol.179.3.1855.
- Lee JW, Fang X, Gupta N, Serikov V, Matthay MA. Allogeneic human mesenchymal stem cells for treatment of E. coli endotoxin-induced acute lung injury in the ex vivo perfused human lung. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Sep 22;106(38):16357-62. doi: 10.1073/pnas.0907996106. Epub 2009 Aug 31.
- Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, Pandey AC, Torres G, Go K, Phinney DG. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Jun 26;104(26):11002-7. doi: 10.1073/pnas.0704421104. Epub 2007 Jun 14.
- Rojas M, Xu J, Woods CR, Mora AL, Spears W, Roman J, Brigham KL. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Aug;33(2):145-52. doi: 10.1165/rcmb.2004-0330OC. Epub 2005 May 12.
- Fang X, Neyrinck AP, Matthay MA, Lee JW. Allogeneic human mesenchymal stem cells restore epithelial protein permeability in cultured human alveolar type II cells by secretion of angiopoietin-1. J Biol Chem. 2010 Aug 20;285(34):26211-22. doi: 10.1074/jbc.M110.119917. Epub 2010 Jun 16.
- Gupta N, Krasnodembskaya A, Kapetanaki M, Mouded M, Tan X, Serikov V, Matthay MA. Mesenchymal stem cells enhance survival and bacterial clearance in murine Escherichia coli pneumonia. Thorax. 2012 Jun;67(6):533-9. doi: 10.1136/thoraxjnl-2011-201176. Epub 2012 Jan 16.
- Krasnodembskaya A, Samarani G, Song Y, Zhuo H, Su X, Lee JW, Gupta N, Petrini M, Matthay MA. Human mesenchymal stem cells reduce mortality and bacteremia in gram-negative sepsis in mice in part by enhancing the phagocytic activity of blood monocytes. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2012 May 15;302(10):L1003-13. doi: 10.1152/ajplung.00180.2011. Epub 2012 Mar 16.
- Krasnodembskaya A, Song Y, Fang X, Gupta N, Serikov V, Lee JW, Matthay MA. Antibacterial effect of human mesenchymal stem cells is mediated in part from secretion of the antimicrobial peptide LL-37. Stem Cells. 2010 Dec;28(12):2229-38. doi: 10.1002/stem.544.
- Lee JW, Krasnodembskaya A, McKenna DH, Song Y, Abbott J, Matthay MA. Therapeutic effects of human mesenchymal stem cells in ex vivo human lungs injured with live bacteria. Am J Respir Crit Care Med. 2013 Apr 1;187(7):751-60. doi: 10.1164/rccm.201206-0990OC.
- Nemeth K, Leelahavanichkul A, Yuen PS, Mayer B, Parmelee A, Doi K, Robey PG, Leelahavanichkul K, Koller BH, Brown JM, Hu X, Jelinek I, Star RA, Mezey E. Bone marrow stromal cells attenuate sepsis via prostaglandin E(2)-dependent reprogramming of host macrophages to increase their interleukin-10 production. Nat Med. 2009 Jan;15(1):42-9. doi: 10.1038/nm.1905. Epub 2008 Nov 21. Erratum In: Nat Med. 2009 Apr;15(4):462.
- Mei SH, Haitsma JJ, Dos Santos CC, Deng Y, Lai PF, Slutsky AS, Liles WC, Stewart DJ. Mesenchymal stem cells reduce inflammation while enhancing bacterial clearance and improving survival in sepsis. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Oct 15;182(8):1047-57. doi: 10.1164/rccm.201001-0010OC. Epub 2010 Jun 17.
- Lee RH, Seo MJ, Reger RL, Spees JL, Pulin AA, Olson SD, Prockop DJ. Multipotent stromal cells from human marrow home to and promote repair of pancreatic islets and renal glomeruli in diabetic NOD/scid mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006 Nov 14;103(46):17438-43. doi: 10.1073/pnas.0608249103. Epub 2006 Nov 6.
- Parekkadan B, van Poll D, Suganuma K, Carter EA, Berthiaume F, Tilles AW, Yarmush ML. Mesenchymal stem cell-derived molecules reverse fulminant hepatic failure. PLoS One. 2007 Sep 26;2(9):e941. doi: 10.1371/journal.pone.0000941.
- Togel F, Hu Z, Weiss K, Isaac J, Lange C, Westenfelder C. Administered mesenchymal stem cells protect against ischemic acute renal failure through differentiation-independent mechanisms. Am J Physiol Renal Physiol. 2005 Jul;289(1):F31-42. doi: 10.1152/ajprenal.00007.2005. Epub 2005 Feb 15.
- Iso Y, Spees JL, Serrano C, Bakondi B, Pochampally R, Song YH, Sobel BE, Delafontaine P, Prockop DJ. Multipotent human stromal cells improve cardiac function after myocardial infarction in mice without long-term engraftment. Biochem Biophys Res Commun. 2007 Mar 16;354(3):700-6. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.01.045. Epub 2007 Jan 17.
- Schuleri KH, Feigenbaum GS, Centola M, Weiss ES, Zimmet JM, Turney J, Kellner J, Zviman MM, Hatzistergos KE, Detrick B, Conte JV, McNiece I, Steenbergen C, Lardo AC, Hare JM. Autologous mesenchymal stem cells produce reverse remodelling in chronic ischaemic cardiomyopathy. Eur Heart J. 2009 Nov;30(22):2722-32. doi: 10.1093/eurheartj/ehp265. Epub 2009 Jul 8.
- Miyahara Y, Nagaya N, Kataoka M, Yanagawa B, Tanaka K, Hao H, Ishino K, Ishida H, Shimizu T, Kangawa K, Sano S, Okano T, Kitamura S, Mori H. Monolayered mesenchymal stem cells repair scarred myocardium after myocardial infarction. Nat Med. 2006 Apr;12(4):459-65. doi: 10.1038/nm1391. Epub 2006 Apr 2.
- Hare JM, Traverse JH, Henry TD, Dib N, Strumpf RK, Schulman SP, Gerstenblith G, DeMaria AN, Denktas AE, Gammon RS, Hermiller JB Jr, Reisman MA, Schaer GL, Sherman W. A randomized, double-blind, placebo-controlled, dose-escalation study of intravenous adult human mesenchymal stem cells (prochymal) after acute myocardial infarction. J Am Coll Cardiol. 2009 Dec 8;54(24):2277-86. doi: 10.1016/j.jacc.2009.06.055.
- Gong Z, Niklason LE. Use of human mesenchymal stem cells as alternative source of smooth muscle cells in vessel engineering. Methods Mol Biol. 2011;698:279-94. doi: 10.1007/978-1-60761-999-4_21.
- Price AP, England KA, Matson AM, Blazar BR, Panoskaltsis-Mortari A. Development of a decellularized lung bioreactor system for bioengineering the lung: the matrix reloaded. Tissue Eng Part A. 2010 Aug;16(8):2581-91. doi: 10.1089/ten.TEA.2009.0659.
- Ishizawa K, Kubo H, Yamada M, Kobayashi S, Numasaki M, Ueda S, Suzuki T, Sasaki H. Bone marrow-derived cells contribute to lung regeneration after elastase-induced pulmonary emphysema. FEBS Lett. 2004 Jan 2;556(1-3):249-52. doi: 10.1016/s0014-5793(03)01399-1.
- Spees JL, Pociask DA, Sullivan DE, Whitney MJ, Lasky JA, Prockop DJ, Brody AR. Engraftment of bone marrow progenitor cells in a rat model of asbestos-induced pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2007 Aug 15;176(4):385-94. doi: 10.1164/rccm.200607-1004OC. Epub 2007 May 11.
- Spees JL, Whitney MJ, Sullivan DE, Lasky JA, Laboy M, Ylostalo J, Prockop DJ. Bone marrow progenitor cells contribute to repair and remodeling of the lung and heart in a rat model of progressive pulmonary hypertension. FASEB J. 2008 Apr;22(4):1226-36. doi: 10.1096/fj.07-8076com. Epub 2007 Nov 21.
- Bonfield TL, Koloze M, Lennon DP, Zuchowski B, Yang SE, Caplan AI. Human mesenchymal stem cells suppress chronic airway inflammation in the murine ovalbumin asthma model. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2010 Dec;299(6):L760-70. doi: 10.1152/ajplung.00182.2009. Epub 2010 Sep 3.
- Gao J, Dennis JE, Muzic RF, Lundberg M, Caplan AI. The dynamic in vivo distribution of bone marrow-derived mesenchymal stem cells after infusion. Cells Tissues Organs. 2001;169(1):12-20. doi: 10.1159/000047856.
- Cargnoni A, Gibelli L, Tosini A, Signoroni PB, Nassuato C, Arienti D, Lombardi G, Albertini A, Wengler GS, Parolini O. Transplantation of allogeneic and xenogeneic placenta-derived cells reduces bleomycin-induced lung fibrosis. Cell Transplant. 2009;18(4):405-22. doi: 10.3727/096368909788809857.
- Lee SH, Jang AS, Kim YE, Cha JY, Kim TH, Jung S, Park SK, Lee YK, Won JH, Kim YH, Park CS. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010 Feb 8;11(1):16. doi: 10.1186/1465-9921-11-16.
- Ortiz LA, Gambelli F, McBride C, Gaupp D, Baddoo M, Kaminski N, Phinney DG. Mesenchymal stem cell engraftment in lung is enhanced in response to bleomycin exposure and ameliorates its fibrotic effects. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003 Jul 8;100(14):8407-11. doi: 10.1073/pnas.1432929100. Epub 2003 Jun 18.
- Kotton DN, Ma BY, Cardoso WV, Sanderson EA, Summer RS, Williams MC, Fine A. Bone marrow-derived cells as progenitors of lung alveolar epithelium. Development. 2001 Dec;128(24):5181-8. doi: 10.1242/dev.128.24.5181.
- Sueblinvong V, Loi R, Eisenhauer PL, Bernstein IM, Suratt BT, Spees JL, Weiss DJ. Derivation of lung epithelium from human cord blood-derived mesenchymal stem cells. Am J Respir Crit Care Med. 2008 Apr 1;177(7):701-11. doi: 10.1164/rccm.200706-859OC. Epub 2007 Dec 6.
- Ma N, Gai H, Mei J, Ding FB, Bao CR, Nguyen DM, Zhong H. Bone marrow mesenchymal stem cells can differentiate into type II alveolar epithelial cells in vitro. Cell Biol Int. 2011 Dec;35(12):1261-6. doi: 10.1042/CBI20110026.
- Yamada M, Kubo H, Kobayashi S, Ishizawa K, Numasaki M, Ueda S, Suzuki T, Sasaki H. Bone marrow-derived progenitor cells are important for lung repair after lipopolysaccharide-induced lung injury. J Immunol. 2004 Jan 15;172(2):1266-72. doi: 10.4049/jimmunol.172.2.1266. Erratum In: J Immunol. 2004 Oct 1;173(7):4755.
- Chang JC, Summer R, Sun X, Fitzsimmons K, Fine A. Evidence that bone marrow cells do not contribute to the alveolar epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Oct;33(4):335-42. doi: 10.1165/rcmb.2005-0129OC. Epub 2005 Jun 16.
- Kotton DN, Fabian AJ, Mulligan RC. Failure of bone marrow to reconstitute lung epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Oct;33(4):328-34. doi: 10.1165/rcmb.2005-0175RC. Epub 2005 Jun 16.
- Kumamoto M, Nishiwaki T, Matsuo N, Kimura H, Matsushima K. Minimally cultured bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate fibrotic lung injury. Eur Respir J. 2009 Sep;34(3):740-8. doi: 10.1183/09031936.00128508. Epub 2009 Mar 26.
- Bitencourt CS, Pereira PA, Ramos SG, Sampaio SV, Arantes EC, Aronoff DM, Faccioli LH. Hyaluronidase recruits mesenchymal-like cells to the lung and ameliorates fibrosis. Fibrogenesis Tissue Repair. 2011 Jan 13;4(1):3. doi: 10.1186/1755-1536-4-3.
- Lee SH, Lee EJ, Lee SY, Kim JH, Shim JJ, Shin C, In KH, Kang KH, Uhm CS, Kim HK, Yang KS, Park S, Kim HS, Kim YM, Yoo TJ. The effect of adipose stem cell therapy on pulmonary fibrosis induced by repetitive intratracheal bleomycin in mice. Exp Lung Res. 2014 Apr;40(3):117-25. doi: 10.3109/01902148.2014.881930.
- Xu J, Mora A, Shim H, Stecenko A, Brigham KL, Rojas M. Role of the SDF-1/CXCR4 axis in the pathogenesis of lung injury and fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007 Sep;37(3):291-9. doi: 10.1165/rcmb.2006-0187OC. Epub 2007 Apr 26.
- Antoniou KM, Papadaki HA, Soufla G, Kastrinaki MC, Damianaki A, Koutala H, Spandidos DA, Siafakas NM. Investigation of bone marrow mesenchymal stem cells (BM MSCs) involvement in Idiopathic Pulmonary Fibrosis (IPF). Respir Med. 2010 Oct;104(10):1535-42. doi: 10.1016/j.rmed.2010.04.015. Epub 2010 May 18.
- Weiss DJ, Casaburi R, Flannery R, LeRoux-Williams M, Tashkin DP. A placebo-controlled, randomized trial of mesenchymal stem cells in COPD. Chest. 2013 Jun;143(6):1590-1598. doi: 10.1378/chest.12-2094.
- Weiss DJ, Chambers D, Giangreco A, Keating A, Kotton D, Lelkes PI, Wagner DE, Prockop DJ; ATS Subcommittee on Stem Cells and Cell Therapies. An official American Thoracic Society workshop report: stem cells and cell therapies in lung biology and diseases. Ann Am Thorac Soc. 2015 Apr;12(4):S79-97. doi: 10.1513/AnnalsATS.201502-086ST.
- Glassberg MK, Toonkel RL. Moving stem cell therapy to patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Respirology. 2014 Oct;19(7):950-1. doi: 10.1111/resp.12364. Epub 2014 Aug 14. No abstract available.
- Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013 Jul 15;188(2):133-40. doi: 10.1164/rccm.201207-1204PP.
- Sundin M, Orvell C, Rasmusson I, Sundberg B, Ringden O, Le Blanc K. Mesenchymal stem cells are susceptible to human herpesviruses, but viral DNA cannot be detected in the healthy seropositive individual. Bone Marrow Transplant. 2006 Jun;37(11):1051-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1705368.
- Klyushnenkova E, Mosca JD, Zernetkina V, Majumdar MK, Beggs KJ, Simonetti DW, Deans RJ, McIntosh KR. T cell responses to allogeneic human mesenchymal stem cells: immunogenicity, tolerance, and suppression. J Biomed Sci. 2005;12(1):47-57. doi: 10.1007/s11373-004-8183-7.
- Le Blanc K, Tammik C, Rosendahl K, Zetterberg E, Ringden O. HLA expression and immunologic properties of differentiated and undifferentiated mesenchymal stem cells. Exp Hematol. 2003 Oct;31(10):890-6. doi: 10.1016/s0301-472x(03)00110-3.
- King P. Pathogenesis of bronchiectasis. Paediatr Respir Rev. 2011 Jun;12(2):104-10. doi: 10.1016/j.prrv.2010.10.011. Epub 2010 Nov 24.
- Weycker D, Edelsberg J, Oster G, Tino G. Prevalence and economic burden of bronchiectasis. Clin Pulm Med. 2005;12(4):205-9
- Seitz AE, Olivier KN, Adjemian J, Holland SM, Prevots DR. Trends in bronchiectasis among medicare beneficiaries in the United States, 2000 to 2007. Chest. 2012 Aug;142(2):432-439. doi: 10.1378/chest.11-2209.
- Bilton D, Tino G, Barker AF, Chambers DC, De Soyza A, Dupont LJ, O'Dochartaigh C, van Haren EH, Vidal LO, Welte T, Fox HG, Wu J, Charlton B; B-305 Study Investigators. Inhaled mannitol for non-cystic fibrosis bronchiectasis: a randomised, controlled trial. Thorax. 2014 Dec;69(12):1073-9. doi: 10.1136/thoraxjnl-2014-205587. Epub 2014 Sep 21.
- Rogers GB, Bruce KD, Martin ML, Burr LD, Serisier DJ. The effect of long-term macrolide treatment on respiratory microbiota composition in non-cystic fibrosis bronchiectasis: an analysis from the randomised, double-blind, placebo-controlled BLESS trial. Lancet Respir Med. 2014 Dec;2(12):988-96. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70213-9. Epub 2014 Oct 14. Erratum In: Lancet Respir Med. 2015 Apr;3(4):e15.
- Altenburg J, de Graaff CS, Stienstra Y, Sloos JH, van Haren EH, Koppers RJ, van der Werf TS, Boersma WG. Effect of azithromycin maintenance treatment on infectious exacerbations among patients with non-cystic fibrosis bronchiectasis: the BAT randomized controlled trial. JAMA. 2013 Mar 27;309(12):1251-9. doi: 10.1001/jama.2013.1937.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Oszacować)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 20150627
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .