- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT02625246
Seguridad y eficacia potencial de las células madre mesenquimales humanas en las bronquiectasias sin fibrosis quística (CELEB)
Un ensayo de fase I para evaluar la seguridad, la tolerabilidad y la eficacia potencial de la infusión de células madre mesenquimales humanas alogénicas (hMSC) en pacientes con bronquiectasias sin fibrosis quística
Descripción general del estudio
Descripción detallada
Se realizará una investigación de fase 1 para probar la seguridad de dos dosis de hMSC derivadas de médula ósea (20 000 000 y 100 000 000) administradas mediante infusión intravenosa periférica.
Grupo 1: 3 sujetos recibirán una administración única de hMSC alogénicas: 20 x106 (20 millones) de células administradas mediante infusión intravenosa periférica Grupo 2: 3 sujetos recibirán una administración única de hMSC alogénicas: 1 x108 (100 millones) de células administradas mediante infusión intravenosa periférica infusión intravenosa El análisis de seguridad provisional se realizará cuatro semanas después de que el primer sujeto se inscriba en cada cohorte. En cada visita se evaluará la seguridad y la tolerabilidad continuas con la revisión de los eventos adversos (AA). Los parámetros de eficacia (pruebas de función pulmonar, capacidad de difusión pulmonar, volúmenes pulmonares, prueba de caminata de 6 minutos (6MWT) y cuestionarios de disnea/calidad de vida (QOL)) se evaluarán cada 12 semanas hasta la finalización del estudio. En cada visita se realizarán pruebas de laboratorio clínico para evaluar la seguridad.
La tomografía computarizada de alta resolución (HRCT, por sus siglas en inglés) se realizará en la visita inicial (si no se realizó dentro de los tres meses anteriores a la inscripción) y luego en la semana 24.
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- Fase 1
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
-
-
Florida
-
Miami, Florida, Estados Unidos, 33136
- University of Miami Hospitals & Clinics
-
-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
- Proporcionar consentimiento informado por escrito,
- tener entre 30 y 87 años al momento de firmar el Consentimiento Informado,
- peso mayor de 45 y menor de 150 kg,
- tener un diagnóstico clínico de bronquiectasias sin FQ antes de la selección,
- Ha tenido al menos 2 exacerbaciones en el último año según lo documentado por el consultorio médico o las visitas al hospital (uso de antibióticos al menos una vez en el último año),
- Mostrar un FEV1 basal entre el 25 % y el 85 % previsto y superior o igual a 1 L y una capacidad de difusión basal del pulmón para monóxido de carbono (DLCO) superior o igual al 30 % (corregido por hemoglobina pero no por volumen alveolar),
- Tener una función ventricular derecha normal, según lo documentado por eco Doppler o cateterismo cardíaco derecho,
- si es una mujer en edad fértil, acepta cumplir con las reglas de anticoncepción definidas a continuación.
- Los sujetos pueden recibir terapias no farmacológicas que incluyen suplementos de oxígeno no superiores a 4 litros por minuto y rehabilitación pulmonar.
- Los sujetos pueden estar en tratamiento crónico con macrólidos o antibióticos inhalados bronquiectasias
Criterio de exclusión:
- Tener resultados de HRCT o biopsia pulmonar quirúrgica inconsistentes con el diagnóstico de bronquiectasias sin FQ. (Exclusión de enfisema y/o enfermedad parenquimatosa difusa)
- ser incapaz de realizar ninguna de las evaluaciones requeridas para el análisis de punto final (informar problemas de seguridad o tolerabilidad, realizar pruebas de función pulmonar (PFT) o HRCT, someterse a extracciones de sangre, leer y responder al cuestionario
- Si es una mujer en edad fértil, tiene una hormona estimulante del folículo (FSH) por debajo de 25,8 UI/L
- recibir tratamiento activo para una exacerbación infecciosa aguda de las bronquiectasias
- Tiene una infección activa que no se trata
- Haber tenido infecciones activas que ocurrieron dentro de un mínimo de 4 semanas de tratamiento del estudio
- Estar actualmente en tratamiento para infecciones por MNT
- Haber tenido cultivos de esputo positivos para micobacterias no tuberculosas (NTM) en los últimos 6 meses
- Tener antecedentes de abuso de drogas o alcohol en los últimos 24 meses.
- Estar recibiendo actualmente (o haber recibido dentro de las cuatro semanas previas a la selección) agentes experimentales para el tratamiento de la bronquiectasia o haberse inscrito en ensayos clínicos dentro de los 30 días anteriores
- Estar en la lista activa (o esperar una lista futura) para el trasplante de cualquier órgano.
- Tener valores de laboratorio de detección anormales clínicamente importantes.
- Tener una enfermedad comórbida grave que, en opinión del investigador, pueda comprometer la seguridad o el cumplimiento del paciente o impedir la finalización satisfactoria del estudio.
- Tener cualquier otra condición que, en opinión del investigador, pueda comprometer la seguridad o el cumplimiento del paciente o impedir la finalización exitosa del estudio.
- Tiene alergias conocidas a la penicilina o estreptomicina.
- Ser receptor de trasplante de órganos.
- Tener un historial clínico de malignidad dentro de los 5 años (es decir, los pacientes con malignidad previa deben estar libres de enfermedad durante 5 años), excepto el carcinoma de células basales de piel, el carcinoma de células escamosas de piel o el carcinoma de cuello uterino tratados curativamente.
- Tiene una afección no pulmonar que limita la esperanza de vida a menos de 1 año.
- Ser suero positivo para VIH, hepatitis BsAg (agente de superficie reactivo) o hepatitis C virémica.
- Tiene hipersensibilidad al dimetilsulfóxido (DMSO)
- Ser incapaz de mantener una saturación de oxígeno (SpO2) de más del 93 % en el aire de la habitación al nivel del mar en reposo) o una SpO2 de más del 88 % en el aire de la habitación a más de 5000 pies (1524 metros) sobre el nivel del mar en reposo.
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Tratamiento
- Asignación: No aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación de un solo grupo
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
---|---|
Experimental: Grupo 1
3 pacientes recibirán una sola administración de hMSC alogénicas: 20 x106 (20 millones) de células administradas mediante infusión intravenosa periférica
|
infusión intravenosa de células madre alogénicas derivadas de médula ósea
Otros nombres:
|
Experimental: Grupo 2
3 pacientes recibirán una administración única de hMSC alogénicas: 1 x 108 (100 millones) de células administradas mediante infusión intravenosa periférica
|
infusión intravenosa de células madre alogénicas derivadas de médula ósea
Otros nombres:
|
¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
---|---|---|
Número de participantes con eventos adversos graves emergentes del tratamiento
Periodo de tiempo: Semana 4 después de la infusión
|
incidencia de cualquier evento adverso grave emergente del tratamiento definido como la combinación de muerte, embolia pulmonar no fatal, accidente cerebrovascular, hospitalización por empeoramiento de la disnea y anomalías clínicamente significativas en las pruebas de laboratorio
|
Semana 4 después de la infusión
|
Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
---|---|---|
Diferencia en Unidades Formadoras de Colonias (UFC) en cultivo semicuantitativo de esputo
Periodo de tiempo: Los participantes serán seguidos desde 1 semana hasta un promedio esperado de 24 semanas después de la infusión.
|
Diferencia en UFC en cultivo semicuantitativo de esputo
|
Los participantes serán seguidos desde 1 semana hasta un promedio esperado de 24 semanas después de la infusión.
|
tasa de disminución de la función pulmonar
Periodo de tiempo: Los participantes serán seguidos desde 12 semanas hasta un promedio esperado de 24 semanas después de la infusión.
|
diferencia en la disminución absoluta del volumen espiratorio forzado en un segundo (FEV1) por ciento previsto
|
Los participantes serán seguidos desde 12 semanas hasta un promedio esperado de 24 semanas después de la infusión.
|
frecuencia de exacerbaciones agudas
Periodo de tiempo: Los participantes serán seguidos desde 12 semanas hasta un promedio esperado de 48 semanas después de la infusión.
|
aumento de la producción de tos y esputo, fiebre, disnea nueva o que empeora en menos de 30 días, hipoxemia nueva o que empeora en ausencia de otras causas identificables
|
Los participantes serán seguidos desde 12 semanas hasta un promedio esperado de 48 semanas después de la infusión.
|
disnea informada y evaluación de la calidad de vida
Periodo de tiempo: Los participantes serán seguidos desde 4 semanas hasta un promedio esperado de 48 semanas después de la infusión.
|
usando el cuestionario de la herramienta de calidad de vida QOL-B versión 2
|
Los participantes serán seguidos desde 4 semanas hasta un promedio esperado de 48 semanas después de la infusión.
|
muerte por cualquier causa
Periodo de tiempo: Los participantes serán seguidos durante la duración del ensayo, que es un promedio esperado de 48 semanas.
|
muerte por cualquier causa
|
Los participantes serán seguidos durante la duración del ensayo, que es un promedio esperado de 48 semanas.
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Glassberg K Marilyn, MD, University of Miami
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Le Blanc K, Frassoni F, Ball L, Locatelli F, Roelofs H, Lewis I, Lanino E, Sundberg B, Bernardo ME, Remberger M, Dini G, Egeler RM, Bacigalupo A, Fibbe W, Ringden O; Developmental Committee of the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Mesenchymal stem cells for treatment of steroid-resistant, severe, acute graft-versus-host disease: a phase II study. Lancet. 2008 May 10;371(9624):1579-86. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60690-X.
- Liang J, Zhang H, Hua B, Wang H, Lu L, Shi S, Hou Y, Zeng X, Gilkeson GS, Sun L. Allogenic mesenchymal stem cells transplantation in refractory systemic lupus erythematosus: a pilot clinical study. Ann Rheum Dis. 2010 Aug;69(8):1423-9. doi: 10.1136/ard.2009.123463. Erratum In: Ann Rheum Dis. 2011 Jan;70(1):237.
- Quittner AL, O'Donnell AE, Salathe MA, Lewis SA, Li X, Montgomery AB, O'Riordan TG, Barker AF. Quality of Life Questionnaire-Bronchiectasis: final psychometric analyses and determination of minimal important difference scores. Thorax. 2015 Jan;70(1):12-20. doi: 10.1136/thoraxjnl-2014-205918. Epub 2014 Oct 16.
- Wilson JG, Liu KD, Zhuo H, Caballero L, McMillan M, Fang X, Cosgrove K, Vojnik R, Calfee CS, Lee JW, Rogers AJ, Levitt J, Wiener-Kronish J, Bajwa EK, Leavitt A, McKenna D, Thompson BT, Matthay MA. Mesenchymal stem (stromal) cells for treatment of ARDS: a phase 1 clinical trial. Lancet Respir Med. 2015 Jan;3(1):24-32. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70291-7. Epub 2014 Dec 17.
- Tzouvelekis A, Paspaliaris V, Koliakos G, Ntolios P, Bouros E, Oikonomou A, Zissimopoulos A, Boussios N, Dardzinski B, Gritzalis D, Antoniadis A, Froudarakis M, Kolios G, Bouros D. A prospective, non-randomized, no placebo-controlled, phase Ib clinical trial to study the safety of the adipose derived stromal cells-stromal vascular fraction in idiopathic pulmonary fibrosis. J Transl Med. 2013 Jul 15;11:171. doi: 10.1186/1479-5876-11-171.
- Chambers DC, Enever D, Ilic N, Sparks L, Whitelaw K, Ayres J, Yerkovich ST, Khalil D, Atkinson KM, Hopkins PM. A phase 1b study of placenta-derived mesenchymal stromal cells in patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Respirology. 2014 Oct;19(7):1013-8. doi: 10.1111/resp.12343. Epub 2014 Jul 9.
- Moodley Y, Atienza D, Manuelpillai U, Samuel CS, Tchongue J, Ilancheran S, Boyd R, Trounson A. Human umbilical cord mesenchymal stem cells reduce fibrosis of bleomycin-induced lung injury. Am J Pathol. 2009 Jul;175(1):303-13. doi: 10.2353/ajpath.2009.080629. Epub 2009 Jun 4.
- Hare JM, Fishman JE, Gerstenblith G, DiFede Velazquez DL, Zambrano JP, Suncion VY, Tracy M, Ghersin E, Johnston PV, Brinker JA, Breton E, Davis-Sproul J, Schulman IH, Byrnes J, Mendizabal AM, Lowery MH, Rouy D, Altman P, Wong Po Foo C, Ruiz P, Amador A, Da Silva J, McNiece IK, Heldman AW, George R, Lardo A. Comparison of allogeneic vs autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells delivered by transendocardial injection in patients with ischemic cardiomyopathy: the POSEIDON randomized trial. JAMA. 2012 Dec 12;308(22):2369-79. doi: 10.1001/jama.2012.25321. Erratum In: JAMA. 2013 Aug 21;310(7):750. George, Richard [added]; Lardo, Albert [added].
- Deans RJ, Moseley AB. Mesenchymal stem cells: biology and potential clinical uses. Exp Hematol. 2000 Aug;28(8):875-84. doi: 10.1016/s0301-472x(00)00482-3.
- Wong C, Jayaram L, Karalus N, Eaton T, Tong C, Hockey H, Milne D, Fergusson W, Tuffery C, Sexton P, Storey L, Ashton T. Azithromycin for prevention of exacerbations in non-cystic fibrosis bronchiectasis (EMBRACE): a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2012 Aug 18;380(9842):660-7. doi: 10.1016/S0140-6736(12)60953-2.
- Jiang Y, Jahagirdar BN, Reinhardt RL, Schwartz RE, Keene CD, Ortiz-Gonzalez XR, Reyes M, Lenvik T, Lund T, Blackstad M, Du J, Aldrich S, Lisberg A, Low WC, Largaespada DA, Verfaillie CM. Pluripotency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow. Nature. 2002 Jul 4;418(6893):41-9. doi: 10.1038/nature00870. Epub 2002 Jun 20. Erratum In: Nature. 2007 Jun 14;447(7146):879-80.
- Gupta N, Su X, Popov B, Lee JW, Serikov V, Matthay MA. Intrapulmonary delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells improves survival and attenuates endotoxin-induced acute lung injury in mice. J Immunol. 2007 Aug 1;179(3):1855-63. doi: 10.4049/jimmunol.179.3.1855.
- Lee JW, Fang X, Gupta N, Serikov V, Matthay MA. Allogeneic human mesenchymal stem cells for treatment of E. coli endotoxin-induced acute lung injury in the ex vivo perfused human lung. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Sep 22;106(38):16357-62. doi: 10.1073/pnas.0907996106. Epub 2009 Aug 31.
- Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, Pandey AC, Torres G, Go K, Phinney DG. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Jun 26;104(26):11002-7. doi: 10.1073/pnas.0704421104. Epub 2007 Jun 14.
- Rojas M, Xu J, Woods CR, Mora AL, Spears W, Roman J, Brigham KL. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Aug;33(2):145-52. doi: 10.1165/rcmb.2004-0330OC. Epub 2005 May 12.
- Fang X, Neyrinck AP, Matthay MA, Lee JW. Allogeneic human mesenchymal stem cells restore epithelial protein permeability in cultured human alveolar type II cells by secretion of angiopoietin-1. J Biol Chem. 2010 Aug 20;285(34):26211-22. doi: 10.1074/jbc.M110.119917. Epub 2010 Jun 16.
- Gupta N, Krasnodembskaya A, Kapetanaki M, Mouded M, Tan X, Serikov V, Matthay MA. Mesenchymal stem cells enhance survival and bacterial clearance in murine Escherichia coli pneumonia. Thorax. 2012 Jun;67(6):533-9. doi: 10.1136/thoraxjnl-2011-201176. Epub 2012 Jan 16.
- Krasnodembskaya A, Samarani G, Song Y, Zhuo H, Su X, Lee JW, Gupta N, Petrini M, Matthay MA. Human mesenchymal stem cells reduce mortality and bacteremia in gram-negative sepsis in mice in part by enhancing the phagocytic activity of blood monocytes. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2012 May 15;302(10):L1003-13. doi: 10.1152/ajplung.00180.2011. Epub 2012 Mar 16.
- Krasnodembskaya A, Song Y, Fang X, Gupta N, Serikov V, Lee JW, Matthay MA. Antibacterial effect of human mesenchymal stem cells is mediated in part from secretion of the antimicrobial peptide LL-37. Stem Cells. 2010 Dec;28(12):2229-38. doi: 10.1002/stem.544.
- Lee JW, Krasnodembskaya A, McKenna DH, Song Y, Abbott J, Matthay MA. Therapeutic effects of human mesenchymal stem cells in ex vivo human lungs injured with live bacteria. Am J Respir Crit Care Med. 2013 Apr 1;187(7):751-60. doi: 10.1164/rccm.201206-0990OC.
- Nemeth K, Leelahavanichkul A, Yuen PS, Mayer B, Parmelee A, Doi K, Robey PG, Leelahavanichkul K, Koller BH, Brown JM, Hu X, Jelinek I, Star RA, Mezey E. Bone marrow stromal cells attenuate sepsis via prostaglandin E(2)-dependent reprogramming of host macrophages to increase their interleukin-10 production. Nat Med. 2009 Jan;15(1):42-9. doi: 10.1038/nm.1905. Epub 2008 Nov 21. Erratum In: Nat Med. 2009 Apr;15(4):462.
- Mei SH, Haitsma JJ, Dos Santos CC, Deng Y, Lai PF, Slutsky AS, Liles WC, Stewart DJ. Mesenchymal stem cells reduce inflammation while enhancing bacterial clearance and improving survival in sepsis. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Oct 15;182(8):1047-57. doi: 10.1164/rccm.201001-0010OC. Epub 2010 Jun 17.
- Lee RH, Seo MJ, Reger RL, Spees JL, Pulin AA, Olson SD, Prockop DJ. Multipotent stromal cells from human marrow home to and promote repair of pancreatic islets and renal glomeruli in diabetic NOD/scid mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006 Nov 14;103(46):17438-43. doi: 10.1073/pnas.0608249103. Epub 2006 Nov 6.
- Parekkadan B, van Poll D, Suganuma K, Carter EA, Berthiaume F, Tilles AW, Yarmush ML. Mesenchymal stem cell-derived molecules reverse fulminant hepatic failure. PLoS One. 2007 Sep 26;2(9):e941. doi: 10.1371/journal.pone.0000941.
- Togel F, Hu Z, Weiss K, Isaac J, Lange C, Westenfelder C. Administered mesenchymal stem cells protect against ischemic acute renal failure through differentiation-independent mechanisms. Am J Physiol Renal Physiol. 2005 Jul;289(1):F31-42. doi: 10.1152/ajprenal.00007.2005. Epub 2005 Feb 15.
- Iso Y, Spees JL, Serrano C, Bakondi B, Pochampally R, Song YH, Sobel BE, Delafontaine P, Prockop DJ. Multipotent human stromal cells improve cardiac function after myocardial infarction in mice without long-term engraftment. Biochem Biophys Res Commun. 2007 Mar 16;354(3):700-6. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.01.045. Epub 2007 Jan 17.
- Schuleri KH, Feigenbaum GS, Centola M, Weiss ES, Zimmet JM, Turney J, Kellner J, Zviman MM, Hatzistergos KE, Detrick B, Conte JV, McNiece I, Steenbergen C, Lardo AC, Hare JM. Autologous mesenchymal stem cells produce reverse remodelling in chronic ischaemic cardiomyopathy. Eur Heart J. 2009 Nov;30(22):2722-32. doi: 10.1093/eurheartj/ehp265. Epub 2009 Jul 8.
- Miyahara Y, Nagaya N, Kataoka M, Yanagawa B, Tanaka K, Hao H, Ishino K, Ishida H, Shimizu T, Kangawa K, Sano S, Okano T, Kitamura S, Mori H. Monolayered mesenchymal stem cells repair scarred myocardium after myocardial infarction. Nat Med. 2006 Apr;12(4):459-65. doi: 10.1038/nm1391. Epub 2006 Apr 2.
- Hare JM, Traverse JH, Henry TD, Dib N, Strumpf RK, Schulman SP, Gerstenblith G, DeMaria AN, Denktas AE, Gammon RS, Hermiller JB Jr, Reisman MA, Schaer GL, Sherman W. A randomized, double-blind, placebo-controlled, dose-escalation study of intravenous adult human mesenchymal stem cells (prochymal) after acute myocardial infarction. J Am Coll Cardiol. 2009 Dec 8;54(24):2277-86. doi: 10.1016/j.jacc.2009.06.055.
- Gong Z, Niklason LE. Use of human mesenchymal stem cells as alternative source of smooth muscle cells in vessel engineering. Methods Mol Biol. 2011;698:279-94. doi: 10.1007/978-1-60761-999-4_21.
- Price AP, England KA, Matson AM, Blazar BR, Panoskaltsis-Mortari A. Development of a decellularized lung bioreactor system for bioengineering the lung: the matrix reloaded. Tissue Eng Part A. 2010 Aug;16(8):2581-91. doi: 10.1089/ten.TEA.2009.0659.
- Ishizawa K, Kubo H, Yamada M, Kobayashi S, Numasaki M, Ueda S, Suzuki T, Sasaki H. Bone marrow-derived cells contribute to lung regeneration after elastase-induced pulmonary emphysema. FEBS Lett. 2004 Jan 2;556(1-3):249-52. doi: 10.1016/s0014-5793(03)01399-1.
- Spees JL, Pociask DA, Sullivan DE, Whitney MJ, Lasky JA, Prockop DJ, Brody AR. Engraftment of bone marrow progenitor cells in a rat model of asbestos-induced pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2007 Aug 15;176(4):385-94. doi: 10.1164/rccm.200607-1004OC. Epub 2007 May 11.
- Spees JL, Whitney MJ, Sullivan DE, Lasky JA, Laboy M, Ylostalo J, Prockop DJ. Bone marrow progenitor cells contribute to repair and remodeling of the lung and heart in a rat model of progressive pulmonary hypertension. FASEB J. 2008 Apr;22(4):1226-36. doi: 10.1096/fj.07-8076com. Epub 2007 Nov 21.
- Bonfield TL, Koloze M, Lennon DP, Zuchowski B, Yang SE, Caplan AI. Human mesenchymal stem cells suppress chronic airway inflammation in the murine ovalbumin asthma model. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2010 Dec;299(6):L760-70. doi: 10.1152/ajplung.00182.2009. Epub 2010 Sep 3.
- Gao J, Dennis JE, Muzic RF, Lundberg M, Caplan AI. The dynamic in vivo distribution of bone marrow-derived mesenchymal stem cells after infusion. Cells Tissues Organs. 2001;169(1):12-20. doi: 10.1159/000047856.
- Cargnoni A, Gibelli L, Tosini A, Signoroni PB, Nassuato C, Arienti D, Lombardi G, Albertini A, Wengler GS, Parolini O. Transplantation of allogeneic and xenogeneic placenta-derived cells reduces bleomycin-induced lung fibrosis. Cell Transplant. 2009;18(4):405-22. doi: 10.3727/096368909788809857.
- Lee SH, Jang AS, Kim YE, Cha JY, Kim TH, Jung S, Park SK, Lee YK, Won JH, Kim YH, Park CS. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010 Feb 8;11(1):16. doi: 10.1186/1465-9921-11-16.
- Ortiz LA, Gambelli F, McBride C, Gaupp D, Baddoo M, Kaminski N, Phinney DG. Mesenchymal stem cell engraftment in lung is enhanced in response to bleomycin exposure and ameliorates its fibrotic effects. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003 Jul 8;100(14):8407-11. doi: 10.1073/pnas.1432929100. Epub 2003 Jun 18.
- Kotton DN, Ma BY, Cardoso WV, Sanderson EA, Summer RS, Williams MC, Fine A. Bone marrow-derived cells as progenitors of lung alveolar epithelium. Development. 2001 Dec;128(24):5181-8. doi: 10.1242/dev.128.24.5181.
- Sueblinvong V, Loi R, Eisenhauer PL, Bernstein IM, Suratt BT, Spees JL, Weiss DJ. Derivation of lung epithelium from human cord blood-derived mesenchymal stem cells. Am J Respir Crit Care Med. 2008 Apr 1;177(7):701-11. doi: 10.1164/rccm.200706-859OC. Epub 2007 Dec 6.
- Ma N, Gai H, Mei J, Ding FB, Bao CR, Nguyen DM, Zhong H. Bone marrow mesenchymal stem cells can differentiate into type II alveolar epithelial cells in vitro. Cell Biol Int. 2011 Dec;35(12):1261-6. doi: 10.1042/CBI20110026.
- Yamada M, Kubo H, Kobayashi S, Ishizawa K, Numasaki M, Ueda S, Suzuki T, Sasaki H. Bone marrow-derived progenitor cells are important for lung repair after lipopolysaccharide-induced lung injury. J Immunol. 2004 Jan 15;172(2):1266-72. doi: 10.4049/jimmunol.172.2.1266. Erratum In: J Immunol. 2004 Oct 1;173(7):4755.
- Chang JC, Summer R, Sun X, Fitzsimmons K, Fine A. Evidence that bone marrow cells do not contribute to the alveolar epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Oct;33(4):335-42. doi: 10.1165/rcmb.2005-0129OC. Epub 2005 Jun 16.
- Kotton DN, Fabian AJ, Mulligan RC. Failure of bone marrow to reconstitute lung epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005 Oct;33(4):328-34. doi: 10.1165/rcmb.2005-0175RC. Epub 2005 Jun 16.
- Kumamoto M, Nishiwaki T, Matsuo N, Kimura H, Matsushima K. Minimally cultured bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate fibrotic lung injury. Eur Respir J. 2009 Sep;34(3):740-8. doi: 10.1183/09031936.00128508. Epub 2009 Mar 26.
- Bitencourt CS, Pereira PA, Ramos SG, Sampaio SV, Arantes EC, Aronoff DM, Faccioli LH. Hyaluronidase recruits mesenchymal-like cells to the lung and ameliorates fibrosis. Fibrogenesis Tissue Repair. 2011 Jan 13;4(1):3. doi: 10.1186/1755-1536-4-3.
- Lee SH, Lee EJ, Lee SY, Kim JH, Shim JJ, Shin C, In KH, Kang KH, Uhm CS, Kim HK, Yang KS, Park S, Kim HS, Kim YM, Yoo TJ. The effect of adipose stem cell therapy on pulmonary fibrosis induced by repetitive intratracheal bleomycin in mice. Exp Lung Res. 2014 Apr;40(3):117-25. doi: 10.3109/01902148.2014.881930.
- Xu J, Mora A, Shim H, Stecenko A, Brigham KL, Rojas M. Role of the SDF-1/CXCR4 axis in the pathogenesis of lung injury and fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007 Sep;37(3):291-9. doi: 10.1165/rcmb.2006-0187OC. Epub 2007 Apr 26.
- Antoniou KM, Papadaki HA, Soufla G, Kastrinaki MC, Damianaki A, Koutala H, Spandidos DA, Siafakas NM. Investigation of bone marrow mesenchymal stem cells (BM MSCs) involvement in Idiopathic Pulmonary Fibrosis (IPF). Respir Med. 2010 Oct;104(10):1535-42. doi: 10.1016/j.rmed.2010.04.015. Epub 2010 May 18.
- Weiss DJ, Casaburi R, Flannery R, LeRoux-Williams M, Tashkin DP. A placebo-controlled, randomized trial of mesenchymal stem cells in COPD. Chest. 2013 Jun;143(6):1590-1598. doi: 10.1378/chest.12-2094.
- Weiss DJ, Chambers D, Giangreco A, Keating A, Kotton D, Lelkes PI, Wagner DE, Prockop DJ; ATS Subcommittee on Stem Cells and Cell Therapies. An official American Thoracic Society workshop report: stem cells and cell therapies in lung biology and diseases. Ann Am Thorac Soc. 2015 Apr;12(4):S79-97. doi: 10.1513/AnnalsATS.201502-086ST.
- Glassberg MK, Toonkel RL. Moving stem cell therapy to patients with idiopathic pulmonary fibrosis. Respirology. 2014 Oct;19(7):950-1. doi: 10.1111/resp.12364. Epub 2014 Aug 14. No abstract available.
- Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013 Jul 15;188(2):133-40. doi: 10.1164/rccm.201207-1204PP.
- Sundin M, Orvell C, Rasmusson I, Sundberg B, Ringden O, Le Blanc K. Mesenchymal stem cells are susceptible to human herpesviruses, but viral DNA cannot be detected in the healthy seropositive individual. Bone Marrow Transplant. 2006 Jun;37(11):1051-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1705368.
- Klyushnenkova E, Mosca JD, Zernetkina V, Majumdar MK, Beggs KJ, Simonetti DW, Deans RJ, McIntosh KR. T cell responses to allogeneic human mesenchymal stem cells: immunogenicity, tolerance, and suppression. J Biomed Sci. 2005;12(1):47-57. doi: 10.1007/s11373-004-8183-7.
- Le Blanc K, Tammik C, Rosendahl K, Zetterberg E, Ringden O. HLA expression and immunologic properties of differentiated and undifferentiated mesenchymal stem cells. Exp Hematol. 2003 Oct;31(10):890-6. doi: 10.1016/s0301-472x(03)00110-3.
- King P. Pathogenesis of bronchiectasis. Paediatr Respir Rev. 2011 Jun;12(2):104-10. doi: 10.1016/j.prrv.2010.10.011. Epub 2010 Nov 24.
- Weycker D, Edelsberg J, Oster G, Tino G. Prevalence and economic burden of bronchiectasis. Clin Pulm Med. 2005;12(4):205-9
- Seitz AE, Olivier KN, Adjemian J, Holland SM, Prevots DR. Trends in bronchiectasis among medicare beneficiaries in the United States, 2000 to 2007. Chest. 2012 Aug;142(2):432-439. doi: 10.1378/chest.11-2209.
- Bilton D, Tino G, Barker AF, Chambers DC, De Soyza A, Dupont LJ, O'Dochartaigh C, van Haren EH, Vidal LO, Welte T, Fox HG, Wu J, Charlton B; B-305 Study Investigators. Inhaled mannitol for non-cystic fibrosis bronchiectasis: a randomised, controlled trial. Thorax. 2014 Dec;69(12):1073-9. doi: 10.1136/thoraxjnl-2014-205587. Epub 2014 Sep 21.
- Rogers GB, Bruce KD, Martin ML, Burr LD, Serisier DJ. The effect of long-term macrolide treatment on respiratory microbiota composition in non-cystic fibrosis bronchiectasis: an analysis from the randomised, double-blind, placebo-controlled BLESS trial. Lancet Respir Med. 2014 Dec;2(12):988-96. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70213-9. Epub 2014 Oct 14. Erratum In: Lancet Respir Med. 2015 Apr;3(4):e15.
- Altenburg J, de Graaff CS, Stienstra Y, Sloos JH, van Haren EH, Koppers RJ, van der Werf TS, Boersma WG. Effect of azithromycin maintenance treatment on infectious exacerbations among patients with non-cystic fibrosis bronchiectasis: the BAT randomized controlled trial. JAMA. 2013 Mar 27;309(12):1251-9. doi: 10.1001/jama.2013.1937.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Actual)
Finalización del estudio (Actual)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Estimar)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (Actual)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- 20150627
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .