Denne siden ble automatisk oversatt og nøyaktigheten av oversettelsen er ikke garantert. Vennligst referer til engelsk versjon for en kildetekst.

Mikrofluidisk brikkemetode versus tetthetsgradientsentrifugeringsmetode på sædparametere

3. desember 2024 oppdatert av: Professor Ernest Hung-Yu Ng

Effekt av sædpreparering med en mikrofluidisk brikkemetode versus en tetthetsgradientsentrifugeringsmetode på sædparametere

Infertilitet påvirker mange par, med mannlig infertilitet som en vanlig årsak. In vitro fertilisering (IVF) er en effektiv behandling, men suksessratene er ikke høye. Sædkvalitet kan påvirke IVF-utfall, og den nåværende metoden som brukes til å behandle sæd kan skade sæd og DNA. Forskere tester nå en ny metode kalt mikrofluidisk brikketeknologi, som reduserer DNA-skader og øker sædcellenes bevegelse. Denne studien vil sammenligne effektiviteten av chipmetoden og den nåværende metoden på sædkvalitet hos menn som går på en fertilitetsklinikk. Studien vil tilfeldig tildele innsamlet sæd til en av de to metodene og vurdere sædkvaliteten ved hjelp av forskjellige tester, samt forskjellen i bruk av to forskjellige mikrofluidiske brikker. Det primære resultatet vil være DNA-fragmentering, og andre utfall inkluderer antall sædceller og motilitet. Sædprøver ville bli samlet inn fra studieobjekter for analyse og at både prøvene og resultatene ikke ville bli brukt i pasientbehandlingen.

Studieoversikt

Detaljert beskrivelse

Infertilitet rammer ett av seks par og blir mer vanlig ettersom mange kvinner utsetter ekteskap og fødsel av ulike årsaker. In vitro fertilisering (IVF) er den mest effektive behandlingen for par med langvarig infertilitet og har behandlet millioner av infertile par over hele verden siden den første fødselen av IVF ble rapportert for mer enn 40 år siden. Til tross for teknologiske fremskritt, forblir graviditets- og fødselsratene rundt 35 % og 25 % per overføring i Europa i 2018. Blant alle infertile par skyldes 20-30 % mannlig infertilitet. Sædparametere kan påvirke IVF-resultatene, og det ble antatt at det relative bidraget fra sæd til en levende fødsel er rundt 10-15 %.

IVF involverer hormoninjeksjoner for å stimulere en kvinnes eggstokker til å produsere et antall oocytter som samles opp ved en mindre operasjon og deretter blandes med sædceller for å danne embryoer i laboratoriet. Vanligvis overføres ett eller to embryoer til livmoren 2-5 dager etter oocyttuthenting. Ved IVF blir sædprøver produsert av ektemenn vanligvis behandlet med en tetthetsgradientsentrifugeringsmetode for å isolere de bedre sædceller for befruktning. Tetthetsgradientsentrifugeringen kan berike sædceller med relativt god motilitet og normal morfologi. Det er mulig å gjenvinne spermatozoer fra sædprøver med svært lav spermtetthet. Det kan gi et relativt godt utbytte. Det krever imidlertid teknisk opplæring å sette opp tetthetsgradienten bestående av to medier med ulik tetthet. Under sædbehandling sentrifugeres sædceller gjennom gradienten. Det er kjent at sentrifugering forårsaker betydelig skade på sædceller av de reaktive oksygenartene som produseres under prosessen. Reaktive oksygenarter er kjent for å være en av hovedårsakene som fører til sperm-DNA-fragmentering og påfølgende uheldige utfall, inkludert implantasjonssvikt og spontanabort. En meta-analyse viste at sæd-DNA-skade har en negativ effekt på klinisk graviditet etter IVF.

En mikrofluidisk brikke, som er en miniatyrisert enhet som inneholder kanaler og kamre i mikroskalaområdet for nanopartikkelpreparering, brukes nylig som en alternativ spermprepareringsteknikk. Ved å bruke mikrofluidisk teknologi kan sædceller gå gjennom brikken som tett simulerer det naturlige utvalget i det kvinnelige kjønnsorganets mikromiljø. Teknologien muliggjør valg av høykvalitets bevegelige sædceller fra sædprøver uten behov for sentrifugering, noe som fører til redusert dannelse av reaktive oksygenarter.

Studier har konsekvent vist at bruken av en mikrofluidisk chip-metode i stor grad reduserer DNA-fragmentering og øker motiliteten sammenlignet med tetthetsgradient-sentrifugeringsmetoden.

Denne randomiserte kontrollerte studien tar sikte på å sammenligne effekten av spermpreparering ved hjelp av en mikrofluidisk chipmetode versus en tetthetsgradient sentrifugeringsmetode på sædparametere før starten av en randomisert studie, som sammenligner effekten av de to spermprepareringsmetodene på de kumulative levefødselsratene på vitro befruktning.

Mål:

Det første målet med denne randomiserte kontrollerte studien er å sammenligne effekten av spermpreparering ved hjelp av en mikrofluidisk chipmetode versus en tetthetsgradientsentrifugering på sædparametere. Hypotesen er at bruk av sædpreparat ved en mikrofluidisk chip-metode forbedrer sædparametere.

Det andre målet er å sammenligne effekten av to forskjellige mikrofluidchipplattformer på sædparametere.

Prøvedesign:

Menn som går på Center of Assisted Reproduction and Embryology, Queen Mary Hospital for fertilitetsbehandling vil bli rekruttert.

Studietype

Intervensjonell

Registrering (Antatt)

80

Fase

  • Ikke aktuelt

Kontakter og plasseringer

Denne delen inneholder kontaktinformasjon for de som utfører studien, og informasjon om hvor denne studien blir utført.

Studiekontakt

Studiesteder

    • Hong Kong
      • Hong Kong, Hong Kong, Kina
        • Rekruttering
        • Department of Obstetrics and Gynaecology
        • Ta kontakt med:
          • Ernest HY NG, MD
          • Telefonnummer: 852-22553400
          • E-post: nghye@hku.hk
        • Hovedetterforsker:
          • Ernest HY NG, MD

Deltakelseskriterier

Forskere ser etter personer som passer til en bestemt beskrivelse, kalt kvalifikasjonskriterier. Noen eksempler på disse kriteriene er en persons generelle helsetilstand eller tidligere behandlinger.

Kvalifikasjonskriterier

Alder som er kvalifisert for studier

  • Barn
  • Voksen
  • Eldre voksen

Tar imot friske frivillige

Ja

Beskrivelse

Inklusjonskriterier:

  • Spermkonsentrasjon av den rå sæden med minst 5 millioner bevegelige sædceller per ml med et totalt volum på ikke mindre enn 1,5 ml.

Ekskluderingskriterier:

  • Spermkonsentrasjon av rå sæd på mindre enn 5 millioner bevegelige sædceller per ml
  • Menn kan ikke gi en ejakulert sædprøve

Studieplan

Denne delen gir detaljer om studieplanen, inkludert hvordan studien er utformet og hva studien måler.

Hvordan er studiet utformet?

Designdetaljer

  • Primært formål: Behandling
  • Tildeling: Randomisert
  • Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
  • Masking: Firemannsrom

Våpen og intervensjoner

Deltakergruppe / Arm
Intervensjon / Behandling
Eksperimentell: Mikrofluidisk brikkemetode
Sperm Separation Device - ZyMōt Multi 850µL-enhet (ZyMōt Fertility, Inc) vil bli brukt. Mikrofluidkammeret vil bli brukt basert på produsentens instruksjoner. 850 μL av sædprøven vil bli tilsatt innløpsporten på enheten og 750 μL befruktningsmedier vil bli tilsatt i utløpsporten. Enheten vil deretter bli inkubert i 6 % CO2 ved 37 °C. Etter 30 minutter vil 500 μL av den forberedte prøven ved utløpsporten bli fjernet og pipettert i et merket reagensrør. Det endelige volumet vil bli justert til 1 ml for spermtelling.
ZyMōt Multi 850µL-enheten er et laboratorieverktøy utviklet for bruk i assistert reproduksjonsteknologi (ART) prosedyrer som intrauterin inseminasjon (IUI) og in vitro fertilisering (IVF). Det er en spermforberedende enhet som bruker en proprietær patentert teknologi for å isolere og velge bevegelige sædceller fra sædprøver for bruk i ART-prosedyrer.
Aktiv komparator: Densitetsgradientsentrifugeringsmetode
Etter flytendegjøring vil spermpreparering fullføres med en diskontinuerlig tetthetsgradientsentrifugeringsmetode, ved bruk av Pureception (CooperSurgical, Danmark) spermtetthetsgradientmedier. Den resulterende spermpelleten etter sentrifugering vil bli vasket én gang med spermvaskemediet (G-IVF Plus, Vitrolife, Sverige). De vaskede spermatozoene resuspenderes med det samme mediet, og justerer det endelige volumet til 500 μL. Det endelige volumet vil bli justert til 1 ml for spermtelling.
Tetthetsgradientsentrifugering er en laboratorieteknikk som brukes til å separere og isolere forskjellige typer celler eller partikler basert på deres tetthet. Det er ofte brukt i ulike applikasjoner, inkludert cellebiologi, immunologi og assistert reproduksjonsteknologi (ART).

Hva måler studien?

Primære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
DNA-fragmentering ved Comet-analyse
Tidsramme: 1 måned
Måling av DNA-fragmentering ved Comet-analyse ved å bruke Olive tail-momentet som kvantitativ metrikk.
1 måned

Sekundære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Antall sædceller
Tidsramme: 1 måned
Antall sædceller
1 måned
Fremover motilitet
Tidsramme: 1 måned
Vurdering av fremadrettet motilitet av sæd ved manuell observasjon ved bruk av Verdens helseorganisasjons (WHO) kriterier.
1 måned
Morfologi
Tidsramme: 1 måned
Kvantitativ vurdering av sædmorfologi ved manuell observasjon ved bruk av Tygerbergs strenge kriterier.
1 måned
Sperm aneuploidi
Tidsramme: 1 måned
Kvantitativ måling av spermaeuploidi ved fluorescens in situ hybridisering (FISH) ved bruk av prober for kromosom X, Y, 13, 18 og 21.
1 måned
Kalsiumionofor A23187-indusert akrosomreaksjonsanalyse
Tidsramme: 1 måned
Kvantitativ måling av akrosomreaksjon i sædceller indusert av kalsiumionofor A23187 ved bruk av flowcytometri.
1 måned
Intakt oocytt/hemizona bindingsanalyse
Tidsramme: 1 måned
Kvantitativ måling av spermbinding til intakte oocytter eller hemizona ved bruk av intakt oocytt/hemizona-bindingsanalyse.
1 måned
Spermhastigheter målt av CASA
Tidsramme: 1 måned
Kvantitativ analyse av spermhastigheter ved bruk av datamaskinassistert spermanalyse (CASA) system, inkludert vurdering av forovermotilitet, krumlinjet hastighet og linearitet.
1 måned
Analyse av kunstig intelligens
Tidsramme: 1 måned
Kvantitativ analyse av spermmorfologi ved bruk av kunstig intelligensalgoritmer.
1 måned

Samarbeidspartnere og etterforskere

Det er her du vil finne personer og organisasjoner som er involvert i denne studien.

Studierekorddatoer

Disse datoene sporer fremdriften for innsending av studieposter og sammendragsresultater til ClinicalTrials.gov. Studieposter og rapporterte resultater gjennomgås av National Library of Medicine (NLM) for å sikre at de oppfyller spesifikke kvalitetskontrollstandarder før de legges ut på det offentlige nettstedet.

Studer hoveddatoer

Studiestart (Faktiske)

1. juli 2023

Primær fullføring (Antatt)

31. mars 2025

Studiet fullført (Antatt)

31. mars 2025

Datoer for studieregistrering

Først innsendt

29. juni 2023

Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene

29. juli 2023

Først lagt ut (Faktiske)

7. august 2023

Oppdateringer av studieposter

Sist oppdatering lagt ut (Antatt)

5. desember 2024

Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene

3. desember 2024

Sist bekreftet

1. desember 2024

Mer informasjon

Begreper knyttet til denne studien

Ytterligere relevante MeSH-vilkår

Andre studie-ID-numre

  • UW 23-233

Plan for individuelle deltakerdata (IPD)

Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?

NEI

Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter

Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt

Nei

Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt

Ja

produkt produsert i og eksportert fra USA

Ja

Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .

Abonnere